Method Article
Un progetto di microplotcrolo per la ricerca di 15N tracciante è descritto per ospitare più eventi di campionamento di piante e terreni in stagione. Per l'analisi di 15N, vengono messe avanti le procedure di raccolta e lavorazione dei campioni di suolo e impianti, compresi i protocolli di macinazione e pesatura.
Molti studi sui fertilizzanti azotati valutano l'effetto complessivo di un trattamento sulle misurazioni di fine stagione, come la resa del grano o le perdite cumulative n. Un approccio isotopo stabile è necessario per seguire e quantificare il destino del fertilizzante derivato N (FDN) attraverso il sistema di coltura del suolo. Lo scopo di questo documento è quello di descrivere un progetto di ricerca di piccole trame che utilizza microtravi arricchite non confinate 15N per eventi multipli di campionamento del suolo e dell'impianto in due stagioni di crescita e fornire protocolli di raccolta, movimentazione e lavorazione dei campioni per l'analisi totale di 15N. I metodi sono stati dimostrati utilizzando uno studio replicato dal Minnesota centro-meridionale piantato al mais(zea mays L.). Ogni trattamento consisteva in sei file di mais (76 cm a spaziatura righe) lunghi 15,2 m con un microplot (2,4 m x 3,8 m) incorporato ad un'estremità. L'urea di grado fertilizzante è stata applicata a 135 kg N∙ha-1 durante la semina, mentre la microtrama ha ricevuto urea arricchita a 5 atomi % 15N. Campioni di suolo e piante sono stati prelevati più volte durante la stagione di crescita, facendo attenzione a ridurre al minimo l'uso di strumenti separati e separando fisicamente campioni non arricchiti e arricchiti durante tutte le procedure. I campioni di suolo e piante sono stati essiccati, macinati per passare attraverso uno schermo da 2 mm, e poi macinati ad una consistenza simile alla farina utilizzando un mulino a rulli. Gli studi di tracciamento richiedono una pianificazione aggiuntiva, il tempo di elaborazione del campione e il lavoro manuale e comportano costi più elevati per 15N materiali arricchiti e analisi dei campioni rispetto agli studi N tradizionali. Tuttavia, utilizzando l'approccio del bilancio di massa, gli studi di tracciamento con più eventi di campionamento in-season consentono al ricercatore di stimare la distribuzione FDN attraverso il sistema di coltura del suolo e di stimare FDN non contabilizzato dal sistema.
L'uso di azoto fertilizzante (N) è essenziale in agricoltura per soddisfare le esigenze alimentari, fibre, mangimi e di carburante di una popolazione globale in crescita, ma le perdite n dai campi agricoli possono avere un impatto negativo sulla qualità ambientale. Poiché N subisce molte trasformazioni nel sistema di coltura del suolo, una migliore comprensione del ciclo N, dell'utilizzo delle colture e del destino complessivo dei fertilizzanti N sono necessari per migliorare le pratiche di gestione che promuovono l'efficienza dell'uso N e riducono al minimo le perdite ambientali. Gli studi tradizionali sui fertilizzanti N si concentrano principalmente sull'effetto di un trattamento sulle misurazioni di fine stagione come la resa delle colture, l'assorbimento di N rispetto al tasso N applicato (efficienza apparente dell'uso del fertilizzante) e il suolo residuo N. Mentre questi studi quantificano gli ingressi, le uscite e le efficienze del sistema complessivo N, non possono identificare né quantificare N nel sistema di coltura del suolo derivato da fonti di fertilizzanti o dal suolo. Un approccio diverso che utilizza isotopi stabili deve essere utilizzato per tracciare e quantificare il destino dei fertilizzanti derivati da N (FDN) nel sistema di coltura del suolo.
L'azoto ha due isotopi stabili, 14N e 15N, che si verificano in natura ad un rapporto relativamente costante di 272:1 per 14N/15N1 (concentrazione di 0,366 atom % 15N o 3600 ppm 15N2,3). L'aggiunta di 15fertilizzanti arricchiti N aumenta il totale di 15N contenuto del sistema del suolo. Come 15N arricchito miscele di fertilizzante con terreno non arricchito N, il cambiamento misurato di 14N /15N rapporto permette ai ricercatori di tracciare FDN nel profilo del suolo e nel raccolto3,4. Un bilancio di massa può essere calcolato misurando la quantità totale di 15N tracciante nel sistema e ciascuna delle sue parti2. Poiché 15fertilizzanti arricchiti N sono significativamente più costosi dei fertilizzanti convenzionali, 15microtrafele arricchite n sono spesso incorporate all'interno dei lotti di trattamento. Lo scopo di questo documento sui metodi è quello di descrivere un progetto di ricerca di piccole trame che utilizza microplots per più eventi di campionamento del suolo e delle piante in stagione per il mais(ea mays L.) e di presentare protocolli per la preparazione di campioni di piante e suolo per un totale di 15N analisi. Questi risultati possono quindi essere utilizzati per stimare l'efficienza dell'uso di N fertilizzanti e creare un bilancio N parziale che tiene contabilizzato l'FDN nel suolo sfuso e nel raccolto.
