Name: chemical amputation and regeneration of the pharynx in the planarian schmidtea mediterranea
Uploaded: 2018-03-26T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 14 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Chemical Amputation and Regeneration of the Pharynx in the Planarian Schmidtea mediterranea at JoVE.com

우리는 감사 알 산체스 알 바로, 초기 최적화 및이 기술 개발을 지원 하 고 싶습니다. 캐롤 린 애 들러의 실험실에 일 코넬 대학 시작 기금에 의해 지원 됩니다.

1입니다. 준비
<ol><li>
Planaria 물 준비 17<ol>
<li>1 X Montjuïc 소금 솔루션에서 planarians을 유지 관리 합니다. 준비 planarian 물, 개별 재고 솔루션 1 M CaCl2, 1m MgSO4, 1 M MgCl2, 1 M KCl과 초순에 5 M NaCl을 확인 합니다. 필터-0.2 µ m 병 맨 filterfor 장기 저장과 소독. 참고: (25 ° C에서 18.2 m ω의 저항)와 초순 이온을 제거 된 물만을 사용 하 여 준비 계곡이 소금.</li>
		<li>5 X 소금 솔루션의 1 리터 재고를 준비 하려면 1 M CaCl2, 1m MgSO4, MgCl2, KCl과 900 mL 초순에 5 M NaCl 솔루션의 1.6 mL 0.5 mL의 0.5 mL의 5 mL의 5 mL을 결합 합니다. 이 솔루션에 NaHCO3 0.504 g를 추가 하 고 섞어 저 어. 염 산 7.0에 pH를 조정 합니다.</li>
		<li>두이 일 농도 대용량 유리병 등 무 균 용기에 초순에 X 1 재고 솔루션 배 희석 ( 재료의 표참조). 이 1 배 솔루션을 사용 하 여 성별이 없는 planarians를 유지 하기 위한. 참고: 계곡이 소금 솔루션, 사용 하 여 로컬로 구입한 봄 물 또는 상용 수족관 소금 포함 된 초순 농도 of0.5 g/L18( 재료의 표참조)를 혼합.</li>
		<li>정적 문화19에 세균 감염을 방지 하기 위해 항생제를 포함 하는 물에서 planarians을 유지 관리 합니다. 50 mg/mL 초순에 gentamicin 황산의 재고 솔루션을 준비 하 고 필터를 소독. 동물 유지는 컨테이너, gentamicin 황산 50 µ g/mL (1:1000 희석)의 최종 농도에 추가 합니다.</li>
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간 붙여넣기의 준비
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<li>Planarians 유기의 다이어트에 성공할 풀을 먹이 쇠고기 간, 구매 신선한 간 고 24 h. 프로세스 제거 부드럽게 벗 여 간 캡슐화 막 캡슐. 간 ~ 1 cm 조각으로 잘라 하 고 블레이드를 사용 하 여 다쳤어요을 모든 간 정 맥과 동맥을 삭제.</li>
		<li>Macerate 간 조각 음식 밀 또는 푸드 프로세서를 사용 하 고 와이어 메쉬 음식 스 트레이너를 통해 전달 합니다. 과자 봉지에 결합 하 고 주사기 또는 35 mm 페 트리 접시로 분배. 수 유, 전에 기포 제거를 부드럽게 원심.</li>
		<li>간 1 년 및 이전에 사용 하 여 해 동-80 ° C에서의 aliquots를 저장 합니다. 녹고, 후 다시 한 번, 어떤 남은 간 동결 또는 24 h까지 4 ° C에서 저장.</li>
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동물의 유지 보수
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<li>Planarians는 성장 하 고 먹이 기의 주파수에 따라 다양 한 크기로 축소 됩니다. 피드 planarians 모든 다른 주 (14 일에 한 번). 장기적인 대량 문화에 대 한 ( 재료의 표참조) 다양 한 크기의 플라스틱 용기를 사용 합니다.</li>
		<li>동물 먹이 상자에 간 한 완두콩 크기의 방울을 배치 하는 금속 주걱 또는 플라스틱 전송 피펫으로 사용 합니다. 동물 상자를 청소 하기 전에 1-2 헤 제거 나머지 음식 먹을 수 있습니다.</li>
		<li>먹이 하지 않을 경우 벌레 먹이 (직접 수 유 후 한 번 그리고 한 번 2 일 후), 면 주 2 회 또는 주 1 회 청소. 청소, 상자에서 planarians를 유지 하면서 신중 하 게 물을 붓는 의해 플라스틱 비 커에 물을 드레인. 상자 표면 종이 타월로 닦아 다음 상자는 깨끗 한 때까지 모든 면에서 반복.</li>
		<li>물 (약 ¾ 상자 볼륨)를 장착 하 고 50 µ g/mL의 최종 농도에 gentamicin 추가. 어두운 캐비닛에 또는 20 ° C 배양 기에서 동물을 저장 합니다.</li>
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</li>
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벌레의 선택
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<li>5-7 일 이전 지 루 했다 벌레를 선택 합니다. 참고: 그것은 훨씬 더가 최근 (1-2 일전 절단) 먹이 벌레에서 pharynges 절단 어렵다. 먹이 동물 또한 더에 민감합니다 나트륨 아 지 드.</li>
		<li>벌레는 약 6 m m 길이 선택 합니다. 벌레의 크기를 예측 하려면 플라스틱 전송 피 펫을 사용 하 여 배양 접시에 그것을 전송. 플랫 6-에서 눈금자 또는 페 트리 접시 아래 5 x 5 mm 방안 놓고 그것을 크롤 링 하는 동안 벌레 길이 측정 합니다. 참고: 길이 6 m m 보다 작은 벌레는 절단 하기 더 어렵다.</li>
	</ol>
</li>
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나트륨 아 지 드의 준비
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<li>나트륨 아 지 드 가루 planaria 물에 용 해 하 여 100 m m 솔루션을 준비 합니다. 주의: 나트륨 아 지 드 독성 이며 신중 하 게 처리 해야 합니다. 나트륨 아 지 드 구로 버리지 마십시오. 다음 사용 하 여, 개별적으로 유해 폐기물 처리에 대 한 수집.</li>
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</li>
</ol>2. 인 두 절단
