Name: in vitro phagocytosis of myelin debris by bone marrow-derived macrophages
Uploaded: 2017-12-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 27 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages at JoVE.com

저자는 글렌 생어 Hodgson, 비디오 제작, 편집, 및 음성에 그의 모든 작품에 대 한 의학의 FSU 대학에 미디어 전문가 감사 하 고 싶습니다.
이 작품은 국립 보건원 (R01GM100474 및 R01GM072611)에 의해 지원 되었다.

방법 여기에 설명 된 플로리다 주립 대학 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 제 2에서 고 관리 및 실험 동물의 사용, 8번째 버전에 대 한 가이드에에서 제시 된 지침을 따릅니다. . 모든 동물 들이이 프로토콜에 사용 되는 전용된 실험실 동물 시설에는 집 사용 까지입니다. 아니 vivo에서 실험 수행된 전에 희생 했다. 동물 숫자를 사용 하 여 평균 셀 및 myelin 컬렉션 가이드로 사용을 최소화 하기 위해 실험 필요에 근거 했다.
참고: 골 수 유래 세포 (BMDMs) (제 1), 붙일 레이블된 두뇌 파생 된 myelin 파편 (제 2), myelin 파편 식 균 작용 (제 3), 분석 하기 위한 일반적인 절차의 준비의 생성이이 프로토콜에 설명 합니다 및 myelin 파편 지질 축적 (제 4)의 분석에 대 한 일반적인 절차. 시 약 준비, 셀 수확 및 조작, myelin 컬렉션 및 라벨, 성과 분석 결과 층 류 공기 biosafety 캐비닛에 완료 되어야 한다.
1. 기본 골 수 유래 세포의 생성
<ol>
	<li>완전 한 대 식 세포 배양 (CMCM)의 준비 참고: 골에서 대 식 세포 생성 대 식 세포 콜로 니 자극 인자 (M-CSF) 사용 해야 합니다. 이 준비 M-CSF의 소스로 L929 murine 구와 조건 미디어를 활용합니다.<ol>
		<li>145 m m 요리 50 mL의 높은 포도 당 (4500 mg/L L-포도 당) Dulbecco의 수정이 글 중간 (DMEM) 7 일 동안 5% 새로운 태어난된 송아지 혈 청 (NCS)와 페니실린/스 보충으로 자란 세포에 의해 L929 murine 구와 단련 미디어를 생성 합니다.</li>
		<li>3500 x g, 4 ° c.에 30 분 동안 50 mL 원뿔 원심 분리기 및 원심 분리기로 문화에서 미디어를 수집</li>
		<li>새로운 50 mL 원뿔 원심 분리기 관으로 supernatants 0.2 µ m 주사기 필터를 통해 필터링. 바른된 미디어-80 ° C에서 최대 6 개월까지 저장할 수 있습니다.</li>
		<li>높은 포도 당 DMEM, 추가 5 %vol / vol NCS, 15 %vol / vol L929 murine 구와 조절 된 DMEM, 및 1% 페니실린/스. 2-3 개월 동안 4 ° C에서 미디어를 저장할 수 있습니다. 사용 하기 전에 37 ° C에 따뜻한.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>기본 골 수 세포와 대 식 세포 유도의 컬렉션 
	참고: 이 프로토콜 한 마우스를 사용 하 여 약 20 백만 골 수 유래 세포 (BMDMs)을 생성 합니다.<ol>
		<li>8 10 주 오래 된 마우스 표준 공동2 질 지침을 사용 하 여 다음 자 궁 경부 전위의 원하는 수 안락사</li>
		<li>70% (vol/vol) 에탄올: h 조2O를 사용 하 여, 포화 모피 동물을 청소.</li>
		<li>복 부에 작은 오프닝 고 신중 하 게 다시 기본 조직을 공개 피부를 당겨. 복 막 구멍을 찌를 하지 주의 하십시오.</li>
		<li>엉덩이에서 시작 하 고 발목에서 끝나는 두 뒷 다리를 제거 합니다. 장소 5-10 mL의 멸 균 인산 염을 포함 하는 100 mm 페 트리 접시에 수집 된 조직 버퍼링 식 염 수 (PBS) 보충 1% 페니실린/스. 
		참고: 때 처리 하는 여러 동물 조직 저하를 제한 하는 얼음 요리 계속 있는지 확인 합니다.</li>
		<li>메스를 사용 하 여 뼈에서 근육과 결합 조직을 제거 합니다. 대 퇴 골과 경골을 사용 하는 셀의 컬렉션에 대 한 비 골 삭제 될 수 있습니다.</li>
		<li>메스와 각 끝에서 작은 부분을 트리밍에 의해 수집 된 뼈의 골 수 구멍을 노출 합니다.</li>
		<li>25g 바늘을 사용 하 여, 50 mL 원뿔 원심 분리기 튜브에 CMCM와 골 수 구멍 플러시. 일단 그들은 충분히 플러시될 뼈 흰색 표시 됩니다.</li>
		<li>컬렉션 완료 되 면 생성 된 단일 세포 현 탁 액을 30-90 s 18 g 바늘 aspirates 교 반 하십시오. 
		참고: 선택적 적혈구 (RBC) 세포 단계는이 시점에서 수행할 수 있습니다. 그것은 최근에 세포내 철 macrophage 양극 화16시 myelin 파편의 효과 영향 수 있습니다 제안 되었습니다. RBC 세포 단계의 포함에 대 한 내용은 Trouplin 외를 참조 하십시오. 17.</li>
		<li>새로운 50 mL 원뿔 원심 분리기 관으로 70 µ m 살 균 셀 스 트레이너를 통해 정지를 필터링 합니다.</li>
		<li>씨앗 145 mm 셀 문화 요리 15-20 mL CMCM에 균등 하 게 세포를 수집. 마우스 희생 당 약 3 개의 문화 요리를 사용 합니다. 37 ° C, 5% CO2에서 문화를 품 어.</li>
		<li>72 시간 한번 비 부착 한 세포를 제거 하 살 균 PBS 가진 접시 세척, 후 추가 15-20 mL 신선한 CMCM. 37 ° C, 5% CO2에서 추가 4 일 문화를 품 어. 7 일 후 총 문화, 처음 고립 된 조 혈 골 수 세포 성숙 BMDMs (그림 1) 될 것입니다.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 붙일 레이블된 두뇌 파생 된 Myelin 파편의 생성
참고: 모든 시 약 4 ° C에서 1 개월까지 저장할 수 있습니다.
<ol>
	<li>Myelin 파편 수집 시 약의 준비
	<ol>
		<li>Tris· 준비 Cl 버퍼 솔루션입니다.<ol>
			<li>800 mL 증류수 이온된 H2O (ddiH2O) 추가 20 mL의 1 M Tris· Cl, 100 m m 나2EDTA (2mm 최종 농도)의 pH는 7.45 (최종 농도 20 mM) 및 20 mL</li>
			<li>PH 7.45 조정 합니다. DdiH20.2 µ m 여과 장치를 통해 오 필터 솔루션 1000ml를 볼륨을 조정 합니다.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>1 M 자당 솔루션을 준비 합니다.<ol>
			<li>Tris·의 100 ml Cl 버퍼 솔루션, 자당의 68.46 g 추가. Tris·와 200 mL에 양을 맞추십시오 Cl 버퍼 솔루션입니다. 0.2 µ m 여과 장치를 통해 솔루션을 필터링 합니다.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Tris·와 1 M 솔루션을 diluting 하 여 0.32 M 자당 솔루션 200ml를 준비 Cl 버퍼 솔루션 0.83:0.16 (vol/vol).</li>
		<li>Tris·와 1 M 솔루션을 diluting 하 여 0.83 M 자당 솔루션의 150 mL를 준비 Cl 버퍼 솔루션 0.83:0.16 (vol/vol).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>두뇌 파생 하는 원유 myelin 파편의 컬렉션 
	참고: 여기에 설명 된 수집 방법 원유 myelin 파편의 격리입니다.<ol>
		<li>뒤에 자 궁 경부 전위 표준 공동2 질 지침을 사용 하 여 나이의 8-10 주 10-12 마우스를 안락사.</li>
		<li>두뇌를 해 부 고 0.32 M 자당 솔루션의 10 mL를 포함 하는 100 mm 접시에 그들을 배치.</li></ol></li></ol>얼음에 접시를 유지.
		<li>로 머리를 잘라 불 임 수술가 위를 사용 하 여 약 5 m m3 크기에 조각.</li>
		<li>조직 50 mL 원뿔 원심 분리기 튜브에 전송 하 고 0.32 M 자당 솔루션의 약 30 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>부드러운 솔루션 달성 될 때까지 무 균 휴대용 로타리 균질 화기와 균질.</li>
		<li>0.32 M 자당 솔루션 90 mL의 최종 볼륨을 무 균된 두뇌를 희석.</li>
		<li>6 38.5 mL 얇은 벽 폴 리 프로필 렌 ultracentrifuge 튜브, 0.83 M 자당 솔루션의 20 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>부드럽게 두 레이어를 혼합 하지 않도록 주의 복용 0.83 M 자당 솔루션의 상단에 무 균된 뇌 솔루션을 추가 합니다.</li>
		<li>0.32 M 자당 솔루션 각 튜브의 균형.</li>
		<li>적절 한 사용 하 여 4 ° C에서 45 분 100000 x g에서 원심 분리기는 미리 ultracentrifuge로 터를 냉각. 로 터 가속 및 감속 myelin 파편 손실을 줄이기 위해 최소 값으로 설정 합니다.</li>
		<li>두 자당 밀도의 인터페이스에서 myelin 파편을 수집 합니다. 
		참고: 파편 튜브의 중심을 향해 백색 악대로 나타납니다.</li>
		<li>50 mL 원뿔 원심 분리기 관으로 원유 myelin 파편을 결합 하 고 대략 35 ml Tris·를 사용 하 여 볼륨 조정 Cl 버퍼 솔루션입니다.</li>
		<li>30-60 s에 대 한 살 균 휴대용 로타리 균질 화기와 원유 myelin 파편을 균질.</li>
		<li>6 깨끗 한 ultracentrifuge 튜브와 Tris·의 적절 한 양으로 균형 사이 정지를 균등 하 게 분하시오 Cl 버퍼 솔루션입니다.</li>
		<li>적절 한 사용 하 여 4 ° C에서 45 분 100000 x g에서 원심 분리기는 미리 ultracentrifuge로 터를 냉각. 그들의 최대 값으로 회전자 가속 및 감속을 설정.</li>
		<li>단단한 흰색 알 약 표시 됩니다 이제,는 상쾌한 삭제 하 고 다시 Tris·의 10-15 mL에 알 약을 중단 Cl 버퍼 솔루션입니다.</li>
		<li>2 깨끗 한 ultracentrifuge 튜브와 Tris·의 적절 한 양으로 균형 사이 정지를 균등 하 게 분하시오 Cl 버퍼 솔루션입니다.</li>
		<li>원심 분리기 다시는 적절 한 사용 하 여 4 ° C에서 45 분 100000 x g에서 미리 냉각 ultracentrifuge로 터. 그들의 최대 값으로 회전자 가속 및 감속을 설정.</li>
		<li>삭제는 상쾌한 하 고 살 균 PBS의 5-6 mL에 산 탄을 resuspend 미리 무게 1.5 mL 마이크로 원심 튜브의 적절 한 수 사이 정지를 나눕니다.</li>
		<li>4 ° c.에서 10 분 동안 22000 x g에서 원심 분리기</li>
		<li>삭제는 상쾌한 고 myelin 파편 알갱이의 무게를 결정 합니다.</li>
		<li>다시 일시 중단 알 약 PBS에서 100 mg/mL의 최종 농도에. 
		참고: 10 ~ 12 두뇌 100 mg/mL myelin 파편의 10-15 mL을 생산 하기 위해 충분 하다. Myelin 파편 6 개월-80 ° C에서 저장 될 수 있습니다.</li>
	