1. Descrizione del sito sul campo
NOTA: quando si eseguono 15N prove sul campo tracciante, i siti selezionati dovrebbero ridurre al minimo le variazioni dovute al suolo, alla topografia e alle caratteristiche fisiche5. La contaminazione incrociata può verificarsi in seguito al movimento laterale del suolo a causa della traslocazione di pendenze, vento o acqua, o di una lavorazione mentre la distribuzione verticale del suolo N può essere influenzata dal flusso dell'acqua del sottosuolo e dal drenaggio delle piastrelle6.
2. Progettazione della trama
3. Precauzioni per campioni di suolo e piante
4. Preparazione e applicazione di fertilizzanti arricchiti da 15N
5. Elaborazione dei campioni di campo: biomassa del mais in superficie
6. Elaborazione del campione di campo: suolo
7. Lavorazione dei campioni di laboratorio: macinare i campioni di terreno e piante
8. Pesare campioni di piante e suolo per l'analisi totale di N e 15N
9. Calcoli
I risultati presentati in questo articolo provengono da un sito sul campo istituito nel 2015 presso il Southern Outreach and Research Center dell'Università del Minnesota situato vicino a Waseca, MN. Il sito è stato gestito come una rotazione di soia di mais [Glycine max (L.) Merr] prima del 2015, ma è stato gestito come una rotazione mais-mais durante le stagioni di crescita 2015 e 2016. Il terreno era un complesso di loam di argilla Nicollet (fine-loamy, misto, superattivo, mesic Aquic Hapludolls)-Webster (fine-loamy, misto, superattivo, mesico Typic Endoaquolls). La fertilità del suolo è stata gestita secondo le linee guida universitarie ad eccezione di N18. Diversi trattamenti con fertilizzanti N sono stati organizzati in un progetto di blocco completo casuale con quattro repliche, ma solo il tasso di 135 kg N∙ha-1 applicato come urea al impianto è presentato in questo documento. La densità di massa del suolo è stata misurata al centro da 0 a 15, da 15 a 30, da 30 a 60, da 60 a 90, e da 60 a 120 cm di profondità da due campioni profondi da 5 cm per replica utilizzando il metodo di base intatto19. La densità di massa è stata mediata entro la profondità tra le repliche e si presuppone che sia costante in tutto il campo. L'impostazione della trama e i campioni di piante e suolo sono stati raccolti ed elaborati come descritto nella sezione del protocollo.
La biomassa totale (FDN e SDN) è aumentata con ogni evento di campionamento successivo nel corso della prima stagione di crescita (Figura 4). La concentrazione di N derivata da fertilizzante è stata la più alta all'inizio della stagione di crescita, che rappresentava il 44 % per cento (errore medio e standard) della biomassa totale fuori terra N a V8 e è diminuita a ogni periodo di campionamento successivo (Figura 4A). Tuttavia, SDN è stata costantemente la più grande frazione di biomassa sopraterra N che illustra l'importanza dell'offerta di suolo N per una crescita ottimale del mais. Alla maturità fisiologica nel primo anno, il 27 x 1% della biomassa sopranbosconina N era dovuto all'FDN con proporzioni simili in grani, stover e frazioni di pannocchia (Figura 4B). Alla maturità fisiologica nel secondo anno, solo il 2 x 0,1% del primo anno di FDN è stato recuperato nella biomassa fuori terra con 1,6 x 0,2 kg di FDN ha-1 del primo anno esportato nel grano (Figura 4A).
