Analyse de ¹⁸FDG TEP/CT d’imagerie comme un outil pour étudier Mycobacterium tuberculosis Infection et traitement chez les Primates Non humains

Nous présentons ici un protocole visant à décrire l’analyse de l’imagerie F-FDG TEP/CT ¹⁸chez les primates non humains qui ont été infectés par M. tuberculosis pour étudier les processus de la maladie, traitement médicamenteux et la réactivation de la maladie.

Mycobacterium tuberculosis demeure l’agent infectieux numéro un dans le monde aujourd'hui. Avec l’émergence de souches résistantes aux antibiotiques, les nouvelles méthodes cliniquement pertinentes sont nécessaires qui évaluent le processus de la maladie et l’écran pour des traitements antibiotiques et de vaccins potentiels. Tomographie par émission de positons/Computed Tomography (PET/CT) a été créé comme un outil précieux pour étudier un certain nombre d’affections comme le cancer, la maladie d’Alzheimer et l’inflammation/infection. Décrites ici sont un certain nombre de stratégies qui ont été utilisées pour évaluer les images de la TEP/CT chez les macaques cynomolgus infectés intrabronchially avec de faibles doses de M. tuberculosis. Par l’évaluation de la taille de la lésion sur CT et absorption de ¹⁸F-fluorodésoxyglucose (FDG) dans les lésions et les ganglions lymphatiques dans les images de PET, ces méthodes décrites montrent que l’imagerie TEP/CT peut prédire développement futur des actifs contre la maladie latente et la propension à la réactivation d’un état latent de l’infection. En outre, en analysant le niveau global de l’inflammation pulmonaire, ces méthodes déterminent antibiotiques efficacité des médicaments contre la tuberculose M. chez le modèle animal existant plus cliniquement pertinent. Méthodes d’analyse de ces images sont certains des outils plus puissants dans l’arsenal contre cette maladie car non seulement ils évaluer un certain nombre de caractéristiques de l’infection et traitement de la toxicomanie, mais ils sont aussi directement traduisibles dans un cadre clinique pour une utilisation chez l’homme études.

Mycobacterium tuberculosis sévit dans les humains depuis des millénaires et provoque une mortalité plus que tout autre agent infectieux unique dans le monde aujourd'hui. En 2015, il y a 10,5 millions nouveaux cas de tuberculose dans le monde¹ avec la majorité des dossiers en provenance de l’Inde, Indonésie, Chine, Nigéria, Pakistan et Afrique du Sud. Estimations placer le bilan mondial de la tuberculose à 1,4 millions de personnes au cours de cette même période. Cette valeur est plus faible que le taux de mortalité de près de 25 % il y a 100 ans. Bien que la drogue TB sensible est traitable, le schéma thérapeutique est long nécessitant des médicaments multiples et conformité est une préoccupation. L’émergence de souches pharmacorésistantes de (MDR) multi représente ~ 580 000 des nouveaux cas de tuberculose en 2015. Le taux de réussite du traitement de patients avec des souches de M. tuberculosis MDR est évalué à environ 50 % seulement. Encore plus alarmant est l’émergence d’intensivement résistant (XDR) souches de M. tuberculosis, qui résistent à presque tous les médicaments disponibles. Ainsi, les nouvelles techniques sont nécessaires dans le champ de recherche de TB qui améliorent la capacité à diagnostiquer la TB, accroître la compréhension immunologique de la maladie et permettre le dépistage des nouveaux traitements et des stratégies de prévention, y compris les antibiotiques schémas et études d’efficacité de vaccins.

M. tuberculosis est un bacille acido-alcoolo-résistants aérobie physiquement caractérisé par son très complexe paroi cellulaire externe et la cinétique de croissance lente. L’infection survient généralement par inhalation des bactéries individuelles contenues dans des gouttelettes en aérosol qui sont expulsés d’une personne symptomatique, infectée lors de toux, éternuements ou chant. Les personnes exposées qui développent une infection, seuls 5 à 10 % des personnes développent tuberculose clinique. Les 90 % restants ont un spectre plus ou des infections asymptomatiques qui varie entre une infection infraclinique et aucune maladie du tout, qui est classée cliniquement latente TB infection (ITL)^2,3. De la population qui a cette infection asymptomatique, environ 10 % développeront une tuberculose active par la réactivation de l’infection contenue dans leur vie. Le risque de réactivation considérablement augmente si une personne ayant des contrats infection asymptomatique par le VIH ou subit un traitement avec un médicament immunosuppresseur, tels que les inhibiteurs TNF pour^4,5,6. Tuberculose active se présente également comme un spectre, avec la plupart des gens ayant une tuberculose pulmonaire, qui touche les poumons et les ganglions thoraciques. Toutefois, M. tuberculosis peut infecter n’importe quel organe, afin que l’infection peut également présenter dans des sites extrapulmonaires de la participation.

Le cachet pathologique de M. tuberculosis infection est une structure sphérique organisée des cellules de l’hôte, appelé le Granulome. Macrophages, les lymphocytes T et les lymphocytes B sont des composants majeurs du Granulome, avec un nombre variable de neutrophiles⁷. Le centre du Granulome est souvent nécrotique. Ainsi, les granulomes fonctionnent comme un microenvironnement immunitaire pour tuer ou contiennent des bacilles, empêchant la propagation à d’autres parties des poumons. Toutefois, M. tuberculosis peut renverser l’assassinat par le Granulome et persistent au sein de ces structures pendant des décennies. Constante et régulière de surveillance pour le développement d’une tuberculose active après une nouvelle infection ou réactivation de l’ITL est impraticable, scientifiquement difficile et chronophage. Techniques qui étudient ces processus longitudinalement, dans les êtres humains et humain-comme des modèles animaux, sont extrêmement utiles à la communauté scientifique à mieux appréhender les nombreuses complexités de M. tuberculosis infection et la maladie.

