* These authors contributed equally
פונקציות תא-אוטונומי של גנים במוח יכולים להילמד על ידי גרימת הפסד או רווח של פונקציה באוכלוסיות דלילה של תאים. כאן, אנו מתארים בתוך הרחם אלקטרופורציה לספק Cre recombinase לאוכלוסיות דליל לפתח נוירונים בקליפת המוח עם הגנים floxed לגרום לאובדן פונקציה בתוך vivo.
תא-אוטונומי פונקציות עצביים של גנים יכולים להתגלות על ידי גרימת הפסד או רווח של פונקציה של גנים באוכלוסיה דלילים וקטנים של נוירונים. כדי לעשות זאת מחייבת יצירת פסיפס שבו הם נוירונים עם הפסד או רווח של תפקוד הגן מוקף ברקמה גנטית בשלוות נפש. כאן, אנו משלבים את המערכת רקומבינציה Cre-לקס עם אלקטרופורציה בתוך הרחם על מנת ליצור פסיפס רקמת המוח יכול לשמש כדי לחקור את תפקוד התא-אוטונומי גנים בנוירונים. דנ א בונה (זמין באמצעות מאגרים), קידוד עבור תווית פלורסנט ו Cre recombinase, יוכנסו פיתוח נוירונים בקליפת המוח, המכיל גנים תמר מוקף עם אתרי loxP במוחם של עוברי העכבר באמצעות בתוך הרחם אלקטרופורציה. בנוסף, אנו מתארים עיבודים שונים בשיטה אלקטרופורציה בתוך הרחם להגביר שרידות ו הפארמצבטית. שיטה זו כרוכה גם הקמה של כייל עבור בתיווך Cre רקומבינציה אוכלוסיה דלילה או צפופה של נוירונים. ההכנות היסטולוגית של רקמת המוח שכותרתו אינם דורשים (אך ניתן להתאים) אימונוהיסטוכימיה. המבנה משמש ערובה זה fluorescently שכותרתו נוירונים לשאת הגן של יצורים recombinase. ההכנות היסטולוגית מאפשרים ניתוח מורפולוגי של נוירונים באמצעות הדמיה קונאפוקלית של דנדריטים, עצב ובשבילים, הדנדריטים. כי הפסד או רווח של פונקציה זו מושגת ברקמת פסיפס דליל, שיטה זו מאפשרת למידת הצורך תא-אוטונומי תנאי הכרחי של ג'ין מוצרים ויוו.
יצירת פסיפס גנטי היא פרדיגמה ניסיוני הקלאסי להבנת הפונקציה של הגן עניין. כדי לקבוע אם הגן הוא הכרחי עבור הפנוטיפ הסלולר, הגישה הפשוטה ביותר היא הגורם לאובדן של הפונקציה של הגן בכל האורגניזם (למשל נוקאאוט). עם זאת, כדי לקבוע אם גן דרושה במיוחד סוג תא מסוים, נוקאאוט של הגן בכל האורגניזם אינה בגישה חוקי. במקום זאת, דרושה שיטה וזה יגרום אובדן התפקוד של גנים בתא נתון בזמן זה הוא מוקף ברקמה wildtype (דהיינו גנטית בשלוות נפש) – במילים אחרות, יצירת פסיפס רקמות. אם התא מוטציה מראה הפנוטיפ המוטנטי, אבל התאים המקיפים אותם wildtype לא, הפונקציות ג'ין באופן אוטונומי-תא ניתוח של רקמות פסיפס, שבה מוטציה בתאים מוקפים רקמה wildtype, אידיאלי להבנת פונקציות התא האוטונומי של גנים, במיוחד במוח שבו נוירונים עכשיו, דונלד יוצרים מחוברות רשת ענפה של רקמות.
