This work was supported by NIH Grant HL-113905

Alle Tierverfahren für diese Studie durchgeführt von der Institutional Animal Care und Use Committee von Nova Southeastern University in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren genehmigt wurden, 8. Auflage (The National Academies Press, Washington, DC, 2011 ). 1. Vorbereiten Gewebeschnitten für Receptor Autoradiographiestift <ol><li> Nach dem Opfer, Ernte frische Hirngewebe und in Alufolie wickeln und in einen -20 ° C Gefrierschrank so schnell wie möglich. Um die richtige Form beibehalten, legen Gehirne in einem Gehirnform, die das Innere des Schädels simuliert, in Alufolie wickeln und in eine - 20 ° C Gefrierschrank. Nach 30 min Ort Gewebe in einem verschließbaren Gefrierkombination Aufbewahrungstasche und für die Langzeitlagerung zu einem -80 ° C Gefrierschrank bewegen. <ol><li> Besorgen Sie sich die frisch gefrorene Gewebeprobe von Interesse aus dem -80 ° C Gefrierschrank und Transfer zu einem Kryostaten auf ein Minimum von -10 ° C und maximal 18 ° C eingestellt, Auftauen zu vermeiden. </li&gt; <li> Legen Sie die Probe auf die Gewebehalterung mit einem Glykol und Harzbasis Einbettmediums nur ein kleiner Teil der Probe in das Medium eingebettet wird. Für Gehirn ist das Gehirn vertikal montiert in der koronalen Ebene zu ermöglichen sectioning. </li></ol></li><li> Legen Sie das Gewebe montieren auf dem Mikrotom innerhalb des Kryostaten und ziehen Sie sie fest an ihrem Platz. Sicherstellen, dass die linken und rechten Seite des Gehirns sind in den gleichen antero-posterior-Koordinaten, und die dorso-ventralen Achse senkrecht zu häufig verwendeten Gehirn Atlanten. </li><li> Beginnen mit der gewünschten Dicke Schneiden (20 &amp; mgr; m empfohlen) und Auftauen die Schnitte auf Objektträger in vertikaler Richtung Halterung eine größere Oberfläche des Raumes in der Folie zu haben. Sammeln Schnitte auf Objektträger in aufeinanderfolgende Gruppen von fünf, dh der erste Satz von Schiebern versehen sind 1-1, 1-2, 1-3, 1-4 und 1-5 (Figur 3). </li><li> Nach einer Reihe von Folien mit Abschnitten Befüllen lufttrocknen lassen Folien für bis zu 1 Stunde, dann die sli platzierendes in einem Kunststoff-Gleitkastens in einer selbstdichtenden Gefrierschrank Aufbewahrungstasche, und bei -20 ° C. </li></ol> 2. Receptor Autoradiographiestift ACHTUNG: Die Radioaktivität. Verwenden Sie Schutzkleidung Radioaktivität zu behandeln. Die Entsorgung wird bei Einrichtung abhängig und müssen Richtlinien folgen richtig (Halbwertszeit 60 Tage) oder abgeholt werden von einem zertifizierten Unternehmen zu zerfallen. <ol><li> Entfernen Sie die &quot;-1&quot; und &quot;-2&quot; Dias von Interesse aus dem -20 ° C Gefrierschrank und montieren in Schiebegriffe (Abbildung 5). Montieren Sie die &quot;-1&quot; Dias zusammen für &quot;nicht-spezifische&quot; Behandlung, und die &quot;-2&quot; Folien für &#39;total&#39; Behandlung. &quot;Nicht-spezifische&quot; Gläser enthalten 10 uM Endkonzentrationen von PD123319 einem AT 2 R - Antagonisten, und Losartan ein AT 1 R - Antagonisten, in Testmedium Puffer (AM5) (Tabelle 1), die &quot;Gesamt&quot; Bindung Gläser werden nur 10 enthalten uM PD123319 in AM5. </li><li> Kehren Sie die Rutschegreift die Dias in die Vorinkubation Färbetrog mit 35-40 ml AM5 und