세균에 대한 두 개의 구성 요소 규제 시스템을 유전자 표적을 확인하는 DNA 친화력 - 정제 칩 (DAP-칩) 방법

이 비디오 문서는 두 개의 구성 요소 시스템 응답 레귤레이터 유전자 표적 및 결합 부위를 결정하기 위해 시험 관내 마이크로 어레이 기반의 방법을 설명한다.

이러한 칩 칩으로 생체 방법에서 전사 인자 글로벌 유전자 목표를 결정하는 데 사용 잘 확립 기술은 다음과 같습니다. 그러나, 그들은에 uncharacterized 활성화 조건 세균성 두 구성 요소 규제 시스템을 탐험에 사용이 제한됩니다. 독특한 신호들의 존재하에 활성화 된 때, 그러한 시스템에만 전사를 조절한다. 이들 신호는 종종 알 수 있기 때문에,이 비디오 문서에 설명 된 시험 관내 마이크로 어레이 기반의 방법은 유전자 표적 및 응답 레귤레이터 결합 부위를 결정하기 위하여 사용될 수있다. 이것은 DNA-친 화성 정제 칩 방법은 시퀀스 된 게놈 어떤 유기체 어떠한 레귤레이터 정제에 사용될 수있다. 프로토콜은 정제 태그 단백질은 사용자 정의 타일 배열에 DNA와 하이브리드의 형광 표지 다음에 단백질 바인딩 DNA를 깎인 게놈 DNA에 결합하고 친화력 정화 할 수 있도록 포함한다. 이 사양에 대한 분석을 최적화하기 위해 사용될 수있다 같이 전일C 규제도 설명되어 있습니다. 어레이 데이터 분석에 의해 생성 된 피크 후 실험적으로 검증되는 결합 부위 모티프를 예측하는 데 사용된다. 모티프 예측 더욱 밀접한 관련 종 orthologous 반응 조절제의 유전자 표적을 결정하기 위하여 사용될 수있다. 우리는 유전자의 목표를 ​​결정하고 사이트의 모티브를 결합함으로써 환경 박테리아 Desulfovibrio 심상 성 Hildenborough에서 sigma54 의존 응답 레귤레이터 DVU3023의 기능을 예측하여이 방법의 적용 가능성을 보여줍니다.

생존하고 번성하는 박테리아의 능력들은 인식하고 그들의 환경에서 섭동에 응답 할 수있다 얼마나 잘 매우 의존적이며, 이것은 차례로 자신의 신호 전달 체계에 의존한다. 경보 시스템 박테리아 인코딩의 수는 "미생물 IQ"라고되어 그 환경의 변화와 여러 신호를 감지 할 수있는 능력과 미세 조정의 응답 ¹ 두의 표시가 될 수 있습니다. 두 성분의 신호 전달 시스템 (TCS)은 세균에 의해 사용되는 가장 널리 시그널링 시스템이며, 그들은 외부 신호를 감지하여 음향 응답 레귤레이터 (RR) ² 인산화를 통해 송신 히스티딘 키나아제 (HK)으로 구성된다. 의 RR은 출력 영역의 다양하므로 서로 다른 음향 모드를 가질 수 있지만, 가장 일반적인 반응은 도메인 ¹ DNA 결합을 통해 전사 조절이다. 감지 신호 및 VAS의 대응 기능TCSS의 t의 대부분은 알 수없는 남아 있습니다.

이러한 칩 - 칩과 같은 생체 내 방법으로 일상적 전사는 ³ 요소 게놈 결합 부위의 측정에 사용되지만, 활성화 조건 또는 신호가 알려져있는 경우, 그들은 단지 세균이 성분계 RR들에 대해 사용될 수있다. 종종 TCS를 활성화 환경 단서는 자신의 유전자를 대상으로보다 결정하기 어렵습니다. 시험 관내 마이크로 어레이는 기재 기반 분석을 효과적으로 빠르게 유전자 표적을 결정하고 TCSS의 기능을 예측하기 위해 사용될 수있다. 상기 분석 된 RR가 인산화 따라서 아세틸 포스페이트 ^4와 같은 작은 분자를 사용 도너 시험 관내에서 활성화 될 수 있다는 사실을 이용한다.

이 방법에서는, DNA 친화력 - 정제 - 칩 (그림 1)에 대한 DAP 칩 이름, 관심의 RR 유전자는 E.에서 그의 태그로 복제됩니다 대장균 및 이후 정제 태그 단백질은 양방향으로 허용된다차 게놈 DNA를 전단한다. 단백질 - 결합 DNA가 다음 친화력 정화에 충실 풍부한 입력 DNA가 증폭, 형광 함께 풀링 및 사용자 관심의 유기체 (그림 1)에 만든 기와 배열에 하이브리드 레이블. 마이크로 어레이 실험 유물로 될 수 있으며, 따라서 추가 단계 분석을 최적화하기 위해 사용된다. 하나의 단계는 (그림 2에서 워크 플로우를 참조) 전기 이동성 이동 분석 (EMSA)를 사용하여 연구에서 RR에 대한 하나의 목표를 ​​결정하려고하는 것입니다. 그런 다음, 게놈 DNA와 DAP 단계에 바인딩 다음, 단백질 - 결합 및 입력 DNA 따라서 최적의 바인딩 상태를 확인한, 긍정적 인 목표는 입력 부분에 상대적으로 단백질 - 결합 부분에 농축되어 있는지 qPCR에 의해 검사된다 RR (그림 2). 어레이 혼성화 후, 데이터는 게놈 궤적을 나타내는 높은 강도 신호의 피크를 찾기 위해 분석된다 여기서 단백질 H광고는 바인딩. 함수 얻어진 유전자 표적에 근거 RR 대해 예측 될 수있다. 대상 게놈 유전자 좌는 다음 실험적 EMSAs (그림 2)를 사용하여 유효성을 검사 결합 부위의 모티브를 예측하는 데 사용됩니다. RR의 기능 예측 및 유전자 목표는 밀접하게 유사한 결합 모티프에 대한 사람들의 게놈 (그림 2)를 스캔하여 orthologous의 RR을 인코딩 종 관련 확장 할 수있다. DAP 칩 방법은 이전에 아무도 없었다 TCS에 대한 풍부한 정보를 제공 할 수 있습니다. 상기 방법은 또한 단백질이 정제 될 수 있으며 DNA 결합 상태가 결정될 수 있으면 어떠한 전사 조절을 위해 사용하고, 게놈 서열과 관심있는 유기체에 해당 될 수있다.