<ol><li>장소는 직경 35 mm 페 트리 접시에에서 벌레. 조심 스럽게 플라스틱 전송 피펫으로 사용 하 여 접시에서 모든 planarian 물 제거. 참고: 20 6 mm 웜 최대이 크기의 접시에 편안 하 게 가질 수 있습니다.</li>
	<li>현미경 아래 접시를 놓고 여러 벌레를 동시에 볼 수 있도록 확대 조정 (예: 10 배 확대). 100mm 나트륨 아 지 드 솔루션에 planarian 물을 바꿉니다. 참고: 35 mm 페 트리 접시, 나트륨 아 지 드의 약 5 mL는 충분 합니다. 솔루션에는 planarians 잠수함 완전히 한다. 필요에 따라 더 큰 접시를 위한 솔루션 볼륨을 조정 합니다.</li>
	<li>현미경 및 이동 하는 첫 번째 3-4 분 요리에서 후 렴에서 동물을 모니터링 합니다.</li>
	<li>인 두의 돌출; 현미경을 통해 관찰 인 두 인 두 주머니에서 밀려 나 되며 완전히 확장 (길이 약 1 m m) 그림 1B와 같이. 참고: 그것은 인 두 더 진행 하기 전에 완전히 확장 완료 될 때까지 대기 하는 것이 중요입니다. 인 두는 동물에서 나온다, 일단 전체 확장 약 1 분 걸립니다.</li>
	<li>사용 하 여 플라스틱 전송 피펫으로 접시 주위 동물 물 총. 피펫으로에 동물을 빨 아 하 고 강제로 그들을 풀어 접시에 몇 번. 이 활기찬 pipetting 인 두 완전히 확장, 분리를 발생 합니다.</li>
	<li>그림 1C와 같이 또는 그것의 길이 따라 세로 또는 가로로 미세 집게 ( 재료의 표참조)의 쌍을 사용 하 여 그것의 둘레에 따라 인 두를 파악. 집게에 슬쩍 하는 인 두와 함께 위쪽으로 초승달 모양으로 동물을 들어올립니다. 동물 발생으로 표면 장력 동물 로부터 분리 하 인 두를 발생 합니다. 참고: 강력한 소용돌이 없는 적절 한 작은 동물 (1-3 m m 길이)의 pharynges를 제거 하려면이 메서드를 사용할 수 있습니다. 파고 또는 다른 동물의 신체 부상 하지 마십시오.</li>
	<li>전송 피펫으로 사용 하 여 신선한 planaria 물을 포함 하는 새로운 요리를 절단된 동물을 이동 합니다.</li>
	<li>일단, 절단된 동물 planaria 물, 완전히 교환 물 세 번에 철저 하 게 린스. Gentamicin의 50µg/mL와 planaria 물을 포함 하는 새로운 접시에 전송. 참고: 이러한 세 가지 세척 하는 동안 완전 한 버퍼 교환 나트륨 아 지 드의 제거를 위해 필수적입니다.</li>
	<li>다음 날, 신선한 planaria 물 gentamicin의 50 µ g/mL를 포함 하는 접시에 물을 바꿉니다. 그 후 모든 다른 일을 반복 합니다.</li>
</ol>3입니다. 절단 후 인 두 제거의 평가
<ol><li>그림 2A와 같이 어두운 장소는 인 두의 성공적인 제거 후 등장 했다 여부 결정 (10-20 배 확대)와 현미경 동물을 검사 합니다.</li>
	<li>또는, 수정 하 고 표 백제 피어슨 연구진이 설명 하는 프로토콜에 따라 동물 20. 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) 또는 streptavidin 붙일 활용에 하룻밤 담가 동물 (1 mg/mL 희석 1: 500 X 0.3%를 포함 하는 인산 염 Buffered 염 분 1에 트리톤 X). 80% glycerol/20% 1 X 인산 Buffered 염 분 및 형광 stereomicroscope (그림 2B) 아래 이미지에에서 슬라이드에 동물을 탑재 합니다. 참고: 이 원고에 있는 모든 이미지는 1.0 X 목적으로 형광 stereomicroscope에 체포 했다.</li>
</ol>4. 먹이 행동을 측정 하 여 인 두 중생의 평가
<ol><li>
간의 준비
	<ol>
<li>Microcentrifuge 또는 원뿔 튜브로 간 붙여넣기의 필요한 수량을 전송 합니다. 짧게 공기 방울을 제거 하려면 회전. 간, 양을 견적 하 고 그 볼륨의 1/5와 빨간 식용 색소의 총 볼륨의 2 %planaria 물 추가. 예를 들어 1000 µ L 간 붙여넣기를 planaria 물 200 µ L 24 µ L의 식용 색소를 추가 합니다.</li>
		<li>Using 플라스틱 유 봉, 피 펫 팁 또는 금속 주걱, 식용 색소는 간 붙여넣기에 고르게 분포 되어 때까지 철저 하 게 혼합. 다시 짧게 스핀. 간 붙여넣기 24 h 4 ° C에서 저장 하거나 장기 저장을 위한-80 ° C에서 aliquots에 동결 될 수 있습니다.</li>
		<li>최대 25 동물 테스트, 접시 (약 1 µ L 당 동물 간 붙여넣기의) 당 간 붙여넣기의 25 µ L를 준비.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
동물 먹이
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<li>화학 절단 후 7 일 새로운 배양 접시에 동물을 전송. 10-15 동물 테스트를 사용 하 여 35mm 접시; 15 동물 60 mm 페 트리 접시에 시험 되어야 한다. 어둠 속에서, 그대로, 약 1 시간 전에 수 유에 대 한 동물을 유지.</li>
		<li>가 위를 사용 하 여, 좁은 엔드의 ½ cm 대략 트리밍에 의해 P200 피 펫 팁의 너비를 늘립니다. 피펫으로 25 µ L의 접시에 빨간 간 붙여넣기. 참고: 트리밍 끝 pipetting 점성 간 붙여넣기 쉽게 만든다. 간 표면에 떠 있는 않도록 분배 하는 동안 접시의 바닥에 팁을 터치 합니다.</li>
		<li>30 분 동안 먹을 동물을 수 있습니다.</li>
		<li>흰색 바탕에 동물을 배치 하거나 10-20 배 확대 현미경 아래에서 그들을 검토 하 여 먹은 동물의 수를 점수.</li>
		<li>수 유, 후 간 접시에서 제거 하 고 청소 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Tanaka, E. M., Reddien, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cellular+basis+for+animal+regeneration.">The cellular basis for animal regeneration.</a> Dev. Cell. 21, 172-185 (2011).</li><li>Tanaka, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Molecular+and+Cellular+Choreography+of+Appendage+Regeneration.">The Molecular and Cellular Choreography of Appendage Regeneration.</a> Cell. 165, 1598-1608 (2016).</li><li>Curado, S., Stainier, D. Y. R., Anderson, R. 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저자는 공개 없다.