כמה צורות של רקמת המוח פסיפס סיפקו עוצמה מודלים לחקור פונקציות התא האוטונומי של גנים. התמקדו ב השתלת עצביים1,2,פסיפס X-linked נקבה3,4, ו-5,פסיפס סומאטית אנדוגני6 נמשכים שלהם מסקנות בהתבסס על פסיפס רקמת המוח. מחיקה מותנה של הגן דרך מערכת רקומבינציה Cre-סלומון היא שיטה זה לוקח את מלוא היתרונות של הזמינות הגדולה של קווים העכבר מהונדס. בשיטה זו, שני אתרים loxP הם הציגו משני צדדיו רצף הנדרש של הגן (כמו אקסון), להשאירו ולצדו אתרי loxP כי שניהם מול באותו כיוון ("floxed"). Cre recombinase excises הרצף בין אתרי loxP7. בתיווך Cre רקומבינציה יכולה להיות מושגת על ידי עכברים floxed מעבר לקו אחר העכבר, לבטא Cre recombinase יחד עם סמן פלורסנט בקבוצת משנה של תאים ("קו כתב Cre"). זה הוכח במגוון דרכים כדי לחשוף את הפונקציות של גנים של קבוצות משנה של תאים, כמו נוירונים סינאפסות או האסטרוציטים8. Cre כתב שורות יכול לבטא CreERT2 כדי לאפשר בתיווך Cre רקומבינציה להיות סמים-inducible (יחיד-נוירון תיוג עם הסתרה inducible בתיווך Cre, או חלקלק)9. באסטרטגיה אחרת נקרא ניתוח פסיפס עם כפול סמנים (גברת)10,11, בתיווך Cre רקומבינציה interchromosomal מאפשר מוטציה homozygous להיווצר לצד משפחתית ולא משפחתית הטרוזיגוטיים רקמות. על הגישות הללו קו חדש של עכברים צריך להיות מיוצר בכל פעם עבור כל מועמד ג'ין או סוג של הסלולר זה נבדק. לחלופין, Cre recombinase יכול להיות מוצג נוצרו אחרי הלידה דרך iontophoresis12 או ויראלי וקטורים (כגון וירוסים adeno-הקשורים13 או lentiviruses14 נושא הסלולר סוג ספציפי היזמים). אסטרטגיה זו יוצרת חזקה ופוסט תיוג. כדי להתמקד בפיתוח נוירונים בקליפת המוח מוחי בדלילות prenatally, אסטרטגיית האידיאלי הוא בתוך הרחם אלקטרופורציה של Cre recombinase עם סמן פלורסנט.
בנוסף שילוב רקומבינציה Cre-סלומון דרך בתוך הרחם אלקטרופורציה לייצר פסיפס רקמות ויוו, אנו מציגים מספר עיבודים להליכים אחרים שפורסמו פרוטוקולים15,16, 17,18,19,20,21. אנו מספקים מידע כדי לשפר את ההצלחה אצל נקבות בהריון-מתוזמן הרבייה. אנחנו גם מתאר שתי אסטרטגיות שלנו להציג דלילים ובהירים תיוג של נוירונים בתוך הרקמה קורטיקלית: אסטרטגיה אחת היא titrate את הרמות של קידוד לבנות יחידה Cre recombinase, סמן פלורסנט22. אסטרטגיה נוספת היא להשתמש במערכת "סופרנובה", תוכנן במיוחד עם פרמטרים אלה המוח23,24. בנוסף, אנו מציעים שיפורים על הפקת פיפטות microinjection עקבית, העבודה הניתוח אלקטרופורציה בתוך הרחם . בסופו של דבר, אנחנו חלוקה לרמות בשלבים קריטיים הכנה היסטולוגית מפושט המאפשר הניתוח של הדנדריטים, דנדריטים, עצב ובשבילים, מבלי להכתים נוספת או אימונוהיסטוכימיה.
השיטות המתוארות כאן אושרו על ידי חיה על עצמך ועל שימוש הוועדה (ACUC) של ג'יימס מדיסון אוניברסיטת, בהתאמה, תאימות עם כל הרלוונטיים ההנחיות הרגולטוריות ומוסדיים.
1. עכבר הקמה
2. הגדרת דנ א
3. הגדרת פיפטה
4. בתוך הרחם אלקטרופורציה
5. היסטולוגית לקראת זריחה מיקרוסקופ
הערה: פרוטוקול זה היסטולוגיה ממוטבת עבור הכנת הרקמה מבעלי חיים שגילם יום לאחר הלידה (P) 13 שהיו electroporated בתוך הרחם. כדי להכין טישו מבעלי חיים צעירים לאחר הלידה (P0-P13), מומלץ לעקוב אחר כל השלבים (כולל זלוף transcardial), למרות המוח צריך להיות מוטבעת אגר לפני הכנת מקטעים (שלב 5.9). אפילו עשוי להיות מוכן רקמות מעוברים בתוך 1-2 ימים לאחר אלקטרופורציה, בשיטות שתוארו קודם לכן18,20.
הסינגל לבנות GFP. Cre (ראה רשימת חומרים) היה electroporated-E15.5, דמיינו את P14. בהתאם את הריכוז של הבונה את עוצמת הזריקה, תוצאה של דלילה או צפופה ניתן להשיג22,26. לדוגמה, הזרקה של 1 µL של 2 מ"ג/מ"ל GFP. תוצאות Cre בהתפלגות דלילה של תאים עם תוויות, אשר יכול להיות בהיר (איור 1 א'), המותאמות לשפות אחרות של שכבה II/III (איור 1B). מכיוון הרקמה הוא בעובי 100 מיקרומטר, רוב ובשבילים דנדריטים נשמרים (איור 1C). יכול להיות שנצפו הדנדריטים-הגדלה גבוהה (60 X; איור 1D). הזרקה של µL 1.5-ריכוז זהה תוצאות מאוד צפוף תיוג (איור 2 א) בשכבה II/III (איור 2B), אשר יכול להיות תת אופטימלית שכן קשה לעקוב אחר המקור של neurites הדנדריטים (איור 2C). עם זאת, עדיין אפשר תמונה נוירון (איור דו-ממדי) ותהליכים שלה (איור 2E) על-ידי בחירת התא מואר בפריפריה של האזור עם תוויות (איור דו-ממדי).