Il budget FDN del raccolto del suolo è utile per quantificare il ciclo FDN all'interno del sistema nel tempo. Entro 8 d dall'applicazione del fertilizzante, la maggior parte dell'FDN era nella parte superiore di 15 cm del profilo del suolo, come previsto (Figura 5). Tuttavia, 22,2 x 4,4 kg N ha-1 si erano già spostati nelle profondità più profonde, mentre il 4 x 10% dell'FDN non era stato contabilizzato. Unaccounted-for FDN è probabilmente guidato principalmente da n meccanismi di perdita tra cui lisciviazione, denitrificazione e volatilità che spostano FDN al di sotto delle profondità di campionamento del suolo o rimuovono completamente l'FDN dal sistema. A V8 e R1, l'FDN non contabilizzato è aumentato a 60,4 x 4,7 kg N ha-1 in media mentre il suolo N (0-15 cm) era in media 31,6 x 6,8 kg Nha -1. La rapida crescita del mais e l'elevata domanda di N da V8 a R1 hanno portato ad un aumento di 19,0 x 4,4 kg FDN ha-1 nella biomassa vegetale sotterranea rispecchiando la riduzione di 17,7 x 5,2 kg di FDNha -1 dalle profondità del suolo da 15 a 60 cm. Le condizioni di temperatura e umidità del suolo tra queste fasi di sviluppo del mais tendono a favorire la crescita microbica con conseguente rapido ricambio di residui organici e riutilizzo di N mineralizzato. Questi risultati suggeriscono che le radici di mais estratte in FDN inorganico dalle profondità da 15 a 60 cm, mentre l'FDN nella profondità da 0 a 15 cm è stata principalmente pedalata tra la materia organica del suolo e le frazioni microbiche. Per convalidare questa ipotesi è necessaria un'ulteriore analisi isotopica delle piscine N inorganiche e organiche del suolo e di una maggiore comprensione delle dinamiche di ciclismo FDN10. Per l'anno successivo alla vendemmia 1, il 59 x 2% dell'FDN originale non è stato contabilizzato, mentre 18,1 kg FDN ha-1 era tra i primi 30 cm del terreno (Figura 5) e 22,1 x 2,3 kg FDN ha-1 è stato esportato nel grano (Figura 4B). L'efficienza di utilizzo del fertilizzante 15N era del 24% (Equazione 7) ed è alla fine delle misure F15NUE comunemente segnalate (25-45%) riportato da altri studi20. Anche se le attrezzature sono state accuratamente pulite tra ogni campione, le misure inferiori di F15NUE dello studio potrebbero essere un artefatto di diluizione del campione arricchito elaborando campioni arricchiti in ordine di arricchimento più basso o più alto previsto. La quantità di FDN nei primi 30 cm è raddoppiata (36,0 x 5,2 kg FDN ha-1) dall'anno 1 post-raccolta all'anno 2 pre-impianto a causa della parziale ripartizione dei residui dal calo precedente, ma per l'anno successivo al raccolto 2 solo 17,3 kg - fDN ha-1 è stato ancora trovato all'interno del sistema suolo-corn (Figura 5). Questo studio indica che alla fine del primo e del secondo anno, solo il 41 e il 29%, rispettivamente del primo anno di FDN, erano contabilizzati all'interno del sistema suolo-mais (compreso il FDN esportato nel grano) mentre il resto era perso per l'ambiente o lisciviato al di sotto della profondità di campionamento del suolo di 90 cm.
I risultati spuri possono essere ottenuti quando i campioni sono contaminati in modo incrociato che interessano i calcoli di Nf,FDN e SDN. Si supponga, ad esempio, che un campione di piante arricchito di 15N con un arricchimento effettivo di 3.000 atom % 15N sia contaminato da materiale non arricchito che diluisce la concentrazione di 15N a 2.500 atom % 15N. Inoltre, si supponga che Total NPlant sia di 100 kg Nha -1, l'artomo % 15N di arricchimento del fertilizzante è stato di 5.000, e l'arricchimento dell'atomo % 15N del campione di piante non arricchite è stato 0,366. Il campione di piante arricchite 15N N Nf sarebbe ridotto da 0,568 (effettivo) a 0,461 (campione contaminato) sottovalutando il vero FDN di 10,7 kg Nha -1. Le sovrastime di FDN possono verificarsi quando i campioni con basso arricchimento di 15N sono contaminati da ulteriori 15N. Pertanto, è necessario prestare estrema attenzione in tutte le fasi di raccolta e lavorazione dei campioni per ridurre al minimo la contaminazione del campione, ma soprattutto quando le masse campione sono ridotte (ad esempio, le procedure di macinazione e pesatura).