그림 1. DNA 친화력 - 정제 - 칩 (DAP-칩) 전략 ^7. 그 유기체에서 RR 유전자는 E.에 카르복시 말단 그의 태그로 복제됩니다 대장균 발현 균주. 정제 그의 태그가 단백질 아세틸 포스페이트 인산화에 의해 활성화하고, 쉬어 된 게놈 DNA와 혼합된다. 나머지는 니켈-NTA 수지를 사용하여 친 화성 정제를 실시하면서 결합 반응의 분취 량은, 입력 DNA로 저장된다. 입력 및 RR 바인딩 된 DNA는 증폭 된 전체 게놈 있으며, 각각를 Cy3 및 Cy5에,로 표지. 표지 된 DNA를 함께 풀링하고 유전자 표적을 결정하기 위해 분석된다 타일링 어레이에 혼성화된다. 그림 수정 및 크리에이티브 커먼즈 라이센스를 ^7에서 사용하는 재판.

워크 플로의 그림 2. 요약. 모든 정제 태그 PROTEI 위해N, EMSA를 이용하여 대상을 결정함으로써 시작한다. (WGA) 농축 및 입력 DNA 증폭 게놈 DNA 다음 DNA 친화력 - 정화 (DAP) 및 전체 게놈을 결합하는 단백질을 허용합니다. 표적 유전자가 알려진 경우, 알려진 타겟 단백질 - 결합 분획에 농축되도록 qPCR에를 사용한다. 어떤 대상을 판별 할 수 있다면, DNA 라벨 및 배열 하이브리드로 직접 진행합니다. qPCR에 의한 농축이 관찰 할 수없는 경우, 결합 단백질 - gDNA를 다른 단백질의 양을 사용하여 DAP-WGA의 단계를 반복합니다. 피크를 찾아 유전자를 대상에 매핑하는 배열 분석을 사용합니다. 결합 부위 모티프를 예측하는 표적 유전자의 상류 영역을 사용한다. 실험적으로 EMSAs를 사용하여 주제를 유효성을 검사합니다. 연구에서 RR의 orthologs를 인코딩 관련 종의 게놈을 스캔 모티브를 사용하고,뿐만 아니라 그 종을 대상으로 유전자를 예측하고있다. 얻어진 유전자 타겟에 기초하여, RR과 orthologs의 생리적 기능은 예측 될 수있다. 그림 수정하고 창조적 인 C를 사용하여 다시 인쇄ommons ^7에서 라이센스.

참고 : 아래의 프로토콜이 박테리아 Desulfovibrio 심상 성 Hildenborough에서 RR의 DVU3023의 유전자 표적의 결정에 맞게 조정됩니다. 그것은 또한 임의의 다른 전사 조절에 적용될 수있다.

1. 복제 및 순화 RR

1. RR 유전자, D.에서 구체적으로 DVU3023를 복제 불가리스 Hildenborough 대장균 발현 벡터에 유전자가 C-말단 그의-태그와식이 T7 프로모터의 제어하에되도록.
   참고 : 몇 클로닝 방법을 사용할 수 있고 연구원에 의해 결정된다. 다른 친화도 태그도 사용될 수있다.
2. 식 E.로 구성 변환 대장균 BL21 (DE3) 식을 변형.
3. 37 ° C에서 BL21 식 변형의 1 L를 성장 중반 로그 단계에서, 단백질의 발현을 유도하기 위해 0.5 mm로 IPTG를 추가합니다. 실온에서 24 시간 동안 성장을 계속한다.
4. 10 마일 5,000 XG에 원심 분리기 세포4 ℃에서 N 용해 완충액에서 재현 탁 셀 (20 mM의 나트륨 포스페이트, pH 7.4의 500 mM의 염화나트륨, 40 mM의 이미 다졸, 1 ㎎ / ㎖ 리소자임, 1X 클레아 벤조). 4 ℃에서 프랑스의 프레스를 사용하여 세포를 Lyse
5. 4 ℃에서 30 분 동안 15,000 XG에 원심 분리기 해물 0.45 μm의 주사기 필터를 사용하여 필터링 할 수 있습니다.
6. 세척 버퍼 10 ML (20 MM의 인산 나트륨, 산도 7.4, 500 mM의 NaCl을, 40 mM의 이미 다졸)를 사용하여 FPLC 악기에 1 ㎖ 니켈 세 파로스 칼럼을 씻으십시오.
7. 열 해물을로드합니다. 세척 버퍼 20 ㎖로 컬럼을 씻으십시오.
8. 0-100 % 용출 완충액 구배 (20 mM의 나트륨 포스페이트, pH 7.4의 500 mM의 NaCl을 500 mM의 이미 다졸)를 사용하여 용리 DVU3023.
9. 탈염 컬럼에서 용출 분수를로드하고 탈염 버퍼 (20 MM의 인산 나트륨의 pH 7.4, 100 mM의 염화나트륨)로 세척.
10. 단백질을 농축하는 고 분자량 컷오프 필터 원심 분리기에서 단백질 샘플. -20 ° C에서 50 % 및 저장 단백질 0.1 ㎜, 글리세롤에 DTT 추가
    주 : 정제 방법이 연구에서 각각의 단백질에 대해 개별적으로 최적화해야합니다.