בסופו של דבר, זה אפשרי להגדיל את הבהירות של נוירונים תוך שמירה על התפלגות דלילה של תאים עם תוויות. כאן, סופרנובה-GFP (ראה רשימת חומרים) היה electroporated-E15.5, דמיינו-P23. שימו לב, המבוסס על תצפיות של רקמת המוח שצולמו כמחנכת בגילאים שונים, לא נראה שיש השפעה של גיל על הבהירות של כל המבנים פלורסנט המשמש כאן24,23,26. הזרקה של µL 1 של תערובת המכילה 1 מ"ג/מ"ל Sn-GFP (CAG-loxP-stop-loxP-EGFP-ires-tTA-WPRE) ו- µg/mL 10 טרה-Cre תוצאות בהתפלגות דליל בעיקר בהיר תאים (איור 3 א) בשכבה II/III (איור 3B). ניתן לאבחן תהליכים דנדריטי ואת עצב (איור 3B) ושל הדנדריטים (איור 3C). מניסיוננו, מיקוד עם גם מבנה יחיד כגון ה-GFP. Cre או עם "סופרנובה" בונה reproducibly תניב ביטוי לפחות 75% של electroporated עוברי.
איור 1: Sparse וביטוי בהיר לאחר בתוך הרחם אלקטרופורציה יחיד לבנות המכיל recombinase GFP ו- Cre. (א) נמוך ההגדלה (4x) זריחה micrograph של קליפת-P23, לאחר אלקטרופורציה ב E15.5. (B) ההגדלה בינוני (20 X) micrograph זריחה של כתם גרעיני דאפי, חשיפת קורטיקלית למינציה (שכבות אני II/III, IV, שכבות עמוק עד IV). (ג) ההגדלה בינוני (20 X) micrograph זריחה של נוירון בודד. (ד) גבוהה ההגדלה (60 X) micrograph זריחה של הדנדריטים. גודל ברים = 200 מיקרומטר (א); 100 מיקרומטר (B, C); 5 מיקרומטר (D). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 2: Dense וביטוי בהיר לאחר בתוך הרחם אלקטרופורציה יחיד לבנות המכיל recombinase GFP ו- Cre. (א) נמוך ההגדלה (4x) זריחה micrograph של קליפת-P14, לאחר אלקטרופורציה ב E15.5. (B) ההגדלה בינוני (20 X) micrograph זריחה של כתם גרעיני דאפי, חשיפת קורטיקלית למינציה (שכבות אני II/III, IV, שכבות עמוק עד IV). (ג) אמצעי ההגדלה (20 X) micrograph זריחה של נוירונים באזור של תיוג הצפוף. (ד) micrograph קרינה פלואורסצנטית ההגדלה בינוני (20 X) של נוירונים נלקח בפריפריה של האזור של תיוג הצפוף. (E) גבוהה ההגדלה (60 X) micrograph זריחה של הדנדריטים. גודל ברים = 200 מיקרומטר (א); 100 מיקרומטר (B, C, D); 5 מיקרומטר (E). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 3: Sparse וביטוי בהיר אחרי אלקטרופורציה בתוך הרחם עם סופרנובה-GFP בונה המכיל recombinase GFP ו- Cre. (א) נמוך ההגדלה (4x) זריחה micrograph של קליפת-P14, לאחר אלקטרופורציה ב E15.5. (B) ההגדלה בינוני (20 X) micrograph זריחה של כתם גרעיני דאפי, חשיפת קורטיקלית למינציה (שכבות אני II/III, IV, שכבות עמוק עד IV). (ג) ההגדלה בינוני (20 X) micrograph זריחה של נוירון בודד. (ד) גבוהה ההגדלה (60 X) micrograph זריחה של הדנדריטים. גודל ברים = 200 מיקרומטר (א); 100 מיקרומטר (B, C); 5 מיקרומטר (D). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
כאן, אנחנו מציגים את השילוב של אלקטרופורציה בתוך הרחם עם Cre recombinase בעכברים floxed כדי ליצור פסיפס רקמת המוח. היתרון בגישה זו הוא כי קו עכבר חדש לא צריך להיווצר בכל פעם תת סוג הסלולר שונים כדי להיות ממוקד: בתוך הרחם אלקטרופורציה יכול לשמש למטרה נוירונים סינאפסות, נוירונים מעכבות או עכשיו תלוי בזמן, דונלד המיקום של אלקטרופורציה15,16,17,18,19,20,21,34 בגישה שלנו, מיקוד קליפת המוח הוא עקבי לשחזור כי השתמשנו אלקטרודות אלקטרופורציה בקוטר 5 מ מ שניתן להעמידה על אזור גדול של telencephalon פיתוח. למטרה-אתרים חלופיים במוח (למשל diencephalon, רשתית העין), או עבור פילוח מדויק יותר של אזורים בתוך קליפת הליכים ואלקטרודות במפורש המיועד לכך עשוי להיות בשימוש15, 16. כמו כן אנו מספקים מבנה יחיד מספקת תיוג בהיר, מבטיחה כי כל ניורון fluorescently שכותרתו מכילה Cre recombinase. חיסרון של באמצעות מבנה יחיד כדי להשיג תיוג בהיר היא האוכלוסייה שכותרתו יכול להיות צפוף מדי (איור 2C), אבל זה יכול להיפתר על ידי הדמיה התאים בפריפריה של האזור עם תוויות (איור דו-ממדי). לחלופין, ניתן לעצב ביטוי של מבנה פלורסנט תלויים Cre recombinase ביטוי17, אך רמות הביטוי נמוך עשוי לדרוש immunostaining עבור דה מרקר פלורסנט. מגבלה זו מופנית על ידי מערכת "סופרנובה" תלויי-Cre פלורסנט סמן ביטוי (איור 3 א)23,24.