이 프로토콜 나트륨 아 지 드를 사용 하 여 인 두의 선택적 절제 하는 방법을 설명 합니다. Planarians에 다른 대상된 제거 연구 대뇌21 또는 약리 치료 dopaminergic 신경22ablate을 제거 하려면 수정된 수술을 사용 했습니다. 기존 방법에 비해 화학 절단의 중요 한 장점 중 하나입니다 그것은 수술을 요구 하지 않습니다. Planarian 시체의 나머지 부분에 비해 인 두의 경직 된 구조는 훨씬 부드러운 바디는 동물에서의 완전 한 제거를 촉진 한다. 또한, 인 두 인 두과 소장, 생성 하는 큰 수술 도구에 의해 유도 된 하나 보다 더 재현 상처 작은 접합 (식도)30 동물에서 분리 합니다. 그것의 물리적 특성 및 동물의 나머지 부분에 작은 해 부 연계를 바탕으로, 인 두 제거 따라서 다른 수술 사지 보다 더 균질 상처 생성 합니다.
나트륨 아 지 드에 노출의 길이 또한이 기술의 성공을 위해 긴요 하다. 나트륨 아 지 드에 짧은 노출 planarians 영향을 악영향을 주지 않습니다, 비록 장기간된 노출 독성 이며 결국 동물을 죽 일 것 이다. 나트륨 아 지 드 시 토 크롬 산화 효소23,24의 억제를 통해 에너지 종속 프로세스 억제로 알려져 있다. 또한, 전사 및 번역, 가능성이 스트레스과 립25에서이 반응의 주요 성분의 축적으로 하지 않습니다. Planarians, 나트륨 아 지 드 노출 후 셀 재개 확산1224 h에 대 한 유사 분열을 억제 합니다. 수정 이러한 한계를 극복 하는 아 지 드 노출 시간 제한, 실험 설계에 철저 한 rinsing, 그리고 과도 mitotic 억제를 위한 회계와 아 지 드를 제거 도울 수와 같은.
인 두 및 그것의 특성 방사형 대칭의 독특한 해 부 위치 새로 거듭난 인 두 조직의 기존 줄기 세포에서 쉽게 구별 하실 수 있습니다. 인 두 재생 조직 얼룩 제자리에서 교 잡26또는 streptavidin DAPI immunohistochemistry, 같은 사용 하 여 셀룰러 및 해 부 수준에서 모니터링할 수 있습니다. 먹이 분석 결과 설명 여기는 인 두의 기능 재생을 분석 실험. 음식 향해 chemotaxis 인 두27,28 필요 하 고 완전 한 기능 인 두 없이 동물 음식 섭취 수 없습니다. 이 간단 하 고, 양적 평가의 장기의 기능 구조 재생 보완 하는 따라서. 또한 화학 절단 동물의 인구에 수행할 수 있으며 동일한 부상으로 수많은 동물을 생성할 수 있습니다. 절차는 따라서 대규모 연구에 대 한 편리한. 줄기 세포, 성숙 인 두의 재생에 필요 하다는 사실과 함께 이러한 장점 인 두 절단 장기 재생을 공부 하는 이상적인 모델을 만든다. 광범위 한 사지와 함께에서 사용, 인 두 제거 상처 크기와 해 부 위치에 미치는 재생 필드21에 중요 한 질문은 상해에 줄기 세포 반응에 대 한 가설 테스트를 사용할 수 있습니다.