entsprechende Inhibitoren für 30 Minuten bei Raumtemperatur gefüllt zu platzieren. Starten Sie nachfolgende Sätze in ihrer Vorinkubation Bad in 4-Minuten-Intervallen. </li><li> Objektträger sofort aus der pre Inkubationslösung übertragen an die Inkubation slide mailers 10 ml AM5 enthält, sowie eine vorbestimmte Konzentration von 125 I-SI-Ang II (berechnet in Abbildung 4) mit den jeweiligen Inhibitoren für 60-90 min bei Raum Temperatur. Wenn ausreichend Radioligand ist, kann 10 Folien platziert werden in modifizierten Schiebegriffe (Rücken an Rücken) und mit 125 I-SI-Ang II in Färbetrog inkubiert. </li><li> Platz gleitet zurück in die Schiebegriffe (falls erforderlich), Fleck, und spülen Sie vorsichtig zur Verwirbelung 1-2 sec in 400 ml destilliertem Wasser in zwei getrennten Behältern. </li><li> Die Objektträger nacheinander in vier Coplin Gläser mit 35-40 ml AM5 für genau 1 min jeweils (wie in Abbildung 4 dargestellt &lt;/ Strong&gt;). </li><li> Nach der letzten 1 Minute Spülen, vorsichtig schwenken die Abschnitte für 1-2 sec in vier Änderungen eiskaltem destilliertem Wasser. </li><li> Föhnen Sie die Folien mit kühler Luft (Achtung: heiße Luft verflüchtigt sich die radioaktive Verbindung) unter Verwendung von vier Haartrockner aus verschiedenen Winkeln für 4 min (Abbildung 5) eingerichtet, bis alle Abschnitte trocken sind, dann legen Sie auf einem Papiertuch. </li><li> Berg Träger mit Gewebe auf einen Karton für Apposition zu einem Röntgenfilm mit doppelseitigem Klebeband nach oben zeigt. </li><li> Berg mindestens eine, 125 Jod Kalibrierstandard Schieber auf jedem Karton (Abbildung 6). Hinweis: Kalibrierstandards von Hirn Paste bestehen gründlich mit 125 Jod an eine Verbindung gebunden gemischt , um einen Phenolring enthält, verdichtet durch Zentrifugation in einer 1 ml Tuberkulin - Spritze, die mit der gleichen Dicke wie die Gehirnschnitte geschnitten Kryostaten und auftauen montiert auf Mikroskop Dias. Alternativ Standards 125 I KalibrierungKunststoffharz bei 20 &amp; mgr; m Dicke geschnitten können kommerziell erhalten werden. Das Kunststoffharz in diesen Standards schirmt den Film partiell vor der Strahlung, so dass eine Gewebeäquivalenz von ~ 40% sollten in die Kalibrierungs berücksichtigt werden. </li></ol> 3. Film Belichtung und Entwicklung <ol><li> Fahren Sie mit einer Dunkelkammer mit einem Riemen-zurück Röntgenkassette und Autoradiographie Film. Öffnen Sie die Kassette und legen Sie den Karton mit Dias innen (Abbildung 6). <ol><li> Schalten Sie das Licht aus, und schalten Sie den Dunkelkammerlicht. Öffnen Sie vorsichtig die Schachtel mit den X-Ray Film, ein Film zu entfernen, und legen Sie den Film glänzenden Seite nach oben (mit dem gezackten Rand auf der unteren rechten Ecke) oben auf den Schlitten in der Kassette. Schließen Sie die Kassette vorsichtig und verdrehen Sie die Verriegelungsstangen Licht (Abbildung 6) heraus zu versiegeln. Belichten der Objektträger für mehrere Tage bis mehrere Wochen bei -20 ° C. </li></ol></li><li> In der Dunkelkammer, öffnen Sie die Kassette und fahren Sie mit dem Filmentwicklungs process. <ol><li> Legen Sie die Dias in die Fächer nacheinander; Entwickler für 2 min, Wasser 5% Eisessig für 30 Sekunden enthält, und Fixiermittel für 5 min. Die Filme werden die in eine Schale gelegt