בנוסף שילוב Cre-לקס רקומבינציה עם אלקטרופורציה בתוך הרחם , אנו מציעים מספר שיפורים עבור גידול אופטימלי של נשים בהריון-מתוזמן. חשוב לשמור על העכברים בחדר מעצר ללא תשלום של רעשים ורעידות הנגרמת על ידי ציוד כגון וקולטי זרימה שכבתית. להעשיר את הסביבה עם igloos פלסטיק, קינון, גשמי, תוספי תזונה כמו זרעי חמניות (ראה רשימת חומרים). מלבד שיקולים סביבתיים, שמנו לב כי ההמלטה הראשונה של נקבה בדרך כלל יש שיעור ההישרדות הנמוך. לפיכך, פרוטוקול שלנו מציע לחכות עד ההריון השני של הנקבה לבצע אלקטרופורציה בתוך הרחם . בעוד אסטרטגיה זו מגבירה את הישרדותם של הגורים, הוא גם נוטה להגדיל את גודל המלטה, אשר ניתן להאריך את זמן הניתוח, ובכך להוריד את ההצלחה של הניתוח. לכן, אם נתקלים מספר גדול במיוחד של עוברי (למשל יותר מאשר 8), אנו מציעים לדלג את אלקטרופורציה על חלק העוברים, במיוחד העוברים הקרוב השחלות ואת הרחם, איפה הכי נוטה פציעה הרקמה. יתר על כן, באמצעות אסטרטגיה העשרה סביבתית באותו שהוזכרו לעיל (פלסטיק igloos, קינון של תוספי תזונה, גשמי) נוטה להגדיל את ההישרדות של המלטות לאחר הלידה. חשוב גם לציין שייחום הזה יכול להתרחש אצל הנקבה שעות ספורות לאחר parturition של ההמלטה הראשונה. במקרה זה, לאפשר הנקבה ללדת המלטה השני שלה, ואז להפריד לאחר הגמילה בניסיון מתוזמן ההזדווגות. כאשר מחפשים מהנרתיק פקקים, זה תרגול טוב כדי להפריד את הנקבה גם אם לא נמצא פקק, במיוחד אם הנקבה היה ייחום בלילה שלפני. תקעים ב זנים מסוימים קשה ספוט, התפישה אירעו כבר.
תחום נוסף של שיפור הוא בהפקת פיפטות microinjection נאותה אלקטרופורציה בתוך הרחם . משיכת פיפטות הזרקת הדנ א לתוך החדרים הצדדיים הוא שלב קריטי. כאן, אנו מספקים פרוטוקול מפורט להגדרת פיפטות עם גודל קצה עקבית, קצה קצה מחוספס. שיטות אחרות כוללות שבירת בחזרה את הטיפ עם להב סכין15 או צובט את קצהו עם מלקחיים16,17. שים לב כי אם פיפטה טיפים קטנים מדי, הם כראוי לנקב את הרחם אך הזרקת זרם המחירים יהיה נמוך מדי, התארכות הזמן שבו פיפטה מתפרש על המוח העוברי. אם פיפטה טיפים גדולים מדי, הם עלולים לגרום נזק את הרחם ואת המוח העוברי. אם פיפטה טיפים יותר מדי חלקלק, הם יגרמו גבשושית דשא גדול הרחם ו/או הגולגולת עובריים לפני שבירת דרך, העלול לגרום נזק העובר. אימון ליצירת הפסקה קשה לייצר טיפ מיקרומטר 20-25, לבדוק טיפים תחת מיקרוסקופ אור פשוט (למשל עם יעד X 10) עד מושגת תוצאה עקבית. בדיקת הנוזל הזה יכול להיות pipetted בקצב סביר (למשל ~0.5 µL/s) עם הרכבה צינור ליניקת היא שיטה אחרת שהייתך גודל קצה בתוך טווח מקובל. כי פיפטות הזרקת מכויל סיים את לימודיו, הסכום המדויק של ה-DNA נמסר הנוזלים לרוחב ידוע. זהו השלב הקריטי ביותר להשגת sparseness הרצוי של reproducibly כדי בסדר גודל. במילים אחרות, ריכוז נתון אמור להניב תיוג בתוך טווח מסוים, למשל נוירונים שכותרתו 10 ל- 100.