2. 전기 영동 이동성 이동 분석 (EMSA)를 사용하여 RR에 대한 유전자의 대상을 결정

1. PCR은 D.를 사용하여 후보 타겟 유전자 DVU3025 400 bp의 상류 영역을 증폭 불가리스 Hildenborough 주형으로서 게놈 DNA 및 비 표지 정방향 프라이머 및 역방향 5'-바이오틴 - 표지 된 프라이머.
   참고 : 종종 RR이 자신의 유전자 / 오페론의 상류 지역을 결합하거나 근위부를 인코딩 유전자를 조절할 수 있습니다 후보 표적 유전자를 선택하는 팁. RR은 다른 종의 orthologs이있는 경우, 지역에 보존되어 유전자를 찾습니다. 다른 방법은 자신이 sigma54 - 의존의 RR에 대한 귤론 예측 (예를 들어, RegPrecise ^5), 또는 예측 sigma54 의존 발기인 ^6에 따라 선택하는 후보 유전자 (가) 있습니다.
2. B (400)를 잘라, 1 % 아가 로즈 겔상에서 PCR 생성물을 실행할P 크기의 제품 및 겔 추출 키트를 정리하여 DNA를 정화.
3. 10 mM 트리스 염산, 산도 7.5, 50 밀리미터의 KCl, 5 mM의 MgCl2를 _2, 1 mM의 DTT, 25 % 글리세롤, 1 ㎍ / ㎖의 폴리 dI.dC (비에 바이오틴 DNA 기판의 100 fmol으로 DVU3023 단백질 (0.5 pmol의)을 혼합 20 μL의 총 부피의 별 경쟁 DNA). 또한 제어와 같은 단백질이없는 반응을 설정합니다. 20 분 동안 벤치에 실온에서 반응을 품어.
4. 참고 :이 나열과 다른 반응 구성 요소가 관심의 RR에 따라 추가 될 수있다 표준 조건입니다. 활성화가 요구되는 경우, 반응물 (종종의 RR이 활성화하지 않고 시험 관내에서 DNA를 결합한다)에 50 mM의 아세틸 포스페이트를 추가한다.
5. 30 분 동안 100 V에서 0.5 배의 TBE 버퍼에 프리 캐스트 미니 6 % 폴리 아크릴 아미드 - 0.5 배의 TBE 젤을 사전 실행합니다. G에 대한 결합 반응과 반응의 부하 18 μL에 배 로딩 버퍼의 5 μL (파란색 0.1 % 브로 모 페놀, 0.1 % 자일 렌 cyanol, 1X TBE 30 % 글리세롤)를 추가엘. 2 시간 동안 100 V에서 실행합니다.
   주 : 겔의 대부분이 버퍼에 의해 절연되도록 버퍼를 실행하여 전기 시스템에서 외부 버퍼 챔버를 채우는, 단백질-DNA 복합체의 탈퇴로 이어질 수있는 과열을 방지하기 위해. 또는, 겔은 4 ℃에서 실행할 수 있습니다
6. 젤의 크기에 충전 된 나일론 막 잘라 적어도 10 분 동안 0.5 배의 TBE에 담근. 카세트에서 젤을 제거합니다. 젤 떨어져있는 능선을 잘라 0.5 배의 TBE에 담가 두 개의 두꺼운 여과지 사이에 젤과 막 사이에, 그리고 반 건조 블로 팅 장치 내부에 배치하고 30 분 동안 20 V에서 실행합니다.
7. 상업 자외선 가교제 악기 내부에 멤브레인을 놓고 3 분으로 시간을 설정합니다.
   참고 : 멤브레인 이제 다음 단계로 진행하기 전에 몇 일 동안 실온에서 건조 저장 될 수있다.
8. 스트렙 타비 딘 - 말 무 과산화를 채용 시판 화학 발광 검출 키트를 사용제조업체의 지침에 따라 오점을 개발하기 위해 자체의 어원.
9. 이미지를 컴퓨터를 사용하여 얼룩은 CCD를 탑재 카메라에 매여 및 RR 테스트중인 DNA 바인딩을 나타냅니다 RR의 존재의 DNA 기판 이동의 변화를 찾습니다.
   주 : 단백질-DNA 시프트의 특이 반응에 제거하거나 볼 시프트를 줄여야 비 표지 경쟁자 DNA의 과잉을 포함하여 시험 될 수있다.

3. 게놈 DNA-단백질 바인딩 후 대상 농축 확인

1. 게놈 DNA-단백질 결합 반응
   1. 그 사이에 2 초 간격으로, 1 초 9 낮은 진폭의 펄스와 마이크로 팁을 사용하여 1.5 ML의 microfuge 튜브 (농도 100 ~ 200 NG / μL에서) 100 ㎕의 게놈 DNA를 초음파 처리하여 500 bp의 평균 크기 전단 게놈 DNA 각.
      참고 : 튜브의 측면에 DNA를 뿌려 놓은 것, 모든 3 펄스 후 내용을 아래로 회전합니다. 실 사용 조건사용되는 초음파 분쇄기 악기와 다를 수 있습니다. 전단 된 DNA 단편 100-1000 bp의 범위 일 수 있지만, 보통 크기가 400-600 염기쌍 내에 있어야한다. 너무 많은 전단 적은 그대로 결합 부위에 발생할 수 있습니다, 너무 많이 또는 너무 작은 전단 하나가 하류 전체 게놈 증폭 단계에서 라이브러리 준비에 영향을 미칠 것입니다.
   2. 10 mM 트리스 - 염산 pH를 7.5, 1 mM의 DTT, 50 mM의 KCl을, 5 mM의 _MgCl2를, 25 % 글리세롤 및 50 mM의 아세틸 인산 RR 단백질 (DVU3023 0.5 pmol의)로 깎인 게놈 DNA의 2-3 μg 섞는다. 30 분 동안 25 ° C에서 반응을 품어. 입력 DNA로 1.5 ML 튜브 및 라벨에 대한 반응의 양도 10 μL.