재생 재생 용량 전신 재생 특정 무척 추 동물에서에서 척추1에서 더 제한 된 능력에 이르기까지 동물의 왕국에 걸쳐 발생 하는 현상입니다. 교체 기능 조직의 복잡 한 과정이 고 종종 여러 종류의 세포 동시 복원을 수반 한다. 예를 들어 도롱뇽 다리, osteoblasts, chondrocytes, 신경, 근육, 그리고 될 필요가 상피 세포를 다시 생성 하려면2를 대체 합니다. 이 새로 생성 된 셀 형식 또한 새로운 다리 기능을 촉진 하기 위하여 제대로 구성 해야 합니다. 이러한 복잡 한 프로세스를 이해 기법을 재생 특정 세포 유형 및 기관으로의 통합에 초점을 해야 합니다.
재생 반응의 연구를 단순화 하기 위해 고용 전략 중 하나입니다 대상된 제거 중 특정 종류의 세포 또는 조직의 더 큰 컬렉션. 예를 들어 zebrafish, 표현의 특정 셀에 nitroreductase 그들의 파괴 후에 metronidazole3,4의 응용 프로그램을 리드. 초파리 애벌레에서 조직의 특정 발기인에서 프로-apoptotic 유전자 표현 imaginal 디스크5,6의 특정 지역 ablate 선택적으로 수 있습니다. 모두 이러한 전략의 손상을 신속 하지만 제어, 그리고 분자 및 세포 재생에 대 한 책임 메커니즘을 해 부에 사용 되었습니다.
이 원고에서 우리는 선택적으로 ablate planarian Schmidtea 서인 두 라는 전체 장기 하는 방법을 설명 합니다. Planarians는 그들의 다 작의 재생 능력에 대 한 알려진 중생의 클래식 모델도 분 조각 전체 동물 7,8을 regrow 수 있습니다. 그들은 줄기 세포를 만능 세포와 혈통 제한 창시자9,,1011의 구성의 큰, 이질적인 인구가 있다. 이 세포는 증식 하 고 인 두, 신경, 소화 및 배설 시스템, 그리고 근육과 상피 세포9,,1012를 포함 하 여 모든 누락 된 조직을 대체 하 차별화 합니다. 우리가 알고 있지만 이러한 줄기 세포 재생을 시작, 우리가 완전히 이러한 모든 다른 세포 유형 대체 몰아 분자 메커니즘을 이해 하지 않습니다. 정확한 줄기 세포 응답을 이끌어내는 정의 부상 방법이 복잡 한 과정의 윤곽을 그리 다 수 있습니다.
인 두, 수 유에 필요한 대형 원통형 튜브 이며, 신경, 근육, 분 비 상피 세포13,29를 포함 합니다. 일반적으로 동물의 복 부 측에 주머니에 숨겨져, 동물의 단일 신체 식품의 존재를 감지 시 열기를 통해 확장 합니다. 선택적으로 인 두를 절단, 하 우리 라는 화학 나트륨 아 지 드, 선 충 C.14,,1516에 일반적으로 사용된 마 취에서에서 planarians를 담근 다. Planarians에 그것의 사용 처음 애 들러 외에 의해 보고 되었다., 2014 년12. 나트륨 아 지 드에 노출의 몇 분 안에 planarians 돌출 그들의 pharynges, 그리고 부드러운 동요와 인 두 동물에서 분리. 우리는 인 두의이 완전 하 고 선택적 손실 "화학 절단"로 참조 하십시오. 1 주일 후 절단, 완전 한 기능 인 두 복원된12입니다. 인 두 먹이 기를 위해 필요 하기 때문에, 기능 재생 먹이 행동을 모니터링 하 여 측정할 수 있습니다. 아래, 우리는 화학 절단 및 인 두의 재생 및 복원의 먹이 행동을 평가 하기 위한 프로토콜을 설명 합니다.

<table><tbody><tr><td>Calcium Chloride Dihydrate (CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)</td><td>Fisher Chemical</td><td>C79-3</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Magnesium Sulfate Anhydrous (MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Fisher Chemical</td><td>M65-3</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Magnesium Chloride Hexahydrate (MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)</td><td>Acros/VWR</td><td>41341-5000</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Potassium Chloride (KCl)</td><td>Acros Organics/VWR</td><td>196770010</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Sodium Chloride (NaCl)</td><td>Acros Organics/VWR</td><td>207790050</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Sodium Bicarbonate (NaHCO3)</td><td>Acros Organics/VWR</td><td>123360010</td><td>Montju&amp;iuml;c salt solution</td></tr><tr><td>Nalgene autoclavable polypropylene copolymer lowboy with spigot</td><td>ThermoFisher Scientific/VWR</td><td>2324-0015</td><td>Storing planaria water</td></tr><tr><td>Instant Ocean Sea Salt</td><td>Spectrum Brands</td><td>Amazon</td><td>Planaria water</td></tr><tr><td>Gentamicin Sulfate</td><td>Gemini Bio-products</td><td>400-100P</td><td>Planaria water</td></tr><tr><td>Razor blades</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>71970</td><td>Mincing liver&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Disposable pastry bags-16&amp;rdquo;, 12 pack</td><td>Wilton</td><td>Amazon</td><td>Liver aliquots</td></tr><tr><td>5 mL syringes</td><td>BD/VWR</td><td>309647</td><td>Liver aliquots</td></tr><tr><td>Petri dishes-35mm/60mm</td><td>Greiner Bio-One/VWR</td><td>82050-536/82050-544</td><td></td></tr><tr><td>Plastic containers (various sizes)</td><td>Ziploc</td><td>Amazon</td><td>Housing planarians in static culture</td></tr><tr><td>Sodium Azide</td><td>Sigma</td><td>S2002</td><td></td></tr><tr><td>Transfer pipette</td><td>Globe Scientific</td><td>138030</td><td></td></tr><tr><td>Forceps - Dumont Tweezer, Style 5</td><td>Electron Microscopy Sciences&amp;nbsp;</td><td>72700-D (0203-5-PO)</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>DAPI&amp;nbsp;</td><td>ThermoFisher</td><td>62247</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidin, Alexa Fluor 488 conjugate</td><td>ThermoFisher</td><td>S11223</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP229-1</td><td></td></tr></tbody></table>

chemical amputation and regeneration of the pharynx in the planarian schmidtea mediterranea

Planarians는 flatworms는 중생에서 매우 효율적인. 그들은 빚이 수 많은 부상의 모든 종류에 신속 하 게 응답할 수 있는 줄기 세포. 이 동물에 일반적인 부상 모델 조직, 여러 장기를 손상의 다량을 제거 합니다. 극복 하기 위해이 광범위 한 조직 손상, 여기 planarian Schmidtea 지중해에서 단일 기관, 인 두를 선택적으로 제거 하는 방법을 설명 합니다. 우리는 시 토 크롬 산화 효소 억제제 나트륨 아 지 드를 포함 하는 솔루션에 몸을 담글 동물에 의해 이것을 달성. 나트륨 아 지 드에 짧은 노출 우리가 "화학 절단" 이라고 부르는 동물에서 인 두의 돌출을 하면 화학 절단 전체 인 두를 제거 하 고 작은 상처 인 두 소장에 연결을 생성 합니다. 광범위 한 rinsing 후 모든 절단된 동물 약 1 주일에서 완전 한 기능 인 두를 다시 생성 합니다. 줄기 세포는 시체의 나머지 부분에서 새로운 인 두의 재생 드라이브. 여기, 우리는 자세한 제공 화학 절단에 대 한 프로토콜 및 성공적인 절단 및 중생을 평가 하기 위해 조직학 및 행동 방법을 설명.