הצעד החשוב ביותר בפרוטוקול הוא ההליך אלקטרופורציה בתוך הרחם . להיות עדין ביותר תוך חשיפת הרחם. כשאני מוציאה את העוברים האחרון של חלל הבטן, ודא כי לא למשוך על השחלות או צוואר הרחם. השימוש את האגודל והאצבע במהלך microinjection ואלקטרופורציה מאפשר מניפולציה עדינה, מיומנות של העוברים כדי לחשוף את הנוזלים לרוחב ומאפשר את העוברים להיות דחף בעדינות בקיר הרחם. עדינה במיוחד היא קריטית בעת טיפול את הרחם ואת עוברי. אם קשה להשיג מגע עדין, להשתמש מלקחיים טבעת עם בורג הגבלת מובנה כדי למנוע את המלקחיים דיכויים העובר או הרחם, גרימת נזק לרקמות. שיקול נוסף הוא לנהל גם את carprofen וגם את הבופרנורפין מיד לפני הניתוח, שיטה אשר מופיעה כדי לספק ניהול כאב יעיל במהלך הניתוח בתוך הרחם מבלי להשפיע על הישרדות עובריים שיעורי35 .
הבא שלנו פשוטה היסטולוגית, מספר שלבים הם קריטיים. לאחר פרפוזיה מוחות ניסיוני עם מקבע, להחזיק את המוח ללא פגע בגולגולת כדי להגן על רקמת המוח מפני נזק במהלך קיבוע שאחרי. למרות שניתן לאחסן המוח 1% PFA במשך ימים, שבועות, לציין כי קרינה פלואורסצנטית יקטן ככל הפתרון PFA polymerizes. חותך 100 מיקרומטר מקטעים הילתית היא בדרך כלל מספיק דק להתיר מיקרוסקופיה קונפוקלית דרך מדור שלם תוך שמירה של המורפולוגיה דנדריטים, עצב. אם הקיבעון התרחשה כראוי, מוח מחיות שגילם P13 יכול להיות מותקן על גבי האזמל הקטן רוטטת פשוט עם דבק מגע, דבק. עם זאת, אם המוח הוא גם גמיש תוך שהוא נחתך על ידי האזמל הקטן רוטטת, הדבק למטה אגר קטן או בלוק agarose שמאחורי המוח כדי למנוע כיפוף בזמן זה הוא להיות למחלקה. אם הבעיה לא נפתרה, להטביע את המוח אגר להקים גוש לחתוך עם מיקרוטום רוטטת, כפי שהוצע שכל כמחנכת הצעיר (שלב 5.8).
שיטה זו משלבת מערכת רקומבינציה Cre-לקס עם אלקטרופורציה בתוך הרחם על מנת ליצור פסיפסים יכול לשמש כדי לחקור את תפקוד התא-אוטונומי גנים נוירונים. שיטה זו גם יכול להיות מוגדר לתמיכה בתוך הרחם אלקטרופורציה לייעו עריכה בונה (למשל CRISPR/Cas9)6, או אחרים recombinases בייעודי לאתר (למשל Flp/והשפלתם או דריי/רוקס24), אשר יכול להיות נועד לייצר רקמת המוח פסיפס. טכניקה חלופית מבטיח אחד יכול לשמש כדי לייצר רקמות פסיפס היא משלוח ויראלי באמצעות הזרקת ע עכברים neonatal36. בשילוב עם הזרקת ע בגילאים עובריים כפי שהוכח כאן ושם15,16,17,18,19,20, 21,22,37, וקטורים ויראלי קידוד Cre recombinase יכול להינתן לפני הלידה כדי להדביק את floxed ובתאים באיזור חדרית. שיקול מכריע אחד יהיה להבטיח הווקטורים ויראלי הם מדולל במידה מספקת כדי להשיג כריתה דליל ולקרוא. עם זאת, גם התוצאה תהיה נמוכה יותר מספרים עותק של הבונה שנגאלו, כולל פלורסנט סמנים חיוניים עבור תצפיות neuroanatomical (למשל הדנדריטים או arborization)24. כדי לסתור הזה כנחותים, מבנים חדשים באמצעות האסטרטגיה אותה בתור "סופרנובה" בונה המודגמות כאן יכול לשמש כדי להשיג תיוג דליל ללא ירידה הבהירות של תאים עם תוויות24המתאימה. עוד שיקול מכריע עם משלוח ויראלי היא לוודא שיש בונה ונמסרו היזמים מסוים באוכלוסייה תא נחקר (למשל סינאפסות כפירמידה נוירונים). ע הזרקה של וקטורים ויראלי גורם זיהום של כל רקמות המקיפים את החדרים, כולל לא רק חדרית באזור של telencephalon הגבי היכן נוצרים נוירונים סינאפסות קורטיקליים ו בהיפוקמפוס, אלא גם את המדיאלי, מיסרו הרוחביים ganglionic איפה interneurons קורטיקלית רבים נולדים34. תכונה נוספת בתוך הרחם אלקטרופורציה לעומת ויראלי מסירת בונה היא שלה חלון זמן קצר יחסית של משלוח. וירוסים מוזרק לתוך החדרים הצדדיים יכולות להימשך אחרי הניתוח, ממשיך להדביק את התאים המצפים את אזור חדרית. לעומת זאת, אלקטרופורציה מתרחשת תוך שניות, מיקוד קבוצה הרבה יותר ספציפית של תאים. זה עשוי להיות יתרון או חיסרון לחוקר, בהתאם subpopulation של תאים שילמדו.