TEP/CT est une technique d’imagerie extrêmement utile qui ait été employée pour étudier une vaste gamme d’États de la maladie chez les humains et les animaux modèles⁸. Animal de compagnie est une technique fonctionnelle qui utilise des composés radioactifs positrons comme journaliste. Ces radio-isotopes sont fonctionnalisés en général à un composé métabolique, tels que le glucose, ou à un groupe de ciblage qui vise à lier à un récepteur d’intérêt. Étant donné que les radiations émises par les isotopes du PET est assez puissante pour pénétrer les tissus, très faibles concentrations peuvent être utilisées qui permet d’étudier sous les niveaux de saturation en ciblant les récepteurs composés et à une concentration suffisamment faible pour avoir aucun effet sur le métabolisme les processus lorsque vous utilisez des agents tels que 2-désoxy - 2-(¹⁸F) Fluoro-D-glucose (FDG). CT est une technique d’imagerie à rayons x en trois dimensions qui utilise différents niveaux d’atténuation des rayons x pour identifier les caractéristiques physiques des organes dans le corps de⁹. Lorsqu’il est associé avec PET, CT est utilisé comme une carte pour déterminer des endroits spécifiques et des structures qui montrent l’absorption d’un radiotraceur PET. TEP/CT est un outil puissant pour l’imagerie in vivo des humains et des modèles animaux infectés par M. tuberculosis infection qui a conduit à beaucoup de renseignements importants sur la pathogenèse, réponse aux traitements médicamenteux, spectre de la maladie, etc.^{6 ,10,11,12}. Cet ouvrage décrit les méthodes d’analyse semi-spécifiques TEP/CT pour étudier la TB dans les modèles de primate non humain longitudinalement à l’aide de paramètres tels que la taille du Granulome, capture de FDG dans les lésions individuelles, toute avidité FDG pulmonaire et les ganglions lymphatiques et détection d’extrapulmonaire la maladie^6,10,11,12.

Ce manuscrit décrit les méthodes d’analyse chez les primates non humains (PSN), plus précisément les macaques cynomolgus, qui servent à évaluer longitudinalement progression de la maladie et le traitement de la toxicomanie suite à une infection avec M. tuberculosis d’imagerie . PSN est un précieux modèle animal car lorsqu’ils sont inoculés avec une faible dose de souche de M. tuberculosis Erdman, animaux présentent une variété de maladies à environ 50 % de développer une tuberculose active et les animaux restants ayant une infection asymptomatique (par exemple contrôle de l’infection, ITL), fournissant le modèle le plus proche pour le spectre de la maladie clinique chez l’homme^{3,13,14,15,16}. Réactivation de l’ITL chez les macaques est déclenchée par les mêmes agents qui provoquent la réactivation chez l’homme, dont on peut citer virus d’immunodéficience (HIV, à l’aide de virus de l’immunodéficience simienne (SIV) que la version de macaque du VIH), l’appauvrissement de CD4 ou tumeur facteur de nécrose (TNF) neutralisation^13,16. En outre, macaques présentent avec la pathologie qui est très similaire à celle observée chez l’homme, y compris les granulomes organisés qui se forment dans les poumons ou d’autres organes¹⁷. Ainsi, ce modèle a fourni des renseignements importants sur les interactions hôte-pathogène base de M. tuberculosis infection, ainsi que des connaissances précieuses sur les régimes médicamenteux et des vaccins pour la tuberculose^{14,18 , 19 , 20 , 21}.

L’imagerie TEP/CT offre la possibilité de suivre l’apparition, la distribution et la progression des granulomes individuels. Ce travail a principalement utilisé le FDG comme sonde, qui, comme un analogue du glucose, incorpore dans les cellules de l’hôte métaboliquement actives, telles que les macrophages, les neutrophiles et les lymphocytes⁸, qui sont dans les granulomes. Ainsi, le FDG est un proxy pour inflammation de l’hôte. Les procédures d’analyse détaillées ci-après utilise OsiriX, un viewer DICOM largement utilisé disponible pour l’achat et l’utilisation. Les méthodes d’analyse image décrits suivre la forme, la taille et l’activité métabolique (via la captation FDG) des granulomes individuels au fil du temps et utilise l’imagerie comme une carte d’identification des lésions spécifiques à la nécropsie animale. En outre, une méthode distincte a été élaborée qui quantifie la sommation de l’absorption FDG dans le poumon au-dessus d’un seuil spécifique (SUV ≥ 2,3) et utilise cette valeur pour évaluer les différences entre le contrôle et les groupes expérimentaux dans les différentes études allant du vaccin essais de modèles de la co-infection. Ces données confirment que cette mesure globale de la capture FDG dans les poumons est en corrélation avec la charge bactérienne, fournissant ainsi des informations sur l’état de la maladie. Des analyses semblables sont possibles sur l’absorption FDG des ganglions thoraciques pour étudier la progression de la maladie aussi bien. Le protocole suivant décrit le processus expérimental d’infection animale grâce à l’analyse de l’image.

toutes les méthodes décrites dans cet ouvrage ont été approuvés par l’Université de Pittsburgh animalier institutionnel et Comité d’urbanisme. Toutes les procédures suivies des exigences de sécurité de biosécurité et rayonnement institutionnels. TDM nécessite enfiler le tablier et la gorge de la couverture de plomb. Costume de biosécurité de niveau 3 (BSL3) et procédures pour l’utilisation de primates non humains doivent être suivies selon les lignes directrices. Tous les la numérisation a été effectuée dans une installation BSL3.

1. procédure d’Infection animale

1. endormir l’animal avec la kétamine (10 mg/kg, intramusculaire) ou telazol (5-8 mg/kg, intramusculaire) si l’animal a des réactions indésirables à la kétamine.
2. à l’aide d’un laryngoscope, visualiser l’épiglotte et les cordes vocales. Anesthésier les cordes vocales en pulvérisant Cetacaïne spray pour ~ 1 s (pas plus de 2 s).
3. à l’aide de laryngoscope, guider un bronchoscope (diamètre extérieur de 2,5 mm) dans la trachée par visualisation directe dans le lobe du poumon droit caudal.
4. Préparer une seringue composé d’environ 5-20 (selon étude) colonies formant des unités de M. tuberculosis dans 2 mL de sérum physiologique stérile et administrer la solution par la voie du bronchoscope. Préparer une seringue distincte consistant en 2 mL de solution saline stérile et administrer la solution saline à travers le canal bronchoscope suivie d’air 5 mL pour assurer une déposition complète de bactéries ²².
5. Retirer le bronchoscope et observer le singe complètement éveillé et alerte.