Figura 1: disegno del grafico per il plot e il microplotto di trattamento. La figura illustra le dimensioni e i posizionamenti relativi delle aree di confine, dell'area di campionamento non arricchita, dell'area di raccolta e dell'area di microplotto all'interno del ploto di trattamento. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Diagramma di campionamento dell'impianto di microplotto e del suolo. La figura illustra le relative posizioni di campionamento delle piante e del suolo in ogni fase di campionamento che evita di alterare i modelli di assorbimento del mais N delle piante di mais campionate successivamente. Gli eventi di campionamento si sono verificati 8 giorni dopo l'applicazione del fertilizzante arricchito 15N, nelle fasi di sviluppo fisiologico del mais V8 e R1, alla maturità fisiologica nell'anno 15N di applicazione dei fertilizzanti arricchiti (PMY1) e l'anno successivo (PMY2) e prima di piantare il secondo anno (PPY2). Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Rappresentazione cronologica della gestione dei microtraci. (A) Sciogliere 15N di urea arricchita in 2 L di acqua deionizzata e spruzzare sul microplotto durante la semina. (B) Raccogliere e tagliare un campione composito di pianta di mais di sei mais dall'interno dell'area di campionamento (15N non arricchita) e un campione composito di pianta di mais di sei mais di 15N arricchito ai tempi di campionamento predeterminati. (C) Dopo la raccolta di campioni a maturità fisiologica, rimuovere tutta la biomassa residua all'altra dall'interno del microplotto. (D) Dopo la raccolta, rastrellare la biomassa del mais non arricchita proveniente dall'area del microlotto. Chip e riapplicare il microplotto mais sopra la biomassa del suolo all'area del microplotto. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4: Esempio di biomassa sotterranea N partizionata in n (FDN) derivata dal fertilizzante e frazioni N derivate dal suolo (SDN). La biomassa totale fuori terra N è stata suddivisa nelle sue singole fonti di FDN (colore solido) e SDN (colore hash) in (A) e (B). Le barre di errore rappresentano l'errore standard della media. (A) La biomassa N di superficie è stata misurata nelle fasi di sviluppo fisiologico del mais V8 e R1 e alla maturità fisiologica nell'anno di applicazione di 15fertilizzanti N (PMY1) e l'anno successivo all'applicazione di fertilizzanti 15N (PMY2). Il valore sopra ogni colonna rappresenta la percentuale del valore N totale che era FDN. (B) La biomassa N di superficie misurata a PMY1 e PMY2 è mostrata nelle sue singole parti di pannocchia (solo anno 1), stover (stalk e foglie; include pannocchia per PMY2) e grano per FDN e SDN. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 5: Esempio del bilancio N derivato da fertilizzante del suolo-mais. La massa di FDN recuperato in superficie (Abvgd) biomassa del mais e a varie profondità di campionamento del suolo è segnalato per sei eventi di campionamento in due stagioni di crescita. Gli eventi di campionamento si sono verificati 8 giorni dopo l'applicazione di fertilizzanti arricchiti 15N (PA), alle fasi di sviluppo fisiologico del mais V8 e R1, alla maturità fisiologica nell'anno 15N di applicazione di fertilizzante arricchito (PMY1) e l'anno successivo (PMY2), e prima di piantare il secondo anno (PPY2). La differenza tra il tasso di fertilizzante applicato (135 kg N ha-1) e la massa di FDN recuperata nelle porzioni suolo-mais è la frazione FDN non contabilizzata. La massa totale di FDN per PPY2 e PMY2 era di 113 kg FDN ha-1 perché 22 kg FDN ha-1 è stato esportato dal sistema del terreno-mais come grano del primo anno. Le barre di errore rappresentano l'errore standard della media. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
La ricerca sugli isotopi stabili è uno strumento utile per tracciare e quantificare l'FDN attraverso il sistema di coltura del suolo. Tuttavia, ci sono tre ipotesi principali associate a studi traccianti N che, se violati, possono invalidare le conclusioni tratte dall'utilizzo di questa metodologia. Essi sono 1) il tracciante è uniformemente distribuito in tutto il sistema, 2) processi nell'ambito dello studio si verificano alle stesse tariffe, e 3) N lasciando il 15N piscina arricchita non restituisce3. Poiché questo studio è interessato alla distribuzione dell'FDN totale in tutto il sistema di coltura del suolo, le ipotesi 2 e 3 sono di minima preoccupazione21.