הגישה שלנו תומך רקומבינציה Cre-לקס על ידי החדרת מבנה יחיד או בונה "סופרנובה". במקרה של המבנה "סופרנובה", אנו מבקשים החוקרים כדי להכיר היתרונות ואת המגבלות של שימוש באסטרטגיה זו. לדוגמה, העיתוי של מחיקה Cre הוכח להתרחש בתוך 2 ימי בנוירונים שכבה II/III מעוררים קליפת המוח24. לכן סביר כי כריתה Cre יכול להתרחש מעל 48 שעות בעקבות אלקטרופורציה, במקום מיד לאחר אלקטרופורציה. לכן, צורות אחרות של בעדות העיתוי והמיקום של Cre כריתה (למשל באמצעות שורת העכבר כתב Cre) אמור לשמש כדי להשלים את השימוש טכניקה חדשה זו, במיוחד במחקרים איפה קריטי Cre כריתה בתוך פרק זמן קטן התחשבות. מכשול פוטנציאלי נוסף הוא כי אחוז קטן של תאים ללא תווית בניסוי "סופרנובה" יכול להביע Cre recombinase. לדוגמה, ב- איור 3, אנחנו פלסמידים 2 co-electroporated: ריכוז גבוה של CAG-loxP-stop-loxP-EGFP-ires-tTA-WPRE, ריכוז נמוך של טרה-Cre. מכיוון טרה הוא מקדם דולפים, Cre recombinase יכול להתבטא תאים אשר קיבל את פלסמיד טרה-Cre. אבל לא את פלסמיד loxP-עצור-loxP-EGFP-tTA, למרות שזה נדיר. בניסוי שבו זה הכרחי כי כל התאים ללא תווית יש ללא כריתה בתיווך Cre בכלל, ניסוי "סופרנובה" ייתכן שתצטרך להיות בתוספת ניסוי שליטה ב- Cre איזה ביטוי recombinase מחוץ שכותרתו נוירונים שקובעת דרך השני אומר (למשל recombinase Cre אימונוהיסטוכימיה).
לסיכום, פרוטוקול שלנו משתנה בקלות כדי להתאים אלה מבנים חדשים, עושה בתוך הרחם אלקטרופורציה שיטה יותר שימושי וישימה עבור ניתוח פסיפס. לפיכך, ניתן לשלב בתוך הרחם אלקטרופורציה עם הכוח של שחלוף במספר דרכים שונות ללמוד פסיפס במוח רקמות ויוו.
המחברים יש שאין ניגודי אינטרסים לחשוף.
