이 작품은 Gastroenterology / 캐나다 보건 연구 / Crohn &#39;s의 협회 및 캐나다의 새로운 탐정 수상의 대장염 재단의 캐나다 협회에서 지원하는 LMS에 Crohn의과 캐나다의 대장염 재단에서&#39;연구 보조의 부여 &#39;에 의해 지원되었다.

1. Clodronate 함유 Liposomes 이용 파괴 Macrophages <ol><li> Liposomes는 4 ° C.에 저장됩니다 두 시간 전에 주사로, 그들은 상온 (18 ° C)에 적응하도록 냉장고에서 clodronate 함유 liposomes, PBS 함유 liposomes, 또는 무균 PBS (분사 제어)를 제거하십시오. </li><li> 1 ML의 주사기에 200 μl를로드하기 전에도 유통을 보장하기 위해 liposomes에게 8-10 번 들어있는 튜브를 반전. 주사기의 상단에 26 게이지 바늘을 연결합니다. </li><li> 단지 아기의 머리와 사지를 고정하기 위해 충분한 피부를 잡고 귀를 아래 왼손, 비듬에게 마우스를 사용합니다. </li><li> 내부 장기가 복부의 오른쪽 아래 사분면에 위치하고 있으며 주사 사이트에서 떨어져 움직일 수 있도록 아기의 머리가 땅에 향해 약간 수 있도록 마우스를 기울이십시오. </li><li> 손바닥 사이에 주사기를 올리고 사출에 고르게 이전 리포좀 솔루션을 배포하는 데 그것을 6 회로 바꾸란. </li> &lt;리&gt; 30-40도 각도에서 마우스 복부 하단 오른쪽에 바늘을 삽입합니다. 리포좀 용액 또는 PBS 200 μl를 주입. </li><li> 유도된 염증 모델 중에는 DSS 유도된 대장염처럼 처음 침투 macrophages를 고갈하는 프로토콜 중 주민 macrophages와 매 2 일간의 고갈을 보장하기 위해 사전에 실험적인 염증의 증상에 대한 사일 쥐는 주입. </li><li> 실험 끝에 계획된 실험적인 분석과 함께 관심있는 사이트에서 조직을 제거하고 immunohistochemical 염색법에 의해 대식 세포 고갈 확인을 위해 paraformaldehyde로 고정시킨다. </li></ol> 2. 골수 Aspirates에서 편광 Macrophages의 유도 <ol><li> 생후 8 12주 사이에 생쥐의 골수는 골수 파생 macrophages 가장 높은 수율을 제공합니다. 마우스를 안락사, 그것은 누워 있으며까지 가능한 자사의 팔다리를 스트레칭, 그 발 아래로 핀. </li><li> 후 멸균에 근무d는, 가능한 한 많은 근육으로 떨어져 절단, 대퇴골 및 tibias를 제거합니다. </li><li> 10% FCS와 IMDM를 사용하여 뼈를에서 플러쉬 골수는 26 게이지 바늘로 장착되어 5 ML의 주사기에 로드된. </li><li> 희석 골수 10 % FCS, 75cm 두 조직 배양 플라스크에 장소 세포, 37에서 품어 ° C, 5 % 4 시간 동안 CO 2와 IMDM 40 ML에 aspirates. 이 단계는 조혈 progenitors에서 자기편 mesenchymal 세포 또는 성숙 macrophages를 제​​거합니다. </li><li> 1,200 rpm으로 5 분 동안 50 ML 원뿔 팔콘 튜브와 원심 분리기에 비 점착 성의 progenitors를 포함하는 전송 문화 뜨는. </li><li> Resuspend 세포 5 ML IMDM의 펠렛 10 % FCS하고 초산에 20 세포 현탁액 1 diluting하여 nucleated 세포를 계산합니다. 이 절차는 적혈구와 나머지 핵은 hemocytometer를 계산하실 수 있습니다 포함한 모든 세포를 lyses. </li><li> 0.5의 농도 × 10 6 세포 / 전체 매체에 ML에서 Resuspend 세포, IMDM 10 % FCS, 150 μm의 제품 monothioglycerol (MTG), 10 NG / MCSF, GM-CSF, 또는 IL-3 하나의 ML. GM-CSF 또는 IL-3-파생 macrophages는 또한 활성화되는 반면 MCSF 파생 macrophages는 고전적인 macrophages를 활성화됩니다. </li><li> 비 점착 성의 세포를 아래로 회전하고 플라스크에게 반환하고, 일 7시, 폐기 비 점착 성의 세포, 일 4에서 매체를 교체하십시오. </li><li> 또한, IFNγ (10 NG / ML) 또는 IL-4 (10 NG / ML)은 스큐 macrophages까지 일 7 시에 MCSF 파생 세포를 포함하는 flasks에 추가할 수있는 고전적인 각각 활성화하거나 또는 활성화 표현형. 3 번 정도 더 일 동안 세포를 품어. </li><li> 10 일째에, 미디어를 제거하고 세포 분열의 버퍼 (Gibco-BRL)를 사용하여 조직 배양 플라스크의 세포를 발사. 다음 장소 5 실온 (18 ° C)에서 5 분 세포에 대한 버퍼의 ML하고 손바닥의 뒤꿈치 단단​​히 여러 번 함께 플라스크의 측면을 두들겨도. 세포가 아래 플라스크를 검사하여 플라스크에서 떠낸했는지 확인현미경. Pipet는 15 ML 원뿔 팔콘 튜브에 세포를 resuspended하고 IMDM 10 % FBS의 추가 10 ML로 플라스크를 씻어. 풀 300 × g에서 5 분 대한 세포를 돌리다. </li><li> 멸균 PBS pH7.4에서 10 7 셀 / ML의 농도에 hemocytometer 및 resuspend를 사용하여 실행 가능한 세포를 세어보세요. Macrophages은 생쥐에 주입을위한 준비가되어 있습니다. </li><li> 예약 1.0 × 대식 세포 표현형 평가를위한 10 6 macrophages. lipopolysaccharide의 분비 질소 산화물의 높은 수준과 IL-10의 IL-12p70 및 낮은 수준으로 자극 클래식한 활성화 macrophages가 번갈아 활성화 macrophages에 비해. 또한 활성 macrophages는 constitutively YM1과 서양이 immunoblotting까지 감지가 가능하다 arginase I (ArgI)를 표현. </li></ol> 3. 마우스로 Macrophages을 Tranferring <ol><li> 10 7 세포 / ML의 농도에서 멸균 PBS에서 Resuspend macrophages. 이것에 대해 허용안전하고 편안하게 꼬리 정맥에 의해 생쥐에 주입 수있는 볼륨입니다 100 μl의 총 판매량 10 6 macrophages의 travenous 주입. </li><li> 꼬리 정맥을 치료하는데 5-10 분 동안 가열 패드 또는 열 무릎을 사용하여 따뜻한 생쥐. 고열의 징후에 대해 항상 마우스를 모니터링합니다. </li><li> 꼬리 정맥에 대한 액세스를 허용 금지 장치에 마우스를 전송합니다. </li><li> 꼬리 90 ° 회전 정맥이 위를 향하게되도록. 정맥은 꼬리 양쪽 다운 laterally 실행하거나, 정맥을 사용할 수 있습니다. </li><li> 알코올 면봉으로 사출 사이트를 청소하고 느리게 26 또는 28 게이지 바늘로 한 ML의 주사기를 사용하여 100 μl를 (10 6 macrophages) 주사. 최대 직면한 베벨 사이드와 함께 혈관에 거의 평행하게 약간 각도에서 바늘을 삽입합니다. </li><li> 바늘이 제대로 삽입되면 아무런 저항도 느껴 보지해야하며 정맥은 주사 후 맑은 수있게됩니다. 마약에 없으면정맥, 꼬리가 팽창됩니다. 이 경우 바늘을 제거하고 다시 마지막 시도하거나 다른 정맥에 대한 근위보십시오. 