L'alto costo del materiale arricchito 15N limita generalmente le dimensioni di 15n studi tracciari. Pertanto, prima di avviare uno studio di tracciamento N, il ricercatore deve pianificare attentamente gli obiettivi del progetto di ricerca considerando: il numero di eventi di campionamento, la durata dello studio (giorni fino ad anni), il tasso di applicazione di N fertilizzanti e la concentrazione di arricchimento di 15N necessaria per misurare le differenze dall'abbondanza naturale (0,366 atomo %) dopo 15N diluizione di fertilizzante arricchito dal suolo sfuso2. I livelli di arricchimento 15N di uso comune e i tassi di applicazione sono riportati per diversi tipi di ricerca agronomica in Ref. 2. Dopo aver determinato gli obiettivi dello studio, il microplotto deve essere sufficientemente grande per accogliere il campionamento del suolo e delle piante ed evitare effetti di bordo. La struttura del grafico descritta in questo protocollo utilizza un grafico non delimitato che richiede l'impiego di aree di confine non campionate6. La concentrazione di 15N nelle zone di confine è diluita dal flusso di massa attraverso il confine del microplotto e dall'assorbimento di N dall'esterno del microplotto da radici laterali di mais che crescono nelle file 1 e 6. I terreni confinati, in cui le barriere fisiche sono spinte nel suolo, non richiedono zone di confine, ma richiedono ulteriori lavori durante la creazione di microplote e possono limitare le operazioni sul campo di routine6. I riferimenti 3, 6, 22-25 forniscono ulteriori indicazioni sulla selezione delle dimensioni delle microtrame, sulla larghezza dei bordi e quando i grafici confinati o non confinati possono essere più appropriati.
Lo schema di campionamento delle piante e del suolo di questo studio è progettato per consentire eventi di campionamento multipli per due stagioni di crescita consecutive. I campioni di piante e suolo di inizio stagione vengono prelevati vicino ai bordi esterni del microplotto. Ogni evento di campionamento successivo si avvicina al centro del microplotto per evitare di campionare aree precedentemente campionate. Almeno due piante di mais separano ogni pianta campionata per ridurre al minimo i cambiamenti nello sviluppo fisiologico del mais. Una sfida con la tecnica di campionamento del suolo di questo studio è che il metodo di campionamento del nucleo del suolo potrebbe non intercettare con precisione la distribuzione eterogenea di 15N nel profilo del suolo3. La variabilità spaziale del totale del suolo N è elevata, con un coefficiente stimato di variazione del 15%3. Lo scavo completo della microtrama migliorerebbe 15N quantificazione, ma richiederebbe l'elaborazione di volumi significativi di suolo e il campionamento dei limiti a un singolo evento3 che non è in linea con gli obiettivi di questo studio. La suddivisione del microplotto in unità di campionamento più piccole consente più eventi di scavo, ma può aumentare le dimensioni necessarie per garantire che le unità non campionate non siano influenzate dalle modifiche apportate alla calotta del raccolto e alla dinamica dell'acqua del suolo. Nonostante la potenziale riduzione della precisione, molti studi utilizzano la tecnica del nucleo del suolo per microplotti n. 1 m29,22,26,27,28. La precisione del campione può essere aumentata aumentando il numero di nuclei di suolo raccolti e composti per microplot utilizzando la seguente formula13:
n - (2)(CV2)/(d2)
dove n è il numero di nuclei del suolo, il valore di normal variate standardizzato per il livello alfa corrispondente (1,96 per 0,05 e 1,65 per 0,10), il CV è il coefficiente di variazione e d è il margine di errore nella media del grafico (come decimale). Sulla base di questa formula, gli autori si aspettano che 15 core per microtrama stimerebbero il totale di N al 7,6% sul 95% dei lotti (n - 15; N. 1,96; CV - 15%; d - 0.076). Il referto 25 ha utilizzato un numero simile di nuclei, ma ha suddiviso il microplotto in 32 unità di campionamento raccogliendo campioni di piante e terreni da quattro unità ad ogni evento di campionamento.
Altri hanno dimostrato che i dati del microplotto possono essere estrapolati all'intero tracciato29. Tuttavia, affinché questa ipotesi sia valida, il complotto di trattamento e il microplotto devono essere gestiti in modo analogo. Se possibile, il fertilizzante N deve essere applicato nelle stesse forme chimiche e fisiche (ad esempio, l'urea disciolta nell'acqua) in quanto queste proprietà influiscono sulle dinamiche fertilizzante-suolo, compresi i meccanismi di perdita N, l'immobilizzazione e la disponibilità di microbi e piante del suolo3.