나트륨 아 지 드에 노출 동물 스트레칭 하 고 몸부림을 일으키는 planarians의 정상적인 운동 성 방해. 이러한 움직임은 동물의 복 부 측에서 등장 하는 인 두 고 나트륨 아 지 드 솔루션에서 약 6 분, 후 인 두의 흰색 팁을 볼 수 있다 (그림 1B-왼쪽된 패널). 몇 분 후, 동물 적극적으로 계약 하 고 완전히 몸 밖으로 강제로 그것을 추진 하 여 인 두를 확장. (그림 1B-중간 패널). 약 아 지 드 노출 후 11 분, 동물 및 인 두 긴장. 이 단계에서 인 두의 특성 종 형태는 명확 하 게 보이는 (그림 1B-오른쪽 패널). 쉽게 절단에 대 한 긴장을 인 두에 대 한 기다려야 중요 하다.
인 두는 크기 때문에, 절단된 동물 (그림 2A)의 등 쪽 측에 어두운 반점의 외관 unpigmented 질량 조직, 제거의 결과. 이 어두운된 영역은 살아있는 동물에서 성공적인 절단의 시각적 표시기입니다. 자리는 절단 후 즉시 표시 하 고 날 더 저명한 된다. 인 두 재생성로이 지역이 밝아집니다. 인 두 재생을 보다 정확 하 게 모니터링할 동물 DAPI 또는 streptavidin 붙일 활용 된 얼룩이 질 수 있다 (그림 2B)하룻밤. 정량적 인 중생의 정도 평가, ImageJ 소프트웨어를 사용 하 여 그 영역을 측정 수 있다.
인 두는 chemosensation와 식품 섭취에 대 한 필수적인 기관 이다. 확인 하려면 이러한 함수를 재생성 하는 동안 복원 되 면, 우리 사용 먹이 분석 실험 동물의 행동을 모니터링. 음식 간 페이스트와 색소를 결합해 서, (그림 3A)하지 않은에서 먹은 동물을 구별할 수 있었습니다. 우리는 다음 기능 인 두 동물의 비율을 평가 하기 위해 붉은 동물의 수를 측정할. 그림 3B에 표시 된 결과 바탕으로, 성공적인 먹이 행동 인 두 제거 후 1 주일 동물 기능 인 두 재생성 해야 나타내는 절단 후 7 일 복원 되었습니다. 나트륨 아 지 드 노출 영향 먹이 동작을 테스트 하려면 우리 나트륨 아 지 드에 동물을 배어 그러나 인 두 방출 직전 그것을 밖으로 씻어. 언젠가 나중에, 우리는 음식 찾는 행동은 먹이 분석 결과와 나트륨 아 지 드 노출 변경 여부를 평가. 화학적으로 절단 동물 부족 인 두, 나트륨 아 지 드 노출 먹은 후 그대로 인 두를 유지 하는 모든 동물 달리 (n = 각 조건에 대해 30 동물) 음식. 이 결과 인 두 그대로 남아로 나트륨 아 지 드 노출 먹이 동작에는 영향을 미치지 않습니다 나타냅니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57168/57168fig1.jpg"> 그림 1 . 인 두 방출 및 절단. (A) 회로도 planarian 해부학의 (B) 인 두 방출 100mm 나트륨 아 지 드에 젖어 시를 보여주는 살아있는 동물의 이미지. 빨간색 화살표는 인 두를 강조 표시합니다. 스케일 바 = 750 µ m. (C) 의 이미지 라이브 동물 (왼쪽)와 집게를 사용 하 여 절단의 회로도 (오른쪽). 패널 인 두를 잡지에 대 한 두 가지 옵션을 보여줍니다. 동물의 복 부 측 얼굴. 스케일 바 = 500 µ m. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57168/57168fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57168/57168fig2.jpg"> 그림 2 . 인 두 절단 및 중생의 평가입니다. (A) 에 라이브 동물의 대표 이미지 지정 시간 절단 전후. 가운데 패널 절단, 점선된 흰색 상자에 의해 강조 후 인 두 지역에서 어두운 자리를 보여줍니다. 지 면 향하도록합니다. 스케일 바 = 500 µ m.에 Alexa488 streptavidin 물 동물의 이미지 (B) 대표 지정 하기 전에 시간과 절단 후. 가운데 패널 절단 후 인 두의 부재를 보여줍니다. 흰색 상자에 의해 강조 하는 인 두 지역. 복 부 면합니다. 눈금 막대 = 500 µ m. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57168/57168fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57168/57168fig3.jpg"> 그림 3. 인 두 중생의 평가입니다. (A) 이미지와 간 25 µ l 60 mm 페 트리 접시의 중앙에 배치 하 여 실시 하는 분석 결과 먹이 기의 개략도. 회로도 (맨 위, 왼쪽) 및 이미지 (가운데) 쇼 동작 그대로 pharynges 동물에 먹이 먹은 동물의 상단 오른쪽, 이미지. 회로도 (왼쪽 하단) 그리고 행동 동물에 먹이 절단 후에 1 일의 이미지 (가운데). 먹지는 하단 오른쪽, 동물입니다. 눈금 막대 = 750 µ m. 먹이의 (B) 결과 분석 결과. 절단 후 특정 시간에 (빨간 채색에 의해 계량) 식품을 섭취 한 동물의 비율입니다. 각 시간 포인트, n = 10 동물, 3 중에 반복. 오차 막대 sd. = <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57168/57168fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Chemical Amputation and Regeneration of the Pharynx in the Planarian Schmidtea mediterranea

화학 절단 및 Planarian Schmidtea 지중해 에 인 두의 재생

Schmidtea 서 planarian 줄기 세포 및 조직 재생을 공부에 대 한 우수한 모델입니다. 이 게시는 선택적으로 한 기관, 인 두, 화학 나트륨 아 지 드를 동물을 노출 하 여 제거 하는 방법을 설명 합니다. 이 프로토콜은 또한 인 두 재생을 모니터링 하기 위한 방법을 설명 합니다.

Planarians are flatworms that are extremely efficient at regeneration. They owe this ability to a large number of stem cells that can rapidly respond to ...