	
	<li>Myelin 파편 형광 라벨
	<ol>
		<li>즉시 사용 하기 전에 50 µ M carboxyfluorescein succinimidyl 에스테 르 (CFSE) 솔루션을 준비 합니다.<ol>
			<li>살 균 PBS를 사용 하 여, CFSE 50 µ M의 최종 작업 농도를 100% 디 메 틸 sulfoxide (DMSO)와 준비의 5 m m 재고 솔루션을 희석.</li>
			<li>0.2 µ m 주사기 필터를 통해 솔루션을 필터링 합니다.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>100 mg/mL myelin 파편의 원하는 금액을 해 동 하 고 다시 무 균 29 g 바늘으로 일시 중단. 
		참고: 그것은 사용 하기 전에 물의 resuspension 필요한 솔루션 중 퇴 하면 myelin 파편을 동결.</li>
		<li>미리 무게 1.5 mL 마이크로 원심 튜브를 myelin 파편을 전송 합니다.</li>
		<li>4 ° c.에서 10 분 동안 14800 x g에서 원심 분리기 폐기는 상쾌한.</li>
		<li>100 µ L myelin 파편 일지도 당 CFSE 솔루션의 200 µ L에 myelin 파편을 resuspend.</li>
		<li>실 온 (RT) 빛에서 보호에서 30 분 동안 품 어.</li>
		<li>4 ° c.에서 10 분 동안 14800 x g에서 원심 분리기 폐기는 상쾌한.</li>
		<li>워시 버퍼의 600-800 µ L에 펠 릿을 resuspend (0.2 µ m 필터 소독 PBS에 100mm 글리신).</li>
		<li>4 ° c.에서 10 분 동안 14800 x g에서 원심 분리기 폐기는 상쾌한.</li>
		<li>단계 2.3.8-2.3.9 두 번 더 반복 합니다.</li>
		<li>최종 세척 후 myelin 파편 펠 릿의 무게를 확인 하 고 다시 살 균 PBS 가진 100 mg/mL를 일시 중단 합니다. 참고: 레이블이 myelin 파편 최대 6 개월까지-80 ° C에서 저장 될 수 있습니다.</li>
	</ol>
	</li>

3. myelin 파편 식 균 작용 분석 결과
참고: 다음 붙일 레이블된 myelin 파편 식 균 작용을 관찰 하는 기본 방법입니다. 다른 트리 트 먼 트 및 실험 조건 추가 조사에 의해 최적화 될 필요 합니다.
<ol>
	<li>치료 접시의 준비
	<ol>
		<li>각 145 m m 플레이트 수집 성숙 BMDMs 10 mM ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA)의 5-6 mL를 사용 하 여 15 mL 원뿔 원심 분리기 튜브에 Dulbecco의 인산 염 버퍼 식 염 수 (dPBS) (pH 7.4)에. 
		참고: 로 셀18의 활성화 상태를 변경할 수 있습니다에 트립 신을 사용 하지 마십시오.</li>
		<li>수집 된 세포의 각 튜브를 미리 데워 진된 CMCM의 동일한 볼륨을 추가 합니다.</li>
		<li>20 ° c.에 8 분 180 x g에서 원심 분리기 폐기는 상쾌한.</li>
		<li>다시 CMCM 셀 수를 일시 중단 합니다.</li>
		<li>24 잘 셀 문화 판의 각 우물에 CMCM의 1 mL에 1 x 105 셀을 추가 합니다.</li>
		<li>37 ° C, 5% CO2 24 h에서 품 어.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Myelin 파편 처리 및 분석
	<ol>
		<li>100 mg/mL CFSE의 10 µ L 표시 각 잘 (1 mg/mL 최종 농도)를 myelin 파편을 추가 합니다.</li>
		<li>37 ° C, 5% CO2에서 1-3 시간 동안 품 어.</li>
		<li>3 회 비를 가득 채우고 myelin 파편 제거 하 살 균 PBS 가진 접시를 씻어.</li>
		<li>각 우물에 4 %paraformaldehyde 400 µ L를 추가 합니다. 실시간에서 30 분 동안 품 어</li>
		<li>2 번 살 균 PBS로 세척 접시입니다.</li>
		<li>각 우물에 Hoechst 33258 솔루션의 400 µ L를 추가 합니다. 빛에서 보호 하는 RT에 5 분 동안 품 어.</li>
		<li>2 번 살 균 PBS로 세척 접시입니다.</li>
		<li>Photobleaching를 줄이기 위해 각 잘에 Tris 버퍼와의 불 화-젤 200 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>거꾸로 피 형광 수 있는 현미경을 사용 하 여 이미지 셀. 
		참고: CFSE의 여기 및 방출 파장은 494 nm 및 521 nm, 각각.</li>
		<li>CFSE 긍정적인 셀 수 상대 myelin 파편 통풍 관을 결정 하는 핵의 수로 나눕니다.</li>
		<li>이미징, 이전 빛에서 보호 하는 4 ° C에서 최대 7 일 동안 접시를 유지 합니다.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 기름 빨간 O 얼룩 통해 세포내 지질의 정량화
참고: 다음 세포내 myelin 파편 파생 지질을 관찰 하는 기본 방법입니다.CFSE myelin 파편을 표시를 사용 하 여 오로의 형광 정량화에 대 한 권장 하지 않습니다 스펙트럼 오버랩 때문에 얼룩. 다른 트리 트 먼 트 및 실험 조건 추가 조사에 의해 최적화 될 필요 합니다.
<ol>
	<li>얼룩이 솔루션의 준비
	<ol>
		<li>0.5% 기름 빨간 O (오로) 얼룩 솔루션을 준비 합니다.<ol>
			<li>천천히 오 (교 반 하면서 1-([4-(Xylylazo)xylyl]azo)-2-naphthol)로 0.5 g을 100 mL 100% 프로필 렌 글리콜 (1, 2-Propanediol)의 추가.</li>
			<li>또는 모든 큰 입자는 해산 될 때까지 15 분 동안 95 ° C에 솔루션을 열. 
			참고: 이상의 100 ° c.가 열 하지 마십시오</li>
			<li>새 컨테이너로 아직 따뜻한 반면 필터 종이 통해 해결책을 필터링 합니다.</li>
			<li>실시간 솔루션에서 멋진 하룻밤 솔루션 실시간에서 1 년까지 저장 될 수 있도록</li>
		</ol>
		</li>
		<li>85% 프로필 렌 글리콜 솔루션을 준비 합니다.<ol>
			<li>DdiH2오 볶음까지 혼합의 15 mL를 100% 프로필 렌 글리콜의 85 mL를 추가 합니다. 솔루션은 실시간에서 1 년까지 저장 될 수 있다</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>치료 접시의 준비
	<ol>
		<li>섹션 3에서 설명 하는 방법을 24-잘 접시를 준비 합니다.</li>
		<li>37 ° C, 5% CO2 24 h에서 품 어.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Myelin 파편 치료
	<ol>
		<li>각 잘 (1 mg/mL 최종 농도)를 100 mg/mL myelin 파편의 10 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>1-3 h 37 ° C, 5% CO2에서 품 어.</li>
		<li>3 번 비 소화 myelin 파편 제거 살 균 PBS 가진 접시를 씻어. 참고:이 시점에서 접시도 즉시 고정 받을 수 있습니다 또는 신선한 CMCM 추가 될 수 있다, 고 셀 반환 추가 시간 포인트에 대 한 보육.</li>
		<li>각 우물에 4 %paraformaldehyde 400 µ L를 추가 합니다. 실시간에서 30 분 동안 품 어</li>
		<li>세척 접시 2 번 살 균 PBS 다음 얼룩을 진행할.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>오로 얼룩이 지 고 분석
	<ol>
		<li>워시 ddiH2오 3 번 플레이트를 고정</li>
		<li>각 잘을 100% 프로필 렌 글리콜의 400 µ L을 추가 하 고 실시간에 5 분 동안 품 어 
		참고:이 ddiH2o.의 carryover 줄어</li>
		<li>프로필 렌 글리콜을 발음 하 고 각 잘 하 오로 솔루션의 400 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>60 ° c.에 8 분 동안 품 어</li>
		<li>오로 솔루션 발음 다음, 각 잘을 85% 프로필 렌 글리콜의 400 µ L을 추가 하 고 실시간에 5 minumintes에 대 한 품 어</li>
		<li>세척 접시 3 번 ddiH2o.</li>
		<li>각 우물에 Hoechst 33258 솔루션의 400 µ L를 추가 합니다. RT, 빛에서 보호에서 5 분 동안 품 어.</li>
		<li>2 번 살 균 PBS로 세척 접시입니다.</li>
		<li>각 우물에 Tris 버퍼와의 불 화-젤 200 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>거꾸로 피 형광 수 있는 현미경을 사용 하 여 이미지 셀. 오로 표준 텍사스 레드 또는 DsRed 필터 세트를 사용 하 여 몇 군데 있습니다.</li>
		<li>각 이미지 필드에 오로 긍정적인 영역을 결정 하 고 핵의 수로 분할 하 여 상대 지질 보존을 계량.</li>
		<li>4 ° C에서 7 일에 대 한 번호판 빛 으로부터 보호 유지.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol>
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O., Sica, A., Mantovani, A., Locati, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+activation+and+polarization.">Macrophage activation and polarization.</a> Front Biosci. 13, (2008).</li><li>Mosser, D. M., Edwards, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exploring+the+full+spectrum+of+macrophage+activation.">Exploring the full spectrum of macrophage activation.</a> Nat Rev Immunol. 8 (12), 958-969 (2008).</li></ol>

저자 아무 공개 있다.

여기에 설명 된 절차 활용 갓 고립 된 원유 CNS myelin 파편과 기본 골 수 유래 세포. 동물 비용을 줄이기 위해,이 좋습니다 모두 두뇌 및 희생의 때에 각 마우스에서 골 수 세포 수확. 두 연구원 협력 동시에 두 재료를 준비할 수 있습니다. 또는, 두뇌 myelin 파편 격리 전에 항생제로 보충 하는 PBS에-80 ° C에 저장할 수 있습니다. 그것은 우리의 경험을 머리 최대 1 개월 myelin 파편 생성 잠재력의 손실 없이 감지할 수 이러한 조건에서 유지 될 수 있었습니다.
CFSE는 형광 강도 및 사용의 용이성 때문에 myelin 파편을 분류 하는 데 사용 됩니다. 휴대 전화 esterases 분자14에 아세테이트 그룹을 쪼개까지 염료 침묵과 남아 있습니다. 해제 된 succinimidyl 에스테 르 그룹 다음 세포질 단백질14공유 첨부 파일에 결과 기본 amides로 반응 수 있습니다. CFSE는 표준 녹색 형광 채널을 사용 하 여 고르기, 거기 여러 파생 상품 다른 스펙트럼 속성 상업적으로 사용할 수 있습니다. 따라서, 여러 형광 염료를 사용 하 여 비슷한 먹어서 분석 결과 디자인 가능 하다. 또한 그 염료는 쉽게 플라즈마 막 십자가, 때문에 그것으로 사용할 수 있습니다 라벨 apoptotic 세포를 비슷한 방식으로 myelin 파편19주목 한다. 또한, 동안 사용자 최적화와 표준 이미지 분석에 의존 하는 우리의 방법을 정량화 수행할 수 있습니다 cytometry 또는 높은 처리량 플레이트 이미징 시스템을 사용 하 여.
기름 빨간 O (또한 용 매 레드 27, 또는 수단 레드 5B) 조직학 샘플에 중립 지질 얼룩을 광범위 하 게 사용 된 지 용 성 염료 이다. 그것의 깊은 붉은 착 색 밝은 분야 및 형광 현미경 검사 법5,20를 통해 세포내 지질 시각화 수 있습니다. 형광 현미경 검사 법을 사용 하 여 오로 얼룩진 지질 작은 물방울의 단일 채널 이미징 및 강력한 정량화에 대 한 수 있습니다. 착 색 방법은 간단 하 고 매우 재현, 동안 해야 합니다 주의 샘플 준비 중. 그것은 중요는 알코올 이나 산 기반 fixatives 사용할 수 없습니다, 그들은 강도 얼룩에 상당한 감소를 이끌어 세포내 지질 분해 수 있습니다. 또한, 양적 이미지 분석, 것과 같이 표준화 된 이미지 캡처 설정 및 충분 한 편견된 샘플링의 중요성 understated 수 없습니다. 컨트롤을 얼룩의 사용 어떤 샘플 자동 형광을 담당 하는 것이 좋습니다. 이러한 얼룩 컨트롤이 동일 하 게, 처리 되어야 하지만 왼쪽 흠 없는 배경 자동 형광의 수준을 측정 하 오로와. 그럼에도 불구 하 고, 우리의 이미지 분석 방법을 사용 하려면 다른 지질 정량화 기법 보다 덜 최적화와 같은 오로 추출 방법21, 표준 곡선 준비를 해야 합니다, 어떤은 더 실험적인 변화 경향이 필요로 샘플의 파괴입니다. 이미지 기반 분석의 사용은 몇몇 전통적인 오로 추출 방법에 그것은 비-파괴적인 장점과 immunostaining21,22 와 호환 됩니다.
마지막으로, 설명 하는 절차는 상대적으로 곧장 앞으로, 그것은 매우 중요 하므로 대 식 세포 병원 체 관련 된 분자 패턴 (PAMPS)는 내 등을 인식 하는 여러 수용 체를 표현 적절 한 무 균 기술을 사용할 수 lipopolysaccharide (LPS)23. 박테리아와 상호 작용 오염 지 대 식 세포 활성화 하 고 그들의 기능24,25극적인 변화를 수 있습니다. 수집 된 myelin 파편에 관해서, 오염에 대 한 테스트 것이 좋습니다. Limulus amebocyte lysate (LAL) 분석 결과 등도 검출 방법 높은 감도 있고이 응용 프로그램5,19이전 사용 되었습니다.
대 식 세포 모두의 건강과 질병에 중요 한 역할 아직 CNS 상해의 맥락에서 BMDMs의 역할은 현재 조사에의 한 중요 한 주제. 여기 설명 된 방법을 사용 하 여, 연구원은 BMDMs에 의해 myelin 파편 식 균 작용의 메커니즘을 이해 하기 시작할 수 있습니다.