2. Acquisition, histogramme et procédure de Reconstruction de l’imagerie

1. Prepare pour l’imagerie. Animal
   1. calme avec la kétamine (10 mg/kg, intramusculaire) ou telazol (5-8 mg/kg, intramusculaire) si l’animal a des réactions indésirables à la kétamine.
      NOTE : Les animaux ont besoin d’être à jeun pendant la nuit pour réduire le risque de vomissements pendant la procédure d’imagerie et de maintenir la cohérence dans FDG TEP.
   2. Insérer le cathéter intraveineux (IV) dans la veine saphène interne de chaque jambe et le fixer avec du ruban de tissu.
   3. Diluer une dose d’environ 5 millicurie du FDG avec du sérum physiologique stérile pour un volume total de 5 mL dans une seringue en plastique.
   4. Enregistrer le niveau de radioactivité avant injection dans la seringue à l’aide d’un calibrateur de dose, enregistrer le temps et placer la seringue dans un porte-seringue plomb.
   5. Lentement injecter la dose radioactive dans le cathéter IV et suivre avec 5 mL de sérum physiologique stérile. Enregistrer le temps d’injection. Temps d’injection devrait être coordonnée à environ 45 min - 1 h avant l’imagerie TEP.
   6. Enregistrer le niveau de radioactivité après l’injection de la seringue à l’aide de l’étalon de la dose et le temps record. Disposer de la seringue dans une poubelle appropriée.
   7. à l’aide d’un laryngoscope, visualiser l’épiglotte et les cordes vocales et anesthésier avec spray Cetacaïne.
   8. Guider une sonde endotrachéale (3,5 à 4,5 mm selon la taille de singe) dans la trachée et gonfler le brassard inséré le tube fin.
   9. à l’aide d’une longue et étroite bande de gaze stérile, fixez le tube d’intubation en enroulant la bande autour du tube, en perçant la bande avec chaque canine de l’animal, puis faire un noeud avec le montant restant de gaze autour du pont du museau et enfin autour de l’arrière o la tête de f.
   10. Couvrir les yeux avec des larmes artificielles pour éviter le dessèchement pendant la formation image.
2. Perform CT et PET scans.
   1. Animal de Place sur la numérisation lit.
   Paramètres
   2. tube d’intubation Connect à un respirateur avec ce qui suit : fréquence respiratoire = 15, pression de crête = 15-17, oxygène % = 40, PEEP (pression expiratoire de fin positive) = 3, Volume de marée = 60, T _j’ai (temps inspiratoire) = 0,4, j’ai : E (inspiratoire à temps expiratoire) Ratio = 1 : 3. 4, T _plateau (pause inspiratoire avant expiration) = 0,5, Peak Flow = 9,0 (ces valeurs peuvent être ajustées selon la compliance pulmonaire spécifique animale ou besoins expérimentaux).
   3. Démarrer inhalant anesthésie (2 % isoflurane) à travers le ventilateur et continuez jusqu'à ce que l’animal ne présente aucune réaction aux stimuli physiques.
   4. Animal Place dans une position couchée avec tête et bras soutenus.
   5. Placer l’animal dans le champ-de-vue du CT et de procéder à un aperçu de la numérisation pour s’assurer que la durée entière du volume pulmonaire sera incluse dans l’analyse complète.
   6. Acquérir un CT scan avec les paramètres suivants (Balayage hélicoïdal, FOV Axial = 250 mm, tension = 140 kV, courant = 2,0 mA, épaisseur de tranche = 1,25 mm, netteté = dièse supplémentaire) tout en menant un souffle de ventilateur tenir.
      Remarque : L’agent de contraste CT est facultative. Si vous effectuez un scan de contraste, un délai est nécessaire entre l’injection de produit de contraste et d’acquisition d’images parce que la mise en commun d’agent de contraste au coeur interfère avec la reconstruction de l’image appropriée de l’espace du poumon sur le TEP scan et crée des artefacts dans les poumons sur le CT scan
   7. n’oubliez pas d’abaisser la concentration isoflurane à 0,7 - 0,8 % au cours de la procédure de balayage.
   Animal
   8. Place dans le champ de vision PET.
      NOTE : Le système en place pour ce travail est un système en ligne avec un CT et PET scanner séparés. Les coordonnées pour le positionnement de PET sont calculées manuellement sur base des coordonnées CT.
   9. Acquérir 600 s PET images pour chaque position lit.
      Remarque : Le système de Focus 220 a un champ de vision axiale de 7,6 cm. Ce travail a été effectué à l’aide de quatre positions de lit qui sont cousues manuellement au cours de post-traitement.
   10. Désactiver l’isoflurane, sevrer progressivement les animal éteint le ventilateur, retirer l’air contenu dans le manchon de tube de ventilateur et retirez le tube une fois que l’animal a retrouvé les réflexes de toux et respire normalement. Retirer le cathéter IV et maintient la pression sur le site d’injection que du débit sanguin se soit arrêtée.
3. PET effectuer image histogramme et reconstruction.
   1. Histogramme image PET exécuter avec les paramètres suivants : histogramme 3D avec aucun lissage, durée : 3, différence de bague : 47, correction globale moyenne deadtime.
   2. Reconstruction image PET exécuter avec les paramètres suivants = OSEM3D algorithme (classés en sous-ensemble attente Maximum-3 Dimension) avec atténuation axée sur les CT, rampe projection filter et correction de nuages de points ce qui donne une image de découpes 284.
4. Images co Registre PET et CT.
5. Exportation Co-registered PET et CT DICOM images au logiciel (p. ex., OsiriX).