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Nanyang Technological University

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Developmental Biology

Chemical Amputation and Regeneration of the Pharynx in the Planarian Schmidtea mediterranea

Unit 1

Regeneration and Repair

SCIENTISTS IN ACTION

10.7K 조회수.  Cornell University. Schmidtea 서 planarian 줄기 세포 및 조직 재생을 공부에 대 한 우수한 모델입니다. 이 게시는 선택적으로 한 기관, 인 두, 화학 나트륨 아 지 드를 동물을 노출 하 여 제거 하는 방법을 설명 합니다. 이 프로토콜은 또한 인 두 재생을 모니터링 하기 위한 방법을 설명 합니다.

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Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

In vertebrates, hematopoiesis is regulated by inductive microenvironments (niches). Likewise, in the invertebrate model organism&#160;Drosophila melanogaster, inductive microenvironments known as larval Hematopoietic Pockets (HPs) have been identified as anatomical sites for the development and regulation of blood cells (hemocytes), in particular of the self-renewing macrophage lineage.&#160;HPs are segmentally repeated pockets between the epidermis and muscle layers of the larva, which also comprise sensory neurons of the peripheral nervous system. In the larva, resident (sessile) hemocytes are exposed to anti-apoptotic, adhesive and proliferative cues from these sensory neurons and potentially other components of the HPs, such as the lining muscle and epithelial layers. During normal development, gradual release of resident hemocytes from the HPs fuels the population of circulating hemocytes, which culminates in the release of most of the resident hemocytes at the beginning of metamorphosis. Immune assaults, physical injury or mechanical disturbance trigger the premature release of resident hemocytes into circulation. The switch of larval hemocytes between resident locations and circulation raises the need for a common standard/procedure to selectively isolate and quantify these two populations of blood cells from single Drosophila larvae. Accordingly, this protocol describes an automated method to release and quantify the resident and circulating hemocytes from single larvae. The method facilitates ex vivo approaches, and may be adapted to serve a variety of developmental stages of Drosophila and other invertebrate organisms.

Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

Drosophila blood cells, or hemocytes, cycle between resident sites and circulation. In the larva, resident (sessile) hemocytes localize to inductive microenvironments, the Hematopoietic Pockets, while circulating hemocytes move freely in the hemolymph. The goal of this protocol is the standardized isolation and quantification of these two, behaviorally distinct but interchanging, hemocyte populations.

의 시금 혈액 세포 집단<em&gt; 초파리</em&gt; 유충

In vertebrates, hematopoiesis is regulated by inductive microenvironments (niches). Likewise, in the invertebrate model organism&#160;Drosophila ...

연구

발생학

Inducing Complete Polyp Regeneration from the Aboral Physa of the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis

Cnidarians, and specifically Hydra, were the first animals shown to regenerate damaged or severed structures, and indeed such studies arguably launched modern biological inquiry through the work of Trembley more than 250 years ago. Presently the study of regeneration has seen a resurgence using both &#34;classic&#34; regenerative organisms, such as the Hydra, planaria and Urodeles, as well as a widening spectrum of species spanning the range of metazoa, from sponges through mammals. Besides its intrinsic interest as a biological phenomenon, understanding how regeneration works in a variety of species will inform us about whether regenerative processes share common features and/or species or context-specific cellular and molecular mechanisms. The starlet sea anemone, Nematostella vectensis, is an emerging model organism for regeneration. Like Hydra, Nematostella is a member of the ancient phylum, cnidaria, but within the class anthozoa, a sister clade to the hydrozoa that is evolutionarily more basal. Thus aspects of regeneration in Nematostella will be interesting to compare and contrast with those of Hydra and other cnidarians. In this article, we present a method to bisect, observe and classify regeneration of the aboral end of the Nematostella adult, which is called the physa. The physa naturally undergoes fission as a means of asexual reproduction, and either natural fission or manual amputation of the physa triggers re-growth and reformation of complex morphologies. Here we have codified these simple morphological changes in a Nematostella Regeneration Staging System (the NRSS). We use the NRSS to test the effects of chloroquine, an inhibitor of lysosomal function that blocks autophagy. The results show that the regeneration of polyp structures, particularly the mesenteries, is abnormal when autophagy is inhibited.

Inducing Complete Polyp Regeneration from the Aboral Physa of the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis

Here we demonstrate how to induce and monitor regeneration in the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis, a model cnidarian anthozoan. We demonstrate how to amputate and categorize regeneration using a morphological staging system, and we use this system to reveal a requirement for autophagy in regenerating polyp structures.

작은 별 말미의 반구 Physa에서 전체 폴립 재생을 유도<em&gt; Nematostella의 vectensis</em

Cnidarians, and specifically Hydra, were the first animals shown to regenerate damaged or severed structures, and indeed such studies arguably launched ...

Surgical Ablation Assay for Studying Eye Regeneration in Planarians

In the study of adult stem cells and regenerative mechanisms, planarian flatworms are a staple in vivo model system. This is due in large part to their abundant pluripotent stem cell population and ability to regenerate all cell and tissue types after injuries that would be catastrophic for most animals. Recently, planarians have gained popularity as a model for eye regeneration. Their ability to regenerate the entire eye (comprised of two tissue types: pigment cells and photoreceptors) allows for the dissection of the mechanisms regulating visual system regeneration. Eye ablation has several advantages over other techniques (such as decapitation or hole punch) for examining eye-specific pathways and mechanisms, the most important of which is that regeneration is largely restricted to eye tissues alone. The purpose of this video article is to demonstrate how to reliably remove the planarian optic cup without disturbing the brain or surrounding tissues. The handling of worms and maintenance of an established colony is also described. This technique uses a 31 G, 5/16-inch insulin needle to surgically scoop out the optic cup of planarians immobilized on a cold plate. This method encompasses both single and double eye ablation, with eyes regenerating within 1-2 weeks, allowing for a wide range of applications. In particular, this ablation technique can be easily combined with pharmacological and genetic (RNA interference) screens for a better understanding of regenerative mechanisms and their evolution, eye stem cells and their maintenance, and phototaxic behavioral responses and their neurological basis.

This protocol shows how to consistently excise planarian eyes (optic cups) without disturbing surrounding tissues. Using an insulin needle and syringe, either one or both eyes can be ablated to facilitate investigations into the mechanisms regulating eye regeneration, the evolution of visual regeneration, and the neural basis of light-induced behavior.