mit Wasser 20 Minuten lang läuft, dann nicht länger als 10 Sekunden in Photoflo gestellt und gehängt. Anmerkung: Die Belichtungszeit wird empirisch bestimmt und mehrere Filme mit unterschiedlichen Belichtungszeiten beinhalten kann: lange genug messbare Signale von den Bereichen mit geringer Bindungs ​​zu erhalten, aber nicht so lange, wie der Film durch Bereiche mit hoher Bindungs ​​zu sättigen. Sobald akzeptablen Belichtungen erhalten werden, dann mit dem nächsten Schritt fort. </li></ol></li></ol> 4. Histologie <ol><li> Bereiten Sie die Thionin - Farbstoff und Färbereagenzien (Tabelle 2, Abbildung 7). <ol><li> Legen Sie die &quot;-3&quot; Folien in der Folienträger, und die Übertragung in der angegebenen Reihenfolge mit entsalztem Wasser beginnt für 1 min, dann Thionin-Farbstoff-Lösung für 10 min, gefolgt von drei Einbrüche in deionized Wasser und einer 30 sec waschen in VE-Wasser. </li><li> Im Anschluss an das Wasser, legen Sie die Dia-Rack in Ethanol wäscht wie folgt; 50%, 70% und 90% für 30 sec, gefolgt von zwei Waschungen Ethanol bei 100% für je 1 min. Schließlich legen Sie die Objektträgergestell in Xylol für 3 Minuten, dann übertragen auf einen zweiten Xylol-Lösung für 5 min. </li></ol></li><li> Jeweils einen Objektträger in einer Zeit aus dem letzten Xylolbad und decken die obere Kante des Schlittens mit einer Harzbasis in einem organischen Lösungsmittel Eindeckmediums, und legen Sie eine 24 mm x 60 mm Deckglas auf die Folie. Lassen Sie Folien ausreichend trocken für ~ 48 Stunden und dann scannen in den Computer bei 2.400 dpi Graustufen. </li></ol> 5. Densitometrische Bildanalyse <ol><li> Legen Sie den Film glänzende Seite nach unten, mit dem gezackten Rand auf der unteren linken Ecke und scannen eine proprietäre Scanner der Lage, die Filmdichte Informationen ohne jegliche Verzerrung in dem Abbildungssystem Computer zu übertragen. </li><li> Öffnen Sie die proprietäre Bildgebungs sysTEM- und verwenden die Kalibrierungsbalken Kalibrierstandards für zukünftige densitometrische Analyse der Bilder auf dem Film (- 12 Figuren 9) herzustellen. </li><li> Messen Sie Bereiche von Interesse entweder durch eine Vorlage zur Gründung oder empirisch umreißt die Bereiche von Interesse. Die Daten werden die gesammelten und basierend auf dem Film getrennt, entweder Kontrolle oder Wildtyp (Abschnitt) und Region. Stellen Sie sicher , Dichte (fmol / g) enthalten, Scan - Bereich und die gesamte Zielgebiet in Messungen (Abbildung 9). <ol><li> Stellen Sie den Scanbereich Bars indem sichergestellt wird, dass Region von Interesse fällt zwischen den Parametern der Hervorhebung (Abbildung 10). </li><li> Exportieren von Daten in eine Tabelle (Tabelle 4). Multiplizieren Sie die Dichte mal die Gesamtzielbereich, dann teilen Sie durch den Scan-Bereich, um den Wert für die Bindung von diesem spezifischen Bereich zu erhalten. Sobald dies für alle Messwerte durchgeführt wird, das Substrat die etablierte unspezifische von insgesamt die spezifische Bindung p zu ergebenübel nehmen. Mittelwerte können auch für diese Werte durchgeführt werden. </li></ol></li></ol>

Robert Speth has licensed antibodies to angiotensin II receptors to a commercial vendor and receives royalties from the sale of said antibodies. The other authors have nothing to disclose.