3. Identifier et analyser les différentes lésions

1. PET ouvert et DICOM CT des images de la OsiriX des bases de données dans l’orientation axiale (CT image volonté être fusionné avec l’image de l’animal et il y aura une fenêtre d’image PET séparée).
2. a l’orientation axiale de scan (ou une série).
3. Clic (n’importe où) sur le CT scan et changer le " WL/WW " dans la barre de menu du haut pour " CT – pulmonaire ".
4. Défilement par le biais de l’analyse afin de déterminer où commencent les lobes du poumon et à la fin. (Préciser les fissures du poumon).
   1. Faites défiler à travers l’analyse entière, en se concentrant sur de petites surfaces de l’espace du poumon au un moment.
   2. Notez que pulmonaires normales apparaît en noir et caractéristiques anatomiques apparaissent plus légers (en fonction de la densité). Airways semblent noirs tandis que le système vasculaire apparaît presque blanc.
   3. Suivre des vaisseaux et des bronches car ils semblent se déplacer tout en défilement des tranches axiales.
   4. Fissures peuvent être identifiés dans les zones où il n’y a aucun navires ou des voies respiratoires. (Ce sont les zones dans le poumon qui apparaissent seulement sombres avec aucune des autres structures anatomiques).
5. La fusion TEP/CT permet d’identifier les lésions.
   1. Faites défiler à travers l’analyse entière, en se concentrant sur de petites surfaces de l’espace du poumon à un moment.
      Remarque : Se concentrer sur le lobe d’un poumon à la fois pour identifier et compter les lésions.
   2. Lésions Identify FDG-avid dans le poumon. Ils regarderont comme des sphères chauds - très différent de fond du poumon. Petites lésions froides seront beaucoup moins évidente et plus difficiles à identifier. Ils apparaîtront sur le scan en tant que structures denses qui ne bougent pas pendant le défilement (comme navires).
      Remarque : Les bateaux et les petites lésions se ressemblent. Un moyen facile de faire la distinction entre les deux est de Placez le curseur sur la structure en question et le défilement de haut en bas une tranche ou deux. Si la structure reste sous le curseur, la structure est une lésion. Si la structure s’éloigne le curseur tout en défilement vers le haut ou vers le bas une tranche, il est plus probable de navire ou des voies respiratoires.
   3. à des fins d’identification, utilisez la " Arrow " outil pour pointer vers chaque lésion sur le scan.
   4. à des fins de localisation, utiliser la " Point " outil et cliquez sur la lésion, afin que le retour sur investissement (région d’intérêt) est directement dans le centre du Granulome. Informations contenues dans ce ROI comprendra les coordonnées cartésiennes (coordonnées XYZ), où se trouve la lésion.
6. Emploi la " longueur " et " ovale " outils pour mesurer les dimensions (mm) et l’avidité FDG (SUV) de chaque lésion.
   1. Pour mesurer la taille d’une lésion, retirer le signal de PET afin que seulement le CT n’est visible.
   2. Choisir le " longueur " outil.
   3. Faites défiler jusqu'à la section qui contient la plus grande partie de la lésion est identifiée (la tranche où la lésion semble être la plus élevée).
   4. Tracer une ligne sur toute la longueur la plus longue de la lésion. Les informations incluses dans ce ROI représentera la longueur (en mm) du diamètre de la lésion.
   5. Pour mesurer l’avidité FDG d’une lésion, tout d’abord cliquer sur le TEP scan et augmentez le PET. Aller à la " WL/WW & CLUT " Osirix menu haut de l’écran et choisissez " définir manuellement les WL/WW " dans le menu déroulant de WL/WW. Dans la boîte de dialogue, entrez 0 dans le " de " et 20 en " à " afin de limiter la fenêtre de 0 à 20 SUV.
   6. Choisir le " ovale " outil de la " fonction du bouton de la souris " menu déroulant outil.
   7. Scroll sur la lésion pour évaluer la partie la plus chaude de la lésion. Dessinez un ovale autour de la lésion. Le " ovale " outil informations ROI comprend des statistiques descriptives pour tous vus au voxels dans la région. Enregistrer le SUV maximale au sein de la région.
   8. Que chaque " ovale " ROI représente uniquement les valeurs SUV pour ce plan axial spécifique de la lésion et les lésions typiques sont de forme sphérique, draw ovales sur plusieurs tranches pour s’assurer que le SUV maximal réels de la lésion est capturé.
      Remarque : Si les scans de TEP/CT sont reconstruits manuellement, les images TEP et CT ne peuvent pas être parfaitement adaptées. Si c’est le cas, toutes les analyses SUV et les ROIs se fasse sur le TEP-scan au lieu du fondu PET/CT scan. Nombreuses lésions étant plus petites que la résolution des cristaux PET détecteur, tous vus mesurées pour les lésions individuelles sont entrés dans un tableur de calculatrice de coefficient de récupération qui effectue une correction de volume partiel pour chaque lésion ²³.