המחברים תודה לתמיכתה הנדיבה של ג'יימס מדיסון אוניברסיטת המחלקה של הביולוגיה ואת ג'יימס מדיסון אוניברסיטת מיקרוסקופ אור מתקן הדמיה. ד ר מארק ל' גבריאלה לקבלת עצות מועילות בנוגע צעיר רקמות כמחנכת הכנה, ד"ר ג'סטין וו בראון, קורי Cleland ל' לתיאום נדיב של חומרים כירורגי בחלל. מחקר זה מומן בחלקו על ידי מענק מחקר שיתופי 4-VA, שותפות שיתוף פעולה לקידום של חבר העמים של וירג'יניה (G.S.V.), וכן על ידי וירג'יניה האקדמיה של המדע קטן פרויקט במענק מחקר (G.S.V.). תמיכה בנדיבות סופק על ידי הקרן בטי ג'ו האוהב באטלר 58 לתואר ראשון מלגות מחקר (ל K.M.B.), פארל הקיץ מחקר מלגה (K.M.B.), ג'יימס מדיסון האוניברסיטה השנייה המאה מלגה (K.M.B.), ג'יימס המלגה מאוניברסיטת מדיסון סנטניאל (ל C.J.H.), ג'יימס מדיסון אוניברסיטת לוסי רובינסון חיפוש ' 30 אנדרטת מלגה (Z.L.H.) ו ג'יימס מדיסון קולג האוניברסיטה של מדע, מתמטיקה בפקולטה סיוע מענק (G.S.V.).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
C57BL/6J mice | The Jackson Laboratory | #000664 | See "1. Mouse set-up" (step 1.1, "wildtype mice") |
GFP.Cre empty vector | AddGene | #20781 | See "2. DNA set-up" (step 2.1 "single DNA construct that codes for Cre recombinase as well as a fluorescent marker"). GFP.Cre empty vector was a gift from Tyler Jacks. |
pK029.CAG-loxP-stop-loxP-RFP-ires-tTA-WPRE (Supernova) | AddGene | #69138 | See "2. DNA set-up" (step 2.1 "Supernova" system) and http://snsupport.webcrow.jp/. pK029.CAG-loxP-stop-loxP-RFP-ires-tTA-WPRE (Supernova) was a gift from Takuji Iwasato. |
pK031.TRE-Cre (Supernova) | AddGene | #69136 | See "2. DNA set-up" (step 2.1 "Supernova" system) and http://snsupport.webcrow.jp/. pK031.TRE-Cre (Supernova) was a gift from Takuji Iwasato. |
pK038.CAG-loxP-stop-loxP-EGFP-ires-tTA-WPRE (Supernova) | AddGene | #85006 | See "2. DNA set-up" (step 2.1 "Supernova" system) and http://snsupport.webcrow.jp/. pK038.CAG-loxP-stop-loxP-EGFP-ires-tTA-WPRE (Supernova) was a gift from Takuji Iwasato. |
EndoFree Plasmid Maxi Kit (10) | Qiagen | #12362 | See "2. DNA set-up" (step 2.3 "endotoxin-free plasmid purification kit") |
Trypan Blue powder, BioReagent grade | Sigma | T6146-5G | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "trypan blue") |
Sodium Chloride, ACS, 2.5 kg | VWR | BDH9286-2.5KG | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "NaCl") |
Potassium Chloride, ACS, 500 g | VWR | #97061-566 | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "KCl") |
Sodium phosphate dibasic, ReagentPlus, 100 g | Sigma-Aldrich | S0876-100G | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "Na2HPO4") |
Potassium phosphate monobasic, ReagentPlus, 100 g | Sigma-Aldrich | P5379-100G | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "KH2PO4") |
Hydrochloric acid, ACS reagent, 500 mL | Fisher Scientific | A144-500 | See "2. DNA set-up" (step 2.5 "HCl") |
P-97 Micropipette Puller | Sutter Instrument | P-97 | See "3. Pipette set-up" (step 3.1 "glass capillary puller") |
3.0 mm wide trough filament | Sutter Instrument | FT330B | See "3. Pipette set-up" (step 3.1 "glass capillary puller") |
Thin Wall Glass Capillaries, 4", 1 / 0.75 OD/ID | World Precision Instruments | TW100-4 | See "3. Pipette set-up" (step 3.1.1 "glass capillary") |
Single Ply Soft-Tech Wipes, 4.5" | Phenix | LW-8148 | See "3. Pipette set-up" (step 3.2.1 "single-ply task wipe"); other single-ply wipes (e.g. Kimwipes) can be used. |
Graefe Forceps, 7 cm, Straight, 0.7 mm 1x2 Teeth | World Precision Instruments | #14140 | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "Graefe forceps") |
Iris Scissors, 11.5 cm, Straight, 12-pack | World Precision Instruments | #503708-12 | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "iris scissors") |
Hartman Mosquito Forceps, 9 cm, Straight, 12-pack | World Precision Instruments | #503728-12 | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "Hartman mosquito forceps") |
General Purpose Non-Woven Sponges, 2" x 2", 4-ply | Medrepexpress | #2204-c | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "non-woven gauze sponges") |
Ring Tipped Forceps, 10 cm, Straight, 2.2mm ID | World Precision Instruments | #503203 | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "ring-tipped forceps") |
Pyrex petri dishes complete, O.D. × H 100 mm × 20 mm | Sigma-Aldrich | CLS3160102-12EA | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "Petri dishes") |
Flat Type Instrument Tray, Stainless Steel, 13-5/8" x 9-3/4" x 5/8" | Amazon | B007SHGAHA | See "4. In utero electroporation" (step 4.1 "stainless steel tray") |