수술 절제 분석 플라나리아에 아이 재생을 유학을위한

In the study of adult stem cells and regenerative mechanisms, planarian flatworms are a staple in vivo model system. This is due in large part to their ...

A Planarian Motility Assay to Gauge the Biomodulating Properties of Natural Products

A straightforward, controllable means of using the non-parasitic planarian, Dugesia tigrina, a free-living aquatic flatworm, to study the stimulant and withdrawal properties of natural products is described. Experimental assays benefitting from unique aspects of planarian physiology have been applied to studies on wound healing, regeneration, and tumorigenesis. In addition, because planarians exhibit sensitivity to a variety of environmental stimuli and are capable of learning and developing conditioned responses, they can be used in behavioral studies examining learning and memory. Planarians possess a basic bilateral symmetry and a central nervous system that uses neurotransmitter systems amenable to studies examining the effects of neuromuscular biomodulators. Consequently, experimental systems monitoring planarian movement and motility have been developed to examine substance addiction and withdrawal. Because planarian motility offers the potential for a sensitive, easily standardized motility assay system to monitor the effect of stimuli, the planarian locomotor velocity (pLmV) test was adapted to monitor both stimulation and withdrawal behaviors by planarians through the determination of the number of grid lines crossed by the animals with time. Here, the technique and its application are demonstrated and explained.

Planarian motility is used to gauge the stimulant and withdrawal properties of natural products when compared to the movement of the animals in spring water alone.

천연 물의 생물 조절 특성을 측정하는 플래니언 모틸리티 분석

A straightforward, controllable means of using the non-parasitic planarian, Dugesia tigrina, a free-living aquatic flatworm, to study the stimulant and ...

생화학

Adult Mouse Digit Amputation and Regeneration: A Simple Model to Investigate Mammalian Blastema Formation and Intramembranous Ossification

Here, we present a protocol of adult mouse distal terminal phalanx (P3) amputation, a procedurally simple and reproducible mammalian model of epimorphic regeneration, which involves blastema formation and intramembranous ossification analyzed by fluorescence immunohistochemistry and sequential in-vivo microcomputed tomography (&#956;CT). Mammalian regeneration is restricted to amputations transecting the distal region of the terminal phalanx (P3); digits amputated at more proximal levels fail to regenerate and undergo fibrotic healing and scar formation. The regeneration response is mediated by the formation of a proliferative blastema, followed by bone regeneration via intramembranous ossification to restore the amputated skeletal length. P3 amputation is a preclinical model to investigate epimorphic regeneration in mammals, and is a powerful tool for the design of therapeutic strategies to replace fibrotic healing with a successful regenerative response. Our protocol uses fluorescence immunohistochemistry to 1) identify early-and-late blastema cell populations, 2) study revascularization in the context of regeneration, and 3) investigate intramembranous ossification without the need for complex bone stabilization devices. We also demonstrate the use of sequential in vivo &#956;CT to create high resolution images to examine morphological changes after amputation, as well as quantify volume and length changes in the same digit over the course of regeneration. We believe this protocol offers tremendous utility to investigate both epimorphic and tissue regenerative responses in mammals.

Here, we present a protocol of adult mouse terminal phalanx amputation to investigate mammalian blastema formation and intramembranous ossification, analyzed by fluorescent immunohistochemistry and sequential in-vivo microcomputed tomography.

성인 마우스 숫자 절단 및 재생 : 포유류 블라스터 마 형성 및 intramembranous Ossification을 조사하는 간단한 모델

Here, we present a protocol of adult mouse distal terminal phalanx (P3) amputation, a procedurally simple and reproducible mammalian model of epimorphic ...

Pharmacological and Functional Genetic Assays to Manipulate Regeneration of the Planarian Dugesia japonica

Free-living planarian flatworms have a long history of experimental usage owing to their remarkable regenerative abilities1. Small fragments excised from these animals reform the original body plan following regeneration of missing body structures. For example if a 'trunk' fragment is cut from an intact worm, a new 'head' will regenerate anteriorly and a 'tail' will regenerate posteriorly restoring the original 'head-to-tail' polarity of body structures prior to amputation (Figure 1A).
Regeneration is driven by planarian stem cells, known as 'neoblasts' which differentiate into ~30 different cell types during normal body homeostasis and enforced tissue regeneration. This regenerative process is robust and easy to demonstrate. Owing to the dedication of several pioneering labs, many tools and functional genetic methods have now been optimized for this model system. Consequently, considerable recent progress has been made in understanding and manipulating the molecular events underpinning planarian developmental plasticity2-9.
The planarian model system will be of interest to a broad range of scientists. For neuroscientists, the model affords the opportunity to study the regeneration of an entire nervous system, rather than simply the regrowth/repair of single nerve cell process that typically are the focus of study in many established models. Planarians express a plethora of neurotransmitters10, represent an important system for studying evolution of the central nervous system11, 12 and have behavioral screening potential13, 14. 
Regenerative outcomes are amenable to manipulation by pharmacological and genetic apparoaches. For example, drugs can be screened for effects on regeneration simply by placing body fragments in drug-containing solutions at different time points after amputation. The role of individual genes can be studied using knockdown methods (in vivo RNAi), which can be achieved either through cycles of microinjection or by feeding bacterially-expressed dsRNA constructs8, 9, 15. Both approaches can produce visually striking phenotypes at high penetrance- for example, regeneration of bipolar animals16-21. To facilitate adoption of this model and implementation of such methods, we showcase in this video article protocols for pharmacological and genetic assays (in vivo RNAi by feeding) using the planarian Dugesia japonica.

Pharmacological and Functional Genetic Assays to Manipulate Regeneration of the Planarian Dugesia japonica

An attractive model for studying stem cell differentiation within a live animal is the planarian flatworm. Regeneration is studied by simple amputation experiments that are easily performed in a basic laboratory and are amenable to pharmacological and genetic (in vivo RNAi) manipulation as detailed by protocols in this article.

약리 및 기능성 유전자 Assays은 Planarian의 재생을 조작하는<em자포니카> Dugesia</em

Free-living planarian flatworms have a long history of experimental usage owing to their remarkable regenerative abilities1. Small fragments excised from ...