4. Total du poumon FDG avidité procédure de mesure pour déterminer l’Inflammation pulmonaire Total

1. PET ouvert et DICOM CT des images de la OsiriX des bases de données dans l’orientation axiale (CT image volonté être fusionné avec l’image de l’animal et il y aura une fenêtre d’image PET séparée).
2. Effectuer une segmentation du volume pulmonaire sur l’image de CT.
   1. Cliquez n’importe où sur le CT scan pour s’assurer qu’il est la fenêtre active.
   2. Allez dans le menu déroulant ROI et sélectionnez " région de grandir (2D/3D) Segmentation … ".
   3. Afin de capturer la densité du poumon normal, affectez la valeur limite inférieure à -1024 et le seuil supérieur -200. Voici les indicatifs des unités Hounsfield, bien que la boîte de segmentation ne nomme pas eux comme tel.
   4. Une fois que les seuils inférieurs et supérieurs sont définies, cliquez n’importe où à l’intérieur du poumon. L’ensemble du poumon doit apparaître en surbrillance en vert.
   5. Est ensuite, cliquez sur " calculer " dans la boîte de dialogue Paramètres de Segmentation. Cela développera la région élèvent d’une tranche du volume de l’ensemble du poumon.
3. Déplacer le " région de croissance " des poumons de la tomodensitométrie de la TEP-scan.
   1. Cliquez sur la petite icône à gauche du nom de la tomodensitométrie et faites glisser l’icône vers le TEP-scan.
   2. Select " copiez les ROIs ". Il devrait y avoir désormais une superposition des poumons sur le TEP-scan.
4. ROI delete from scanner (en option).
   NOTE : Il aide à être en mesure de voir l’ensemble du poumon sans ROIs sur le CT scan pour s’assurer que toutes les pathologie dans le poumon est capturé. Pour ce faire, supprimez la ROIs. Assurez-vous que la fenêtre de la CT est active (cliquez sur le CT scan) choisi le ROI dropdown menu et choisissez " supprimer tous les ROIs dans cette série. "
5. Renseignez les zones à forte densité du poumon qui apparaissent comme des lacunes sur le TEP-scan.
   Remarque : À plusieurs reprises, il y a trous dans le ROI sur le TEP scan où le tissu pulmonaire était plus dense que HU-200 sur le CT scan (cette étape peut être ignorée si elle ne fonctionne pas).
   1. Mettez en surbrillance le menu déroulant ROI et sélectionnez " brosse ROIs " → " fermeture. " lorsque la boîte de dialogue s’affiche, faites glisser la flèche 3 sorte que la partie supérieure de la boîte de dialogue affiche " structuration Élément rayon : 3 " et vérifier " appliquer à tous les ROIs avec le même nom. "
      Remarque : lorsqu’il existe de larges portions de la maladie (tels que les comptes consolidés qui sont plus denses qu’entourant les tissus pulmonaires), souvent fermant la brosse ROIs ne sera pas suffisant pour remplir l’ensemble du poumon. Si c’est le cas, l’écart doit être renseigné manuellement.
   2. Aller à la " fonction du bouton de la souris " zone dans le menu du haut cliquez sur la petite flèche à droite.
   3. Sélectionner le " brosse " outil.
   4. Une fois que cet outil est sélectionné, dessiner manuellement dans le retour sur investissement pour combler les trous.
6. Isolat poumon ROI sur TEP-scan.
   1. Maintenant qu’il y ait une représentation de l’ensemble du poumon sur l’animal de compagnie Scan, supprimer tous les pixels à l’extérieur du poumon.
   2. Mettez en surbrillance le menu déroulant ROI et sélectionnez " définir des valeurs de Pixel de … ".
   3. Cliquez sur la case à cocher En dehors de ROI et de la valeur tous les pixels en dehors de la ROI 0.
7. Isoler " chaud " pathologie.
   1. Utiliser n’importe quel seuil qui désire servir " chaud. " vus plus de 2.3 sont considérés comme " chaud " basée sur les valeurs de la littérature pour la tuberculose lésions ²⁴.
   2. Sélectionnez le menu déroulant ROI " définir des valeurs de Pixel de … ".
   3. Cliquez sur la case à cocher à l’intérieur de ROI. Assurez-vous de cliquer sur le " et " boîte afin que toutes les valeurs entre 0 et 2.3 sont réglés sur 0.
8. Assurez-vous que seuls des pathologie de la maladie ne sont comptabilisé dans le retour sur investissement.
   1. Remarque qu’il y a des zones (comme le foie) qui sont plus chauds que la 2.3. S’assurer que seules les zones souhaitées sont capturés en supprimant la ROIs et créer un autre poussent la région. Autres tissus communs qui nuisent à cette époque comprennent du cœur, ganglions lymphatiques médiastinaux, vertèbres et nervures.
   2. Mettez en surbrillance le menu déroulant ROI et sélectionnez " supprimer tous les ROIs dans cette série. " ensuite, allez au ROI et sélectionnez " région de grandir (2D/3D) Segmentation … ".
   3. Modifier le seuil de seuil inférieur à 2,3 et le seuil supérieur à 100.
   4. Faites défiler à travers la fenêtre entière de PET, en cliquant sur la pathologie de la maladie et en cliquant sur " Compute. " répétez pour chaque zone de maladie chaude. Veillez à enregistrer le poumon entier ROI à l’aide de la " enregistrer les ROIs " option dans le menu ROI.
9. Exportation de valeurs brutes dans un tableur.
   1. Allez dans Viewer 2D dans le menu déroulant et sélectionnez " Revert série. "
   2. ensuite, allez dans la barre de menu déroulant Plugins
   3. Select " outils de ROI " → " exportation ROIs. " nom et enregistrer le fichier exporté des données brutes. Veillez à sélectionner " CSV " au bas de cette boîte de dialogue.
10. Calculer l’avidité de FDG Total de données brutes. Chaque ligne de cette feuille de calcul représente une seule tranche de l’analyse. La colonne d’intérêt est " RoiTotal. "
    1. afin de calculer la " avidité Total FDG, " ajouter tous les " RoiTotal " des tranches ensemble. Calculer la somme de la colonne F (RoiTotal). Cette somme est la mesure d’avidité Total FDG.
    2. OsiriX si n’a pas le retour sur investissement Export Plug-in, allez dans Plugins dans le menu déroulant. Sélectionnez " Plugins Manager … " cliquez sur le " Télécharger … " onglet en haut de la boîte de dialogue. Sélectionnez " ExportROIs " de la " plugins disponibles " menu déroulant. Sélectionnez " Télécharger & Install. "

5. Méthode d’analyse pour déterminer l’absorption FDG dans " chaude " ganglions

1. PET ouvert et CT DICOM images de OsiriX des bases de données dans l’orientation axiale (CT image volonté être fusionné avec l’image de l’animal et il y aura une fenêtre d’image PET séparée).
2. S’assurer que, lors de l’exécution manuelle analyse du retour sur investissement sur les images de l’animal que la fenêtre d’image intensité correspondre.
   1. Cliquez sur la fenêtre d’image PET pour s’assurer que c’est la fenêtre active.
   2. Dans le menu de OsiriX, cliquez sur le " WL/WW " menu déroulant, puis cliquez sur " définir manuellement les WL/WW ".
   3. Lorsque la liste déroulante s’affiche dans la fenêtre active de PET, renseignez la valeur de l’intensité minimale souhaitée dans le " de " champ et l’intensité maximale désirée valeur en la " à " champ (par exemple à la fenêtre l’image de PET de 0 à 20 SUV, tapez 0 dans la " de " champ et 20 dans la " à " champ).
   4. Alternativement, si on désire toujours charger les images avec les mêmes valeurs d’intensité, dans le menu principal sélectionnez Osirix - > PET - > puis sous " niveau de fenêtre & largeur " section, cliquez sur le Utilisation des teneurs bubble et insérer les valeurs souhaitées dans les " de " et " à " champs.
3. Une fois que le ganglion désiré est déterminé, dessinez manuellement un retour sur investissement sur les bords du ganglion.
   1. Mettre en valeur l’image de fusion TEP/CT pour s’assurer que c’est la fenêtre active.
   2. Tel qu’il est utile d’utiliser une table de correspondance des couleurs multicolores pour cette analyse, pour modifier ce paramètre : cliquez sur le " CLUT " dropdown boîte dans la barre d’outils principale de OsiriX et sélectionnez le paramètre de tableau de recherche désiré (UCLA préféré).
   3. Dessiner un ROI manuel autour du ganglion lymphatique, cliquez sur le menu déroulant sur le côté droit de la " fonction de bouton de souris " dans la barre d’outils principale et sélectionnez " polygone fermé ". Cliquez sur le bord du ganglion basé sur l’apparence de fenêtrage PET vers le haut de tableau pour établir le premier point de la ROI.
   4. Cliquez sur un autre point du bord externe du ganglion et continuer le suivi jusqu'à ce que le ganglion lymphatique est presque fermé.
   5. Pour établir le point final du ROI, double cliquez pour fermer le roi.
   6. Répéter ce processus sur plusieurs tranches afin d’assurer la détermination du maximum vus dans le ganglion.
   7. Enregistrer les données désirées de SUV dans une feuille de calcul distincte.

6. Détermination du FDG Muscle Background capture de normalisation des valeurs

Remarque : afin de garder la cohérence sur plusieurs points d’imagerie dans le temps en ce qui concerne l’absorption FDG et la variation de l’activité métabolique chez l’animal à différentes fois, toutes les analyses de PET devraient être normalisées au muscle et présentés comme tels. Toutes les données quantitatives de PET présentées dans ce travail est représenté comme un SUVCMR (norme absorption valeur cylindre musculaire Ratio).

1. PET ouvert et CT DICOM images de OsiriX des bases de données dans l’orientation axiale (CT image volonté être fusionné avec l’image de l’animal et il y aura une fenêtre d’image PET séparée).
2. Cliquez sur l’image Co-registered PET et CT pour s’assurer que c’est la fenêtre active.
3. Naviguer dans l’image jusqu'à atteindre la tranche contenant le point de rencontre des bronches principales (carina).
4. ROIs tirer dos muscle pour obtenir le fond des valeurs SUV.
   1. Sélectionnez l’outil ROI de liste déroulante sur la droite de la " Option de bouton de souris " dans le menu principal OsiriX.
   2. Mettez en surbrillance " ovale " comme l’outil ROI.
   3. Tirer les ROIs d’environ la même taille sur le postérieur des muscles situés et latérale de la colonne vertébrale.
   4. Cliquez sur l’icône à gauche de la Co-registered TEP/CT et faites glisser l’icône vers la fenêtre PET.
   5. Select " copiez les ROIs ". La ROIs devrait maintenant être vu sur la fenêtre de la TEP-scan.
   6. Sur le menu principal, sélectionnez le " Mode " case et assurez-vous que " MIP – Projection intensité Max " est sélectionné dans la liste déroulante à droite immédiatement.
   7. Veiller à ce que le " épaisse dalle " échelle mobile est définie sur 10. Ceci indique que 10 tranches sont combinées sur l’image de PET comme une projection intensité maximale un " cylindre " volume d’intérêt (origine du ratio de muscle de cylindre).
5. Enregistrer les valeurs moyennes de SUV de la deux ROIs dans une feuille de calcul.
6. Moyenne des deux valeurs pour obtenir le fond valeur de captation musculaire FDG. C’est la valeur utilisée pour obtenir les valeurs de ratio entre l’absorption à l’emplacement de la cible et l’absorption métabolique basale.

Identification et analyse des différentes lésions

Granulomes individuels peuvent être visualisées en nombre, taille, et la captation FDG qualitativement à comprendre la portée générale du processus de l’infection (Figure 1). À l’aide de ces images, comptage des granulomes au fil du temps est une mesure quantitative de la propagation des maladies. La figure 2 illustre les comtes de granulome individuels au fil du temps dans un groupe de 10 animaux. Les 10 animaux, trois ont développé une maladie active et six développé une infection latente. Un animal a montré aucun signe de maladie active, mais a été parfois culture positive (dans les échantillons de lavage gastriques aspirer ou broncho-alvéolaire) pour M. tuberculosis, placez-le dans le spectre de la maladie entre actif et latente et a été ainsi supprimé de l’analyse de cette expérience particulière. Des trois animaux atteints de maladie active, un animal mis au point miliaire par infection après 12 semaines et a été euthanasié (Ceci est identifié à la Figure 2 comme TNTC [trop nombreux au Count]). De 6 semaines après l’infection et par la suite, les animaux qui seraient développerait plus tard une maladie active ont montré les chiffres statistiquement plus élevées des granulomes que les animaux qui seraient développerait une infection latente.

Afin de mieux caractériser et distinguer les granulomes entre animaux actifs et latents, les lésions individuelles sur tomographies TEP ont été analysées pour déterminer s’il y a une différence en jacquard FDG absorption entre les deux groupes. Dans tous les animaux d’une infection active, il y avait une augmentation de l’absorption FDG dans chaque Granulome de trois à six semaines après l’infection (Figure 3 a). À l’inverse, granulomes chez les animaux qui ont développé une infection latente a montré une variation dans l’absorption FDG avec certaines lésions augmente, diminue ou montrant la capture même de trois à six semaines (Figure 3 b). Ces résultats sont comparés dans les groupes montrant la différence de change entre animaux latente et active à trois semaines par rapport à six semaines (Figure 3) et de trois semaines par rapport à 24 semaines (Figure 3D). Dans les deux cas, les granulomes des animaux actifs ont montré un changement positif et significativement différent dans les SUV (au sein de chaque animal (Figure 3 a et 3 b) et par comparaison de groupes d’animaux (Figure 3 et 3D).

Analyse de FDG absorption à des ganglions « À chaud »

Ganglions lymphatiques médiastinaux ne sont pas facilement visualisées sur la tomographie par ordinateur sauf si considérablement élargie, images d’animal de compagnie doivent être utilisés pour identifier ces tissus malades. Lors de l’analyse des ganglions lymphatiques, il est essentiel que l’image est toujours proportionnelle à la même échelle de PET maximale et minimale pour maintenir la cohérence tout au long du processus. Si l'on compare les MLNs d’animaux qui ont développé une maladie active ou latente, Lin et coll. ont montré par analyse du retour sur investissement de MLNs que, si l’absorption FDG dans les ganglions lymphatiques, étaient similaires entre les animaux actifs et latents à 3 semaines, MLNs d’animaux actifs significativement absorption supérieure à 6 semaines¹¹. Des différences ont été vus à un degré supérieur à 8 et 12 semaines (Figure 4). Ainsi, les données TEP/CT peuvent être utilisées pour évaluer des différences significatives dans les ganglions lymphatiques, en plus d’étudier les granulomes chez les animaux infectés.

Pulmonaire totale FDG avidité

Ainsi de la puissance de l’évaluation totale des poumons avidité FDG, Lin et coll. ont montré que l’inflammation pulmonaire élevé chez les animaux cliniquement qualifiées d’ITL est corrélée avec le risque de réactivation⁶. Dans cette étude, macaques cynomolgus d’ITL (infectés par M. tuberculosisfaible dose) ont été imagée TEP/CT (infection après 6 mois) avant la neutralisation de facteur de nécrose tumorale (TNF) afin d’évaluer le spectre de lésions chez ITL définie clinique et déterminer le risque de réactivation. Animaux avec pulmonaire totale plus élevée avidité FDG était plus susceptibles de réactiver (Figure 5). Plus de 90 % des animaux avec plus de 10³ poumon avidité FDG ou visible (par scan) au moins un site extra pulmonaire de l’infection réactivé après la neutralisation de TNF. Un seul animal qui ne pas réactiver a dépassé ce seuil d’avidité FDG totale des poumons. Ainsi, les paramètres de la TEP/CT peuvent être un puissant outil pour prédire les résultats cliniques bien que les paramètres spécifiques doivent être identifiés scientifiquement.

À titre d’exemple pour montrer utilitaire dans les scénarios de traitement médicamenteux, Coleman et coll. ont réalisé une étude test oxazolidinones chez les humains et les macaques macaques où pulmonaire totale avidité FDG a été mesurée avant traitement et un et deux mois après le traitement¹⁰. Pli variations ont été calculées pour montrer la réaction aux médicaments un mois (Figure 6 a) et deux mois après le traitement (Figure 6 b). Aux deux périodes, les animaux témoins ont montré avidité FDG significativement plus élevée dans l’espace de l’ensemble du poumon que les animaux traités. Dans tous les animaux traités, inflammation pulmonaire totale a diminué au cours de la thérapeutique de deux mois, alors que dans la plupart des animaux témoins, total a augmenté au fil du temps des inflammations pulmonaires ou n’a pas changé.

La figure 1. Série FDG TEP/CT Images montrant une diffusion et un modèle Stable de granulome évolution au cours de l’Infection précoce.
(Rangée du haut) Granulomes primaires (flèches blanches) ont été établis tout d’abord à infection après 3 semaines, alors que les granulomes nouveau développé à côté des lésions existantes (flèches vertes) ou de nouveaux sites (flèches jaunes). Les animaux qui seraient développerait plus tard de TB active mis au point plus de lésions au cours de l’infection. (Rangée du bas) Granulomes primaires (flèches blanches) des animaux latente est généralement restaient stables, avec quelques granulomes nouveau développe par le biais de cours de l’infection. WKS PI, post-infection semaines. Figure tirée de Coleman et al.¹¹ s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

La figure 2. Données représentatives de dépeignant la médiane et la gamme de granulome comptant de CT balaye comparant animaux présentant une Infection Active (symboles rouges) à l’Infection latente(Symboles verts).
Une infection active animaux avaient des granulomes plus que les animaux infectés de façon latente, dès après l’infection six semaines. P < 0,05 (*) par test de Mann-Whitney. Semaines PI, post-infection semaines. TNTC, trop nombreux pour les compter. Adaptation du Coleman et al.¹¹ s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

La figure 3. Utilisation de l’analyse du retour sur investissement sur PET Images pour montrer que métabolique activité du poumon granulomes diffère entre actif et latentes infectées animaux pendant début Infection.
Des granulomes individuels chez les animaux actifs [A] ont une augmentation significative de l’activité métabolique (mesurée par absorption standard valeur normalisée à absorption musculaire [SUVCMR]) entre 3 et 6 semaines après que l’infection alors que latentes infectés des animaux [B] pas. Le changement dans l’activité métabolique des lésions entre les animaux latents et actifs comme des groupes ont été comparés à 3 vs 6 semaines [C] et 3 vs 24 semaines [D] montrant que des animaux infectés activement (carrés rouges) ont une modification beaucoup plus importante absorption que latente animaux (cercles verts) aux deux périodes. Les lignes noires solides représentent la médiane. Le test de Wilcoxon somme grade a été utilisé pour analyser les données dans les groupes A et B. Pour les séries C et D, les valeurs ont été analysées par le test de Mann-Whitney. P < 0,0001 (*) pour tous les panneaux. Adaptation du Coleman et al.¹¹ s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

La figure 4. Analyse du retour sur investissement de PET Images pour montrer les différences dans l’absorption FDG dans les ganglions lymphatiques médiastinaux entre animaux ayant une maladie Active (cases rouge) et la maladie latente (cercles verts).
L’absorption est plus élevée chez les animaux infectés activement à 6, 8 et 12 semaines après l’infection. Chaque point représente un nœud lymphatique. Les lignes noires solides représentent la médiane. P < 0,05 (*), P < 0,01 (*) et P < 0,001 (*) par test de Mann-Whitney. Adaptation du Coleman et al.¹¹ s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

La figure 5. Analyse du retour sur investissement de pulmonaire totale FDG avidité mesures à Six mois après l’Infection en soulignant les différences dans l’absorption FDG chez les animaux dont la réactivation d’une Infection latente (carrés rose) en comparaison avec les animaux qui restent latente (cercles verts).
Trois des quatre animaux « réactivé » qui se trouvent au-dessous de la ligne pointillée avaient une maladie extrapulmonaire avant la neutralisation de TNF (facteur de nécrose tumorale). Chaque point représente un animal. Ligne pointillée représente la valeur seuil de risque susceptible de réactivation. Les lignes noires solides représentent la médiane. P < 0,01 (*) de Mann-Whitney Test. Data adapté de Lin et al.⁶ s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

La figure 6. Représentant au Total pulmonaire FDG avidité ROI mesures mettant en évidence dans l’ensemble changent une inflammation mesurée dans les poumons en comparant non traitées (cercles rouges) et linézolide traités de singes (cercles bleus).
Avidité FDG a été mesurée avant le traitement de linézolide (30 mg/kg/jour) et le changement de pli en absorption totale de FDG a été mesuré à 1 mois [A] et 2 mois [B] après le traitement. Chaque singe est représentée par un cercle individuel. Les lignes noires solides représentent la médiane. P < 0,01 (*) par Mann-Whitney Test. s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Les données acquises de la TEP/CT peuvent servir de mesures de substitution pour de nombreux aspects de l’infection à M. tuberculosis qui seraient non observables sans une telle technologie. TEP/CT est beaucoup plus sensible que la technologie des rayons x, qui est souvent utilisée dans les études de macaques. TEP/CT fournit des informations structurelles, spatiales et fonctionnelles. Les analyses décrites ci-dessus ont de nombreuses applications pratiques telles que le suivi de progression de la maladie, évaluation de l’efficacité du traitement médicamenteux et prévoyant des facteurs de risque de réactivation^{6,10,11, 13}.