Platinum Tweezertrode, 5 mm | BTX | #45-0489 | See "4. In utero electroporation" (step 4.3 and 4.16 "tweezer-type electrodes") |
ECM 830 Foot Pedal | BTX | #45-0211 | See "4. In utero electroporation" (step 4.3 and 4.17 "foot pedal") |
ECM 830 Generator | BTX | #45-0052 | See "4. In utero electroporation" (step 4.3 "generator") |
Single Animal Isoflurane Anesthesia System with Small Induction Box | Harvard Apparatus | #72-6468 | See "4. In utero electroporation" (step 4.4 and 4.6 "nose cone", step 4.4 "induction chamber") |
Ophthalmic ointment | Hanna Pharmaceutical Supply Co | #0536108691 | See "4. In utero electroporation" (step 4.7 "veterinary ophthalmic ointment") |
Space Gel (AIMS) | VWR | #95059-640 | See "4. In utero electroporation" (step 4.8 "sealed pouch filled with supersaturated salt solution") |
Hair Remover Gel Cream, Sensitive Formula | Veet | #062200809951 | See "4. In utero electroporation" (step 4.9 "depilatory cream") |
10ul Low Retention Tip Starter (960 tips/pk) | Phenix Research Products | TSP-10LKIT | See "4. In utero electroporation" (step 4.12 "sterile 10 µL micropipette tip") |
Aspirator tube assemblies for calibrated microcapillary pipettes | Sigma-Aldrich | A5177 | See "4. In utero electroporation" (step 4.15 "aspirator tube assembly") |
Braided Absorbable Suture, 4-0, Needle NFS-2(FS-2), 27" | Medrepexpress | MV-J397 | See "4. In utero electroporation" (step 4.19 "absorbable sutures") |
“LiquiVet Rapid” Tissue Adhesive | Medrepexpress | VG3 | See "4. In utero electroporation" (step 4.20 "tissue adhesive") |
Hypodermic syringes, polypropylene, Luer lock tip, capacity 1.0 mL | Sigma-Aldrich | Z551546-100EA | See "4. In utero electroporation" (step 4.21 "1 mL syringe") |
BD Precisionglide syringe needles gauge 26, L 1/2 in. | Sigma-Aldrich | Z192392-100EA | See "4. In utero electroporation" (step 4.21 "26G, ½” needle") |
Nestlets Nesting Material | Ancare | NES3600 | See "4. In utero electroporation" (step 4.24 "nesting materials") |
Sunflower Seeds, Black Oil, Sterile | Bio-Serv | S5137 | See "4. In utero electroporation" (step 4.24 "sunflower seeds") |
Paraformaldehyde, 97% | Alfa Aesar | A11313 | See "5. Histology" (step 5.1.1 "PFA") |
Economy Tweezers #3, 11 cm, 0.2 x 0.4 mm tips | World Precision Instruments | #501976 | See "5. Histology" (step 5.5 "tweezers") |
Agar powder | Alfa Aesar | #10752 | See "5. Histology" (step 5.8.1 "agar") |
Single-edge razor blades, #9 blade | Stanley Tools | #11-515 | See "5. Histology" (step 5.9 "single-edge razor blade") |
Specimen disc S D 50 mm | Leica | #14046327404 | See "5. Histology" (step 5.9 "vibrating microtome specimen disc") |
Buffer tray S assembly | Leica | #1404630132 | See "5. Histology" (step 5.10 "buffer tray") |
VT1000 S Vibratome | Leica | #14047235612 | See "5. Histology" (step 5.10 "vibrating microtome") |
Double Edge Razor Blades | Personna | BP9020 | See "5. Histology" (step 5.10 "blade") |
Knife Holder S | Leica | #14046230131 | See "5. Histology" (step 5.10 "knife holder") |
Studio Elements Golden Taklon Short Handle Round Brush Set | Amazon | B0089KU6XE | See "5. Histology" (step 5.12.1 "fine tipped paintbrush") |
Superfrost Plus Slides | Electron Microscopy Services | #71869-11 | See "5. Histology" (step 5.12.1 "microscope slide") |
ProLong Diamond Antifade Mountant, 10 ml | Thermofisher | P36970 | See "5. Histology" (step 5.12.3-5.12.4 "mountant") |
Cover Glass, 24 x 50 mm, No. 1 | Phenix Research Products | MS1415-10 | See "5. Histology" (step 5.12.4 "coverslip") |
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542 | See "5. Histology" (step 5.13.1 "DAPI") |
Fixed Stage Upright Microscope | Olympus | BX51WI | See "5. Histology" (step 5.15 "light microscope") |
Laser Scanning Confocal Microscope | Nikon | TE2000/C2si | See "5. Histology" (step 5.15 "confocal microscope") |
4x objective, NA = 0.20 | Nikon | CFI Plan Apo Lambda 4X | See "5. Histology" (step 5.15 "low-power objective") |
20x objective, NA = 0.75 | Nikon | CFI Plan Apo Lambda 20X | See "5. Histology" (step 5.15 "medium-power objective") |
60x objective, NA = 1.40 | Nikon | CFI Plan Apo VC 60X Oil | See "5. Histology" (step 5.15 "high-power objective") |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionExplore More Articles
This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved