미세 유체 혼합 플랫폼을 사용하여 유전자 전달을 위한 지질 나노 입자 제조 및 특성화

지질 나노 입자는 mRNA 및 DNA 캡슐화를 위한 미세유체 혼합 플랫폼 접근 방식을 사용하여 개발됩니다.

지질 기반 의약품 운반대는 작은 크기, 생체 적합성 및 높은 캡슐화 효율로 인해 임상 및 시판 가능한 전달 시스템에 사용되어 왔습니다. 지질 나노 입자 (LP)를 사용하여 핵산을 캡슐화하는 것은 RNA 또는 DNA를 저하로부터 보호하는 동시에 세포 섭취를 촉진하는 데 유리하다. LP는 종종 이온화 지질, 도우미 지질, 콜레스테롤 및 폴리에틸렌 글리콜 (PEG) 공액 지질을 포함한 여러 지질 성분을 포함한다. LP는 이온화성 지질 존재로 인해 핵산을 쉽게 캡슐화할 수 있으며, 이는 낮은 pH에서 양이온이며 음전하 RNA 또는 DNA로 복합화를 허용합니다. 여기서 LPPs는 수성 상에서 지질 성분의 신속한 혼합을 사용하여 메신저 RNA(mRNA) 또는 플라스미드 DNA(pDNA)를 캡슐화함으로써 형성된다. 이 혼합은 정밀한 미세 유체 혼합 플랫폼을 사용하여 수행되므로 라미나르 흐름을 유지하면서 나노 입자 자체 조립을 허용합니다. 유체역학적 크기와 다분산성은 동적 광 산란(DLS)을 사용하여 측정됩니다. LNP의 유효 표면 전하는 제타 전위를 측정하여 결정됩니다. 캡슐화 효율은 힌지된 핵산을 정량화하기 위해 형광염을 사용하는 것이 특징입니다. 대표적인 결과는 이 방법의 재현성과 상이한 제형 및 공정 파라미터가 개발된 LNP에 미치는 영향을 입증한다.

약물 운반대는 낮은 세포 독성, 생체 이용률 증가 및 향상된 안정성^1,2,3을포함한 전형적인 유리한 특성을 가진^치료법을보호하고 전달하는 데 사용됩니다. 중합체 나노 입자, 미셀 및 지질 계 입자는 이전에 핵산 캡슐화 및^전달을위해 탐구되었다^4,5,6,7. 지질은 고안정성^8과생체 적합성이기 때문에 지질및 지질 나노입자를 포함한 다양한 유형의 나노캐리어 시스템에서 사용되어 왔다. LP는 유전자^{전달9,10을}위해 핵산을 쉽게 캡슐화할 수 있다. 그들은 전신 순환⁽¹¹⁾ 동안 혈청 프로테아제에 의한 분해로부터 핵산을 보호하고 LP의 표면 지형 및 물리적 특성이 그들의 생체^분포에영향을 미치기 때문에 특정 부위에 대한 전달을 향상시킬 수 있다. LP는 또한 조직 침투 및 세포 섭취를 향상^9. 이전 연구는 2018년 미국 식품의약국(FDA)과 유럽의약품청에서 승인한 유전성 트랜스티레틴 매개 아밀로이드증¹⁴ 치료의 치료 다신경병증치료제를 함유한 최초의 상용 LNP를 포함하여 LNP¹³내에서 siRNA 캡슐화의 성공을 입증하였다. 최근에는 LNPs가 더 큰 핵산 모이티, 즉 mRNA 및 DNA^9의전달을 위해 연구되고 있다. 2018년 현재, 22개의 지질계 핵산 전달 시스템이^{임상시험(14)을}겪고 있었다. 또한, LP를 함유하는 mRNA는 현재 주요 후보이며 COVID-19 백신^15,16에채용되었다. 이러한 비 바이러스 유전자 치료에 대한 잠재적 인 성공은 작은 형성을 필요로 (~100 nm), 안정적이고 핵산의 높은 캡슐화와 균일 한 입자.

LNP 제형의 주성분으로서 이온화지질을 사용하는 것은 복합성, 캡슐화 및 전달^{효율(14)에}대한 이점을 보여주었다. 이온화지질은 전형적으로 산성 해리 상수(pKa) < 7을 가지며; 예를 들어, 딜리놀레틸메틸-4-디메틸아미노부티레이트(D-Lin-MC3-DMA)는 FDA 승인 LNP 제형에 사용되는 이온화지질6.44^17의pKa를 가지고 있다. 낮은 pH에서, 이온화 지질에 아민 그룹은 양성되고 긍정적으로 충전되어 mRNA 및 DNA에 음전하 인산염 그룹으로 조립할 수 있게 합니다. 아민의 비율, "N", 인산염에 대한 그룹, "P", 그룹은 조립을 최적화하는 데 사용된다. N/P 비는 사용되는 지질 및 핵산에 의존하며, 이는^{제형(18)에}따라 다릅니다. 형성 후, pH는 치료 적 투여를 허용하기 위해 중성 또는 생리적 pH로 조절될 수 있다. 이러한 pH 값에서, 이온화지질은 또한 LNP에 중립 표면 전하를 부여하는 데프로톤화된다.

이온화지질은 또한 내피 탈출^19,20에도움이 됩니다. LP는 세포 섭취 중 내분비증을 겪고^핵(21)에세포 질 또는 DNA 화물을 세포 세포질 또는 DNA 화물로 전달하기 위해 내성에서 방출되어야 한다. 내분 내부는 전형적으로 세포외 배지보다 더 산성환경이며, 이는 이온화지질을 양산하^22,23로렌더링한다. 양전하 이온지질은 내피 지질 막에 대한 음전하와 상호 작용할 수 있으며, 이는 LNP 및 핵산의 방출을 허용하는 내종의 불안정을 유발할 수 있다. 다른 이온화지질은 현재 LNP 분포의 효능을 향상시키기 위해 연구되고 있으며, 내도^탈출(14).

LNP의 그밖 전형적인 분대는 인산염 (PC) 또는 인포에탄올라민 (PE) 지질과 같은 도우미 지질을 포함합니다. 1,2-Dioleoyl-sn-글리세로-3-인포에탄탄민(DOPE), 1,2-디스테로일-센-글리세로-3-인포콜린(DSPC), 및 1,2-2-디오레오틸-센-글리세로-3-인포콜린(DOPC)은 일반적으로 사용되며,^24. DOPE는 반전 된 육각형 II (HII) 위상을 형성하고 멤브레인 융합^(26)에의한 형질을 향상시키는 것으로 나타났으며, DSPC는 원통형 기하학적^{기하학적 인 27로}LP를 안정화시키는 것으로 생각되고 있다. 콜레스테롤은 또한 막 강성을 증가시키기 위하여 제형에 통합되고, 그 후에 LNP의 안정성을 돕습니다. 마지막으로, 지질-공주 폴리에틸렌 글리콜(PEG)은 입자 자가^{조립(27)을}돕는 데 필요한 스테릭 장벽을 제공하는 제형에 포함된다. PEG는 또한 집계를 방지하여 LP의 스토리지 안정성을 향상시킵니다. 또한 PEG는 종종 스텔스 성분으로 사용되며 LP의 순환 시간을 증가시킬 수 있습니다. 그러나, 이 속성은 또한 apolipoprotein E (ApoE)^28에의해 구동되는 내인성 표적 화기 장치를 통해 간구에 LP의 모집에 대한 도전을 제기할 수 있다. 따라서, 연구는 LNP에서 PEG의 확산에 대한 아실 사슬 길이를 조사하고, 짧은 길이 (C8-14) LNP에서 해리하고 더 긴 아실 길이에 비해 ApoE 모집에 더 순종발견^28. 또한, PEG가 공주되는 지질꼬리의 포화정도는^LP(29)의조직 분포에 영향을 미치는 것으로 나타났다. 최근에는 생물학적 약물 제품 제형에 일반적으로 사용되는 계면활성제이고 오랫동안 불포화지질꼬리를 가진 트위엔(20)은 주사^{부위(29)에서}근육을 크게 감염시킨 PEG-DSPE에 비해 림프절배수에 높은 트랜스페션을 갖는 것으로 나타났다. 이 매개 변수는 원하는 LNP 바이오 분배를 달성하기 위해 최적화 될 수있다.

종래의 LP 성형 방법은 박막 수화 방법 및 에탄올 주입^{방법(27)을}포함한다. 이들은 쉽게 사용할 수있는 기술이지만, 그들은 또한 노동 집약적이며, 낮은 캡슐화 효율을 초래할 수 있으며,^27을확장하는 데 어려움을 겪고 있습니다. 혼합 기술의 발전으로 인해 더 균일한^{입자(27)를}개발하면서 확장할 수 있는 방법이 더 많아졌다. 이러한 방법에는 T-접합 혼합, 비틀거림 헤링본 혼합, 및 미세 유체 유체 유체 역학^{초점(27)이 포함됩니다.} 각 방법은 독특한 구조를 가지고 있지만, 모두 지질 성분을 함유하는 유기상으로 핵산을 함유하는 수상의 신속한 혼합을 허용하여^{핵산(27)의}높은 캡슐화를 초래한다. 이 프로토콜에서는 미세 유체 카트리지를 통한 신속하고 제어된 혼합이 사용되며, 이는 비틀거리는 헤링본 혼합 설계를 사용합니다. 이 프로토콜은 LP를 포함하는 핵산의 준비, 조립 및 특성화를 간략하게 설명합니다.

전체 프로세스의 회로도는 그림 1에서제공됩니다.

1. 버퍼 준비

참고: 완충제의 멸균 여과는 핵산 및 LNP 품질에 영향을 미칠 수 있는 미립자를 제거하기 위해 여기에서 매우 권장됩니다.

1. 인산염 완충식식염수(PBS)
   1. 8m Na₂HPO_4,2mM KH₂PO_4, 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl을 사용하여 1x PBS를 뉴클레아제 자유수역에서 준비하고 pH를 7.4로 조정한다.
   2. 0.22 μm 모공 크기의 필터를 사용하여 진공 여과로 살균하십시오.
2. 체연성 버퍼
   1. 5mM 나트륨 구연산, 5mMM 구연산, 150mMM나트륨염화를 뉴클레아제 자유수분으로 사용하여 구연산 완충제를 준비하고 pH 4.5에 적응한다.
   2. 0.22 μm 모공 크기의 필터를 사용하여 진공 여과로 살균하십시오.
      참고: 구연산 버퍼는 mRNA가 LNP에서 캡슐화될 핵산인 경우에만 준비되어야 합니다. DNA가 캡슐화될 경우 1.2를 건너뛰고 1.3으로 진행한다.
3. 말릭산 완충제
   1. 20mM 말산과 30mM나트륨염화나트륨을 뉴클레아제 자유물로 사용하여 사과산 완충제를 준비하고 pH 3.0에 적응한다.
   2. 0.22 μm 모공 크기의 필터를 사용하여 진공 여과로 살균하십시오.
      참고: 말산 완충제는 DNA가 LNP에 캡슐화될 핵산인 경우에만 준비되어야 합니다. mRNA를 캡슐화하려면 1.3을 건너뜁니다. 구연산 완충제는 mRNA 캡슐화에 사용되며, 말산 완충액을 가진 3.0의 하부 pH는 mRNA 분해가능성을 증가시킬 수 있다. 프로토콜은 여기에서 일시 중지할 수 있습니다.

2. 지질 믹스의 준비

1. 육수 지질이 분말 형태로 있으면 순수 200 증거 에탄올로 용해하십시오.
2. 원하는 어금니 비율을 기준으로 지질 성분의 필요한 혼합을 계산합니다. 50:10:39:1의 어금니 비율 (이온화 지질:도우미 지질:콜레스테롤:PEG)은 10mM의 총 지질 농도에 대한 예로 여기에서 사용될 것이다. 표 1은 이러한 각 구성 요소에 필요한 농도와 볼륨을 표시합니다.
   참고: 미세유체 믹서에 대한 에탄올(EtOH)에서 지질 혼합 농도를 달성하는 데 필요한 부피를 계산할 때, EtOH의 첨가가 지질 농도에 영향을 미치지 않도록 총 부피가 고려된다. 예를 들어, 68.5 μL의 이온화성 지질 부피는 에탄올에서 5mM 농도를 533 μL의 총 지질 혼합 부피를 곱한 다음 38.9 mMMM의 육수 지질 농도로 나누어 계산된다.
3. 각 지질 스톡 용액을 유리 바이알에 적당히 추가하여 구성 요소가 간헐적인 소용돌이와 혼합할 수 있도록 합니다. 533 μL의 총 혼합물에 대한 200 증거 에탄올을 추가합니다. 표 1의예에서, 이것은 에탄올의 254 μL입니다.
   참고: LP 1mL을 생산하는 단일 실행의 경우 지질 용액의 342.5 μL이 필요합니다. 이는 수성 핵산이 추출 물 수집 전후에 버려진 일부 부피를 가진 유기 지질 용액에 3:1 혼합되기 때문입니다. 533 μL의 혼합은 초과로 보상하기 위해 만들어집니다.

3. 핵산 용액 의 준비

참고: 핵산 용액의 준비 및 취급은 가능한 한 멸균 및 RNase 가 없는 환경에서 수행되어야 합니다. 핵산으로 가능한 한 생물 안전 캐비닛에서 작업하십시오.

1. N/P 비율을 계산합니다. N/P 비는 이온화성 지질 아민 군(N)의 총 수로 음전하 핵산 인산염 군(P)의 총 수이다. N/P 비율은 종종 LNP 형성 중에 최적화할 수 있는 매개 변수입니다. 아래 단계를 따르십시오.
   1. 아래 수식을 사용하여 N 단위 수를 계산합니다.
      
      참고: 이온화지질농도(표 1)는5 mM로, 이는 5 x^10-6 mol/mL에 해당합니다. 필요한 지질 사출 부피는 0.3425 mL입니다. 예를 들어, 분자당 N 단위의 수가 1인 경우 위의 방정식을 사용하여 지질 혼합물에 1.03 x^{10 18} N 단위가 있다.
   2. 원하는 N/P 비율에 대해 P 단위를 계산합니다. 여기에 N/P = 36이 예를 들어 사용됩니다.
      
2. 아래 방정식을 사용하여 2.86 x 10¹⁶ P 단위를 얻기 위해 필요한 핵산 농도를 계산한다.
   
   여기서, mRNA를 위한 베이스 쌍 당 P 단위의 수는 1이고 DNA는 2입니다. 1,200개의 염기의 mRNA의 경우, N/P= 36에 필요한 mRNA의 양은 3.96 x^10-11 두더지이다.
3. 아래 방정식을 사용하여 N/P = 36에 필요한 mRNA의 질량 농도를 계산합니다.
   