      참고 : 아세틸 인산이 체외 인산화 단백질을 활성화하기 위해 추가됩니다. 인산화 바인딩 DNA를 자극하지만, 많은 RR이 또한 활성화 ⁷ 않고 체외에서 DNA를 결합한다. 반응물에 첨가 단백질의 양은 단백질 프렙의 활성에 의존 할 것이다. EMSA이 선택하는 데 사용할 수 있습니다이 금액을 imize.
2. 선호도는 단백질 바인딩 DNA를 정화
   1. 0.6 ML의 microfuge 튜브에 니켈 - NTA 아가로 오스 수지의 30 μl를 추가합니다. 하단의 수지를 수집하기 위해 1 분 100 XG에 원심 분리기 및 뜨는을 제거합니다. 100 세척 버퍼 (10 mM 트리스-HCl, pH7.5, 5 mM의 _MgCl2를, 50 mM의 KCl을, 25 % 글리세롤)의 μL, 영화 튜브를 혼합하고, 2 분 100 XG에 원심 분리기를 추가합니다. 뜨는을 제거합니다.
   2. 세척 니켈 - NTA 수지에 결합 반응의 나머지 90 μl를 추가하고 30 분 동안 회전 진탕 배양한다.
   3. 2 분 100 XG에서 원심 분리하고, 상층 액 (언 바운드 DNA)를 제거합니다. , 세척 버퍼 100 μl를 추가 내용을 혼합 튜브를 가볍게, 2 분 100 XG에 원심 분리기. 뜨는을 제거합니다. 두 번 더 세척 단계를 반복합니다.
   4. 수지에 용출 버퍼의 35 μL (20 MM의 인산 나트륨 완충액 pH를 8, 500 mM의 NaCl을, 500 mM의 이미 다졸)를 추가하고 소용돌이로 교반하여 혼합한다. 5 분간 RT에서 벤치에 부화. 2 분 100 XG에 원심 분리기. 단백질 바인딩 된 DNA의 일부로서 새로운 1.5 ML 튜브 및 라벨에 뜨는을 전송합니다.
   5. 또한 입력 DNA에 용출 버퍼의 35 μl를 추가합니다.
   6. 입력 및 PCR 정제 키트를 사용하여 단백질 - 결합 DNA 분획을 정제 하였다.
3. 전체 게놈은 입력 및 단백질 - 결합 DNA 샘플을 증폭한다.
   1. 입력 및 PCR 튜브를 분리하는 단백질 - 결합 DNA의 10 μl를 추가합니다. 배 분열 버퍼의 1 μL, 도서관 준비 버퍼 2 μL, 각각의 샘플 라이브러리 안정화 용액 1 μl를 추가합니다. 소용돌이로 교반하여 잘 섞는다. 2 분, 그리고 얼음에 진정을위한 95 ° C에서 열 순환기에 열.
      주 : DNA의 시작 양이 증폭 바이어스를 도입하는 것을 방지하기 위해 적어도 10 NG이어야한다.
   2. , 도서관 준비 효소 1 μl를 추가 피펫으로 혼합하고, 16 ° C/20 분에 열 자전거 타는 사람에 24 ° C/20 분, 20 분, 75 ° C / 5 분에게 37 ° C를 품어4 ° C에서 홀드
   3. 각 튜브에 물 47.5 μL, 10 배 증폭 마스터 믹스의 7.5 μL, 중합 효소의 5 μl를 추가합니다. 94 ° C/15 초 20주기, 65 ° C / 5 분 뒤에 95 ° C / 3 분,에 잘 열 섞는다. 4 ℃에서 반응을 잡고
   4. PCR 정제 키트를 사용하여 증폭 된 DNA 샘플을 정화하고 분광 DNA 농도를 측정한다.
4. qPCR에를 사용하여 단백질 - 결합 DNA의 대상 농축 확인
   1. 디자인 qPCR에 프라이머 모든 자유롭게 사용할 수 프라이머 디자인 소프트웨어를 사용하여 EMSA 검증 표적 유전자 (DVU3025)의 상류 지역의 200 bp의 증폭합니다.
   2. 각각의 프라이머 세트 각 DNA 템플릿에 대한 세중의 qPCR 반응을 설정합니다. 각각의 프라이머 세트에 대한 마스터 믹스를 준비합니다. 1X 마스터 믹스 2 배 SYBR 녹색 qPCR에 믹스 10 μL, 18 μL의 총에 각각의 프라이머와 물을 0.5 μM이 포함되어 있습니다. 96 - 웰 PCR 플레이트의 웰 당 마스터 믹스의 분취 액 18 μL.
   3. Dilut전자 증폭 5 NG에 정제 입력 및 단백질 - 결합 DNA 샘플 / 물 μL와 DNA 템플릿으로 사용합니다. 우물에 DNA 템플릿 2 μl를 추가합니다.
   4. , 매우 명확한 qPCR의 밀봉 필름 플레이트를 밀봉 200 XG / 1 분에서 원심 분리기에 플레이트 스핀 다운. 실시간 qPCR의 기계에 판을 놓습니다. 사이클 관련 qPCR에 소프트웨어를 사용하여 다음과 같이 95 ° C / 1 분, 95 ° C/10 초, 40 회, 59 ° C/15 초, 70 ° C/35 초.
   5. 또한 관련이없는 유전자 (대조군)의 상류 지역을 증폭하는 프라이머와 세중의 qPCR 반응을 설정합니다.
   6. 입력 DNA의에서 단백질 - 결합 DNA의 C의 _{T 값을} 빼서 ΔC _T를 계산합니다. 2 ^ΔC _T와 같은 단백질 바인딩 된 DNA의 표적 유전자의 배 농축을 계산합니다.
      참고 : 대상 상류 영역이 입력 DNA 대 단백질 - 결합 DNA를 농축 한 경우는 결합 반응과 선호도 정화 SUCC 없음을 나타냅니다essful. 4 단계로 진행합니다. 대상 상류 지역의 농축이 관찰되지 않은 경우, 단백질의 서로 다른 양의 결합 반응 (3.1 단계)를 반복합니다.

4. DNA 라벨링 및 배열 하이브리드

1. Cy5에와 Cy3에 충실 DNA와 라벨 입력 DNA
   OTE :를 Cy3와 Cy5의 염료는 빛에 민감하고주의를 최소한으로 빛의 노출을 유지하기 위해주의해야한다.
   1. 40 μL와 혼합 1 μg의 DNA는 9-MERS를 Cy3/Cy5-labeled 물 80 μL에 볼륨을 조절합니다.
   2. 열 (열 순환기에) 어둠 속에서 10 분 동안 98 ° C에서 변성. 2 분 동안 얼음에 빠른 진정.
   3. 잘 섞어, 각 반응에, 5 밀리미터의 dNTPs, 8 μL의 물, 그리고에 (어둠 속에서 2 시간 동안 37 ° C에서 알을 품다 ^- 2 μL 클레 나우 중합 효소 (50,000 U / ㎖ 3'-5'-엑소)를 추가 열 순환기).
   4. 0.5 M.에 대한 반응과 NaCl 용액을 중지하는 50 mM EDTA에 추가
   5. 1.5 ML 튜브 (계속)로 전송 샘플10 분 동안 12,000 XG에서 0.9 이소프로판올의 양, 10 분 동안 어둠 속에서 부화, 원심 분리기를 aining. 펠릿은 Cy5에 표지 된 DNA에 대한 Cy3로 표지 된 DNA와 블루 핑크해야한다.
   6. 2 분 동안 12,000 XG에서 80 % 에탄올 (500 μL) 및 원심 분리기와 펠렛을 씻으십시오. 어둠 속에서 5 ~ 10 분간 자연 건조 펠릿.
      참고 : 펠렛은 -20 ℃에서 저장 될 수있다
   7. 25 μL의 물을 Resuspend 펠릿. 분광 광도계로 DNA 농도를 측정한다.
   8. 풀 함께 6 μg 어둠 속에서 낮은 열에서 원심 분리기에서 1.5 ML 튜브 진공 건조의를 Cy3 및 Cy5에 표지 DNA (투명 경우 원심 분리기 뚜껑을 포함)의 각.
      참고 : 펠렛 하이브리드에 대한 준비가 될 때까지 -20 ° C에서 저장 될 수있다.
2. 마이크로 어레이 혼성화
   1. C.를 사용하여 42 ℃로 온도를 설정하기 전에 3 ~ 4 시간에 하이브리드 시스템을 켭니다
   2. 1X 솔루션은 11.8 ㎕의 2 배 Hybridi이 포함되어 있는지 등 하이브리드 솔루션의 마스터 믹스를 준비합니다를 sync_len 버퍼, 4.7 ㎕의 하이브리드 구성 요소 A, 0.5 ㎕의 정렬 올리고.
   3. 5 μL 물에 알약을 재현 탁. 샘플이 믹스의 13 μl를 추가합니다. 15 초 동안 소용돌이, 5 분 동안 건조 욕조에 95 ℃에서 배양한다. 로딩을위한 준비가 될 때까지 하이브리드 시스템의 42 ° C에서 샘플을 보관하십시오.
   4. 제조 업체의 프로토콜에 따라, 마이크로 어레이 슬라이드 믹서 어셈블리를 준비합니다.
   5. 하이브리드 시스템 내에서 믹서 슬라이드 어셈블리를 놓습니다. 충전 포트에로드 샘플의 16 μl를, 접착 필름과 포트를 밀봉 시스템에 혼합 설정하고, 42 ℃에서 16 ~ 20 시간 동안 하이브리드
   6. 물에 10 배 상업적으로 이용 가능한 버퍼를 희석하여 1X 세척 버퍼 I (250 ㎖), II (50 ㎖), III (50 ㎖)를 준비하고 각각에 DTT가 1 ㎜에 추가합니다. 따뜻한 버퍼 I는 42 ° C.
   7. 따뜻한 버퍼 I. 벗기고 믹서를 포함하는 그릇 안에 분해 도구로 믹서 슬라이드, 장소를 밀어 적극적으로 쉬 동안손으로 분해 도구를 aking.
   8. 세척 버퍼 I 50 ㎖로 용기에 슬라이드를 삽입하고 손으로 2 분 동안 격렬하게 흔들어.
   9. 전송 50 ㎖ 세척 버퍼 II와 두 번째 용기에 슬라이드와 손으로 1 분 동안 격렬하게 흔들어.
   10. 전송 50 ㎖ 세척 버퍼 III와 세 번째 용기에 밀어 넣고 손으로 15 초 동안 격렬하게 흔들어.
   11. 빨리 종이 타월에 슬라이드의 가장자리를 얼룩 및 슬라이드 랙에 배치합니다. 슬라이드를 건조 2 분 200 XG에 원심 분리기. 슬라이드 케이스 내에서 호일로 포장하고, 데시 케이 터에 저장합니다.
3. 배열 스캔
   1. 악기의 지시에 따라 마이크로 어레이 스캐너에서 슬라이드를 놓습니다.
   2. 532 나노 미터 = Cy3에 635 ㎚ 인 = Cy5에로 파장을 설정하는 스캐너의 소프트웨어를 사용하고, 350 및 400 사이의 최초의 광전자 증 배관의 이익.
   3. 슬라이드의 배열을 찾을 슬라이드를 미리 볼 수 있습니다. 스캔 어레이 영역을 선택합니다.
   4. 배열을 검색하고 배열 ​​기능은 대부분 노란색이라는 광전자 증 배관의 설정 등의 조정. 히스토그램은 빨강과 녹색 겹쳐 곡선 또는 가능한 한 서로 근접을 표시해야합니다. 곡선은 포화 상태에 ^10-5 정규화 카운트 위에 종료해야합니다.
   5. 개별적으로 모두 532 및 635 nm의 이미지를 저장합니다.
4. 어레이 데이터 분석
   1. 배열 분석 소프트웨어로 이미지를 가져옵니다. 소프트웨어를 사용하여, (를 Cy3와 Cy5에 이미지에 대한) 각 어레이에 두 개의 쌍 보고서 (. 쌍)을 만듭니다. 쌍 파일을 사용하여 스케일 로그 ₂ 비율 파일을 만듭니다. 500 BP의 슬라이딩 창을 사용하여 피크를 검색 할 로그 ₂ 비율 파일을 사용합니다. 유전자 표적의 상류 지역에 피크 궤적을지도.
   2. 긍정적 인 대상 (EMSA을 사용하여 결정하고이 예에서 qPCR에, DVU3025에 의해 확인)이 최고 피크 내에 표시되었는지 확인합니다.
      주 : 양성 대상 베스트 히트 구비하지 않으면,이 가능한지 consi 아래 RR배급 제도 여러 유전자 표적을 가지며 칩 DAP 복제 수행 될 수 있으며, 모든 복제물에 공통 피크가 목표리스트를 생성하는데 사용될 수있다.

5. 결합 부위 주제 예측 및 검증

1. DAP 칩 분석에 의해 발생함에 따라 유전자 표적을 위해 상류 지역 (400 BP)에 대한 시퀀스를 검색합니다. 모티브를 예측하기 위해 온라인 (meme.nbcr.net) 미생물을 통해 이러한 순서에 MEME을 적용합니다.
   참고 사항 : sigma54 의존 규제로 증강 결합 단백질이 시작 사이트의 상류 수백 개의 염기쌍을 바인딩 할 수 있습니다. 다른 전사 조절기를 들어, 200 BP와 같은 짧은 지역은 상류에 충분합니다.
2. 디자인 상단과 양쪽 끝에서 10 기지에 의해 측면 예측 결합 부위 모티브를 포함하는 바닥 가닥 DNA 올리고머. 비오틴 상단 가닥 5 '를 주문하십시오.
3. 10 mM 트리스 염산, 산도 8.0, 1 ㎜ EDTA, 50 mM의 염화나트륨의에서 1:1.5 비율의 상단과 하단 가닥 올리고 혼합PCR 튜브에 20 μl의 총 반응 부피. 열을 25 ℃로 천천히 냉각 다음에 열 자전거 타는 사람에서 5 분, 95 ° C에서 열 배 희석하고 EMSA에 대한 야생형 dsDNA 기판으로 사용합니다.
4. 상기와 동일한 절차를 사용하여 수정 기판을 준비하지만, 설계 올리고머 결합 모티프의 보존 된 염기에서 4-6의 치환을 수행하는.
5. RR 및 야생형 또는 수정 기판과 결합 반응을 설정하고 2 단계에서 설명 된대로 EMSA를 사용하여 검사합니다.
6. 참고 : RR 야생 형 기판 있지만 수정을 결합하면 예상 모티브가 확인됩니다.

기타 관련 세균 종의 주제 6. 보존

1. DVU3023의 orthologs를 포함하는 관심의 게놈을 선택합니다. NCBI 사이트에서 게놈에 대한 순서와 주석 파일을 얻습니다.
2. POS를 구축하기 위해 DAP 칩 대상에서 모티브 시퀀스를 사용하는 스크립트를 작성하는 등의 Perl과 같은 프로그래밍 언어를 사용하여ition 가중 행렬과 다른 염기 서열을 유전체에 존재하는 유사한 주제를 점수 행렬을 사용합니다.

상기 방법은 Desulfovibrio 불가리스 Hildenborough ⁷ 박테리아를 감소 모델 황산에서의 RR 해외 유전자 표적을 결정하기 위해 적용 하였다. 이 유기체가 그것을 감지에 응답 가능한 신호의 다양한 나타내는 70의 RR로 표현 TCSS의 다수가 있습니다. 생체 이러한 경보 시스템의 기능을 분석하고 자신의 신호 때문에 수행하기 어렵고 따라서 자신의 활성화 조건입니다 알 수 있습니다. 여기서 DAP - 칩 방법은 유전자 표적을 결정하고, 따라서 대표적인 RR의 DVU3023 가능한 기능을 예측하는 데 사용되었다.