꼬리가 힘든이며 바늘은 꼬리 정맥 주입시 신속하게 무딘지고 새로운 바늘은 각 주사를 사용해야합니다. </li><li> 사출 이어, 바늘을 제거 출혈이 멈출 때까지 주입 사이트에 부드러운 압력을 적용, 그 출혈은 멈추었 있도록 추가로 5 분 용 마우스를 모니터합니다. </li><li> 실험 절차를 수행하는 동안 편광 macrophages의 지속적인 전달을 보장하기 위해 4 일에 한 대식 세포 주사를 반복합니다. </li><li> 실험이 끝나면 실험적인 분석과 함께 관심있는 사이트에서 조직을 제거하고 immunohistochemical 염색법에 의한 편광 macrophages의 효과적인 전달을 확인하는 paraformaldehyde 또는 포르말린으로 고정시킨다. </li></ol> 4. 대표 결과 주민 macrop의 번호와 표현형특정 조직의 hages가 조사중인 조직에 의존하고 감염이나 염증 동안 변경됩니다. 마찬가지로, 조직에서 macrophages를 고갈하기 clodronate 함유 liposomes의 능력은 관리 및 대상 조직에 대한 효과적인 전달 경로에 따라 달라집니다. F4/80의 감소 + 대식 세포 마커, F4/80 (그림 1A)에 대한 immunohistochemical 염색법에 의해 분명 DSS 유도된 대장염 동안 마우스 콜론의 macrophages의 clodronate 함유 liposomes 결과의 Intraperitoneal 주입. Histological 염색법은 또한 조직 섹션에있는 대식 세포 번호 및 표현형의 양적 차이를 결정하는 데 사용할 수 있습니다. 그림 1B는 마우스가 함께 주입되면 macrophages의 55 %의 평균은 마우스 콜론에서 검색된없이 고갈에 비해 clodronate 함유 liposomes으로 소진되는 보여줍니다 분사 제어와 같은 PBS 혼자. 각 값은 F4/80 및 ArgI는 얼룩 계산에 의해 결정됩니다계산은 실험적인 상태로 멀게 두 명에 의해 수행되고있는 마우스 당 3 섹션에서 3 점 6 생쥐에서 시리얼 조직 섹션에 에드 긍정적인 세포. 이러한 결과는 clodronate의 liposomes의 intraperitoneal 주사가 생쥐에서 colonic macrophages를 고갈 것을 보여줍니다. (GM-CSF 나 IL-3-파생 또는 MCSF - 파생과 고전적인 활성 (MCSF-파생된 또는 MCSF - 유래와 IFNγ 대우) 또는 다른 방법으로 활성화되어 다양한 성장 요인의 수확량의 macrophages의 존재의 골수에서 macrophages의 유도 ) IL-4로 치료. 8주 옛 마우스에서 2 대퇴골과 2 tibias로부터 골수를 플러쉬 것은 일반적으로 마우스 당 6 × 10 7 nucleated 세포 수율 8 × 10 6 MCSF 파생 macrophages, 10 × 10 6 GM-CSF-파생 macrophages, 또는 12를 얻을 × 10 6 IL-3-파생 macrophages. 그림 2A는 대식 세포에서 아질산염과 IL-12p70/IL-10 비율 한모금 보여줍니다ernatants 24 시간 동안 lipopolysaccharide로 치료 그림 2B는 0.5의 전형적인 서양 얼룩 분석 × MCSF에서 10 6 macrophages + / 보여줍니다 -. IL-4 파생 조건 또는 활성화된 대식 세포 마커, ArgI, YM1에 대한 항체와 탐지를하거나, 같은 GAPDH로 제어를 실었습니다. 이러한 데이터는 골수 파생 macrophages가 파생하는 동안 편광 표현형에 괴상한 수 있도록 보여줍니다. 티슈로 전직 생체내 파생 편광 macrophages의 효과적인 전송 관리 및 조직에 대한 접근의 경로에 따라 달라집니다. DSS 유도된 대장염 동안 macrophages는 염증의 사이트로 이동하고 또한 활성화 macrophages은 질병 심각도를 줄일 정맥 주입. 그림 3A는 macrophages의 총계를 보여줍와 생쥐에서 histological 섹션에 포함 ArgI + (또는 활성화) macrophages의 수가 편광 주사 골수macrophages를 파생. DSS 유도된 대장염 동안 콜론으로 편광 macrophages의 양도의 영향은 질병 활동 지수, 체중 감소, 직장 출혈, 그리고 감소 대변 일관성 (그림 3B)에 근거 첨가제 점수가 표시됩니다. 이러한 결과는 전 생체내가 파생된 것으로 입증, adoptively 양도 macrophages 콜론과 영향 유도된 염증에 대한 트래픽이 있습니다. M2 macrophages 크게 질병 활동 색인을 줄이는 반면 M1 macrophages는 염증에 영향을 미치지 않습니다. <img src="/files/ftp_upload/4105/4105fig1.jpg" alt="그림 1"/> 그림 1. Clodronate 함유 liposomes 효과적 F4/80를 고갈 +와 F480 + ArgI + 생체내에서 마우스 콜론의 세포. 혼합 C57BL / 6 × 129Sv 배경에 야생 형 생쥐의 F2 세대는 치료를 DSS하기 전에 PBS (컨트롤) 또는 clodronate 함유 liposomes (Clodronate) 4 일 동안 칠일 및 주입 IP에 대해 5 % DSS을 받았고그리고 일 0, 2, 4 및 DSS 치료 중에 6. () 콜론은 제거 고정되어, 그리고 섹션은 성숙 macrophages (F4/80)과 M2 대식 세포 마커, ArgI위한 immunohistochemistry에 의해 물들어 있었다되었다. F4/80의 (B) Quantitation +와 ArgI + macrophages. 긍정적으로 얼룩진 세포는 3 섹션 / 마우스에서 6 생쥐 / 그룹에서 6 분야 40 × 확대 실험적인 상태로 멀게 두 명으로 집계되었다. * P &lt;0.01. <img src="/files/ftp_upload/4105/4105fig2.jpg" alt="그림 2"/> 그림 2. MCSF 파생 macrophages는 고전적인 활성화 표현형을 표현하고 IL-4로 치료 MCSF 파생 macrophages는 또는 활성화된 대식 세포의 표현형 표현. () 고전 활성화 표현형과 일치, MCSF 파생 macrophages은 lipopolysaccharide에 대한 반응으로 질산 산화 높은 수준의 생산과 그 하류 신진 대사, 아질산을 감지 Griess 분석에 의해 측정할 수있다. 그들 ALS엘리사에 의해 측정할 수 높은 IL-12p70/IL-10 비율, 생산 O. * P N = 3 &lt;0.01. (B) 또는 활성화 표현형과 일치하는, IL-4 constitutively 명시 YM1와 ArgI 대우 MCSF 파생 macrophages는 어느 서양 immunoblotting까지 감지가 가능하다. 데이터는 유사한 결과를 3 개의 독립적인 실험의 대표입니다. <img src="/files/ftp_upload/4105/4105fig3.jpg" alt="그림 3"/> 그림 3. 정맥 주입, 전직 생체내 - 파생 또는 콜론으로 macrophages 트래픽을 활성화하고 장의 염증을 줄일 수 있습니다. 혼합 C57BL / 6 × 129Sv 배경에 야생 형 생쥐의 F2 세대가 6 일 자신들의 식수의 5 % DSS를 받았습니다. M1과 M2 macrophages는 DSS 치료 기간 동안 일 0과 4 주사를 주입했다. () 콜론은 제거 고정되어, 그리고 섹션은 성숙 macrophages (F4/80)에 immunohistochemistry와 M2 대식 세포 마커 (ArgI)에 의해 물들어 있었다되었다.컨트롤 PBS 주입 생쥐 (C)에 대한 macrophages의 Quantitation는 M1 macrophages (+ M1) 및 M2 macrophages (+ M2)와 함께 주입 생쥐에 주입 생쥐는 3 구역 / 마우스에서 6 분야 40 × 확대 긍정적 스테인드 세포를 계수에 의해 수행되었다 6 생쥐 / 그룹에서. 계산은 실험적인 상태로 멀게 두 명에 의해 수행되었다. (B) 질병 활동 모니터링 및 치료 기간 동안 매일 점수 및 체중 감소, 직장 출혈, 그리고 감소 대변 일관성을 바탕으로 첨가제 점수가되었습니다. * P N을위한 &lt;0.05이 독립적인 실험에서 = 6 생쥐.