Suivi de la propagation des granulomes et absorption FDG de différentes lésions peut être comparé entre contrôle et groupes expérimentaux non seulement fournir l’emplacement précis de l’infection, mais aussi suivre la diffusion de la maladie,²⁵. Par exemple, dans le travail de Coleman et al. décrivant une infection précoce chez les macaques cynomolgus, suite à la progression de l’infection peut déterminer si l’infection au sein d’un animal va rester active et s’aggravent ou être contenu par le système immunitaire (par exemple ITL)¹¹. Il s’agit d’un exemple de la puissance d’imagerie TEP/CT à l’étude de l’évolution de la maladie en ce qui concerne les granulomes. La même méthode peut être utilisée pour étudier un large éventail de paramètres expérimentaux au fil du temps. Par exemple, l’énumération des granulomes qui établissent par infection après 4 semaines peut fournir une mesure des résultats puissants pour un vaccin, puisque les meilleurs vaccins empêcherait ou limiter la mise en place de granulome suite contestation. Une autre mesure de résultat pour les vaccins pourrait être en limitant la diffusion. Ces mesures de résultats quantifiables fournissent des données importantes sans avoir à effectuer les premières autopsies sur les animaux. Une limitation de l’évaluation individuelles granulomes est la sensibilité du scanner CT ; visualisation des granulomes < 1 mm de taille n’est souvent pas possible.

Évaluation des ganglions lymphatiques médiastinaux (MLNs) est importante lors de l’étude de M. tuberculosis infection aussi bien. MLNs sont importants pour les cellules T d’amorçage et le trafic des cellules immunitaires au cours de l’infection. Cependant, dans presque tous les macaques, au moins un et parfois plusieurs MLNs peuvent s’infecter. Ainsi, MLNs sont un autre site de persistance bactérienne au cours de la tuberculose active et tuberculose-infection et peuvent servir de réservoir pour les bactéries, éventuellement contribuer à réactivation^26,27. En cas de grave implication MLN, voies respiratoires peuvent être compressés. Grands MLNs nécrotiques peuvent éroder dans les voies aériennes, menant à la diffusion de l’infection. Analyse des données de TEP/CT sur les ganglions lymphatiques est plus complexe que les granulomes parce que des éléments structuraux des nœuds ne sont pas immédiatement visibles sur la tomographie par ordinateur. En outre, seulement les ganglions lymphatiques qui sont métaboliquement actives peuvent être analysées en raison de l’absorption FDG. Pour cette raison, lors de l’analyse à chaud des ganglions, il est important de veiller à ce que l’image de l’animal est proportionnelle à la même échelle d’intensité maximale et minimale pour chaque analyse d’image assurer la cohérence. Car ils peuvent être de grandes structures, le centre nécrotique peut être négatif pour l’avidité FDG et avidité FDG peut semble donc être réduite au fil du temps, même lorsque la maladie progresse dans les MLNs.

Pulmonaire totale avidité FDG représente l’inflammation totale dans les poumons. Le montant de l’inflammation pulmonaire est une indication de la gravité de la maladie et est corrélé avec la charge bactérienne^6,10,28 donc ce quantitatif et évaluation objective a de nombreuses applications. Pour mesurer l’avidité FDG totale, tous les voxels dans une image d’animal de compagnie qui montrent un SUV de plus de 2,3 sont combinés en un seul volume d’intérêt (VOI) et la valeur totale de SUV de la VOI toute la valeur finale d’avidité. Cette valeur a été choisie de littérature qui a comparé les valeurs SUV de capture de FDG dans les tumeurs du poumon à diverses pathologies infectieuses dans les humains²⁴. Il est important de noter que cette valeur totale d’avidité FDG est limitée seulement à la maladie en l’espace de poumon et tous les FDG absorption non-maladie connexe ou située en proximité vers les poumons ne doit pas être considérée. En outre, pulmonaire totale avidité FDG n’inclut pas MLNs. Tandis que l’avidité des granulomes individuels et les ganglions lymphatiques nous permet de voir la variabilité des résultats de la TB dans le contexte de l’hôte, avidité FDG du poumon total fait partie intégrante à l’évaluation de l’hôte dans son ensemble. Ces méthodes servent également d’outils analytiques pour mesurer la réaction aux médicaments pour la tuberculose-maladie. Travaux antérieurs ont montré que le traitement de médicaments contre la tuberculose peut réduire la taille et l’avidité FDG des granulomes individuels au fil du temps,¹² et ces changements ont été associés à la réduction du fardeau bactérien. Changements dans l’inflammation au cours complet de régimes thérapeutiques permet également d’évaluer l’efficacité du médicament ou l’échec.

En raison du caractère très détaillé de ces procédures, une bonne quantité de dépannage peut être nécessaire afin d’obtenir des données plus cohérentes au cours d’études. C’est le but de cet article pour décrire les mesures pour permettre aux personnes dans le monde entier d’utiliser ces techniques, tout en gardant à l’esprit ce souci du détail précis est essentiel. Évaluation des images de personnes devraient être très familiers avec l’anatomie et la physiologie afin de reconnaître l’anomalie dans les analyses particulières. Lecteurs de l’image doivent reconnaître absorption sonde non-normales dans tout le corps parce que TB peut se propager au-delà de la cavité thoracique. En outre, TEP et CT enregistrement en imagerie n’est pas un processus parfait et les écarts occasionnels sur l’enregistrement de l’image peuvent se produire ; reconnaissant ce fait peut être crucial lors de l’évaluation des caractéristiques très petite maladie (c'est-à-dire des granulomes de 1 à 2 mm). Une analyse préalable à l’infection peut être particulièrement utile comme un comparateur pour identifier pulmonaires normales (et autres organes) des structures et modèles d’animal familier et reconnaître ceux qui sont nouveaux ou modifiés après l’infection. Un autre élément important de cette analyse est mesure de fond. Toutes les données de PET sont normalisées à absorption musculaire comme une base physiologique parce que l’absorption FDG est basée sur le métabolisme. Une combinaison des muscles rhomboïdes et serratus dans le dos sont utilisés pour les mesures de fond en raison de la proximité de la cavité thoracique et la cohérence relative à l’absorption FDG chez les animaux à jeun. Dans le cas de M. la tuberculose -infecté macaques, il est préférable d’utiliser un autre organe, comme le foie, pour les mesures de fond, comme M. tuberculosis peut infecter le foie et le métabolisme du foie peut être affecté lors du traitement des animaux avec différents médicaments antituberculeux. Prendre ces facteurs en compte ainsi que de veiller à ce que toute image régions d’intérêt est enregistrés à la fin de l’analyse devrait donner des résultats très reproductibles.

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Les auteurs tiennent à remercier Mark Rodgers décrivant les procédures de l’infection et L. Eoin Carney et Brian Lopresti d’orientation dans l’établissement de ces procédures d’imagerie. Ce travail a été financé par la Fondation Bill et Melinda Gates (J.L.F., P.L.L.), National Institutes of Health, National Institutes of Allergy et infectieuses Maladies R01 AI111871 (P.L.L.), National Heart Lung et sang Institut R01 HL106804 (J . L.F.), R01 HL110811.