DVU3023는 동족 HK (그림 3A)이 오페론으로 인코딩 된 시그마 54-따라 RR입니다. C-말단 그의 태그가 유전자에 복제 및 E.에서 정제 대장균. 초기 목표 결정의 경우, 정제 RR은 10 유전자 오페론 (DVU3025-3035)으로 C 하류 오페론에 결합에 대해 시험 하였다젖산 흡수 및 산화 유전자의 onsisting. RR DVU3023는 DVU3025 (그림 3B)의 상류 지역을 이동했다. 다음 RR DVU3023가 깎인 D.에 결합 하였다 심상 성 Hildenborough 게놈 DNA. 인산화가 DVU3025의 프로모터 부위에 결합이 필요하지 않았지만, 아세틸 인산이 다른 발기인에 바인딩에 필요한 한 경우 반응에 추가되었습니다. 단백질 - 결합 DNA 분획의 친화력 정화 후, qPCR에이 DVU3025의 상류 영역이 입력 DNA에 (C _T = 6.9) 상대 (C의 _T = 단백질 바인딩 부분에서 (8.45 배) 농축되어 있음을 나타 내기 위해 사용되었다 9.98 따라서 사용되는 바인딩 조건이 RR의 DVU3023에 적합한 있다고 표시) (그림 3C). 무작위로 선택된 유전자 (DVU0013)의 프로모터 영역의 보충의 부재는 음성 대조군으로 사용 하였다.

단백질 바인딩 및 입력 DNA 샘플은 다음 형광 표지 및 하이브리드 화 된D. intergenic 지역에서 높은 조사 밀도를했다 심상 성 Hildenborough 기와 배열입니다. 상위 4 개 피크 DVU3023 (그림 3D)에 대한 가능성이 대상으로 선정되었다. 이러한 네 개의 피크는 또한 칩 DAP에서 식별 다른 몇몇의 RR 대해 분석하고, 따라서.도 3e는 DVU3023 의해 조절 유전자의 개략도이다 끈끈한 DNA (표 1)로 표시 하였다 여러 다른 사람에 의해 관찰 하였다. 긍정적 인 목표 DVU3025은 가장 높은 점수를 얻을 첫 번째 피크였다. 두 유전자의 대상은 두 개의 다른 단독으로 인코딩 된 젖산 permeases (DVU2451 및 DVU3284)이다. 네 번째 유전자의 목표는 상류 지역에서,하지만 두 convergently 전사 유전자 / 오페론 (DVU0652 및 DVU0653) 사이의 intergenic 지역에서 거짓말을하지 않습니다. 이것은 큰 intergenic 지역이며, 또한도 예측 sigma54 의존 프로모터를 인코딩합니다. 그것은 REGU이다이 지역에서 인코딩 발견되지 않은 스르나가있을 수 있습니다RR DVU3023에 의해 lated.

칩 DAP에 의해 얻어진 대상의 업스트림 영역을 사용하여, MEME는 결합 부위 모티프 (도 3F, 표 2)를 예측하는 데 사용되었다. DVU3025의 특정 주제 상류을 들고 EMSA 기판은 그 RR의 DVU3023 예측 된 모티브를 인식하고 바인딩 확인하기 위해 설계되었습니다. 모티브는 더 바인딩 변화 (그림 3G)를 제거 모티브 내에서 보존 기지에 대체하는 것으로 확인되었다. 유효성이 검사를 모티브는 다음 DVU3023에 대한 orthologs 있었다 다른 밀접한 관련이 황산염 환원 박테리아의 게놈 서열을 스캔 펄 생성 된 스크립트에 사용되었다. 모티브가 오픈 리딩 프레임 (표 3)의 상류 지역에 위치 할 때 궤적은 가능한 유전자를 대상으로 선택되었다. orthologous의 RR에 대한 예측을 모티브로 한 시퀀스를 사용하여, 합의 결합 부위를 모티브로 (그림 3 층)를 닮아있는 생성 된 ONE D. 얻어 혼자 심상 성 Hildenborough.

그림 3. D.에 대한 게놈 목표를 결정 불가리스 응답 레귤레이터 DVU3023. A. DVU3023은 그 동족 HK와 오페론에 인코딩됩니다. 다운 스트림 오페론은 sigma54 의존 발기인 (검정 구부러진 화살표)를 가지고 후보 표적 유전자로 사용되었다. B. 정화 RR DVU3023 바인딩 및 DVU3025의 상류 지역. C. Q-PCR (DVU3025 ^7의 상류 지역을 이동 긍정적 대상) 및 DVU0013 () 음성 대조군으로 선정. E 단백질 바인딩 풍부한 DNA 분획, 내가 입력 DNA입니다. D. 최고 DAP 칩 분석 후의 네 개의 봉우리. 시작하고 DNA를 참조는 PE의 시작과 끝 좌표 종료AKS; 점수는 피크에서 네 번째로 높은 프로브의 로그 ₂ R의 비율을 의미; 루즈 벨트는 거짓 발견 속도를 =; cutoff_p 피크가 DAP 칩 봉우리에 따라 DVU3023에 대한 유전자의 대상. E. 도식 표현을 확인 하였다되는 컷오프 비율입니다. 상자에 숫자 D. HK-RR 유전자의 피크 번호가 회색에서 파란색과 다른 유전자에 녹색, 표적 유전자에 나타냅니다. 블랙 구부러진 화살표가 sigma54 의존 발기인이며, 녹색 채워진 원은 결합 부위의 모티브를 예​​측하고 있습니다. 다음과 같이 유전자의 이름은 다음과 같습니다 -; LLP - 젖산 퍼 미아, 피루 베이트 페레 독신의 산화 환원 효소 포 GLCD-글리콜 산 산화 효소, glpC-FE-S는 결합 단백질을 클러스터; PTA - phosphotransacetylase, ACK-아세트산 키나제; lldE - 젖산 산화 효소 서브 유닛; lldF / G - 젖산 산화 효소 서브 유닛; MCP -. PRED의 메틸 접수 화성 단백질 F. Weblogo ⁸ 이미지결합 부위를 모티브로 icted. 최고 - DAP 칩 대상에서 파생 된; 바닥 -. DVU3023 ⁷ EMSA를 사용하여 예측 결합 부위를 모티브 G. 검증의 orthologs와 게놈에 존재하는 결합 부위에서 유래. DVU3023는 야생형 모티브 (W)를 이동하지만 수정 모티브 (M). W와 M 주제가 시퀀스가 오른쪽 ^7에 표시됩니다. 그림 수정하고 라지브 등의 알 ⁷ 크리 에이 티브 커먼즈 라이센스를 사용하는 재판.

표 1. DAP 칩 어레이 분석에서 상위 20 개 봉우리. 테이블은 세 부분으로 나누어 져 있습니다. 피크 특성은 위치가 피크 게놈 또는 염색체 외 플라스미드에서 발견되었는지 여부를 말합니다 배열 분석 소프트웨어에 의해 생성, 시작의 참조를 끝 봉우리의 세부 정보를 표시타트와 피크 끝 궤적, 점수가 피크에서 네 번째로 높은 프로브에 대한 로그 ₂ R의 비율을 의미한다, 루즈 벨트는 거짓 발견 속도 값을 의미하며, cutoff_p 피크가 확인 된에서 컷오프 비율입니다. 다른 두 섹션은 매핑 좌표 및 유전자 피크의 각각 매핑지도보기 시작과 끝 궤적 좌표 끝에서 시작. 이 섹션에서는 유전자 가닥 유전자 (양의 값이 음의 값이 유전자 좌가 유전자 내에 표시하면서 궤적은, 유전자의 상류 표시)의 시작에서 거리를 나타내는 오프셋 유전자를 코딩 가닥을 의미 오버랩 유전자 값에 해당하는 경우 궤적이 유전자를 중복, DVU는 좌표에 매핑되는 유전자의 DVU 번호를 의미하고, 설명은 유전자 주석을 나타냅니다. 표 수정하고 라지브 등의 알 ^7에서 크리 에이 티브 커먼즈 라이센스를 사용하는 재판. 알을 보려면 여기를 클릭하세요이 테이블의 arger 버전.

그림 3의 합의 DAP 칩 목표 기반의 모티브를 구축하는 데 사용 표 2. 시퀀스. 표 수정 및 라지브 등의 알 ⁷ 크리 에이 티브 커먼즈 라이센스를 사용하는 재판.

표 3. DVU3023 다른 염기 서열 Desulfovibrio에 존재 orthologs 및 관련 종에 대한 결합 부위 모티브. 스캔 각 게놈의 경우, 유기체의 이름을 괄호 DVU3023에 DVU3023의 ortholog 및 퍼센트 ID의 궤적 태그 다음에 표시됩니다. 스코어는 입력 sequen 유사성에 근거 펄 프로그램에 의해 할당 된 값을 나타낸다CES. 설명 대상 오페론의 유전자에 대한 유전자 주석을 말한다. 표 수정하고 라지브 등의 알 ⁷ 크리 에이 티브 커먼즈 라이센스를 사용하는 재판. 이 테이블의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

여기에 설명 된 칩 DAP 방법은 성공적 일이 대표적인 결과로 게재되어있는 Desulfovibrio 불가리스 Hildenborough ⁷ 몇개의 RR 대한 유전자 표적을 결정하는 데 사용되었다. RR의 DVU3023 들어, 후보 유전자 표적을 선택하는 것은 수월했다. DVU3025은 RR 유전자의 바로 하류에 위치하고 있으며, RR 및 대상 유전자는 여러 Desulfovibrio 종에서 보존하고, 또한 DVU3025는 예측 sigma54 의존 발기인 있습니다. EMSA는 급속 후보 표적 유전자에 대한 결합에 대해 RR를 테스트하기위한 간단한 방법을 제공하고, 또한 정제 된 단백질 샘플의 활성의 평가뿐만 아니라, 최적의 단백질-DNA 결합 조건을 결정한다.

DNA 결합 활성은 인산화 DNA 바인딩에 필요한 있는지 아세틸 포스페이트의 존재 및 부재하에 시험 될 수있다. 모두의 RR은 작은 분자 기증자에 의해 인산화되는 것은 아닙니다9는, 이러한 경우 정제 동족 센서 키나제, 가능한 경우, 단백질을 활성화하는 데 사용될 수있다. 수신자 도메인의 주요 활성 부위의 잔류 물이 부족하고 인산화 ^(10)에 의해 활성화되지 않습니다 알려진 전형적인 RR들도 있습니다. 연구의 RR 대다수, 인산화 ¹¹ DNA 결합을 자극한다. 그러나 인산화 바인딩 ⁽¹²⁾ 생체 DNA에 영향을주지 않는 사례가 있으며,이 인산화가 ¹³ 바인딩에 필요한 예입니다, 또한 발기인의 일부가 인산화 ^(14)과 증가를 결합 케이스. DAP - 칩 방법 RR 구속 프로모터의 집합에 차이가 있는지를 결정하기로하고 인산화없이 수행 될 수있다. 그러나, 일부의 RR는 E.로부터 기능적으로 인산화 된 형태로 정제 될 수 있음을 주목해야한다 대장균 ^13.

여기에 설명 된 프로토콜은 그의 - 태그 PROTEI입니다단백질 - 결합 DNA는 니켈 NTA 아가 로스 수지를 사용하여 정제 친화력이지만, 쉽게 풀다운에 대한 적절한 친 화성 수지를 이용하여 태깅 된 단백질의 어떠한 개조 될 수 N되도록. DAP-WGA의 단계에 따라, qPCR의 단계는 단백질 gDNA를 결합 조건이 적절하고 단백질 바인딩 DNA가 성공적으로 친 화성 정제에 의해 충실한 것을 이었다는 것을 확인하는 추가 제어를 제공합니다. 보다 3 배 농축은 하이브리드 단계를 진행하기에 충분하다. EMSA 반응과는 달리, 폴리 dI.dC 그것이 WGA 단계를 방해하기 때문에 반응을 바인딩 gDNA를 추가 같은 더 비 특정 경쟁의 DNA가 없습니다. 단백질 샘플이 아닌 특정 DNA 결합 활성이있는 경우이 때문에 다음 확인 대상 DNA의 명확한 농축은 qPCR에 의해 관찰되지 않습니다. 따라서 qPCR의 제어 단계는 gDNA를 결합 반응에서 사용되는 단백질의 양을 최적화하기 위해 사용될 수있다. 전체 게놈 증폭 시판 키트는 INTR 주장을 oduce없이 증폭 바이어스를 최소 출발 DNA 재료 및 증폭 사이클의 낮은 숫자에 대한 자신의 지침을 따를 때. 증폭 바이어스는 비 증폭 DNA 대 증폭에 다양한 프라이머 세트로 qPCR에를 사용하여 확인할 수있다. 하류 어레이 혼성화에 어떤 영향도 차분 라벨 및 증폭 모으고 비 증폭 게놈 DNA가 혼성화에 의해 결정될 수있다.

어레이 데이터 분석 다음 생성되는 피크의 목록은 몇개의 피크가 0의 거짓 발견 레이트 값을 갖는 일반적으로 길다. 따라서 이러한 높은 _로그이 R 점수와 cutoff_p 값과 같은 다른 피크 특성의 조합 (어레이 분석에 의해 생성 된 것처럼 본 연구에서 사용 된 소프트웨어) 아래로 가장 높은 신뢰 유전자 대상에 목록을 추려하는 데 사용됩니다. 베스트 5 안타 간의 사전 결정된 표적 유전자의 존재는 크게 데이터 세트의 신뢰성을 강화한다. 이리저리 규제 단백질의 수를이 분석을 수행같은 유기체 또한 몇개의 데이터에 나타납니다 "끈적 끈적한"DNA 시퀀스를 식별하는 데 도움이 될 것입니다 m ^7을 설정합니다. 결합 부위를 모티브로 예측하고 검증 할 수있는 경우 또한 다음 봉우리에있는 목록에서 아래로 내려 모티프의 존재는 보수적 인 표적 유전자의 목록을 선택하는 데 사용할 수 있습니다. 프로모터 영역 이외의 DNA 서열의 농축 배열 하이브리드의 유물 일 수도 있고, 이전에 알 수없는 오픈 리딩 프레임 또는 작은 RNA를 ^7의 규정을 나타낼 수 있습니다. 유전자 표적 EMSA를 이용하여 소정 수없는 레귤레이터, DAP 칩 분석은 ^{"블라인드"7을} 수행 할 수있다. 이러한 경우도, 바인딩 사이트 주제의 식별 유전자 대상의 선택을 향상시킬 것입니다. 분석에 사용하는 단백질 농도를 결정하는 것은 무작위로 선택된 DNA 기판을 이용 EMSA에 의해 평가 될 수있다 단백질의 비특이적 결합 활성에 의존 할 것이다. 낮은 농도는 t에 대한 더 나은 작업높은 비특이적 결합 활성을 가진 호스 단백질. 블라인드 칩 DAP의 신뢰도는 다른 단백질 농도로 복제 세이를 수행함으로써 개선 될 수있다. 몇 가지 목표와 RR이 들어, 두 또는 하나의 분석은 다음 EMSAs를 사용하여 유효성을 검사 할 수있는 대상의 목록을 생성하기에 충분할 수있다. 등의 RR에 대한 DAP 칩 데이터는 일반적으로 초기 몇 봉우리를 넘어 로그 ₂ R 점수 또는 cutoff_p 값의 명확한 점프를 보여줍니다. 여러 대상과의 RR를 들어, 세 개의 반복에서 데이터는 EMSA 유효성 검사를 위해 선택 될 수있는 몇 가지의 일반적인 피크의 목록을 생성하기 위해 분석 될 수있다.

DAP 칩 대상에 따라 결합 부위의 모티브를 예​​측하는 능력은이 방법의 가치에 추가하고 크게 얻은 정보는 증가한다. EMSA 다시 실험적으로 예측을 확인하는 효율적인 프로토콜을 제공합니다. 펄 또는 다른 프로그램 언어의 소프트웨어 스크립트 가능한 게놈 seque 통해 빠르게 검색하는 데 사용될 수있다NCES. 결과 고유 검색 게놈 규제 orthologous 표적 유전자뿐만 아니라 표적 유전자 모두를 식별한다. 여기에 표시된 대표 결과에서 DVU3023에 대해 식별 네 상류 대상 지역의 세 젖산 흡수 및 산화 관련 유전자의 기능을 주석했다. DVU3023에 대한 결합 부위의 모티브가 확인되었다 또한 있기 때문에, 다른 게놈 비슷한 주제의 사이트를 검색 할 수 있습니다. 함께 결과가 DVU3022-3023 TCS 잘 Desulfovibrio 및 기타 관련 황산염 환원 세균에 보존되어 있음을 나타냅니다, 그것은 아세테이트에 젖산 수송과 산화에 대한 유전자를 조절하는 것이. 젖산이 유기체에 의해 사용되는 기본 탄소와 전자 소스이기 때문에, DVU3023 가능성이 자신의 생리에 중요한 역할을한다. RR DVU3023위한 최고 DAP 칩 봉우리 가운데, intergenic 지역도 있었다. 결합 부위를 모티브로이 지역에서 발견되지 않은 있지만, 예측 시그마 54-따라 프로모터의 존재는 T를 제안모자 인코딩 된 정체 불명의 ORF 또는 스르나가있을 수 있습니다, 그것은 DVU3023위한 진정한 대상이 될 수있다. 이러한 결과는 단독으로 계산 예측을 기반으로 목표 위치 판정 반대로 결합 부위 예측과 결합 시험용 칩 DAP 방식의 가치를 강조한다.

이러한 여기에 설명 된 것과 유사한 시험 관내 방법은 몇 가지 경우 ^{15 ~ 17에} 사용하지 않고 매우 드물게 이전에 배우지 않은 레귤레이터되었습니다. 최적화 EMSA 및 qPCR에 앞서 실질적 방법은 신규 레귤레이터에 사용될 때의 결과를 분석하는데 도움이 될 어레이 혼성화하는 단계. 어레이 인쇄 장애가지면 DAP 단계는 결합 부위 ^{(18, 19)를} 구하는 차세대 서열과 결합 될 수있다. 가 더 어레이 기반의 방법은 순서를 기반으로 전략, 방법 등 미래 적응 O에 대한 사용자 정의 기와 마이크로 어레이를 설계 할 필요가 우회 치환으로그 rganism. 칩 - 시퀀서 기술 칩 - 칩 방법에 비해 피크 검출의 민감도 및 특이도 초래하고, 또한 급속하게 더 비용 효과 ^{(20)가되고있다.} 이 문서는 두 가지 구성 요소 응답 규제에 초점을 맞추고 있지만,이 방법은 모든 원핵 또는 진핵 세포 전사 인자 ^(15)를 사용할 수 있습니다. 뉴 클레오 점유는 자주 규제 및 생체에 의한 진핵 세포 전사 인자에 대한 결합 부위의 슈팅이 골대를 비교하고 체외 분석에서 이러한 효과 ^21을 공개 할 수있다 목표에 효과가있다.

저자는 공개 할 관심의 충돌이 없습니다.

우리는 비디오 촬영을 위해 준비하는 그녀의 도움과 기술을 보여 에이미 첸 감사합니다. 수수께끼에 의해 수행이 작품 : 유전자 및 분자 조립 (http://enigma.lbl.gov)와 생태계 및 네트워크 통합은, 로렌스 버클리 국립 연구소의 과학적인 초점 영역 프로그램은 과학, 생물의 사무실의 사무실에 의해 지원되었다 계약 번호 DE-AC02-05CH11231에서 미국 에너지 국의 환경 연구.