   리보뉴클레오티드 모노인산염 기의 평균 분자량은 322 g/mol^30이다. 1,200-염기 mRNA를 가진, mRNA의 분자량은 386,400 g/mol입니다. 핵산 용액의 필요한 분사 부피는 1.028 mL이다. 따라서, 필요한 mRNA의 농도는 14.88 μg/mL인 1.488x10-5 g/mL이다.
4. 구연산 완충에서 mRNA의 14.88 μg/mL의 1.5mL를 구성한다.
   참고: DNA가 캡슐화된 핵산이 될 때, 말산 완충제를 사용하여 핵산 용액을 구성한다.

4. 미세 유체 채널을 프라이밍

참고: 이 프로토콜은 계측기 제조업체의 지침에서 적용됩니다.

1. 적절한필드(표 2)를클릭하여 프라이밍 매개 변수를 계측기 소프트웨어에 입력합니다.
   참고: 3:1의 유동비와 4-12mL/min의 유량은^27,31을 권장합니다. 이것은 여기에 제시 된 연구에서 최적의 것으로 나타났습니다., 뿐만 아니라 제조 업체에 의해. 응용 프로그램에 관심이 있는 경우 이 용도가 변경될 수 있습니다.
2. 기기 뚜껑을 열고 미세유체 카트리지를 회전 블록에 놓습니다.
3. 1mL 주사기에 에탄올의 0.5mL 이상을 그려 주사기 팁에 거품이나 공기 간격이 없도록 합니다. 이 주사기를 카트리지의 오른쪽 입구에 로드합니다.
4. 수성 완충제(DNA용 RNA 및 성산용 구연산용 구연산)로 3mL 주사기를 채우면 기포나 틈이 없습니다. 이 주사기를 카트리지의 왼쪽 입구에 로드합니다.
5. 클립 홀더에 15mL 원문 튜브 2개를 삽입하여 폐기물 용기역할을 합니다.
6. 계측기 소프트웨어에서 실행을 클릭하여 믹싱을 시작하여 매개 변수가 올바르게 입력되도록 합니다.
7. 계측기가 프라이밍을 중지하면 아래 파란색 표시등이 차단되어 뚜껑을 열고 원문 튜브와 주사기를 적절히 폐기합니다.

5. LNP 형성

참고: 이 프로토콜은 계측기 제조업체의 지침에서 적용됩니다.

1. 적절한필드(표 2)를클릭하여 제형 매개변수로 소프트웨어를 업데이트합니다.
2. 지질 혼합물로 1mL 주사기를 채우세요(2단계에서 준비). 주사기 팁의 공기 간격이나 거품을 제거하고 주사기를 카트리지의 오른쪽에 삽입합니다.
3. 핵산 용액(3단계에서 제조)을 3mL 주사기로 끌어주어 주사기 팁에 거품이나 공기 갭이 없도록 합니다. 주사기를 카트리지의 왼쪽 입구에 삽입합니다.
   참고: LP의 1mL 솔루션을 만들기 위해 볼륨이 제공됩니다. 이 계측기는 최대 10mL의 주사기 크기를 통합할 수 있으며, 결과에 영향을 미치지 않고 그에 따라 볼륨을 확장할 수 있습니다. 한 번의 준비로 준비할 수 있는 최대 LP의 최대 부피는 12mL입니다.
4. 샘플 이름으로 15mL RNase 가 없는 원식 튜브에 라벨을 부착하고 왼쪽 튜브 클립에 삽입합니다. 오른쪽 튜브 클립에 15mL 폐기물 원식을 놓습니다.
5. 매개 변수의 올바른 입력을 확인 한 후 계측기 뚜껑을 닫고 실행을클릭합니다.
6. 기기가 실행이 끝나면 폐기물 용기와 카트리지를 올바르게 폐기하십시오. LNP 샘플로 원물 튜브를 유지합니다.
7. 에탄올을 <5%(v/v)로 최소화하기 위해 LNP 5x를 PBS로 희석합니다.
   참고: 저분해성 혼합 후 가능한 한 빨리 PBS에서 LP를 희석하여 분해를 방지하는 것이 중요합니다. 항상 바이오 세이프티 캐비닛에서 희석을 수행하고 버퍼 교환 을 통해 생물 안전 캐비닛에서 계속 작동합니다.

6. 버퍼 교환

참고: 초원심분리기 필터 를 사용하기 위한 프로토콜이 제공됩니다. 이 방법은 버퍼의 보다 시간 효율적인 교환을 초래하지만 투석은 여기에서 대체 될 수 있습니다.

1. PBS 2mL의 초원심분리기 필터(100kDa 모공 크기)를 5분 동안 1000 x g에서 원심분리하여 미리 세척합니다. 아래쪽 구획에서 PBS를 비웁니다.
   참고: PBS는 pH를 7.4± 0.2로 증가시키기 위해 선택되며, 이는 생리학적으로 관련이 있으며 중성 전하를 갖는 이온화성 지질을 초래할 것이다.
2. 미리 세척된 초원심분리기 필터의 상단 구획에 희석된 LP를 12분 동안 1000 x g의 원심분리기를 추가합니다.
3. 아래쪽 구획에서 흐름 통과를 폐기합니다. 매번 초원심분리기 필터에 PBS 5mL을 추가하여 2mL의 세서스를 더 수행합니다. 동일한 매개 변수에서 원심 분리기입니다. 유지 관리해야 하는 최대 볼륨은 없습니다.
   참고: LP의 스케일업 볼륨이 준비된 경우, 그에 따라 각 세척에 대한 PBS의 부피를 늘립니다. 예를 들어, LP의 2mL가 한 번의 실행으로 제조된 경우, 세척당 10mL PBS가 제안됩니다.
4. LNP 손실을 최소화하기 위해 초원심분리기 필터의 벽에 대한 LNP 용액을 몇 번 피펫합니다. 초원심분리기 필터에서 LNP 용액을 제거하고 뉴클레아제 프리 바이알에 저장하십시오. 1mL의 LNP 솔루션의 최종 볼륨을 달성하는 데 필요한 경우 PBS를 추가합니다.
5. 필요한 경우 습식 0.2 μm 주사기 필터를 필터링합니다.
   참고: 프로토콜은 여기에서 일시 중지할 수 있습니다.

7. 캡슐화 효율 측정

1. PBS에서 작동하는 핵산 용액의 2배 연속 희석을 500 ng/mL의 최고 농도로 시작하여 최소 5개의 희석제를 만들어 표준 곡선을 준비합니다. PBS를 빈 공백으로 사용합니다.
2. LNP 샘플 희석을 준비합니다. PBS를 사용하여 LNP 샘플을 희석하여 표준 곡선의 중간 점 주위에 있는 대략적인 이론적 농도를 달성한다(예를 들어 초기 농도에서 추정되는 핵산의 250 ng/mL).
3. TRItonX-100을 사용하여 RNA 정량화 시약(mRNA 측정용)의 용액을 준비하여 LP를 방해하고 LNP 내부 및 외부의 총 핵산 양을 측정한다. 이 솔루션에는 RNA 시약0.5% (v/v) RNA 시약, 0.4% (v/v) TritonX-100 및 99.1% (v/v) PBS가 포함되어 있습니다.
4. TritonX-100 없이 시약의 용액을 준비하여 LP에 캡슐화되지 않은 핵산의 양을 측정한다. 이 솔루션에는 0.5% (v/v) RNA 시약 및 99.5% (v/v) PBS가 포함되어 있습니다.
   참고: LP가 플라스미드 DNA와 같은 이중 좌초 DNA(dsDNA)를 캡슐화하는 경우 동일한 절차에 따라 dsDNA 시약을 7.3 및 7.4로 사용합니다.
5. 96-well 블랙 형광 능력 플레이트에서 7.1 및 7.2로 제조된 LNP 및 핵산 표준 용액각각의 적어도 4개의 복제를 적재한다.
6. 표준 및 샘플 복제의 절반에 TritonX-100을 포함하는 시약의 동일한 볼륨을 추가합니다. 이것은 핵산의 총 양을 정량화할 것입니다.
7. 표준 및 샘플의 나머지 우물에 TritonX-100 없이 시약의 동일한 볼륨을 추가합니다. 이것은 LNP 내부에 캡슐화되지 않은 핵산의 양을 정량화할 것이다.
8. 실온에서 5분 동안 접시를 흔들어 표준과 시약을 철저히 혼합하여 광 노출을 방지하기 위한 예방 조치를 취하십시오.
9. 마이크로 플레이트 판독기를 사용하여 형광을 측정하고 480 nm의 난초 파장과 520 nm의 방출 파장을 제공합니다.
10. TritonX-100 없이 시약의 첨가로 만들어진 표준 곡선을 사용하여 LNP 외부의 핵산 농도를 계산한다. 7.2에서 사용되는 희석 계수를 곱합니다.
11. TritonX-100을 함유하는 시약의 첨가로 만들어진 표준 곡선을 사용하여 LNP 내부 및 외부의 핵산 농도를 계산한다. 7.2에서 사용되는 희석 계수를 곱합니다.
12. 핵산의 농도를 외부의 핵산 농도(7.10단계에서 계산)를 내부및 외부의 핵산 농도로부터 빼서 내부핵산의 농도를 계산합니다(7.11단계에서 계산)
13. LNP 내부의 핵산 농도(7.12단계에서 계산) 및 핵산의 총 농도(7.11단계에서 계산)의 캡슐화 효율을 정량화한다.
    참고: 프로토콜은 여기에서 일시 중지할 수 있습니다.

8. 농도 조정

1. 필요한 경우 캡슐화 효율에서 의 결과를 사용하여 LNP 용액 내에서 핵산 농도를 조정합니다.
2. 덜 농축 된 용액이 원하는 경우, 원하는 농도를 달성하기 위해 PBS로 용액을 희석.
3. 보다 농축된 용액이 원하는 경우 초원심분리기 필터를 사용하여 추가 원심분리 실행을 수행합니다.
   참고: 프로토콜은 여기에서 일시 중지할 수 있습니다.

9. LNP 유체 역학 크기 및 다분산성 측정

1. 1 mL의 최종 볼륨을 얻기 위해 PBS와 LNP 용액 40x의 알리쿼트희석.
   참고: 필요한 경우 이 희석이 변경될 수 있습니다. 이 희석 값은 품질 결과를 제공하면서 LNP 주식 솔루션의 소량을 사용하기 때문에 제안됩니다.
2. 세미 마이크로 큐벳을 사용하여 유체 역학 직경 및 다분산지수를 측정합니다. LNP 용액을 큐벳에 추가하고 계측기에 삽입합니다. 계측기 소프트웨어에 측정 유형, 샘플 세부 사항(재료, 분산제, 온도 및 셀 유형) 및 측정 지침(실행 수)을 포함하도록 작동 절차를 설정합니다. 측정 수집을 시작할 준비가 되면 시작을 클릭합니다.

10. LNP 제타 잠재력 측정

1. 1 mL의 최종 부피를 얻기 위해 핵자유수분으로 LNP 용액 40배의 알리쿼트를 희석한다.
   참고: 뉴클레아제 프리 워터는 전도도에 높은 염완충제의 영향을 최소화하기 위해 제타 전위 측정용매로 사용된다.
2. 접힌 모세관 제타 세포를 사용하여 제타 전위를 측정합니다.
   1. LNP 용액을 큐벳에 채우기 라인까지 추가합니다. 전극이 계측기와 접촉하고 있는지 확인하는 계측기에 삽입합니다.
   2. 계측기 소프트웨어에 측정 유형, 샘플 세부 사항(재료, 분산제, 온도 및 셀 유형) 및 측정 지침(실행 수)을 포함하도록 작동 절차를 설정합니다. 측정 수집을 시작할 준비가 되면 시작을 클릭합니다.

동일한 지질 제형 및 6의 N/P 비율을 가진 LP의 다중 배치는 기술의 재현성을 입증하기 위하여 별도의 일에 개발되었다. 배치 1 과 2 유사한 다분산성과 겹치는 크기 분포를 초래하였다(도2A)두 개의 상이한 배치(도2B)사이의 크기 또는 캡슐화 효율에서 유의한 차이가 관찰되지 않았다. 캡슐화 효율은 각 배치(>98.5%)에 대해 높았으며 크기는 77nm LNP 직경과 유사했습니다. 입자는 배치 1의 경우 0.15의 평균 다분산지수 지수(PDI)와 배치 2의 0.18로 균일했습니다.

제형 파라미터의 변화는 N/P 비, 이온화지질 사용 및 캡슐화된 핵산에 대하여 일부 작지만 통계적으로 유의한 차이를 보였다. 차이점이 논의되는 동안, 형성된 모든 LP는 80% 이상의 캡슐화를 초래하고, 대부분의 제형이 95% 이상, 입자 크기가 110nm 미만인 것으로, 유전자 전달을 위해 개발된 모든 제형을 만드는 것이 중요하다. 첫째, 이온화지질 A는 10및 36의 N/P에서 LP를 개발하는 데 사용되었다. N/P 비율을 감소시키는 결과 캡슐화 효율이 4% 감소하고 N/P에서 98nm에서 LMP의 유체역학적 직경이 N/P= 10에서 36~109nm로 증가하였다(그림3A). LPP를 이온화성 지질 A와 다른 이온화성 지질 B와 비교하고 36의 N/P를 유지하는 것은 캡슐화 효율에 큰 변화를 초래했으며, 여기서 100% pDNA의 100%가 이온화성 지질 A를 사용하여 형성된 LNP로 캡슐화되었고 pDNA의 81%는 ionizable IonizableBIiid를사용하여 형성된 LNPs로 캡슐화되었다(3B). 이온화지질 B LP는 또한 95nm의 유체 역학 직경을 가진 약간 더 작은 입자 귀착되었습니다. 마지막으로, LP는 mRNA와 pDNA를 모두 가진 이온화성 지질 A를 사용하여 형성되었다. PDNA를 캡슐화하는 LP는 91nm직경(도 3C)을가진 mRNA LNP와 비교하여 119nm 직경의 더 큰 입자를 초래하였다. pDNA와 mRNA LP 모두 ~91-94%에서 유사한 캡슐화 효율을 초래했습니다.

마지막으로, 유량 공정 파라미터의 변화는 여기에서 테스트된 유량에서 개발된 LP에 영향을 미치지 않았다. 4mL/min 및 12mL/min 모두에서, LP는 pDNA의 96%를 캡슐화하고 110nm직경(도 4)을갖는 것을 특징으로 하고, 개발되었다. 공정 파라미터 또는 제형 파라미터에 관계없이 모든 LMP는 중성 제타 전위 측정을 담당했습니다.

그림 1: LNP 개발 및 특성화 워크플로우. 첫째, 지질 혼합 및 핵산 솔루션이만들어집니다(1 및 2). 지질 혼합물에는 이온화지질, 도우미 지질, 콜레스테롤 및 PEG가 에탄올에 포함되어 있으며 핵산 용액에는 완충제에 mRNA 또는 DNA가 포함되어 있습니다. 용액은LP(4)를형성하는 미세유체 카트리지(3)를 사용하여 혼합된다. 다음으로, 에탄올을 제거하고 용액 pH를중립(5)으로증가시키기 위해 완충교환이 필요하다. LP의 특성화는 캡슐화 효율 및 입자 크기, 다각성 및 제타 전위를 각각(6 및 7)로결정하도록 수행된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2: 별도의 일에 형성된 LP의 일괄 재생성. (A)mRNA 및 N/P=6을 가진 각 배치에 대해 배치 1 대 배치 2(B)캡슐화 효율(%) 및 유체역학 직경(nm)에 대한 크기 분포. 오류 막대는 표준 편차를 기록합니다. α aNOVA를 사용하는 통계 분석은 0.05가 의미가 없습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

도 3: 제형 파라미터의 변형. (A)N/P = 10 및 36에서 형성된 LP는 pDNA를 사용한 이온화 성지 A를 사용한다. (B)이온화지질 A와 이온화지질 B로 형성된 LP는 모두 N/P = 36p에서 pDNA를 사용한다. (C)N/P = 6에서 이온화 지질 C를 사용하여 mRNA 또는 pDNA로 형성된 LP. 오류 막대는 표준 편차를 기록합니다. 통계 분석은 α =0.05를 가진 양방향 ANOVA를 사용하여 수행되었다; *p<0.05; **p<0.01; p<0.001; p<0.0001. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4: 프로세스 매개 변수의 변형입니다. LP는 N/P= 10에서 pDNA를 사용한 이온화 지질 A를 사용하여 4 및 12mL/min의 유량으로 형성되었다. 오류 막대는 표준 편차를 기록합니다. α aNOVA를 사용하는 통계 분석은 0.05가 의미가 없습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

표 1: LP 1mL을 준비하는 예제 지질 믹스. 제공된 에탄올의 지질 재고 농도는 지질이 에탄올에서 용해될 수 있도록 허용하는 것으로 나타났지만, 다른 재고 농도가 활용될 수 있으며 지질이 용해되는 한 결과에 영향을 미치지 않을 것이다. 미세 유체 혼합을 위한 에탄올내 지질의 예도 농도도 제공됩니다. 이러한 농도는 원하는 LNP 준비에 따라 다양할 수 있는 어금니 비율을 기반으로 합니다.

표 2: 미세 유체 혼합 벤치탑 악기 소프트웨어 프라이밍 및 LNP 제형 예제 매개 변수

재현성, 속도 및 저부피 스크리닝은 다른 기존 방법(예: 지질 필름 수화 및 에탄올 주입)에 비해 LP를 형성하기 위해 미세유체 혼합을 사용하는 데 상당한 이점이 있습니다. 우리는 다른 LNP 배치로 관찰 된 캡슐화 효율이나 입자 크기에 영향을 미치지 않고이 방법의 재현성을 입증했습니다. 이것은 LP를 포함하여 어떤 치료든지, 임상적으로 유효하게 하기 위한 필수적인 기준입니다.

여기에 설명된 기술은 단 몇 분의 시간 규모에 LNP 형성결과 비틀거리는 헤링본 미세 유체 혼합을 채택합니다. 이 혼합은 제어 및 단축 시간^27에유리한 혼란스러운 흡인을 사용합니다. 이 믹서는 수성 및 유기 상이 효과적으로 서로²⁷을 감싸수 있습니다. 비틀거리는 헤링본 혼합을 사용하여, 이전 연구는 입자가 가장 작은 열역학적으로 안정된^{크기(32)에서}형성되는 것으로 나타났으며, 이는 조성물이 LNPs^27,32,33의크기와 다분산성에 영향을 미치는 경향이 있음을 의미한다. 이는 대표적인 결과에서 관찰되었으며, 여기서 N/P 비, 이온화성 지질이 사용되고, 핵산캡슐화된 핵산은 캡슐화 효율 및 입자 크기의 변화에 영향을 미치는 요인이되었다. 유량 및 혼합 비율과 같은 작동 매개 변수는 특정 임계값 이상의 크기에영향을 미칠 수 있으며, 그 후 입자 크기가 가장 작은^27,33에있습니다. 캡슐화 효율이나 입자 크기의 변화는 4mL/min 대 12mL/min의 유량을 사용할 때 관찰되지 않았다. 따라서 두 유량 모두 LNP 결과에 영향을 미칠 임계값을 초과할 가능성이 높습니다. 전술한 예제 실험 및 상술한 결과는 지질 A 및 pDNA를 사용했다. 다른 이온화지질과 핵산이 유량에 대하여 LNP 특성에 더 많은 영향을 미칠 수 있을 수 있습니다. 다른 유형의 미세 유체 혼합에는 난류 흐름을 사용하는 T-접합 및 대류 확산^{혼합(27)을}기반으로 하는 미세유체 유체 역학 초점 방법이 포함됩니다. LNP 개발을 위한 이러한 다른 유형의 미세 유체 혼합 기술과 비교하여, 비틀거리는 헤링본 혼합은 신속한 혼합, 배치 가변성으로 배치 최소화, 그리고^27의상업적 사용 가능한 세 가지 중요한 기준의 조합을 가능하게 한다. 3가지 미세유체 혼합 방법 모두 종래의 지질막 수분 화 또는 에탄올 주입 방법에 비해 캡슐화 효율및 제어크기를^{허용한다(27).}

마지막으로, 연구 개발 단계에서 다양한 LNP 제형의 낮은 볼륨을 생산하는 능력은 상당한 이점이다. LP 개발의 한 가지 과제는 원하는 결과와 효능을 달성하기 위해 제형당 테스트 및 최적화할 수 있는 변수의 수입니다. 지질 및 핵산은 주어진 용도에 가장 적합한 LNP를 찾기 위해 많은 제형 파라미터(예를 들어, 어금니 비, N/P 비율, 공정 파라미터 등)를 스크린, 문제 해결 및 수정하는 데 비용이 엄청나게 많을 수 있다. 낮은 부피가 대규모로 최종 제형을 생산하는 데 한계가 있을 수 있지만, 더 큰 미세 유체 혼합 계측기로 기술을 확장하는 능력은 시판됩니다.

프로토콜의 중요한 단계는 제조업체의 권장 사항에 지질 재고 솔루션의 적절한 저장으로 시작합니다. LP는 추가 사용이 있을 때까지 2-8°C에 보관해야 합니다. 제시된 핵산 제제를 위해, 제시된 결과는 구연산 완충제 및 성산 완충이 높은 핵산 캡슐화^34,35로LP를 성공적으로 형성하는 데 효과적이라는 것을 보여준다. 원하는 경우 다른 버퍼를 대신 사용할 수 있습니다. 다른 완충제가 선택되면, 지질이 양이온적이고 핵산으로 복잡할 수 있는지 확인하기 위해 이온화지질의 pKa 아래에 pH를 유지하는 것이 중요하다. 미세유체 혼합 계측기를 사용하는 경우, 제조업체가 권장하는 카트리지 사용을 초과하지 말고 LNP 형성 전에 카트리지를 프라이밍하고, 상이한 제형 조성물 사이에서 카트리지를 변경하는 것이 중요하다. 수성 형성을 위한 가장 일반적인 유동비: 유기용액은 3:1; 그러나 필요한 경우 변경할 수 있습니다. 유량도 원하는 대로 조정할 수 있습니다. 마지막으로, 전체 프로세스전반에 걸쳐 RNase 가 없는 환경을 보장하기 위해 mRNA와 함께 작업할 때 중요합니다. 원하는 크기 또는 캡슐화 효율이 달성되지 않으면 문제 해결을 시작하는 일부 장소는 사용되는 N/P 비율 또는 지질 어금니 백분율을 변경하는 것을 포함합니다. 여기에 설명된 계측기 공정은 12mL의 최대 볼륨 제한이 있는 벤치탑 모델을 사용하지만, 이 공정은 다른 미세 유체 혼합 모델을 사용하여 더 큰 볼륨으로 확장할 수 있습니다. 이 과정은 다양한 임상 적응증을 위한 LP 개발에 사용하기 위해 지질 혼합물과 핵산의 변화에 적응할 수 있다. 이러한 유연성을 통해 LP를 통해 다양한 원하는 제형을 생산할 수 있는 다양한 미래 애플리케이션을 얻을 수 있습니다. 이 기술은 또한 리포솜및 중합나노입자를 포함하는 나노입자의 그밖 모형을 개발하기 위해 이용되었습니다. 일부 파라미터 변경과 함께, 이 방법은 다양한 나노입자 제형에 사용될 수 있다.

여기에 상세한 프로토콜은 mRNA 또는 DNA 캡슐화 된 LP를 달성하기위한 재현 가능한 방법을 설명합니다. 프로세스 매개 변수 외에도 추가 고려 사항은 LNP 결과에 영향을 미칠 수 있습니다. 이전 작품은 또한 다양한 핵산, 이온화 지질, N/P 비율, PEG 링커 길이 등을 가진 LP를 생성하는 유사한 방법을 사용했습니다. 이러한 매개 변수는 입자의 캡슐화 효율, 크기 및 전하에 영향을 줄 수 있습니다. 계측기 제조업체는^{또한 18,36을}최적화 할 수있는 이러한 매개 변수에 따라 유사한 변화를 지적했다. 이러한 파라미터는 핵산의 생체 분포 및 효능에 더 영향을 미칠 수 있다. 예를 들어, 연구는 탄화수소 사슬 길이 (C14, C16 및 C18)를 조사하고 C14의 짧은 아실 체인이 긴 아실 사슬에 비해 간 섭취량의 높은 수준을 초래한다는 것을 발견, 이는 시간의 긴 기간 동안 순환에 남아^28. 이 프로토콜을 사용하면 다양한 조성물을 가진 LP의 형성, 최적화 및 테스트를 통해 다양한 프로세스가 가능합니다.

모든 저자는 사오피의 직원입니다. 저자는 이해 상충이나 경쟁적인 재정적 이익이 없다고 선언합니다.

아툴 살루자, 야틴 고칸, 마리아 테레사 페라키아, 월터 슈벵거, 필립 자카스가 LNP 개발에 대한 지도와 공헌에 감사드립니다.