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B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternative+activation+of+macrophages+by+IL-4+requires+SHIP+degradation.">Alternative activation of macrophages by IL-4 requires SHIP degradation.</a> Eur. J. Immunol. 41, 1742-1753 (2011).</li><li>Cailhier, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conditional+macrophage+ablation+demonstrates+that+resident+macrophages+initiate+acute+peritoneal+inflammation.">Conditional macrophage ablation demonstrates that resident macrophages initiate acute peritoneal inflammation.</a> J. Immunol. 174, 2336-2342 (2005).</li></ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

Macrophages가 면역 체계에 중요한 역할을 phagocytic 세포입니다. 그들은 타고난 면역 반응을 시작하고 후천성 면역 응답을 감독 책임이 있습니다. 일반적으로 고전적인 활성화 macrophages는 IFNγ 또는 LPS에 의해 활성화하고 병원균을 제거하고 염증 반응 1을 장착 책임이 있습니다. 반대로, 또는 활성 macrophages는 IL-4 또는 IL-13에 의해 활성화되고 염증 1 해상도 동안 소기 파편의 역할과 조직 리모델링을 재생합니다. 뱃속에있는 전문 macrophages는 bactericidal 활동을 유지하지만 프로 염증 반응 2를 탑재하지 않습니다. 유익한 식물 및 식품 항원이 관용은 소재의 통관을 허용 그 위반 부적 절한 잠재적으로 병적인 면역 반응 3 시작하지 않고 상피 장벽. 이소성 colonic 대식 세포 기능 기여할 수염증성 장 질환, 과민성 대장 증후군 및 대장암 3-5 포함한 병리 학적 조건. 도전 수있는 건강 또는 질병에있는 역할을 정의할 수 있도록 대식 세포의 표현형는 로컬 microenvironment에 따라 달라집니다. 여기에서 설명한 프로토콜은 생체내 환경에서 복잡한에서 대식 세포 고갈을 허용합니다. 또한, 현장에서 대식 세포의 표현형의 역할을 검토하기 위해 phenotypically 정의된 편광 macrophages는 골수 aspirates에서 전직 생체내을 파생 수 있으며 adoptively 함께 또는 macrophages의 사전 파괴하지 않고, 마우스로 전학 왔어. Clodronate 함유 liposomes는 대식 세포 &#39;자살&#39;을 홍보하고 조직 6 다양한 macrophages를 고갈하는 데 사용되었습니다. Macrophages는 세포 및 유도 apoptosis 12에 clodronate를 공개 lysosomal phospholipases에 의해 연속적으로 저하될 수 있습니다 clodronate 함유 liposomes을 phagocytose </suP&gt;. Clodronate은 (0.25 G / ML 수용액) liposomes에 캡슐과 일개월 12에 대해 4 ° C에서 안정적입니다. 주사기로와 마우스에 주입하기 전에로드하기 전에 Liposomes는 균등 관계없이 관리 또는 대상 조직의 경로, 솔루션에 배포해야합니다. clodronate 함유 liposomes 7 생체내에 macrophages를 파괴했을 때 PBS 주입과 PBS 함유 liposomes의 주입 필요가 제어합니다. PBS 함유 liposomes 혼자 PBS 주사보다 나은 컨트롤처럼 보여야 하니까요. 우리와 다른, PBS 함유 liposomes 몇 가지 실험 조건 8, 9 macrophages를 고갈 수 있다고 보고된 바 있으나, 그것은 몇 가지 보고서가 성공적으로 PBS 함유 컨트롤과 같은 liposomes를 이용하면서 점에 유의하는 것이 중요합니다. 또한, 혼자 liposomes가 일시적으로 10 phagocytosis를 억제하는 것으로보고되었습니다. PBS 함유 liposomes에 의한 대식 세포 고갈은 P에 의존 수도 있습니다hagocytic 능력과 마우스 변형에 따라 달라질 수 있습니다, 유전적 배경, 조직, 및 / 또는 실험 조건. 의 사용은 PBS-포함된 특정 응용 프로그램에서 대식 세포 고갈에 대한 제어와 그 효과로 liposomes 것이 실험적으로 결정되어야합니다. 따라서 우리는 PBS 및 PBS 함유 모두 liposomes이 초기 실험 중에 분사 컨트롤로 사용하는 것이 좋습니다. 대식 세포 고갈 실험을 설계에서 중요한 고려 사항은 clodronate 함유 liposomes의 행정의 노선입니다. 우리는 성공적으로 intraperitoneal 주사에게 8을 이용하여 생쥐에서 colonic macrophages을 대상으로했습니다. 기타 intrarectal 관리 또는 정맥 주사 9, 11을 사용했습니다. 정맥 주사는 얇은 판에서 macrophages의 90 %까지 고갈하는 것으로보고되었습니다 반면 Intrarectal 및 intraperitoneal 행정부는 두 colonic macrophages의 약 50 %를 고갈하는 것으로보고되었습니다propria 8, 9, 11. 우리는 기술의 단순 인해 clodronate 함유 liposomes를 전달 intraperitoneal 주사를 수행하기로하고 우리와 비슷한 연구가 성공적으로 관리 7이 경로를 사용했기 때문에. 콜론의 고갈 높은 수준의이 실험을 위해 필요한 경우에는 정맥 주사는 고갈을 향상시킬 수 있습니다. 행정의 노선은 다른 조직에있는 대식 세포 고갈에 대한 중요한 고려 사항이다. Intraperitoneal 주사는 복막, omentum, parathymic의 림프절, 간 및 지라 macrophages 12 고갈하는 데 사용되었습니다. 정맥 주사는 간, 비장 및 골수 12 macrophages를 고갈하는 데 사용되었습니다. clodronate 함유 liposomes의 심실 관리는 소뇌, 뇌 및 척수 12 perivascular 및 meningeal macrophages를 고갈하는 데 사용되었습니다. Intratracheal그리고 clodronate 함유 liposomes의 비강 관리는 폐포 macrophages를 고갈하는 데 사용되었습니다. 마지막으로, 지방 행정이 성공적으로 고환과 vitreal macrophages 12, 13를 고갈하는 데 사용되었습니다. 대상 조직의 대식 세포 고갈의 효능은 실험적으로 결정하고 immunohistochemistry (그림 1A) 또는 유동세포계측법하여 조직을 더럽히는 것으로 확인되어야합니다. 어떤 경우에는 그것은 대식 세포 고갈 속도를 증가해야 할 수도 있습니다. 고갈을 높이기 위해 최적화할 수 변수는 clodronate 함유 리포좀 행정의 노선, clodronate 함유 사출 당 liposomes 및 / 또는 분사의 빈도의 양을 변화 등이 있습니다. clodronate 함유 liposomes과 macrophages를 파괴 데이터의 해석에서 중요한 고려 사항은 모든 프로 phagocytes가 돌기 세포를 포함하여 고갈된다는 것입니다. 보장하기 위해 그생물 학적 효과는 대식 세포에 의존, 보완 reconstitution 실험이 필요합니다. 골수 aspirates에서 macrophages를 파생하는 것은 reconstitution 실험을위한 유용한 도구뿐만 아니라 연구 조사 대식 세포 기능입니다. 우리는 성공적으로 macrophages 14 대안 활성화에 PI3K 신호 통로의 역할을 탐구 체외 연구에서이 프로토콜을 사용 하였다. 파생 과정에서 중요한 두 단계가 있습니다. 첫째, 준수 고갈 단계 중 하나 mesenchymal 세포 또는 성숙 조혈 세포를 오염, 골수 aspirates에서 점착 성의 세포를 제거하는 매우 중요합니다. 둘째, 대식 세포 표현형는 실험적인 절차에서 그들이 사용하기 전에 확인하여야한다. 이 프로토콜에 대한 수정은 서로 다른 유전자 모델 체외에서 대식 세포 표현형 및 함수에서 특정 유전자의 역할의 조사를 허용, 대식 세포의 유도와 reconstitution에 사용될 수있다생체내에서 D. reconstitution 실험의 경우 정맥 주사는 대식 세포 전달의 가장 일반적인 모드입니다하지만 전지 수량 및 사출 주파수 모두 특정 연구에 대해 최적화할 수 있습니다. 레트로 - 궤도 주사는 reconstitution에 사용할 수 있으며, 비슷한 결과를 제공해야합니다. 참고, macrophages는 염증의 사이트로 모집하고 그들의 표현형들은 microenvironment의 신호에 대한 응답으로 변경될 수 있습니다. 마지막으로, 입양 전송 대상 조직이지만 주민 조직 macrophages의 사전 고갈이 adoptively 전송 macrophages 설립을 허용해야 할 수도 있습니다으로 macrophages를 전달하기에 충분 수도 있습니다. 여기에 제시된 프로토콜은 기존의 방법을 통해 장점을 가지고 있습니다. macrophages를 고갈하는 다른 방법은 조건부 절제 유전자 변형 마우스, CD11b-DTR 15 사용하는 것입니다. 이 마우스에는 인간 디프테리아 독소 (DT) 수용체는 컨트롤 O 아래에 표시됩니다F 대식 세포에 특정한 CD11b업자. 이것은 독소 감도를 수여하고 DT 주입은 대식 세포 고갈 - 15 일으 킵니다. 비율 대식 세포 고갈이 모델의 큰 것이지만, clodronate 함유 liposomes 두 가지 중요한 장점을 제공합니다. Clodronate 함유 리포좀 주입은 어떤 마우스 변형에 macrophages를 고갈하는 데 사용할 수 있습니다. Macrophages가 CD11b-DTR 마우스 메서드를 사용하는 데 필요한 backcrossing에 필요한 시간과 비용없이 유전자 변형 생쥐에서 고갈 수 있습니다. 조사를 받고 모델이 독특한 또는 혼합 배경을 요구하는 경우 같은 이유로, macrophages가 어떠한 배경에 생쥐에서 고갈 수있는이 중요한 고려 사항이다. 마찬가지로, 마우스 라인에서 전직 생체내 파생 macrophages를 사용 입양 전송 실험 alloreactivity 어떤 문제가 발생하지 않습니다. 여기에 설명된 프로토콜 연구 질문에 다양한 적용할 수 있습니다. 우리 차를 이용ESE는 기술 결장에 염증에 macrophages의 역할을 연구합니다. Clodronate 함유 리포좀 - 중재 대식 세포 고갈과 macrophages의 입양 전송은 조직의 다수를 타겟으로하는 데 사용할 수 있습니다. 대식 세포 입양 전송은 reconstitute 고갈 macrophages이나 염증의 유전자 또는 inducible 모델에서 염증의 사이트에 직접 macrophages로 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 또한 macrophages 또는 그 편광은 병리와 관련된 질병 모델에서 대식 세포 타겟 치료제를 검사를위한 플랫폼을 제공합니다.

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Clodronate 함유 liposomes </td><td> <a href="http://Clodronateliposomes.org" target="_blank">Clodronateliposomes.org</a> </td><td></td></tr><tr><td> PBS 함유 liposomes </td><td> <a href="http://Clodronateliposomes.org" target="_blank">Clodronateliposomes.org</a> </td><td></td></tr><tr><td> 멸균 PBS pH7.4 </td><td> Invitrogen </td><td> 14,190 </td></tr><tr><td> IMDM </td><td> Invitrogen </td><td> 12,440 </td></tr><tr><td> 소태아 세럼 (FCS) </td><td> Invitrogen </td><td> 12,483 </td></tr><tr><td> 초산 </td><td> BDH Aristar </td><td> BDH3092-500MLP </td></tr><tr><td> Monothioglycerol (MTG) </td><td> 시그마 </td><td> 96-275 </td></tr><tr><td> Recombinant murine MCSF </td><td> Stemcell 기술 </td><td> 02,951 </td></tr><tr><td> GM-CSF 재조합 murine </td><td> Stemcell 기술 </td><td> 02,935 </td></tr><tr><td> 재조합 murine IL-3 </td><td> Stemcell 기술 </td><td> 02,903 </td></tr><tr><td> 재조합 murine IFNγ </td><td> Stemcell 기술 </td><td> 02,746 </td></tr><tr><td> 재조합 murine IL-4 </td><td> Stemcell 기술 </td><td> 02,714 </td></tr><tr><td> 세포 분리 버퍼 </td><td> Invitrogen </td><td> 13150-016 </td></tr><tr><td> anti-F4/80 항체를 밀고 </td><td> AbD Serotec </td><td> MCA497GA </td></tr><tr><td> 마우스 방지 ArgI 항체 </td><td> BD의 형질 도입 연구소 </td><td> 610,708 </td></tr></tbody></table> 표 1.이 프로토콜에서 사용되는 특정 시약.

depletion and reconstitution of macrophages in mice

Macrophages는 타고난 면역 반응을 시작하고 후천성 면역 반응을 지시 전염성 도전이나 부상으로 타고난 면역 반응에서 중요한 선수입니다. 대식 세포 기능 장애는 적절한 면역 반응을 마운트 무능력으로 이어질 수 있으며, 같은, 염증성 장 질환 등 많은 질병 프로세스에 연루되었습니다. Macrophages는 크게 두 가지 범주로 나누어집니다 편광 phenotypes를 표시합니다. 고전 활성화 macrophages는 IFNγ 또는 LPS로 자극에 의​​해 활성화, 해상도 또는 활성화 macrophages 반면, IL-4 또는 IL-13에 의해 활성화, 소기 파편과 조직 리모델링에 참여하고 연루되어 세균의 도전에 대한 응답으로 중요한 역할을 염증의 위상. 생체내의 염증 반응 동안, macrophages는 면역 세포를 침투의 복잡한 혼합물 속에서 발견되고 exacerbating 또는 resolvin으로 참여할 수g 걸렸다. 전체 동물 모델에서 현장에서 macrophages의 역할을 정의하려면, 그것은 복잡한 환경에서 macrophages을 파괴의 효과를 조사할 필요가 있습니다. 현장에서 대식 세포의 표현형의 역할에 관한 질문을하려면 phenotypically 정의된 편광 macrophages는 골수 aspirates에서, 전직 생체내를 얻을 수와 함께 또는 macrophages의 사전 파괴하지 않고, 다시 생쥐로 추가했습니다. 프로토콜에서 clodronate 함유 liposomes 여기를 제시, 대 PBS 주입 제어, dextran 나트륨 황산 (DSS) 유발 생쥐의 대장염 동안 colonic macrophages를 고갈하는 데 사용되었다. 또한, 편광 macrophages는 전직 생체내를 파생되었으며 정맥 주사에 의해 생쥐로 전학 왔어. 이 방법에 주의해야 할 점은 그 clodronate 함유 liposomes 너무 고갈에 의해 관찰 효과는 대식 세포 관련, reconstitution O한지 돌기 세포 및 macrophages 모두를 포함한 모든 전문 phagocytes을 고갈이다macrophages의 입양 전송에 의한 F의 표현형이 필요합니다. 생쥐의 조직 대식 세포 고갈도 CD11b-DTR 배경에 backcrossing 마우스에 의해 달성될 수있는이 훌륭한 보완적인 접근 방법입니다. clodronate 함유 리포좀-매개 고갈의 장점은 backcrossing 마우스에 관련된 시간과 비용을 요구하지 않으며 그것에 관계없이 생쥐 (C57BL / 6, BALB / C, 또는 혼합된 배경의 배경 생쥐에서 사용될 수있다는 것입니다 ).

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Depletion and Reconstitution of Macrophages in Mice

Macrophages는 항상성의 중심 역할을하고 여러 조직의 병리. 여기에 제시된 프로토콜은 macrophages를 파괴하는 방법을 설명합니다<em&gt; 생체내에서</em&gt;, 골수 aspirates에서 편광 macrophages를 파생하고 adoptively 생쥐에 macrophages를 전송. 이 기술은 편광 macrophages 건강과 질병에서 재생하는 역할의 결정을 허용합니다.

마우스의 Macrophages의 고갈과 Reconstitution

Macrophages are critical players in the innate  immune response to infectious challenge or injury, initiating the innate immune  response and directing ...

depletion-and-reconstitution-of-macrophages-in-mice

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

39.5K 조회수.  University of British Columbia. Macrophages는 항상성의 중심 역할을하고 여러 조직의 병리. 여기에 제시된 프로토콜은 macrophages를 파괴하는 방법을 설명합니다 생체내에서, 골수 aspirates에서 편광 macrophages를 파생하고 adoptively 생쥐에 macrophages를 전송. 이 기술은 편광 macrophages 건강과 질병에서 재생하는 역할의 결정을 허용합니다.

비디오: Depletion and Reconstitution of Macrophages in Mice

Depletion of Specific Cell Populations by Complement Depletion

The purification of immune cell populations is often required in order to study their unique functions. In particular, molecular approaches such as real-time PCR and microarray analysis require the isolation of cell populations with high purity. Commonly used purification strategies include fluorescent activated cell sorting (FACS), magnetic bead separation and complement depletion. Of the three strategies, complement depletion offers the advantages of being fast, inexpensive, gentle on the cells and a high cell yield. The complement system is composed of a large number of plasma proteins that when activated initiate a proteolytic cascade culminating in the formation of a membrane-attack complex that forms a pore on a cell surface resulting in cell death1. The classical pathway is activated by IgM and IgG antibodies and was first described as a mechanism for killing bacteria. With the generation of monoclonal antibodies (mAb), the complement cascade can be used to lyse any cell population in an antigen-specific manner. Depletion of cells by the complement cascade is achieved by the addition of complement fixing antigen-specific antibodies and rabbit complement to the starting cell population. The cells are incubated for one hour at 37&deg;C and the lysed cells are subsequently removed by two rounds of washing. MAb with a high efficiency for complement fixation typically deplete 95-100% of the targeted cell population. Depending on the purification strategy for the targeted cell population, complement depletion can be used for cell purification or for the enrichment of cell populations that then can be further purified by a subsequent method.

To effectively study the function of immune cell populations their purification is often required. Complement depletion is a fast and inexpensive technique for the isolation of immune cell populations with high purity.

보완 고갈에 의해 특정 세포 집단의 고갈

The purification of immune cell populations is often required in order to study their unique functions.  In particular, molecular approaches such as ...

연구

면역학 및 감염병학

Study of Phagolysosome Biogenesis in Live Macrophages

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome maturation is the complex and tightly regulated process during which a nascent phagosome undergoes drastic transformation through well-orchestrated interactions with various cellular organelles and compartments in the cytoplasm. This process, which is essential for the physiological function of phagocytic cells by endowing phagosomes with their lytic and bactericidal properties, culminates in fusion of phagosomes with lysosomes and biogenesis of phagolysosomes which is considered to be the last and critical stage of maturation for phagosomes. In this report, we describe a live cell imaging based method for qualitative and quantitative analysis of the dynamic process of lysosome to phagosome content delivery, which is a hallmark of phagolysosome biogenesis. This approach uses IgG-coated microbeads as a model for phagocytosis and fluorophore-conjugated dextran molecules as a luminal lysosomal cargo probe, in order to follow the dynamic delivery of lysosmal content to the phagosomes in real time in live macrophages using time-lapse imaging and confocal laser scanning microscopy. Here we describe in detail the background, the preparation steps and the step-by-step experimental setup to enable easy and precise deployment of this method in other labs. Our described method is simple, robust, and most importantly, can be easily adapted to study phagosomal interactions and maturation in different systems and under various experimental settings such as use of various phagocytic cells types, loss-of-function experiments, different probes, and phagocytic particles.

라이브 식세포에 Phagolysosome 속생의 연구

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome ...

Use of Shigella flexneri to Study Autophagy-Cytoskeleton Interactions

Shigella flexneri is an intracellular pathogen that can escape from phagosomes to reach the cytosol, and polymerize the host actin cytoskeleton to promote its motility and dissemination. New work has shown that proteins involved in actin-based motility are also linked to autophagy, an intracellular degradation process crucial for cell autonomous immunity. Strikingly, host cells may prevent actin-based motility of S. flexneri by compartmentalizing bacteria inside &#8216;septin cages&#8217; and targeting them to autophagy. These observations indicate that a more complete understanding of septins, a family of filamentous GTP-binding proteins, will provide new insights into the process of autophagy. This report describes protocols to monitor autophagy-cytoskeleton interactions caused by S. flexneri in vitro using tissue culture cells and in vivo using zebrafish larvae. These protocols enable investigation of intracellular mechanisms that control bacterial dissemination at the molecular, cellular, and whole organism level.

Use of Shigella flexneri to Study Autophagy-Cytoskeleton Interactions

To counteract pathogen dissemination, host cells reorganize their cytoskeleton to compartmentalize bacteria and induce autophagy. Using Shigella infection of tissue culture cells, host and pathogen determinants underlying this process are identified and characterized. Using zebrafish models of Shigella infection, the role of discovered molecules and mechanisms are investigated in vivo.

사용<em&gt; 시겔 flexneri</em&gt; 자식 작용 - 세포 뼈대의 상호 작용을 연구하는

Shigella flexneri is an intracellular pathogen that can escape from phagosomes to reach the cytosol, and polymerize the host actin cytoskeleton to promote ...

Proteomic Profiling of Macrophages by 2D Electrophoresis

The goal of the two-dimensional (2D) electrophoresis protocol described here is to show how to analyse the phenotype of human cultured macrophages. The key role of macrophages has been shown in various pathological disorders such as inflammatory, immunological, and infectious diseases. In this protocol, we use primary cultures of human monocyte-derived macrophages that can be differentiated into the M1 (pro-inflammatory) or the M2 (anti-inflammatory) phenotype. This in vitro model is reliable for studying the biological activities of M1 and M2 macrophages and also for a proteomic approach. Proteomic techniques are useful for comparing the phenotype and behaviour of M1 and M2 macrophages during host pathogenicity. 2D gel electrophoresis is a powerful proteomic technique for mapping large numbers of proteins or polypeptides simultaneously. We describe the protocol of 2D electrophoresis using fluorescent dyes, named 2D Differential Gel Electrophoresis (DIGE). The M1 and M2 macrophages proteins are labelled with cyanine dyes before separation by isoelectric focusing, according to their isoelectric point in the first dimension, and their molecular mass, in the second dimension. Separated protein or polypeptidic spots are then used to detect differences in protein or polypeptide expression levels. The proteomic approaches described here allows the investigation of the macrophage protein changes associated with various disorders like host pathogenicity or microbial toxins.

Macrophages are the key cells involved in host pathogenicity. Macrophages display phenotypic and functional diversity that can be analysed and detected by proteomic analysis. This article describes how to perform 2D electrophoresis of primary cultures of human macrophages differentiated into M1 or M2 phenotype.

2D 전기 영동에 의한 대 식세포의 프로테옴 프로파일 링

The goal of the two-dimensional (2D) electrophoresis protocol described here is to show how to analyse the phenotype of human cultured macrophages. The ...

Macrophage Cholesterol Depletion and Its Effect on the Phagocytosis of Cryptococcus neoformans

Cryptococcosis is a life-threatening infection caused by pathogenic fungi of the genus Cryptococcus. Infection occurs upon inhalation of spores, which are able to replicate in the deep lung. Phagocytosis of Cryptococcus by macrophages is one of the ways that the disease is able to spread into the central nervous system to cause lethal meningoencephalitis. Therefore, study of the association between Cryptococcus and macrophages is important to understanding the progression of the infection. The present study describes a step-by-step protocol to study macrophage infectivity by C. neoformansin vitro. Using this protocol, the role of host sterols on host-pathogen interactions is studied. Different concentrations of methyl--cyclodextrin (MCD) were used to deplete cholesterol from murine reticulum sarcoma macrophage-like cell line J774A.1. Cholesterol depletion was confirmed and quantified using both a commercially available cholesterol quantification kit and thin layer chromatography. Cholesterol depleted cells were activated using Lipopolysacharide (LPS) and Interferon gamma (IFN&#947;) and infected with antibody-opsonized Cryptococcus neoformans wild-type H99 cells at an effector-to-target ratio of 1:1. Infected cells were monitored after 2 hr of incubation with C. neoformans and their phagocytic index was calculated. Cholesterol depletion resulted in a significant reduction in the phagocytic index. The presented protocols offer a convenient method to mimic the initiation of the infection process in a laboratory environment and study the role of host lipid composition on infectivity.

Macrophage Cholesterol Depletion and Its Effect on the Phagocytosis of Cryptococcus neoformans

In this article, a protocol for infection of macrophages with Cryptococcus neoformans is described. Also, a method for sterol depletion from the macrophages is explained. These protocols provide a guide to study fungal infections in vitro and examine the role of sterols in such infections.

대 식세포 콜레스테롤 고갈과의 식균 작용에 미치는 영향<em&gt; 크립토 콕 쿠스 네오 포르</em

Cryptococcosis is a life-threatening infection caused by pathogenic fungi of the genus Cryptococcus. Infection occurs upon inhalation of spores, which are ...

Isolation of Salmonella typhimurium-containing Phagosomes from Macrophages

Salmonella typhimurium is a facultative intracellular bacterium that causes gastroenteritis in humans. After invasion of the lamina propria, S. typhimurium bacteria are quickly detected and phagocytized by macrophages, and contained in vesicles known as phagosomes in order to be degraded. Isolation of S. typhimurium-containing phagosomes have been widely used to study how S. typhimurium infection alters the process of phagosome maturation to prevent bacterial degradation. Classically, the isolation of bacteria-containing phagosomes has been performed by sucrose gradient centrifugation. However, this process is time-consuming, and requires specialized equipment and a certain degree of dexterity. Described here is a simple and quick method for the isolation of S. typhimurium-containing phagosomes from macrophages by coating the bacteria with biotin-streptavidin-conjugated magnetic beads. Phagosomes obtained by this method can be suspended in any buffer of choice, allowing the utilization of isolated phagosomes for a broad range of assays, such as protein, metabolite, and lipid analysis. In summary, this method for the isolation of S. typhimurium-containing phagosomes is specific, efficient, rapid, requires minimum equipment, and is more versatile than the classical method of isolation by sucrose gradient-ultracentrifugation.

Isolation of Salmonella typhimurium-containing Phagosomes from Macrophages

We describe here a simple and quick method for the isolation of Salmonella typhimurium-containing phagosomes from macrophages by coating the bacteria with biotin and streptavidin.

살 모 넬 라 typhimurium의 절연-대 식 세포에서 Phagosomes를 포함 하

Salmonella typhimurium is a facultative intracellular bacterium that causes gastroenteritis in humans. After invasion of the lamina propria, S. ...

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

Alveolar macrophages are terminally differentiated, lung-resident macrophages of prenatal origin. Alveolar macrophages are unique in their long life and their important role in lung development and function, as well as their lung-localized responses to infection and inflammation. To date, no unified method for identification, isolation, and handling of alveolar macrophages from humans and mice exists. Such a method is needed for studies on these important innate immune cells in various experimental settings. The method described here, which can be easily adopted by any laboratory, is a simplified approach to harvesting alveolar macrophages from bronchoalveolar lavage fluid or from lung tissue and maintaining them in vitro. Because alveolar macrophages primarily occur as adherent cells in the alveoli, the focus of this method is on dislodging them prior to harvest and identification. The lung is a highly vascularized organ, and various cell types of myeloid and lymphoid origin inhabit, interact, and are influenced by the lung microenvironment. By using the set of surface markers described here, researchers can easily and unambiguously distinguish alveolar macrophages from other leukocytes, and purify them for downstream applications. The culture method developed herein supports both human and mouse alveolar macrophages for in vitro growth, and is compatible with cellular and molecular studies.

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

This communication describes methodologies for isolation and culture of alveolar macrophages from humans and murine models for experimental purposes.

고립과 Murine 인간과 치경 대 식 세포의 생체 외에서 문화

Alveolar macrophages are terminally differentiated, lung-resident macrophages of prenatal origin. Alveolar macrophages are unique in their long life and ...

Quantification of Atherosclerosis in Mice

Cardiovascular disease is the main cause of death in the world. The underlying cause in most cases is atherosclerosis, which is in part a chronic inflammatory disease. Experimental atherosclerosis studies have elucidated the role of cholesterol and inflammation in the disease process. This has led to successful clinical trials with pharmaceutical agents that reduce clinical manifestations of atherosclerosis. Careful and well-controlled experiments in mouse models of the disease could further elucidate the pathogenesis of the disease, which is not fully understood. Standardized lesion analysis is important to reduce experimental variability and increase reproducibility. Determining lesion size in aortic root, aortic arch, and brachiocephalic artery are common endpoints in experimental atherosclerosis. This protocol provides a technical description for evaluation of atherosclerosis at all these sites in a single mouse. The protocol is particularly useful when material is limited, as is frequently the case when genetically modified animals are being characterized.

Murine models of atherosclerosis are useful tools to investigate pathogenic pathways on a molecular level, but require standardized quantification of lesion development. This protocol describes an optimized method to determine lesion size in the major arterial vessels including the aortic root, aortic arch, and brachiocephalic artery.

마우스에서 동맥 경화증의 정량화

Cardiovascular disease is the main cause of death in the world. The underlying cause in most cases is atherosclerosis, which is in part a chronic ...

Tuning Degradation to Achieve Specific and Efficient Protein Depletion

The plant auxin binding receptor, TIR1, recognizes proteins containing a specific auxin-inducible degron (AID) motif in the presence of auxin, targeting them for degradation. This system is exploited in many non-plant eukaryotes, such that a target protein, tagged with the AID motif, is degraded upon auxin addition. The level of TIR1 expression is critical; excessive expression leads to degradation of the AID-tagged protein even in the absence of auxin, whereas low expression leads to slow depletion. A &#946;-estradiol-inducible AID system was created, with expression of TIR1 under the control of a &#946;-estradiol inducible promoter. The level of TIR1 is tunable by changing the time of incubation with &#946;-estradiol before auxin addition. This protocol describes how to rapidly deplete a target protein using the AID system. The appropriate &#946;-estradiol incubation time depends on the abundance of the target protein. Therefore, efficient depletion depends on optimal timing that also minimizes auxin-independent depletion.

Here, we present a protocol to effectively and specifically deplete a protein of interest in the yeast Saccharomyces cerevisiae using the &#946;-est AID system.

특이적이고 효율적인 단백질 고갈을 달성하기 위한 튜닝 분해

The plant auxin binding receptor, TIR1, recognizes proteins containing a specific auxin-inducible degron (AID) motif in the presence of auxin, targeting ...

Adoptive Immunotherapy of iNKT Cells in Glucose-6-Phosphate Isomerase (G6PI)-Induced RA Mice

Rheumatoid arthritis (RA) is a complex chronic inflammatory autoimmune disease. The pathogenesis of the disease is related to invariant natural killer T (iNKT) cells. Patients with active RA present fewer iNKT cells, defective cell function, and excessive polarization of Th1. In this study, an RA animal model was established using a mixture of hGPI325-339 and hGPI469-483 peptides. The iNKT cells were obtained by in vivo induction and in vitro purification, followed by infusion into RA mice for adoptive immunotherapy. The in vivo imaging system (IVIS) tracking revealed that iNKT cells were mainly distributed in the spleen and liver. On day 12 after cell therapy, the disease progression slowed down significantly, the clinical symptoms were alleviated, the abundance of iNKT cells in the thymus increased, the proportion of iNKT1 in the thymus decreased, and the levels of TNF-&#945;, IFN-&#947;, and IL-6 in the serum decreased. Adoptive immunotherapy of iNKT cells restored the balance of immune cells and corrected the excessive inflammation of the body.

Adoptive Immunotherapy of iNKT Cells in Glucose-6-Phosphate Isomerase G6PI-Induced RA Mice

This protocol uses G6PI mixed peptides to construct rheumatoid arthritis models that are closer to that of human rheumatoid arthritis in CD4+ T cells and cytokines. High purity invariant natural killer T cells (mainly iNKT2) with specific phenotypes and functions were obtained by in vivo induction and in vitro purification for adoptive immunotherapy.

포도당-6-인산염 이사머라제(G6PI)-유도 RA 마우스에서 iNKT 세포의 입양 면역 요법

Rheumatoid arthritis (RA) is a complex chronic inflammatory autoimmune disease. The pathogenesis of the disease is related to invariant natural killer T ...