Name: an objective and reproducible test of olfactory learning and discrimination in mice
Uploaded: 2018-03-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 33 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice at JoVE.com

Este protocolo es una adaptación de trabajos previos en nuestro laboratorio (Huang et al. 8). todos los métodos aquí descritos han sido aprobados por el cuidado Animal y uso Comité (ACUC) de la Baylor College of Medicine. Es apoyado por la McNair Medical Institute, NINDS concesión R01NS078294 a B.R.A., subvención del NIH IDDRC U54HD083092, subvención NIDDK F30DK112571 a JMP y donación de NINDS F31NS092435 para CKM.

Todos los ratones fueron utilizados bajo un protocolo aprobado por el Baylor College de medicina institucional Animal Care y uso según estándares de NIH. Ratones en este protocolo fueron los ratones adultos (> 6 semanas de edad) en C57BL6/j de fondo e incluyó ratones masculinos y femeninos. Después de las tareas de formación/puesta en escena, ratones vuelven a su jaula casera.
1. construcción y reglas generales para el uso de operante aprendizaje cuadro (figura 1B, C)
<ol><li>Montar una cámara de ratón con fondo de la cámara. Mantener el cuadro de la formación en un tráfico bajo, área de tenue para evitar distracciones.</li>
	<li>Perforar cada puerto de agua con un pequeño agujero en la parte superior para permitir que una aguja de calibre 18 dispensar agua dentro del puerto.</li>
	<li>Frasco de vidrio se llenan de olor disuelto en aceite mineral (sustituida a la semana) y apriete firmemente la tapa.</li>
	<li>Conecte la aguja de calibre 18 a tubo de silicona. Perforar la tapa del frasco de vidrio con aguja de calibre 18 y conecte el otro extremo del tubo de silicona a la entrada de los puertos de olor.</li>
	<li>Colocar cada tubo de silicona en una válvula de olor.</li>
	<li>Conecte la línea de vacío a los puertos de olor.</li>
	<li>Conecte dos jeringas de 10 mL a una varilla de metal holding y conecte la tubería a las jeringas. Conecte el otro extremo de la tubería a una aguja de 18 G. Introducir la aguja en el orificio taladrado del puerto de poke de nariz de la cámara del ratón. Conecte el otro extremo de la tubería a la válvula de agua.</li>
	<li>Llena las dos jeringas de 10 mL con roedores el agua potable.</li>
	<li>Conecte un medidor de flujo de aire a la entrada de aire y mantener el flujo de aire en 3 – 5 L/min.</li>
	<li>Conecte las 2 válvulas de agua, 2 válvulas de olor, 2 puertos de agua, Puerto de olor y poder en el sistema de interfaz USB. Conecte las válvulas a los puertos 'Salida', todos los puertos de agua y olor a 'Input' puertos. Conecte todos los equipos para las salidas de la caja de interfaz USB de potencia y por último, conectar la caja de interfaz USB a corriente.</li>
	<li>Ajustar la succión del vacío para evitar la contaminación cruzada de olores entre los ensayos.</li>
	<li>Use tubería de olor específico para conectar frascos de olor a la cámara.</li>
</ol>2. ratón preparación: 1 – 3 días
<ol><li>Ratones se dividen en 3 grupos: control (no es necesario entrenamiento olfativo), pseudo-entrenados (ratones que reciben la recompensa o el castigo al azar) y grupos. Exponer ratones pseudo-capacitados para la prestación de la formación caja y olor, pero no proporcionan formación olfativa debido al resultado de la recompensa y castigo se asocia al azar con el olor entregado. Nota: El grupo pseudo capacitado pasará por el paradigma de la formación en las etapas de "Pseudotraining". Ratones entrenados completará todas las etapas de formación. Pseudotraining es opcional si el propósito del experimento es analizar las diferencias conductuales en discriminación de olor o aprendizaje. El protocolo proporciona que aquí agrega este grupo si el experimentador quiere sondear las diferencias neuronales antes y después del entrenamiento. El grupo pseudotrained entonces control de exposición pasiva olor y formación relacionado no olfativa.</li>
	<li>Comienza restricción de agua en los ratones a 40 mL/kg/día. Evitar la pérdida de peso mayor al 20% del peso inicial de los animales para evitar sufrimiento (figura 2A).</li>
	<li>Pesan los ratones diariamente para asegurar que están por encima del 80% del peso inicial. Si un ratón cae por debajo de este umbral, quitar el mouse del estudio y acceso libre al agua.</li>
	<li>Mantener todos los factores ambientales constantes en el protocolo incluida la temperatura, los ruidos y los olores callejeros (incluyendo personal del cuerpo y aromas de perfume/Colonia/desodorante). Nota: Como con todas las pruebas animal comportamiento, pequeños cambios ambientales pueden influir mucho resultados.</li>
</ol>3. instrucciones para todas las etapas
<ol><li>Código de software de formación para cada etapa siguiente. Ejecutar el software en el software de comportamiento. Nota: Para todas las etapas de codificación están contenidas en archivos de codificación adicionales. Datos de 20 senderos están agrupados como un solo bloque y ratón funcionamiento se muestra en bloques. Además, cada etapa puede repetirse en un ratón para un número de días hasta que se cumplen los criterios de finalización.</li>
	<li>No mantenga ratones en el cuadro de comportamiento de más de 60 min/día.</li>
	<li>Ratón limpia la basura de la jaula antes de cada ratón se transfiere a la jaula. Rocíe y limpie la cámara con etanol al 70% para minimizar la distracción de ratón olor.</li>
</ol>4. entrenamiento etapa 1: Asociar agua recompensa con un centro nariz Poke, 1 – 3 días
<ol><li>En esta etapa, asociado a ratones con una recompensa de agua sobre la exploración del puerto de agua.</li>
	<li>
Instrucciones de programación de capacitación fase 1
	<ol>
<li>Programa de esta etapa sólo utilizar el puerto de suministro de agua. Deja el ratón recibe una recompensa de agua por cada poke de la nariz. Nota: El programa es la salida de la duración del ensayo y el número total de agua premia el ratón que recibió.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Establecer la pseudotraining etapa 1 programación de la misma como formación etapa 1.</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Configurar el cuadro de comportamiento con un puerto de agua en el centro y con los puertos inaccesibles. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de la etapa 1.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Considerar esta etapa como completa cuando el ratón logra 100 ensayos dentro de 60 minutos quitar el ratón de la cámara después de 60 min o 100 ensayos hayan terminado (figura 2B). Nota: Debido a las diferencias individuales, algunos ratones naturalmente se abstendrán de exploración de la caja.</li>
	<li>Si es preciso, manualmente entregan agua en el puerto de agua. Repetir esta fase hasta por 3 días. Nota: Los ratones que ya están entrenados pueden repetirse más a mantener la paridad y a mantenerlos en restricción de líquidos. También es posible promover a todo un grupo en etapa 2 cuando llega a la media del grupo 100 ensayos/60 min. Esto permitirá que para que todos los ratones continuar entrenamiento el mismo día.</li>
</ol>5. entrenamiento etapa 2: Asociar una recompensa de agua puerto lateral con centro puerto nariz Poke, 1 – 5 días
<ol><li>En esta etapa, que los ratones meter su nariz en el centro puerto y recibirá inmediatamente una recompensa de agua en las salidas laterales.</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Configurar este y cada etapa posterior con 2 puertos de agua en los lados y el puerto de olor en el medio. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de fase 2.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Instrucciones de programación de entrenamiento etapa 2
	<ol>
<li>Proporcionar el ratón una recompensa inmediata de agua en ambos lados después de un poke de la nariz en el centro de puerto de la entrega de olor. Definir los parámetros de salida para esta etapa como la duración de la prueba, el número de juicios iniciados y la cantidad de agua premios recibidos dentro de 5 s de un poke de la nariz.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Establecer la pseudotraining etapa 2 programación de la misma como formación etapa 2.</li>
	<li>Considerar esta etapa como completa cuando se realizan un mínimo de 40 ensayos en 60 min, con al menos el 25% de agua premios recibidos dentro de 5 s de la poke de nariz de puerto centro. Quite el ratón una vez terminada esta etapa (figura 2C). Nota: El programa calcula el porcentaje de agua premios recibidos en tiempo y forma con el fin de determinar la finalización de esta etapa. Aunque ratones varían en cuán rápido que completan esta etapa, más ratones alcanzará criterios de terminación dentro de 5 días. Sin embargo, si un ratón no ha terminado esta etapa dentro de 5 días, haga avanzar el ratón a la siguiente etapa. Este ratón se quitarán de la cohorte.</li>
</ol>6. entrenamiento etapa 3: Asociar una recompensa de agua con un olor específico y dentro de una ventana de tiempo específica, 1 – 3 días
<ol><li>En esta etapa, que los ratones reciben un olor de s (+) ir a un poke de la nariz en el centro del puerto. Posteriormente, dar una recompensa de agua sobre un poke de nariz en las salidas de agua laterales dentro de 5 s.</li>
	<li>
Instrucciones de programación de entrenamiento etapa 3
	<ol>
<li>Entregar el olor s en el centro de puerto de olor.</li>
		<li>Entregar la recompensa de agua si el ratón pasa las salidas laterales dentro de 5 s de la entrega de un olor. Nota: El programa comienza requiriendo sólo un poke de nariz de 100 ms en el puerto de centro para dar una recompensa del agua. Una vez que el ratón pasa el puerto del centro para la cantidad correcta de tiempo en el 80% de los ensayos, la duración del tiempo de un poke de nariz requiere para una recompensa de agua aumentará en 50 ms a 400 ms.</li>
		<li>Establecer los parámetros de salida idéntica a la etapa 2.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Establecer las instrucciones de programación etapa 3 pseudotraining mismo como entrenamiento etapa 3. Sin embargo, debe conectarse el olor s + el controlador entrega de olor para que el olor s + no se asocia con una recompensa de agua.</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Establecer la misma configuración en etapa 2.</li>
		<li>Conectar el olor s con el controlador de entrega de olor. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de la etapa 3. Quite el ratón una vez terminada esta etapa.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Considerar esta etapa como completa cuando hay más de 60 premios en 60 min (figura 2D).</li>
</ol>7. etapa 4A: Asociación de olor prohibido (S-) y el castigo de tiempo de espera, 1 – 2 días
<ol><li>En esta etapa, introduce los ratones a un olor ninguno (S-). Proporcionar un castigo de tiempo los ratones que mal va a los puertos de agua después de oler el olor ninguno.</li>
	<li>
Instrucciones de programación de entrenamiento etapa 4A
	<ol>
<li>Entregar sólo el aroma de s en esta fase al principio, idéntica a la etapa 3. Después de 40 ensayos completa de ratones, comienzan entrega al azar de los olores a s + y S-olores. Programa un castigo fuera de tiempo 2-s si el ratón intenta buscar una recompensa de agua después de ser presentado el olor ninguno. Nota: Para ayudar en la distinción de ir vs prohibido, las luces laterales del IR se pueden manipular, que son en Go olores y apagado durante ninguno de los aceites. Las luces funcionan como una referencia secundaria para ratones en la formación inicial. Una vez que los ratones están capacitados con las luces, deben entrenamiento menores ir sin luces para confirmar que han aprendido la tarea con los olores.</li>
		<li>Establecer los parámetros de salida como tiempo de duración del juicio, número de ensayos iniciados, número de ensayos completados, % correcto y número total de premios recibidos.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Establecer las instrucciones de programación de 4A etapa de pseudotraining el mismo como formación etapa 4S excepto s + y S-olores se presentan aleatoriamente desde el principio. Dar agua castigos recompensa o tiempo de espera al azar, independientemente del desempeño de la tarea.</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Definir la configuración de la caja el mismo como anterior etapa 3.</li>
		<li>Conexión s + y S-olor al controlador de entrega de olor. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de 4A etapa. Después de los ensayos de 40 completa de ratones, cambiar el programa para entregar al azar los olores. Quite el ratón una vez terminada esta etapa.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Considerar esta etapa como completa cuando hay 40 ensayos con > 60% de respuestas correctas.</li>
</ol>8. etapa 4B: asociar olor prohibido (S-) y el castigo de tiempo, 5-11 días
<ol><li>
Instrucciones de programación de entrenamiento etapa 4B
	<ol>
<li>Hacer esta etapa idéntica a 4A etapa, sin embargo el castigo de tiempo por tratar de una recompensa de agua después un olor S 4 s.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fijar la recompensa de agua pseudotraining etapa 4B programación instrucciones idénticas a 4A etapa, sin embargo y castigo de tiempo se entregan al azar por ensayo.</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Definir la configuración de la caja el mismo como anterior etapa 4A.</li>
		<li>Conexión s + y S-olor al controlador de entrega de olor. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de etapa 4B. Considerar esta etapa completa cuando hay > 100 ensayos dentro de 60 minutos con una precisión > 85% (figura 2E)</li>
	</ol>
</li>
	<li>Controlar el porcentaje máximo y mínimo correcto para cada sesión de seguimiento de cada ratón en esta etapa. Aproximadamente el 85-90% de los ratones alcanzar criterios de terminación de esta etapa. Excluir a los ratones que no alcanzan la finalización de esta etapa de la Go/No-Go fase de prueba.</li>
	<li>(Opcional) Al final de esta etapa, aplicar un entrenamiento de la revocación, donde los olores de Go/No-Go se encienden la plataforma vial de olor. Asegúrese de que los ratones no se asocian con otro estímulo, como el sonido de las válvulas asociadas con las salidas laterales.</li>
</ol>9. Go/No-Go ensayo tarea: 1 día, 20 Min por ratón por día
<ol><li>Considerar esto como la fase final para determinar la exactitud de la identificación de asociaciones de olor y aprender a discriminar pares de olor. Nota: Novela olores son utilizados para S + S-para poner a prueba cuánto animales tome aprender nuevas asociaciones. Pares de odorante estructuralmente similares se utilizan para aumentar la dificultad de la tarea. 1-Butanol y 1-Pentanol, acetato de isoamilo vs butirato de isoamilo, ejemplos y + carvona vs - carvona.</li>
	<li>
Instrucciones de programación
	<ol>
<li>Deje que el software de entrenamiento detectar la longitud de poke de la nariz. Programa un poke de nariz de 300 ms en el puerto de olor centro para ejecutar la tarea.</li>
		<li>Establecer los parámetros de salida idéntico a etapa 4B, excepto no utilice cualquier luz guiada por señales.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Caja y configuración de ratón
	<ol>
<li>Definir la configuración de la caja el mismo como anterior etapa 4B.</li>
		<li>Conexión s + y S-olor al controlador de entrega de olor. Coloque el ratón en la cámara. Cerrar la cámara del ratón y comenzar el programa de fase Go/No-Go. Exponer a los ratones que han aprendido a la tarea de aprendizaje olfativo de nuevos pares de olores químicamente similares. Nota: Ratones de tipo salvaje con discriminación de olor adecuado alcanzan > 85% de precisión con nuevos olores después de aproximadamente 10-20 cuadras o 200-400 ensayos (figura 3A).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Carleton, A., Petreanu, L. T., Lansford, R., Alvarez-Buylla, A., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Becoming+a+new+neuron+in+the+adult+olfactory+bulb.">Becoming a new neuron in the adult olfactory bulb.</a> Nat Neurosci. 6 (5), 507-518 (2003).</li><li>Petreanu, L., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maturation+and+death+of+adult-born+olfactory+bulb+granule+neurons:+role+of+olfaction.">Maturation and death of adult-born olfactory bulb granule neurons: role of olfaction.</a> J Neurosci. 22 (14), 6106-6113 (2002).</li><li>Yamaguchi, M., Mori, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+period+for+sensory+experience-dependent+survival+of+newly+generated+granule+cells+in+the+adult+mouse+olfactory+bulb.">Critical period for sensory experience-dependent survival of newly generated granule cells in the adult mouse olfactory bulb.</a> PNAS. 102 (27), 9697-9702 (2005).</li><li>Rochefort, C., Gheusi, G., Vincent, J. D., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enriched+odor+exposure+increases+the+number+of+newborn+neurons+in+the+adult+olfactory+bulb+and+improves+odor+memory.">Enriched odor exposure increases the number of newborn neurons in the adult olfactory bulb and improves odor memory.</a> J Neurosci. 22 (7), 2679-2689 (2002).</li><li>Arenkiel, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-induced+remodeling+of+olfactory+bulb+microcircuits+revealed+by+monosynaptic+tracing.">Activity-induced remodeling of olfactory bulb microcircuits revealed by monosynaptic tracing.</a> PloS one. 6 (12), 29423 (2011).</li><li>Alonso, M., Viollet, C., Gabellec, M. M., Meas-Yedid, V., Olivo-Marin, J. C., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Olfactory+discrimination+learning+increases+the+survival+of+adult-born+neurons+in+the+olfactory+bulb.">Olfactory discrimination learning increases the survival of adult-born neurons in the olfactory bulb.</a> J Neurosci. 26 (41), 10508-10513 (2006).</li><li>Quast, K. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+broadening+of+inhibitory+sensory+maps.">Developmental broadening of inhibitory sensory maps.</a> Nat Neurosci. 20 (2), 189 (2017).</li><li>Huang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Task+learning+promotes+plasticity+of+interneuron+connectivity+maps+in+the+olfactory+bulb.">Task learning promotes plasticity of interneuron connectivity maps in the olfactory bulb.</a> J Neurosci. 36 (34), 8856-8871 (2016).</li><li>Arbuckle, E. P., Smith, G. D., Gomez, M. C., Lugo, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Testing+for+odor+discrimination+and+habituation+in+mice.">Testing for odor discrimination and habituation in mice.</a> J Vis Sci. (99), e52615 (2015).</li><li>Zou, J., Wang, W., Pan, Y. W., Lu, S., Xia, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+to+measure+olfactory+behavior+in+mice.">Methods to measure olfactory behavior in mice.</a> Curr Protoc Toxicol. , 11-18 (2015).</li><li>Uchida, N., Takahashi, Y. K., Tanifuji, M., Mori, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odor+maps+in+the+mammalian+olfactory+bulb:+domain+organization+and+odorant+structural+features.">Odor maps in the mammalian olfactory bulb: domain organization and odorant structural features.</a> Nat Neurosci. 3 (10), 1035 (2000).</li><li>Cang, J., Isaacson, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+whole-cell+recording+of+odor-evoked+synaptic+transmission+in+the+rat+olfactory+bulb.">In vivo whole-cell recording of odor-evoked synaptic transmission in the rat olfactory bulb.</a> J Neurosci. 23 (10), 4108-4116 (2003).</li><li>Parthasarathy, K., Bhalla, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laterality+and+symmetry+in+rat+olfactory+behavior+and+in+physiology+of+olfactory+input.">Laterality and symmetry in rat olfactory behavior and in physiology of olfactory input.</a> J Neurosci. 33 (13), 5750-5760 (2013).</li><li>Rajan, R., Clement, J. P., Bhalla, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rats+smell+in+stereo.">Rats smell in stereo.</a> Science. 311 (5761), 666-670 (2006).</li><li>Batista-Brito, R., Close, J., Machold, R., Fishell, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+distinct+temporal+origins+of+olfactory+bulb+interneuron+subtypes.">The distinct temporal origins of olfactory bulb interneuron subtypes.</a> J Neurosci. 28 (15), 3966-3975 (2008).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous+postnatal+neurogenesis+contributes+to+formation+of+the+olfactory+bulb+neural+circuits+and+flexible+olfactory+associative+learning.">Continuous postnatal neurogenesis contributes to formation of the olfactory bulb neural circuits and flexible olfactory associative learning.</a> J Neurosci. 34 (17), 5788-5799 (2014).</li><li>Resendez, S. L., Jennings, J. H., Ung, R. L., Namboodiri, V. M. K., Zhou, Z. C., Otis, J. M., Stuber, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+of+cortical,+subcortical,+and+deep+brain+neural+circuit+dynamics+during+naturalistic+mammalian+behavior+with+head-mounted+microscopes+and+chronically+implanted+lenses.">Visualization of cortical, subcortical, and deep brain neural circuit dynamics during naturalistic mammalian behavior with head-mounted microscopes and chronically implanted lenses.</a> Nat Protoc. 11 (3), 566 (2016).</li><li>Park, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=One-step+optogenetics+with+multifunctional+flexible+polymer+fibers.">One-step optogenetics with multifunctional flexible polymer fibers.</a> Nat Neurosci. 20 (4), 612 (2017).</li></ol>

Los autores declaran no hay conflictos de intereses y no intereses en competencia.

El sistema olfativo roedor proporciona un modelo único para estudiar la plasticidad dependiente sensorial. Aquí presentamos un paradigma de aprendizaje olfativo para entrenar a ratones para asociar pares de olor con una recompensa o castigo. A través de esta tarea de aprendizaje, se pueden estudiar cambios aguas abajo en experimentos posteriores (electrofisiología, en vivo imágenes neuronales, etcetera). Al finalizar, ratones aprenderán a realizar una tarea de localización de olor simple para asociar una recompensa de agua con un olor y un castigo de tiempo de espera con otro olor.
Ya que este es un ensayo de comportamiento, recomendamos utilizando una distribución igual de edad y sexo entre experimentales y control de grupos de animales. Es imperativo que se mantengan las condiciones entre ratones tan constante como sea posible. Por ejemplo, asegúrese de que el controlador de ratones y las condiciones de iluminación permanecen constantes a lo largo de la formación. Si muchos ratones no realizan la tarea como se esperaba, asegura que se cumplan las siguientes condiciones: (1) mantener la configuración de comportamiento tan tranquila como sea posible. (2) agua priva a los ratones lo suficiente. Nos encontramos con que incluso después de todo un día de privación de agua, muchos ratones no suficientemente beberá bastante desde el puerto del centro de la caja de la etapa 1 para alcanzar criterios de terminación. (3) al principio de cada nuevo ratón, compruebe las válvulas de olor y agua y los tubos para asegurar la colocación correcta. (4) aceites varían en su volatilidad y por lo tanto algunos se evaporan más rápidamente que otros. Reemplazar aceites más volátiles con presiones de vapor más altas diarias en lugar de semanalmente, especialmente si se utilizan concentraciones más bajas.
Este protocolo puede ser modificado según el propósito experimental. Si el tiempo de aprendizaje en etapa 4B es importante, puede ser aconsejable quitar olores hasta esta etapa. Esto asegura que cualquier aprendizaje olfativo comienza en etapa 4B. Para lograr esto, hemos realizado este protocolo por quitar el olor de la etapa 3 y salto 4A etapa totalmente. Ratones tienen más dificultades para alcanzar criterios de terminación utilizando este método, pero esto también da información valiosa para ratones aprenden cómo rápidamente esta tarea la primera vez.
Una limitación de este protocolo es que ratones tienen que completar distintas etapas hasta que pueden llevar a cabo exámenes olfativos. Por lo tanto, aunque no visto por nuestro laboratorio, una manipulación puede impedir la cognición que sistemáticamente no se llega a etapa 4B. Hemos intentado negar este problema asegurándose de que cada etapa sea suficientemente suficientemente largo para permitir más ratones pasar al siguiente paso de la formación. Sin embargo, si un ratón no alcanzar criterios de terminación para una etapa incluso después del período de formación completo, quitamos eso ratón de la cohorte. Esto nos permite continuar con el estudio sin esperar ningún ratón individuales. Otra limitación es que aún tenemos que extender este protocolo a otros modelos animales importantes para el campo de olfato. Ratas, por ejemplo, han sido instrumentales en revelar la función neuronal en el OB11,12. Debido a su inteligencia, las ratas tienen más rápido aprendizaje veces de ratones13,14. A pesar de estas limitaciones, elegimos ratones de este protocolo por su maleabilidad genética para realizar manipulaciones específicas de tipo celular y grabaciones15.
Mayoría de los protocolos existente utiliza diferencias en aspiraciones de olor o tiempo a los olores para aproximar la discriminación o el aprendizaje4,6,9,10,16. Este protocolo puede medir directamente la discriminación sobre la base de una ensayo por ensayo. Además, este puede medir el número exacto de ensayos que cada ratón necesita aprender una asociación. Este enfoque totalmente automatizada elimina cualquier sesgo humano a partir del análisis de datos. Animales alimentos privados han utilizado con éxito para el aprendizaje olfativo. Ratones de agua privado fueron elegidas debido al mayor número de ensayos que un ratón puede realizar con agua en comida16.
Como monitores de actividad implantables, como lentes de índice graduado (sonrisa) y unidades de múltiples electrodos, continúan mejorando, pronto seamos capaces de combinar estas tecnologías con este protocolo17,18. Por grabación formar áreas relevantes del cerebro durante el aprendizaje olfativo, es posible sondear cómo neuronal de las actividades de cambio durante el aprendizaje asociativo. Esto puede ayudar a revelar cuestiones fundamentales de la neurociencia, como cómo las neuronas codifican información diferente durante el aprendizaje.

El ratón OB, donde información de olor primero entra en sistema nervioso central (SNC), proporciona un excelente modelo para estudiar cambios estructurales dependen de la experiencia. Contorno OB integra continuamente las neuronas nacidas en adulto de una manera dependiente de la actividad. Precursores de la neurona nacido adulto dividen apagado de progenitores que la zona subventricular adyacente a los ventrículos laterales1. A migrar en el OB, estos precursores neuronales o sobrevivirán, distinguen e integran como células del gránulo inhibitorio o experimentan apoptosis2. Selección de destino de la célula está influenciada por la actividad olfativa, incluyendo aprendizaje olfativo3,4,5,6. Tras la integración, cambios sinápticos inducidos por el aprendizaje ocurren en células del gránulo durante una semana dos periodo crítico7,8. Así, los ensayos para el aprendizaje olfativo son útiles para examinar cómo dependiente de la experiencia plasticidad influencias estructurales y funcionales reorganización de un circuito del cerebro maduro.
Este protocolo ofrece una forma de entrenamiento olfativo mediante el uso de un paradigma de condicionamiento operante. En esta tarea, ratones privados de agua están entrenados para asociar un olor (el olor a "Ir") con un premio de agua y otro olor (el olor a "Ninguno") con un castigo de tiempo de espera juicio. Progreso a través de una serie gradual de las fases de la formación a lo largo de 2-4 semanas en ratones. Cuando la formación es completa, ratones responden al olor vaya o prohibido con comportamientos discretos, correspondientes (buscando una recompensa de agua en los ensayos Go y no buscan la recompensa de agua ninguno ensayos) (figura 1A). Después de entrenamiento, ratones pueden ser impugnados más con pares de olores químicamente similares probar la discriminación o se convierten en la transición a estudios de investigación aprendizaje olfativo cómo altera la estructura o función de la OB. Aunque las tareas de discriminación de olores se han descrito previamente, más confían en las medidas subjetivas como el número de aspiraciones entre dos odorantes9,10. Además, la necesidad de calificación humana de tales tareas es mucho tiempo. La tarea de aprendizaje olfativo de Go/No-Go se describe en este protocolo ofrece una medición imparcial, directa de discriminación de olores y el aprendizaje olfativo.

<table><tbody><tr><td>Glass vial</td><td>Qorpak</td><td>GLC-01016</td><td></td></tr><tr><td>Silicon Tubing</td><td>Thermo Scientific</td><td>86000030</td><td></td></tr><tr><td>18 gauge needles</td><td>BD</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>1-Butanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>437603</td><td></td></tr><tr><td>Propionic Acid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>402907</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Chamber</td><td>Med Associates</td><td>ENV-307W</td><td></td></tr><tr><td>Chamber Floor</td><td>Med Associates</td><td>ENV-307W-GFW</td><td></td></tr><tr><td>Water Port</td><td>Med Associates</td><td>ENV-313W</td><td>Need two</td></tr><tr><td>Odor stimulus</td><td>Med Associates</td><td>ENV-275</td><td>Contain 2 valves to gate odor delivery&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Odor Port</td><td>Med Associates</td><td>ENV-375W-NPP</td><td></td></tr><tr><td>USB Interface</td><td>Med Associates</td><td>DIG-703A-USB</td><td></td></tr><tr><td>Desktop Computer with Windows 2000, XP, Vista, or 7</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flow meter</td><td>VWR</td><td>97004-952</td><td></td></tr><tr><td>Behavioral software</td><td>Med Associates</td><td>SOF-735</td><td>This software, which runs each training stage, has now been replaced with Med-PC V</td></tr><tr><td>Data Transfer software</td><td>Med Associates</td><td>SOF-731</td><td>This software formats the data to Excel</td></tr><tr><td>Training Software</td><td>Med Associates</td><td>DIG-703A-USB</td><td>This software is used to program each training stage</td></tr><tr><td>Water Valve</td><td>Neptune Research</td><td>225P012-11</td><td>This valve is used to gate the water delivery. Need Two</td></tr><tr><td>Odor Valve</td><td>Neptune Research</td><td>360P012-42</td><td>This valve is used to gate the odor delivery. Need Two</td></tr></tbody></table>

an objective and reproducible test of olfactory learning and discrimination in mice

Olfato es la modalidad sensorial predominante en los ratones y muchos comportamientos importantes, incluyendo alimentación, detección de depredador, apareamiento y crianza de los hijos. Lo importante, ratones pueden ser entrenados para asociar los olores nuevos de respuestas conductuales específicas para proporcionar la penetración en función del circuito olfatorio. Este protocolo describe el procedimiento para los ratones de entrenamiento en una tarea de aprendizaje operante Go/No-Go. En este enfoque, ratones están entrenados en cientos de pruebas automatizadas diariamente durante 2-4 semanas y luego pueden ser probados en novela Go/No-Go olor los pares para evaluar discriminación olfativa, o ser utilizado para estudios sobre cómo aprender olor altera la estructura o función de la olfativa circuito. Además, el bulbo olfatorio de ratón (OB) cuenta con integración continua de las neuronas nacidas en adulto. Curiosamente, aprendizaje olfativo aumenta la supervivencia y conexiones sinápticas de estas neuronas nacido adulto. Por lo tanto, este protocolo puede combinarse con otras técnicas de bioquímicas, electrofisiológicas y proyección de imagen para el estudio de aprender y dependiente de actividad factores que median en la supervivencia neuronal y la plasticidad.

Una vez que los ratones han aprendido la tarea de aprendizaje olfativo, ahora puede asociar pares de olor novela de recompensa y de castigo. Estos ratones entrenados comienzan normalmente con un 50% la precisión en la tarea Go/No-Go. El porcentaje correcto se puede trazar por el bloque de ensayo como una curva de aprendizaje para los pares de olores nuevos (figura 3A). Dentro de los 10 ensayos de bloque, que toman la mayoría ratones de menos de 30 minutos para llevar a cabo, los ratones son capaces de discriminar correctamente entre los olores con más de 85% de precisión (línea roja). Esto demuestra que nuestro protocolo ha capacitado con éxito a ratones de tipo salvaje para asociar un olor con una recompensa de agua y otro con un castigo de tiempo de espera. Para evaluar la capacidad de discriminación entre dos cohortes, estos datos pueden analizarse más para comparar el número de ensayos necesarios para alcanzar la competencia de 85% (figura 3B) o por el porcentaje promedio correcto después de alcanzar la competencia.
Una vez que los ratones aprenden la tarea, pares de olor pueden modificarse para aumentar o disminuir la dificultad de la tarea. Por ejemplo, disminuyendo la concentración de olor-par aumenta la dificultad de la tarea (figura 3C). Este análisis puede revelar el umbral de detección para cohortes de ratones diferentes. Además, pares de olor pueden cambiar para ser más estructuralmente similares (es decir, enantiómeros o diferencias de solo carbono). Mezclas de olor también pueden utilizarse para aumentar la dificultad de la tarea (es decir, mezcla de 40/60 vs mezcla 30/70).
Ratones son capaces de recordar anteriores pares de olor aprendido. Después de esperar 7 días desde la tarea de aprendizaje, un programa de prueba de memoria que tipo salvaje ratones rápidamente pueden recordar previamente había aprendido asociaciones de olor (figura 3D).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57142/57142fig1.jpg"> Figura 1 : Go/No-Go formación paradigma y equipo configuración. Ratones (A) responden correctamente ya sea para obtener agua durante presentación vaya olor o absteniéndose durante presentación de olor ninguno. Cuadro (B) el comportamiento se configura tales que sólo un puerto de agua sola es accesible durante la etapa 1 y todas las etapas posteriores contienen un puerto de suministro central de olor y dos puertos de agua. Círculo azul: Puerto de agua. Círculo verde: Puerto de olor. (C) olor entrega es cerrada por la válvula de un olor para cada olor. Toma de aire de presión positiva conduce a un distribuidor. Flechas rojas indican la línea de presión positiva de aire en el frasco de olor preparado (círculo rojo). Flecha azul indica la mezcla de aire y olor dejando el frasco de olor y pasar a través de una válvula de olor (círculo azul claro) y entrar un aire blanco caja de integración. Flecha naranja indica presión positiva de aire va a una válvula de regulación central (círculo naranja) a la caja integradora para permitir la presión de aire positiva empujar la mezcla de olor/el aire de cuadro integrador para el puerto de la entrega del olor (flecha de fondo negro). <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57142/57142fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57142/57142fig2.jpg"> Figura 2 : Datos. Peso corporal de ratones (A) porcentaje descienda por debajo de 80% mientras que en la restricción de líquidos. Línea roja = umbral del 80%. N = 8 ratones. (B) etapa 1 formación resultados muestran el número de pinchazos de puerto centro en 60 minutos para recibir la recompensa de agua. N = 8 ratones. Barras de error son el error estándar de la media. (C) etapa 2 formación indican el porcentaje de agua premios recibidos dentro de 5 s de poke de nariz de centro. Línea roja es el umbral del 25%. Significa el porcentaje de gris destacando como error estándar de la media. N = 8 ratones. (D) etapa 3 acumulativa premia a mostrar número de premios recibidos por los 8 ratones día 1 y día 2 del entrenamiento. Línea roja es 60 umbrales de la recompensa. Barras de error son de desviación estándar. (E) etapa 4B precisión resultados porcentaje de respuestas correctas para etapa 4B muestran. Línea roja es el 85% del umbral. Línea negra sólida es media y destacando gris es el error estándar de la media. N = 4 ratones. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57142/57142fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57142/57142fig3.jpg"> Figura 3: Representante resultados para tarea Go/No-Go. (A) Go/No-Go de tareas para Odorantes de novela 2 (s = acetato de isoamilo, S-= acetato de amilo) después de ratones fueron entrenados en la (s) de eugenol y el eucaliptol (S-). N = 5 ratones, con error estándar de la media en gris. Línea verde es el 50% de precisión, la línea roja es umbral 85% de precisión. (B) ejemplo de tarea Go/No-Go para un ratón que un aprendiz rápido frente a un ratón de lento aprendizaje para hexanol (s) y el ácido butírico (S-). (C) Go/No-Go de tareas para diferentes presiones parciales de hexanol (s) y butírico (S-). (D) capacidad de ratones para recordar el par de olor 7 días después del entrenamiento. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57142/57142fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

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An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Aquí capacitamos a ratones en una tarea de aprendizaje asociativo para probar la discriminación de olor. Este protocolo permite también estudios sobre cambios estructurales inducidos por el aprendizaje en el cerebro.

Una prueba objetiva y Reproducible de aprendizaje olfativo y discriminación en ratones

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and ...

an-objective-reproducible-test-olfactory-learning-discrimination

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.5K vistas.  Baylor College of Medicine. Aquí capacitamos a ratones en una tarea de aprendizaje asociativo para probar la discriminación de olor. Este protocolo permite también estudios sobre cambios estructurales inducidos por el aprendizaje en el cerebro.

Video: An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Low-stress Route Learning Using the Lashley III Maze in Mice

Many behavior tests designed to assess learning and memory in rodents, particularly mice, rely on visual cues, food and/or water deprivation, or other aversive stimuli to motivate task acquisition. As animals age, sensory modalities deteriorate. For example, many strains of mice develop hearing deficits or cataracts. Changes in the sensory systems required to guide mice during task acquisition present potential confounds in interpreting learning changes in aging animals. Moreover, the use of aversive stimuli to motivate animals to learn tasks is potentially confounding when comparing mice with differential sensitivities to stress. To minimize these types of confounding effects, we have implemented a modified version of the Lashley III maze. This maze relies on route learning, whereby mice learn to navigate a maze via repeated exposure under low stress conditions, e.g. dark phase, no food/water deprivation, until they navigate a path from the start location to a pseudo-home cage with 0 or 1 error(s) on two consecutive trials. We classify this as a low-stress behavior test because it does not rely on aversive stimuli to encourage exploration of the maze and learning of the task. The apparatus consists of a modular start box, a 4-arm maze body, and a goal box. At the end of the goal box is a pseudo-home cage that contains bedding similar to that found in the animal&#x2019;s home cage and is specific to each animal for the duration of maze testing. It has been demonstrated previously that this pseudo-home cage provides sufficient reward to motivate mice to learn to navigate the maze1. Here, we present the visualization of the Lashley III maze procedure in the context of evaluating age-related differences in learning and memory in mice along with a comparison of learning behavior in two different background strains of mice. We hope that other investigators interested in evaluating the effects of aging or stress vulnerability in mice will consider this maze an attractive alternative to behavioral tests that involve more stressful learning tasks and/or visual cues.

The Lashley III maze is a route-learning task that does not rely on aversive stimuli or visual cues. It is thus a highly attractive option for evaluating learning and memory, especially in aging mice or otherwise where stress is a consideration.

De baja tensión Ruta de Aprendizaje Usando el laberinto Lashley III en ratones

Many behavior tests designed to assess learning and memory in rodents, particularly mice, rely on visual cues, food and/or water deprivation, or other ...

Investigación

Neurociencias

Testing for Odor Discrimination and Habituation in Mice

This video demonstrates a technique to establish the presence of a normally functioning olfactory system in a mouse. The test helps determine whether the mouse can discriminate between non-social odors and social odors, whether the mouse habituates to a repeatedly presented odor, and whether the mouse demonstrates dishabituation when presented with a novel odor. Since many social behavior tests measure the experimental animal&#8217;s response to a familiar or novel mouse, false positives can be avoided by establishing that the animals can detect and discriminate between social odors. There are similar considerations in learning tests such as fear conditioning that use odor to create a novel environment or olfactory cues as an associative stimulus. Deficits in the olfactory system would impair the ability to distinguish between contexts and to form an association with an olfactory cue during fear conditioning. 
In the odor habitation/dishabituation test, the mouse is repeatedly presented with several odors. Each odor is presented three times for two minutes. The investigator records the sniffing time directed towards the odor as the measurement of olfactory responsiveness. A typical mouse shows a decrease in response to the odor over repeated presentations (habituation). The experimenter then presents a novel odor that elicits increased sniffing towards the new odor (dishabituation). After repeated presentation of the novel odor the animal again shows habituation. This protocol involves the presentation of water, two or more non-social odors, and two social odors. In addition to reducing experimental confounds, this test can provide information on the function of the olfactory systems of new knockout, knock-in, and conditional knockout mouse lines.

This manuscript describes a protocol to examine the olfactory system of rodents. The olfactory habituation/dishabituation test will allow investigators to determine whether a mouse habituates to a repeatedly presented odor and whether the mouse demonstrates dishabituation when presented a novel odor.

Las pruebas para detectar olor Discriminación y habituación en ratones

This video demonstrates a technique to establish the presence of a normally functioning olfactory system in a mouse. The test helps determine whether the ...

Comportamiento

Simple and Computer-assisted Olfactory Testing for Mice

Olfaction is highly conserved among species and is required for reproduction and survival.
In humans, olfaction is also one of the senses that is affected with aging and is a strong predictor of neurodegenerative diseases. Thus, olfaction testing is used as a non-invasive diagnostic method to detect neurological deficits early on. In order to understand the mechanisms underlying olfactory network susceptibility, olfactory research in rodents has gained momentum in the past decade.
Here, we present a very simple, time efficient and reproducible olfactory testing method of innate odor perception and sensitivity in mice without the need of any prior food or water restriction. The tests are performed in a familiar environment to the mice, require only the scents and a 2 min session of odorant exposure. The analysis is performed, post-hoc, using computer-assisted commands on ImageJ and can be, therefore, carried out from start to end by one researcher.
This protocol does not require any special hardware or setup and is indicated for any laboratory interested in testing olfactory perception and sensitivity.

We present a simple and unbiased olfactory test in mice. With this protocol olfactory discrimination, preference, avoidance and sensitivity to a novel odor as compared to water can be assessed in single behavioral sessions. This method is indicated for a single experimenter and analysis is based on computer-assisted video processing.

Simple y asistida por ordenador de pruebas olfativas para Ratones

Olfaction is highly conserved among species and is required for reproduction and survival.
In humans, olfaction is also one of the senses that is affected ...

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer&#39;s Disease Model Mice

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including acquisition of spatial memoryand long-term spatial memory 1. The MWM is a relatively simple procedure typically consisting of six day trials, the main advantage being the differentiation between the spatial (hidden-platform) and non-spatial (visible platform) conditions 2-4. In addition, the MWM testing environment reduces odor trail interference 5. This has led the task to be used extensively in the study of the neurobiology and neuropharmacology of spatial learning and memory. The MWM plays an important role in the validation of rodent models for neurocognitive disorders such as Alzheimer&#x2019;s Disease 6, 7. In this protocol we discussed the typical procedure of MWM for testing learning and memory and data analysis commonly used in Alzheimer&#x2019;s disease transgenic model mice.

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer's Disease Model Mice

The Morris Water Maze is a behavioral task to test hippocampal-dependent learning and memory. It has been widely used in the study of neurobiology, neuropharmacology and neurocognitive disorders in rodent models.

Agua Morris laberinto de prueba para los déficits de aprendizaje y memoria en ratones de Alzheimer modelo de enfermedad

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including ...

Olfactory Behavioral Testing in the Adult Mouse

The rodent olfactory system is of increasing interest to scientists, studied, in part, in systems biology because of its stereotyped, yet accessible circuitry. In addition, this area's unique ability to generate new neurons throughout an organism's lifetime makes it an attractive system for developmental and regenerative biologists alike. Such interest necessitates a means for a quick, yet reliable assessment of olfactory function. Many tests of olfactory ability are complex, variable or not specifically designed for mice. Also, some tests are sensitive to memory deficits as well as defects in olfactory abilities, confounding obtained results.
Here, we describe a simple battery of tests designed to identify defects in olfactory sensitivity and preference. First, an initial general health assessment allows for the identification of animals suitable for further testing. Second, mice are exposed to various dilutions of scents to ascertain whether there is a threshold difference. Third, mice are presented with various scents, both attractive and aversive, that allow for the assessment of olfactory preference. These simple studies should make the initial characterization of olfactory behavior accessible for labs of varied resources and expertise.

Fundamental, yet unique properties of the rodent olfactory system have led to its increasing study among biologists. A relatively simple assessment of its function is then also needed. Here we describe sensitive tests for the characterization of mouse olfactory sensitivity and preference.

Pruebas del comportamiento olfativo en el ratón adulto

The rodent olfactory system is of increasing interest to scientists, studied, in part, in systems biology because of its stereotyped, yet accessible ...

Biología

A Low-Cost, Odor-Reward Association Task for Tests of Learning and Memory

Robust and simple behavioral paradigms of appetitive, associative memory are crucial for researchers interested in cellular and molecular mechanisms of memory. In this paper, an effective and low-cost mouse behavioral protocol is described for examining the effects of physiological manipulation (such as the infusion of pharmacological agents) on the learning rate and duration of odor-reward memory. Representative results are provided from a study examining the differential role of tyrosine kinase receptor activity in short-term (STM) and long-term memory (LTM). Male mice were conditioned to associate a reward (sugar pellet) with one of the two odors, and their memory for the association was tested 2 or 48 h later. Immediately prior to the training, a tyrosine kinase (Trk) receptor inhibitor or vehicle infusions were delivered into the olfactory bulb (OB). Although there was no effect of the infusion on the learning rate, blockade of the Trk receptors in the OB selectively impaired LTM (48 h), and not short-term memory (STM; 2 h). The LTM impairment was attributed to the diminished odor selectivity as measured by the length of the digging time. The culmination of the results of this experiment showed that Trk receptor activation in the OB is the key in olfactory memory consolidation.

An odor-reward, associative learning task was used to investigate the differential effects of physiological manipulation on long-term and short-term memory.

Robust and simple behavioral paradigms of appetitive, associative memory are crucial for researchers interested in cellular and molecular mechanisms of ...

Evaluación del deterioro olfativo en ratones debido a la inhalación de contaminantes ambientales

Studying the Effects of Inhaled Environmental Pollutants on Olfactory Function in Mice

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental pollutants exposure may impair olfaction; thereby, there is an urgent need for methods to evaluate the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfaction. Mice are ideal models for olfactory experiments because of their highly developed olfactory system and behavioral characteristics. To assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice, a detailed buried food test and social odor discrimination experiment is provided, including the experiment preparation, the selection and construction of experimental facilities, the testing process, and indexes of time. Meanwhile, timekeeping equipment, operational details, and the experimental environment are discussed to ensure the success of the assay. Zinc sulfate is used as the treatment to demonstrate the feasibility of the experimental approach. The protocol provides a simple and clear operational process for assessing the effects of inhaled environmental pollutants on olfactory function in mice.

Autor destacado: Evaluación de los efectos olfativos de los contaminantes en el aire: alimentos enterrados y pruebas de olor social

This paper provides a detailed description of the buried food test and social odor discrimination experiment to assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice.

Estudio de los efectos de los contaminantes ambientales inhalados sobre la función olfativa en ratones

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental ...

Medio ambiente

Assessment of Mouse Judgment Bias through an Olfactory Digging Task

Judgment biases (JB) are differences in the way that individuals in positive and negative affective/emotional states interpret ambiguous information. This phenomenon has long been observed in humans, with individuals in positive states responding to ambiguity 'optimistically' and those in negative states instead showing 'pessimism'. Researchers aiming to assess animal affect have taken advantage of these differential responses, developing tasks to assess judgment bias as an indicator of affective state. These tasks are becoming increasingly popular across diverse species and fields of research. However, for laboratory mice, the most widely used vertebrates in research and a species heavily relied upon to model affective disorders, only one JB task has been successfully validated as sensitive to changes in affective state. Here, we provide a detailed description of this novel murine JB task, and evidence of its sensitivity to mouse affect. Though refinements are still necessary, assessment of mouse JB opens the door for answering both practical questions regarding mouse welfare, and fundamental questions about the impact of affective state in translational research.

This article provides a detailed description of a novel mouse judgment bias protocol. Evidence of this olfactory digging task's sensitivity to affective state is also demonstrated and its utility across diverse research fields is discussed.

Evaluación del sesgo de juicio del ratón a través de una tarea de excavación olfativa

Judgment biases (JB) are differences in the way that individuals in positive and negative affective/emotional states interpret ambiguous information. This ...

Una prueba objetiva y Reproducible de aprendizaje olfativo y discriminación en ratones

Resumen

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Capítulos en este video

De baja tensión Ruta de Aprendizaje Usando el laberinto Lashley III en ratones

Las pruebas para detectar olor Discriminación y habituación en ratones

Simple y asistida por ordenador de pruebas olfativas para Ratones

Agua Morris laberinto de prueba para los déficits de aprendizaje y memoria en ratones de Alzheimer modelo de enfermedad

Pruebas del comportamiento olfativo en el ratón adulto

A Low-Cost, Odor-Reward Association Task for Tests of Learning and Memory

Estudio de los efectos de los contaminantes ambientales inhalados sobre la función olfativa en ratones

Estudio de los efectos de los contaminantes ambientales inhalados sobre la función olfativa en ratones

Estudio de los efectos de los contaminantes ambientales inhalados sobre la función olfativa en ratones

Evaluación del sesgo de juicio del ratón a través de una tarea de excavación olfativa