Il metodo di macinazione del barattolo a rulli descritto in questo protocollo è in grado di polverizzare grandi volumi di campioni di piante e suolo, ideale per garantire un campione rappresentativo omogeneo. Tuttavia, la tecnica richiede un notevole lavoro manuale e tempo per caricare, scaricare, rotolare e pulire i vasi a rullo. La lavorazione del campione è limitata dal numero disponibile di barattoli a rulli, dalla capacità dell'unità nastro trasportatore e dalle dimensioni del bagno acido. Le fiale di macinazione commerciali possono essere un'alternativa ai vasetti a rulli, ma possono limitare il volume dei campioni di piante e suolo trasformati. Possono essere costruite fiale di macinazione monouso fatte in laboratorio che potenzialmente fungono sia da contenitore di macinazione che come contenitore di stoccaggio del campione. La considerazione principale di uno di questi metodi di macinazione è quella di ridurre al minimo la contaminazione incrociata tra i campioni.
Infine, poiché il materiale fertilizzante arricchito 15N è costoso, 15N arricchito sopraterra e campioni di suolo possono essere conservati e omogeneizzati per l'uso in studi futuri. Questi prodotti possono essere particolarmente utili quando si studia la decomposizione dei residui, il potenziale di mineralizzazione o altri processi di ciclo dei nutrienti21.
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Gli autori riconoscono il sostegno del Minnesota Corn Research & Promotion Council, della Hueg-Harrison Fellowship e della Borsa di studio Discovery, Research and InnoVation Economy (MnDRIVE) del Minnesota.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
20 mL scintillation vial | ANY; Fisher Scientific is one example | 0334172C | |
250 mL borosilicate glass bottle | QORPAK | 264047 | |
48-well plate | EA Consumables | E2063 | |
96-well plate | EA Consumables | E2079 | |
Cloth parts bag (30x50 cm) | ANY | NA | For corn ears |
CO2 Backpack Sprayer | ANY; Bellspray Inc is one example | Model T | |
Coin envelop (6.4x10.8 cm) | ANY; ULINE is one example | S-6285 | For 2-mm ground plant samples |
Corn chipper | ANY; DR Chipper Shredder is one example | SKU:CS23030BMN0 | For chipping corn biomass |
Corn seed | ANY | NA | Hybrid appropriate to the region |
Disposable shoe cover | ANY; Boardwalk is one example | BWK00031L | |
Ethanol 200 Proof | ANY; Decon Laboratories Inc. is one example | 2701TP | |
Fabric bags with drawstring (90x60 cm) | ANY | NA | For plant sample collection |
Fertilizer Urea (46-0-0) | ANY | NA | ~0.366 atom % 15N |
Hand rake | ANY; Fastenal Company is one example | 5098-63-107 | |
Hand sickle | ANY; Home Depot is one example | NJP150 | For plant sample collection |
Hand-held soil probe | ANY; AMS is one example | 401.01 | |
Hydraulic soil probe | ANY; Giddings is one example | GSPS | |
Hydrochloric acid, 12N | Ricca Chemical | R37800001A | |
Jar mill | ANY; Cole-Parmer is one example | SI-04172-50 | |
Laboratory Mill | Perten | 3610 | For grinding grain |
Microbalance accurate to four decimal places | ANY; Mettler Toledo is one example | XPR2 | |
N95 Particulate Filtering Facepiece Respirator | ANY, ULINE is one example | S-9632 | |
Neoprene or butyl rubber gloves | ANY | NA | For working in HCl acid bath |
Paper hardware bags (13.3x8.7x27.8 cm) | ANY; ULINE is one example | S-8530 | For soil samples and corn grain |
Plant grinder | ANY; Thomas Wiley Model 4 Mill is one example | 1188Y47-TS | For grinding chipped corn biomass to 2-mm particles |
Plastic tags | ULINE | S-5544Y-PW | For labeling fabric bags and microplot stalk bundles |
Sodium hydroxide pellets, ACS | Spectrum Chemical | SPCM-S1295-07 | |
Soil grinder | ANY; AGVISE stainless steel grinder with motor is one example | NA | For grinding soil to pass through a 2-mm sieve |
Tin capsule 5x9 mm | Costech Analytical Technologies Inc. | 041061 | |
Tin capsule 9x10 mm | Costech Analytical Technologies Inc. | 041073 | |
Urea (46-0-0) | MilliporeSigma | 490970 | 10 atom % 15N |
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