생물학

Planarian Immobilization, Partial Irradiation, and Tissue Transplantation

The planarian, a freshwater flatworm, has proven to be a powerful system for dissecting metazoan regeneration and stem cell biology1,2. Planarian regeneration of any missing or damaged tissues is made possible by adult stem cells termed neoblasts3. Although these stem cells have been definitively shown to be pluripotent and singularly capable of reconstituting an entire animal4, the heterogeneity within the stem cell population and the dynamics of their cellular behaviors remain largely unresolved. Due to the large number and wide distribution of stem cells throughout the planarian body plan, advanced methods for manipulating subpopulations of stem cells for molecular and functional study in vivo are needed.
Tissue transplantation and partial irradiation are two methods by which a subpopulation of planarian stem cells can be isolated for further study. Each technique has distinct advantages. Tissue transplantation allows for the introduction of stem cells, into a na&iuml;ve host, that are either inherently genetically distinct or have been previously treated pharmacologically. Alternatively, partial irradiation allows for the isolation of stem cells within a host, juxtaposed to tissue devoid of stem cells, without the introduction of a wound or any breech in tissue integrity. Using these two methods, one can investigate the cell autonomous and non-autonomous factors that control stem cell functions, such as proliferation, differentiation, and migration.
Both tissue transplantation5,6 and partial irradiation7 have been used historically in defining many of the questions about planarian regeneration that remain under study today. However, these techniques have remained underused due to the laborious and inconsistent nature of previous methods. The protocols presented here represent a large step forward in decreasing the time and effort necessary to reproducibly generate large numbers of grafted or partially irradiated animals with efficacies approaching 100 percent. We cover the culture of large animals, immobilization, preparation for partial irradiation, tissue transplantation, and the optimization of animal recovery. Furthermore, the work described here demonstrates the first application of the partial irradiation method for use with the most widely studied planarian, Schmidtea mediterranea. Additionally, efficient tissue grafting in planaria opens the door for the functional testing of subpopulations of na&iuml;ve or treated stem cells in repopulation assays, which has long been the gold-standard method of assaying adult stem cell potential in mammals8. Broad adoption of these techniques will no doubt lead to a better understanding of the cellular behaviors of adult stem cells during tissue homeostasis and regeneration.

An effective method for grafting tissue of defined and consistent size between planaria is described. Also included is a description of how the immobilization technique used for transplantation can be adapted, in conjunction with lead shields, for the partial irradiation of live animals.

Planarian의 부동화, 부분 조사 및 조직 이식

The planarian, a freshwater flatworm, has proven to be a powerful system for dissecting metazoan regeneration and stem cell biology1,2. Planarian ...

Planarian Scrunching as a Quantitative Behavioral Readout for Noxious Stimuli Sensing

Freshwater planarians normally glide smoothly through ciliary propulsion on their ventral side. Certain environmental conditions, however, can induce musculature-driven forms of locomotion: peristalsis or scrunching. While peristalsis results from a ciliary defect, scrunching is independent of cilia function and is a specific response to certain stimuli, including amputation, noxious temperature, extreme pH, and ethanol. Thus, these two musculature-driven gaits are mechanistically distinct. However, they can be difficult to distinguish qualitatively. Here, we provide a protocol for inducing scrunching using various physical and chemical stimuli. We detail the quantitative characterization of scrunching, which can be used to distinguish it from peristalsis and gliding, using freely available software. Since scrunching is a universal planarian gait, albeit with characteristic species-specific differences, this protocol can be broadly applied to all species of planarians, when using appropriate considerations. To demonstrate this, we compare the response of the two most popular planarian species used in behavioral research, Dugesia japonica and Schmidtea mediterranea, to the same set of physical and chemical stimuli. Furthermore, the specificity of scrunching allows this protocol to be used in conjunction with RNA interference and/or pharmacological exposure to dissect the molecular targets and neuronal circuits involved, potentially providing mechanistic insight into important aspects of nociception and neuromuscular communication.

Freshwater planarians exhibit three gaits (gliding, peristalsis, and scrunching) that are distinguishable by quantitative behavioral analysis. We describe a method to induce scrunching using various noxious stimuli, quantification thereof, and distinction from peristalsis and gliding. Using gene knockdown, we demonstrate the specificity of scrunching as a quantitative phenotypic readout.

유해 자극 감지를 위한 양적 행동 판독으로 기획자 스크런싱

Freshwater planarians normally glide smoothly through ciliary propulsion on their ventral side. Certain environmental conditions, however, can induce ...

Planarian Ovary Dissection for Ultrastructural Analysis and Antibody Staining

Accessibility to germ cells allows the study of germ cell development, meiosis, and recombination. The sexual biotype of the freshwater planarian, Schmidtea mediterranea, is a powerful invertebrate model to study the epigenetic specification of germ cells. Unlike the large number of testis and male germ cells, planarian oocytes are relatively difficult to locate and examine, as there are only two ovaries, each with 5-20 oocytes. Deeper localization within the planarian body and lack of protective epithelial tissues also make it challenging to dissect planarian ovaries directly. 
This protocol uses a brief fixation step to facilitate the localization and dissection of planarian ovaries for downstream analysis to overcome these difficulties. The dissected ovary is compatible for ultrastructural examination by transmission electron microscopy (TEM) and antibody immunostaining. The dissection technique outlined in this protocol also allows for gene perturbation experiments, in which the ovaries are examined under different RNA interference (RNAi) conditions. Direct access to the intact germ cells in the ovary achieved by this protocol will greatly improve the imaging depth and quality and allow cellular and subcellular interrogation of oocyte biology.

<meta charset="utf8"></head><body>초고구조 분석 및 항체 염색을 위한 Planarian 난소 절제

This protocol presents steps taken to dissect ovaries in the freshwater planarians, Schmidtea mediterranea. The dissected ovaries are compatible for antibody immunostaining and ultrastructural analysis with transmission electron microscopy to study the cell biology of the oocytes and somatic cells, providing an imaging depth and quality that were previously inaccessible.

화학 절단 및 Planarian Schmidtea 지중해 에 인 두의 재생

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