골 수 유래 세포 (BMDMs) 타고 난 및 적응형 면역 시스템 사이의 중요 한 링크입니다. 항 원 제시 세포 (Apc), 그들은 모두 항 원 프레 젠 테이 션을 통해 세포와 통신할 수 있습니다 고 cytokine 릴리스1,2,3. 그러나, 직업적인 식 세포로 그들의 주요 기능은 병원 균, 나이 든된 세포 및 세포질 파편1,4입니다. 척수 상해 (SCI), 다음 myelin 파편의 대량은 CNS 축 삭 myelination5에 대 한 책임 셀 형식은 죽어가는 oligodendrocytes에서 생성 됩니다. 우리와 다른 myelin 파편의 침투 BMDMs5,,67의 주로 책임은 나타났습니다. 그러나, 척수 상해 내 사이트 engulfment myelin 파편의 프로-염증 성 상태5,,89로이 일반적으로 염증 세포 변화 제안 되었습니다. 부상된 척수에서 신경 염증의 주요 중재자, BMDMs로 중요 한 임상 대상입니다.
척수 부상된에서 BMDMs의 영향을 조사 하기 위해, 우리는 생체 외에서 모델을 직접 BMDMs myelin 파편에 대처 하는 방법을 연구를 개발 했습니다. 생물 학적 관련성을 높이기 위해 기본 murine BMDMs와 갓 고립 된 myelin 파편이이 조사에 사용 됩니다. 따라서, 여기에 제시 하는 방법 또한 자세히 분리와 기본 murine BMDMs의 문화 그리고 murine CNS를 격리 하는 데 사용 하는 수정 된 자당 그라데이션 기법 파생 myelin 파편10,,1112. Myelin 파편 형광 염료, 트랙 BMDMs CFSE에 의해 그것의 국제화는이 응용 프로그램에 적합 잘-세포 독성 때문에 및 그것의 좁은 형광 스펙트럼 허가 carboxyfluorescein succinimidyl 에스테 르 (CFSE), 쉽게 표시 될 수 있습니다. 13,14프로브 다른 형광과 멀티플렉싱 합니다. 먹어서, 다음 myelin 파편 지질은 리소좀을 통해 수송 하 고 세포내 지질 방울5에 중립 지질으로 패키지. 이 세포내 지질 축적을 계량 하는 기름 빨간 O (오로) 양적 이미지 분석을 위해 최적화 하는 방법 얼룩 선물이. 이 간단한 얼룩 방법은 강력한 재현할 결과 및 정량화15를 생성합니다. 이러한 메서드는 제한 된 특수 장비로 myelin 파편 식 균 작용 및 지질 보존의 연구를 촉진 한다.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SH30243.01</td><td>High glucose with L-glutamine, sodium pyruvate</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin Solution</td><td>Corning</td><td>30-002-CI</td><td>100X Solution</td></tr><tr><td>New Born Calf Serum (NCS)</td><td>Rocky Mountain Biologics</td><td>NBS-BBT-5XM</td><td>United States Origin</td></tr><tr><td>NCTC clone 929 [L cell, L-929, derivative of Strain L]&amp;nbsp;</td><td>ATCC</td><td>CCL-1</td><td>L929 Cell Line of Conditioned Media Preparation</td></tr><tr><td>24-well Cell Culture Plates</td><td>VWR</td><td>10062-896&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cell Culture Dish</td><td>Greiner Bio-One</td><td>639960</td><td>Polystyrine, 145/20mm</td></tr><tr><td>CFSE Cell Proliferation Kit</td><td>Thermo Fisher</td><td>C34570</td><td>DMSO for Reconsitution Provided</td></tr><tr><td>Fluoro-gel with Tris Buffer&amp;nbsp;</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>17985-11</td><td></td></tr><tr><td>Oil Red O</td><td>Sigma Aldrich</td><td>O0625</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Materials&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Ultracentrifuge Tubes</td><td>Beckman Coulter</td><td>326823</td><td>Thinwall, Polypropylene, 38.5 mL, 25 x 89 mm</td></tr><tr><td>SW 32 Ti Ultracentrifuge Rotor</td><td>Beckman Coulter</td><td>369650</td><td>SW 32 Ti Rotor, Swinging Bucket, Titanium</td></tr><tr><td>Hand Held Rotary Homogenizer</td><td>Fisher Science</td><td>08-451-71</td><td></td></tr></tbody></table>

in vitro phagocytosis of myelin debris by bone marrow-derived macrophages

골 수 유래 세포 (BMDMs)는 수 입자의 다양 한 비운의 직업적인 식 세포로 서 중요 한 생리 적인 역할을 봉사 하는 성숙한 백혈구. 일반적으로, 중앙 신경 시스템 (CNS)에서 BMDMs 제한 됩니다 하지만 부상, 다음 그들은 쉽게 침투 수 있습니다. 일단 부상된 CNS 조직 내의 BMDMs 부상 파생 세포 부스러기, 지질 풍부한 myelin 파편의 다량을 포함 하 여의 허가 대 한 책임 1 차 셀 유형입니다. BMDM 침투 및 myelin 파편 식 균 작용 CNS 내의 neuropathological 파급 효과 복잡 하 고 잘 이해 있습니다. 여기서 설명 하는 프로토콜 연구에 대 한 직접적인 생체 외에서 BMDMs의 CNS 상해의 컨텍스트에서 허용. 우리는 murine BMDM 절연 및 문화, myelin 파편 준비 및 분석 실험 BMDM myelin 파편 식 균 작용을 평가 하기 위해 커버. 이 기술은 중요 한 전문된 장비 또는 자료에 대 한 필요 없이 강력한 같지는 결과 아직 연구자의 요구에 맞게 쉽게 사용자 지정할 수 있습니다.

CFSE myelin 파편 분류와 BMDMs의 치료 분명 국제화 (그림 2) 항복 한다. 3-시간 상호 작용 시간 강력한 다운스트림 검출을 위한 충분 한 추가 myelin 파편 phagocytose에 BMDMs에 대 한 충분 한 동안, 상호 작용의 1 시간 만큼 적게와 세포내 축적을 관찰할 수 있습니다. 그러나, 일부 myelin 파편 여전히 존재할 수 있습니다 세포 표면에 세척 후. 이 부족 한 세척 또는 입자 안 먹어서의 초기 단계 동안 내 면 완벽 하 게 되 고 있을 수 있습니다.
BMDMs 빠르게 myelin 파편을 internalize 수 있다, 하는 동안 lysosomal 처리 오로 stainable 지질 작은 물방울 형태로 하기 전에 필요 합니다. 설명 하기 위해, BMDMs myelin 파편으로 90 분 동안 incubated, 세척, 되었고 이전에 고정 하 고 (그림 3) 얼룩 시간의 추가 금액에 대 한 교양. 그림 4 는 치료 시작 및 중립 지질 외관 사이 지연이 있다. 그것은 지질 보존은 문화 중 안정 하지 주목 해야한다. BMDMs는 물방울 형성 후 곧 축적 된 지질 대사를 시작 합니다. 이와 같이, 세척 떨어져 비를 가득 채우고 myelin 파편과 고정 사이 24 시간 보다 더 긴 대기를 좋습니다.
오로 스테인드 영역의 정량화 myelin 지질 대사 BMDMs (그림 5)에서 속도 보여 줍니다. 90 분 상호 작용 기간에 따라 세포는 신선한 CMCM에 외피에 반환 했다. 신선한 매체에 이른 추적 기간 동안에 BMDMs phagocytosed myelin 파편 지질 구성 요소 중립 오로 stainable 지질에 대사. 오로 긍정적인 지역에 있는 꾸준한 증가 시간 상호 작용에서에서 일반적입니다. 그러나 24 시간 후,에 BMDMs 것 이다 effluxed 또는 세포내 지질의 상당 부분을 물질 대사로 변화.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56322/56322fig1.jpg"> 
그림 1 : 대표 BMDM 문화. 몇 가지 부착 세포 처음 관찰 될 것 이다. 3 일에 모든 비 부착 한 세포 제거 됩니다. 하루 7, 성숙한 골 수 유래 세포 관찰 된다. 규모 = 50 µ m. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56322/56322fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56322/56322fig2.jpg"> 
그림 2 : BMDM Myelin 파편 식 균 작용의 대표 이미지 분석. 셀 1 mg/mL CFSE myelin 파편 1 시간 전에 세척 및 4% 고정에 대 한 분류로 치료 했다 PFA. 내 면된 myelin 파편 피 형광 수 현미경에 표준 GFP 필터 세트를 사용 하 여 구상 될 수 있다. 규모 = 50 µ m. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56322/56322fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56322/56322fig3.jpg"> 
그림 3 : 기름 빨간 O (오로) 실험 디자인의 다이어그램. BMDM 세척 및 문화 정착 이전 신선한 매체에 90 분, 1 mg/mL myelin 파편 (1: 100 희석)으로 처리 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56322/56322fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56322/56322fig4.jpg"> 
그림 4 : 오로 Myelin 파편 식 균 작용에 따라 BMDM의 얼룩. 4 %PFA 표시 시간 포인트, BMDMs에 오로와 Hoechst 33258 스테인드 했다 다음 고정. 각 시간 지점에 대 한 대표적인 이미지 표시 됩니다. 규모 = 100 µ m. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56322/56322fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56322/56322fig5.jpg"> 
그림 5 : 오로 얼룩의 양적 이미지 분석. 오로 얼룩의 정량화에 대 한 3 웰 스 잘 당 5 이미지 20 X에 몇 군데 있었다. 모든 이미지 수집 설정을 동일 했다. 오차 막대 SEM. = (n = 3). <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56322/56322fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages

선물이 phagocytic 용량의 기본 murine 골 수 유래 세포 붙일 레이블된 myelin 파편과 세포내 지질 작은 물방울 얼룩을 사용 하 여 평가 하는 방법.

생체 외에서 골 수 유래 세포에 의해 Myelin 파편 식 균 작용

Bone marrow-derived macrophages (BMDMs) are mature leukocytes that serve a critical physiological role as professional phagocytes capable of clearing a ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vitro Phagocytosis of Myelin Debris by Bone Marrow-Derived Macrophages

12.6K 조회수.  Florida State University. 선물이 phagocytic 용량의 기본 murine 골 수 유래 세포 붙일 레이블된 myelin 파편과 세포내 지질 작은 물방울 얼룩을 사용 하 여 평가 하는 방법.

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Depletion and Reconstitution of Macrophages in Mice

Macrophages are critical players in the innate immune response to infectious challenge or injury, initiating the innate immune response and directing the acquired immune response. Macrophage dysfunction can lead to an inability to mount an appropriate immune response and as such, has been implicated in many disease processes, including inflammatory bowel diseases. Macrophages display polarized phenotypes that are broadly divided into two categories. Classically activated macrophages, activated by stimulation with IFN&gamma; or LPS, play an essential role in response to bacterial challenge whereas alternatively activated macrophages, activated by IL-4 or IL-13, participate in debris scavenging and tissue remodeling and have been implicated in the resolution phase of inflammation. During an inflammatory response in vivo, macrophages are found amid a complex mixture of infiltrating immune cells and may participate by exacerbating or resolving inflammation. To define the role of macrophages in situ in a whole animal model, it is necessary to examine the effect of depleting macrophages from the complex environment. To ask questions about the role of macrophage phenotype in situ, phenotypically defined polarized macrophages can be derived ex vivo, from bone marrow aspirates and added back to mice, with or without prior depletion of macrophages. In the protocol presented here clodronate-containing liposomes, versus PBS injected controls, were used to deplete colonic macrophages during dextran sodium sulfate (DSS)-induced colitis in mice. In addition, polarized macrophages were derived ex vivo and transferred to mice by intravenous injection. A caveat to this approach is that clodronate-containing liposomes deplete all professional phagocytes, including both dendritic cells and macrophages so to ensure the effect observed by depletion is macrophage-specific, reconstitution of phenotype by adoptive transfer of macrophages is necessary. Systemic macrophage depletion in mice can also be achieved by backcrossing mice onto a CD11b-DTR background, which is an excellent complementary approach. The advantage of clodronate-containing liposome-mediated depletion is that it does not require the time and expense involved in backcrossing mice and it can be used in mice regardless of the background of the mice (C57BL/6, BALB/c, or mixed background).

Macrophages play a central role in homeostasis and pathology in many tissues. The protocol presented here describes methods for depleting macrophages in vivo, deriving polarized macrophages from bone marrow aspirates, and adoptively transferring macrophages into mice. These techniques allow determination of the role that polarized macrophages play in health and disease.

마우스의 Macrophages의 고갈과 Reconstitution

Macrophages are critical players in the innate  immune response to infectious challenge or injury, initiating the innate immune  response and directing ...

연구

면역학 및 감염병학

Bone Marrow-derived Macrophage Production

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because of their powerful microbicidal activities. Macrophages are widely distributed throughout the body and are present in the lymphoid organs, liver, lungs, gastrointestinal tract, central nervous system, bone, and skin. Because of their repartition, they participate in a wide range of physiological and pathological processes. Macrophages are highly versatile cells that are able to recognize microenvironmental alterations and to maintain tissue homeostasis. Numerous pathogens have evolved mechanisms to use macrophages as Trojan horses to survive, replicate in, and infect both humans and animals and to propagate throughout the body. The recent explosion of interest in evolutionary, genetic, and biochemical aspects of host-pathogen interactions has renewed scientific attention regarding macrophages. Here, we describe a procedure to isolate and cultivate macrophages from murine bone marrow that will provide large numbers of macrophages for studying host-pathogen interactions as well as other processes.

Macrophages have long been recognized as a critical component of the innate and adaptive immune responses. The recent explosion of knowledge pertaining to evolutionary, genetic, and biochemical aspects of the interaction between macrophages and microbes has renewed scientific attention to macrophages. This article describes a method to differentiate macrophages from mouse bone marrow.

뼈 대식 세포 생산에게 골수 유래

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because ...

Study of Phagolysosome Biogenesis in Live Macrophages

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome maturation is the complex and tightly regulated process during which a nascent phagosome undergoes drastic transformation through well-orchestrated interactions with various cellular organelles and compartments in the cytoplasm. This process, which is essential for the physiological function of phagocytic cells by endowing phagosomes with their lytic and bactericidal properties, culminates in fusion of phagosomes with lysosomes and biogenesis of phagolysosomes which is considered to be the last and critical stage of maturation for phagosomes. In this report, we describe a live cell imaging based method for qualitative and quantitative analysis of the dynamic process of lysosome to phagosome content delivery, which is a hallmark of phagolysosome biogenesis. This approach uses IgG-coated microbeads as a model for phagocytosis and fluorophore-conjugated dextran molecules as a luminal lysosomal cargo probe, in order to follow the dynamic delivery of lysosmal content to the phagosomes in real time in live macrophages using time-lapse imaging and confocal laser scanning microscopy. Here we describe in detail the background, the preparation steps and the step-by-step experimental setup to enable easy and precise deployment of this method in other labs. Our described method is simple, robust, and most importantly, can be easily adapted to study phagosomal interactions and maturation in different systems and under various experimental settings such as use of various phagocytic cells types, loss-of-function experiments, different probes, and phagocytic particles.

라이브 식세포에 Phagolysosome 속생의 연구

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome ...

An Engulfment Assay: A Protocol to Assess Interactions Between CNS Phagocytes and Neurons

Phagocytosis is a process in which a cell engulfs material (entire cell, parts of a cell, debris, etc.) in its surrounding extracellular environment and subsequently digests this material, commonly through lysosomal degradation. Microglia are the resident immune cells of the central nervous system (CNS) whose phagocytic function has been described in a broad range of conditions from neurodegenerative disease (e.g., beta-amyloid clearance in Alzheimer&#8217;s disease) to development of the healthy brain (e.g., synaptic pruning)1-6. The following protocol is an engulfment assay developed to visualize and quantify microglia-mediated engulfment of presynaptic inputs in the developing mouse retinogeniculate system7. While this assay was used to assess microglia function in this particular context, a similar approach may be used to assess other phagocytes throughout the brain (e.g., astrocytes) and the rest of the body (e.g., peripheral macrophages) as well as other contexts in which synaptic remodeling occurs (e.g. ,brain injury/disease).

Microglia are the resident immune cells of the central nervous system (CNS) with a high capacity to phagocytose or engulf material in their extracellular environment. Here, a broadly applicable, reliable, and highly quantitative assay for visualizing and measuring microglia-mediated engulfment of synaptic components is described.

말림 분석 : CNS 식세포와 신경 세포 사이의 상호 작용을 평가하기위한 프로토콜

Phagocytosis is a process in which a cell engulfs material (entire cell, parts of a cell, debris, etc.) in its surrounding extracellular environment and ...

신경과학

Metabolic Characterization of Polarized M1 and M2 Bone Marrow-derived Macrophages Using Real-time Extracellular Flux Analysis

Specific metabolic pathways are increasingly being recognized as critical hallmarks of macrophage subsets. While LPS-induced classically activated M1 or M(LPS) macrophages are pro-inflammatory, IL-4 induces alternative macrophage activation and these so-called M2 or M(IL-4) support resolution of inflammation and wound healing. Recent evidence shows the crucial role of metabolic reprogramming in the regulation of M1 and M2 macrophage polarization. 
In this manuscript, an extracellular flux analyzer is applied to assess the metabolic characteristics of naive, M1 and M2 polarized mouse bone marrow-derived macrophages. This instrument uses pH and oxygen sensors to measure the extracellular acidification rate (ECAR) and oxygen consumption rate (OCR), which can be related to glycolytic and mitochondrial oxidative metabolism. As such, both glycolysis and mitochondrial oxidative metabolism can be measured in real-time in one single assay.
Using this technique, we demonstrate here that inflammatory M1 macrophages display enhanced glycolytic metabolism and reduced mitochondrial activity. Conversely, anti-inflammatory M2 macrophages show high mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) and are characterized by an enhanced spare respiratory capacity (SRC). 
The presented functional assay serves as a framework to investigate how particular cytokines, pharmacological compounds, gene knock outs or other interventions affect the macrophage&#8217;s metabolic phenotype and inflammatory status.

Metabolic reprogramming is a characteristic and prerequisite for M1 and M2 macrophage polarization. This manuscript describes an assay for the measurement of fundamental parameters of glycolysis and mitochondrial function in mouse bone marrow-derived macrophages. This tool can be applied to investigate how particular factors affect the macrophage&#8217;s metabolism and phenotype.

실시간 세포 외 유출 분석을 사용하여 편광 M1과 M2 골수 유래 대 식세포의 대사 특성

Specific metabolic pathways are increasingly being recognized as critical hallmarks of macrophage subsets. While LPS-induced classically activated M1 or ...

Mesenchymal Stem Cell Regulation of Macrophage Phagocytosis; Quantitation and Imaging

Mesenchymal stem cells (MSC) have traditionally been studied for their regenerative properties, but more recently, their immunoregulatory characteristics have been at the forefront. They interact with and regulate immune cell activity. The focus of this study is the MSC regulation of macrophage phagocytic activity. Macrophage (M&#934;) phagocytosis is an important part of the innate immune system response to infection, and the mechanisms through which MSC modulate this response are under active investigation. Presented here is a method to study M&#934; phagocytosis of non-opsonized zymosan particles conjugated to a pH-sensitive fluorescent molecule while in co-culture with MSC. As phagocytic activity increases and the labeled zymosan particles are enclosed within the acidic environment of the phagolysosome, the fluorescence intensity of the pH-sensitive molecule increases. With the appropriate excitation and emission wavelengths, phagocytic activity is measured using a fluorescent spectrophotometer and kinetic data is presented as changes in relative fluorescent units over a 70 min period. To support this quantitative data, the change in the phagocytic activity is visualized using dynamic imaging. Results using this method demonstrate that when in co-culture, MSC enhance M&#934; phagocytosis of non-opsonized zymosan of both naive and IFN-&#947; treated M&#934;. These data add to the current knowledge of MSC regulation of the innate immune system. This method can be applied in future investigations to fully delineate the underlying cellular and molecular mechanisms.

Presented here is a protocol to quantify and produce dynamic images of mesenchymal stem cell (MSC) mediated regulation of macrophage (M&#934;) phagocytosis of non-opsonized yeast (zymosan) particles that are conjugated to a pH-sensitive fluorescent molecule.

대식세포식세포의 중간엽 줄기세포 조절; 수량 및 이미징

Mesenchymal stem cells (MSC) have traditionally been studied for their regenerative properties, but more recently, their immunoregulatory characteristics ...

Flow Cytometry Approach to Characterize Phagocytic Properties of Acutely-Isolated Adult Microglia and Brain Macrophages In Vitro

Microglia and central nervous system (CNS)-infiltrating macrophages, collectively called CNS mononuclear phagocytes (CNS-MPs), play central roles in neurological diseases including neurodegeneration and stroke. CNS-MPs are involved in phagocytic clearance of pathological proteins, debris and neuronal synapses, each with distinct underlying molecular pathways. Characterizing these phagocytic properties can provide a functional readout that compliments molecular profiling of microglia using traditional flow cytometry, transcriptomics and proteomics approaches. Phagocytic profiling of microglia has relied on microscopic visualization and in vitro cultures of mouse neonatal microglia. The former approach suffers from limited sampling while the latter approach is inherently poorly reflective of the true in vivo state of adult CNS-MPs. This paper describes optimized protocols to phenotype phagocytic properties of acutely-isolated mouse CNS-MPs by flow cytometry. CNS-MPs are acutely isolated from adult mouse brain using mechanical dissociation followed by density gradient centrifugation, incubated with fluorescent microspheres or fluorescent A&#946; fibrils, washed, and then labeled with panels of antibodies against surface markers (CD11b, CD45). Using this approach, it is possible to compare phagocytic properties of brain-resident microglia with CNS-infiltrating macrophages and then assess the effect of aging and disease pathology on these phagocytic phenotypes. This rapid method also holds potential to functionally phenotype acutely-isolated human CNS-MPs from post-mortem or surgical brain specimens. Additionally, specific mechanisms of phagocytosis by CNS-MP subsets can be investigated by inhibiting select phagocytic pathways.

Assessment of phagocytic properties of microglia and brain macrophages can provide a valuable functional dimension to molecular profiling studies. We describe a validated protocol that uses flow cytometry to rapidly and reliably quantify phagocytosis of fluorescent microspheres and amyloid beta fibrils by acutely-isolated microglia and brain macrophages from mouse models.

Microglia and central nervous system (CNS)-infiltrating macrophages, collectively called CNS mononuclear phagocytes (CNS-MPs), play central roles in ...

Isolation and Culture of Bone Marrow-Derived Macrophages from Mice

Macrophages have important effector functions in homeostasis and inflammation. These cells are present in every tissue in the body and have the important ability to change their profile according to the stimuli present in the microenvironment. Cytokines can profoundly affect macrophage physiology, especially IFN-&#947; and interleukin 4, generating M1 and M2 types respectively. Because of the versatility of these cells, the production of a population of bone marrow-derived macrophages can be a basic step in many experimental models of cell biology. The aim of this protocol is to help researchers in the isolation and culture of macrophages derived from bone marrow progenitors. Bone marrow progenitors from pathogen-free C57BL/6 mice are transformed into macrophages upon exposure to macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) that, in this protocol, is obtained from the supernatant of the murine fibroblast lineage L-929. After incubation, mature macrophages are available for use from the 7th to the 10th day. A single animal can be the source of approximately 2 x 107 macrophages. Therefore, it is an ideal protocol for obtaining large amounts of primary macrophages using basic methods of cell culture.

The present protocol describes the isolation and culture of bone marrow-derived macrophages from mice.

Macrophages have important effector functions in homeostasis and inflammation. These cells are present in every tissue in the body and have the important ...

In vitro Quantitative Imaging Assay for Phagocytosis of Dead Neuroblastoma Cells by iPSC-Macrophages

Microglia orchestrate neuroimmune responses in several neurodegenerative diseases, including Parkinson&#39;s disease and Alzheimer&#39;s disease. Microglia clear up dead and dying neurons through the process of efferocytosis, a specialized form of phagocytosis. The phagocytosis function can be disrupted by environmental or genetic risk factors that affect microglia. This paper presents a rapid and simple in vitro&#160;microscopy protocol for studying microglial efferocytosis in an induced pluripotent stem cell (iPSC) model of microglia, using a human neuroblastoma cell line (SH-SY5Y) labeled with a pH-sensitive dye for the phagocytic cargo. The procedure results in a high yield of dead neuroblastoma cells, which display surface phosphatidylserine, recognized as an &#34;eat-me&#34; signal by phagocytes. The 96-well plate assay is suitable for live-cell time-lapse imaging, or the plate can be successfully fixed prior to further processing and quantified by high-content microscopy. Fixed-cell high-content microscopy enables the assay to be scaled up for screening of small molecule inhibitors or assessing the phagocytic function of genetic variant iPSC lines. While this assay was developed to study phagocytosis of whole dead neuroblastoma cells by iPSC-macrophages, the assay can be easily adapted for other cargoes relevant to neurodegenerative diseases, such as synaptosomes and myelin, and other phagocytic cell types.

Neurodegenerative diseases are associated with dysregulated microglia functions. This article outlines an in vitro assay of phagocytosis of neuroblastoma cells by iPSC-macrophages. Quantitative microscopy readouts are described for both live-cell time-lapse imaging and fixed-cell high-content imaging.

iPSC-대식세포에 의한 죽은 신경 모세포종 세포의 식증에 대한 체외 정량적 이미징 분석

Microglia orchestrate neuroimmune responses in several neurodegenerative diseases, including Parkinson&#39;s disease and Alzheimer&#39;s disease. ...

신생아 골수 유래 대식세포의 식세포 분석 평가 

Neonatal Mouse Bone Marrow Isolation and Preparation of Bone Marrow-Derived Macrophages

Various techniques for isolating bone marrow from adult mice have been well established. However, isolating bone marrow from neonatal mice is challenging and time-consuming, yet for some models, it is translationally relevant and necessary. This protocol describes an efficient and straightforward method for preparing bone marrow cells from 7-9-day-old pups. These cells can then be further isolated or differentiated into specific cell types of interest. Macrophages are crucial immune cells that play a major role in inflammation and infection. During development, neonatal macrophages contribute significantly to tissue remodeling. Moreover, the phenotype and functions of neonatal macrophages differ from those of their adult counterparts. This protocol also outlines the differentiation of neonatal macrophages from the isolated bone marrow cells in the presence of L929-conditioned medium. Surface markers for differentiated neonatal macrophages were assessed using flow cytometric analysis. To demonstrate functionality, the phagocytic efficiency was also tested using pH-sensitive dye-conjugated Escherichia coli.

저자 스포트라이트: Developing a Reproducible Method for Isolating Bone Marrow-Derived macrophages from Neonatal Mice to Advance Early Life Immune Response(신생아 마우스에서 골수 유래 대식세포를 분리하여 조기 면역 반응을 촉진하기 위한 재현성 있는 방

This protocol describes a non-enzymatic and straightforward method for isolating 7-9-day-old neonatal mouse bone marrow cells and generating differentiated macrophages using a supernatant of L929 cells as a source of granulocyte colony-stimulating factor (M-CSF). The bone marrow-derived macrophages were further analyzed for surface antigens F4/80, CD206, CD11b, and functional competency.

신생아 마우스 골수 분리 및 골수 유래 대식세포의 준비

Various techniques for isolating bone marrow from adult mice have been well established. However, isolating bone marrow from neonatal mice is challenging ...