Das beschriebene Protokoll identifiziert die Visualisierung von &quot;total&quot; und &quot;nicht-spezifische&quot; Bindung des Radioliganden in benachbarten Abschnitten der koronalen Abschnitte eines Nagetier Gehirn zuvor geerntet und bei -80 ° C gelagert, und jedes Gewebe leicht auf praktisch sein kann, dass hat anatomisch Unterbauten, die Differential-Display Mengen an Rezeptoren oder Radioligand-Bindungsstellen aufgelöst. Die Verfahren im Protokoll beschrieben sind einfach und die Analyse ist entscheidend für die korrekte Interpretation der Ergebnisse. Die 20 &amp; mgr; m Dicke wurde als optimal bestimmt wird; wenn der Abschnitt zu dick ist die unspezifische Bindung erhöht, so dass es schwierig ist, die Bindung des Radioliganden an sein Target zu lösen. Wenn der Abschnitt dünner geschnitten wird, wird es schwierig, erfolgreich zu schneiden und sequentieller Abschnitte ohne Verzerrung speichern. Die optimale Schnitttemperatur variiert leicht aufgrund der Art des Gewebes und der Dicke der Abschnitte und is in der Regel empirisch ermittelt. Sobald der Kontakt zwischen der Klinge und dem Gewebe hergestellt ist, kann die Ausrichtung der Probe überprüft und neu ausgerichtet, indem die Gewebeprobe bewegt zurück weg von der Klinge, und Neuausrichten der Befestigungskugel. Wenn ein Nagetier Gehirn Schneiden ist es wichtig, die linken und rechten Seite des Gehirns sind in den gleichen antero-posterior-Koordinaten, und die dorso-ventralen Achse senkrecht zu gewährleisten Atlanten auf häufig verwendete Gehirn. Slide-Sets werden in der Reihenfolge vorge markierten Studien über benachbarten Abschnitten von Gewebe zu leiten. Die ersten Sätze von 5 Folien sind gekennzeichnet 1-1, 1-2, 1-3, 1-4 und 1-5. Der erste Schnitt Abschnitt geht auf Folie 1-1 in der oberen linken Ecke (dies ist die rechte obere Ecke der Folie ist, wenn es vereist Seite nach unten); der zweite Schnitt Abschnitt geht auf Folie 1-2 usw. Der fünfte Schnitt Abschnitt 1-5 auf Folie geht. Der sechste Schnitt Abschnitt geht auf Folie 1-1 auf der linken Seite des ersten Abschnitts. Nachdem der erste Satz von Dias gefüllt ist, starten Sie einen weiteren Satz von 5 geschobenes markierte 2-1, 2-2, 2-3, 2-4 und 2-5. Dieser Zyklus wird so weit zurück in das Gehirn wie nötig fortgesetzt. Die &quot;-4&quot; und &quot;-5&quot; Objektträger werden als Backup aufbewahrt oder einen anderen Rezeptor radioaktiv zu markieren. Die Rezeptor-Autoradiographie Protokoll hängt von dem Radioligand verwendet und die Eigenschaften der Rezeptoren befragt werden, um die Konzentrationen von Puffern, Salzen und Inhibitoren zu bestimmen. Zur Messung der AT1 - Subtyp des Ang - II - Rezeptoren in diesem Verfahren ein hochaffiner Jod-125 markiertem Liganden, 125 I-Sar 1 Ile 8 -Ang II (125 I-SI-Ang II); radiomarkierten von Robert C. Speth, Ph.D. (Peptid Radioiodierung Shared Resource, Georgetown University), die auch im Handel erhältlich ist) in AM5 Puffer (Tabelle 1) gelöst; ein Natriumphosphatpuffer mit Natriumchlorid, EDTA und Bacitracin. AM5 bietet einen guten Schutz des Radioliganden von Metallpeptidasen und Bacitracin empfindlichen peptidases einen physiologischen pH und NaCl-Konzentration Bereitstellen Bindungseigenschaften zu optimieren. Vorinkubation in AM5 macht die Gewebeschnitte Inhibitoren Peptidase Radioligand Abbau zu minimieren, und auch dissoziiert endogene Ang II von den Ang II-Rezeptoren. Losartan und PD123319, AT1R und AT2R Antagonisten jeweils sättigen, dass ihre Zielrezeptoren werden in Konzentrationen zugegeben (10 &amp; mgr; M), um den Radioliganden von der Bindung an diese Rezeptoren zu verhindern bzw. zu beurteilen unspezifische Bindung und begrenzen spezifische, an den AT1-Rezeptor-Bindung. Die gewünschte Konzentration an 125 I-SI-Ang II für den Assay bestimmt wird , und die erforderliche Verdünnung der Stammlösung wird aus einer Tabelle des Radioisotops Abklingrate (siehe Protokoll Tabelle 3) ermittelt. Optimal eine Konzentration von Radioligand den K D annähert verwendet wird , die derzeit 50% der Rezeptoren besetzen würde. Da jedoch Radioliga kann teuer niedrigere Konzentrationen e sein.B. 10-20% der K D - Konzentration kann verwendet werden. Dies hat einen potentiellen Vorteil, das Signal-Rausch-Verhältnis zu erhöhen, indem nicht-spezifische Verringerung mehr als spezifische Bindungs ​​binden. Allerdings sind längere Belichtungszeiten erforderlich, um ein Bild der Bindung zu entwickeln. Wie oben (Abschnitt 3.4) festgestellt, ob der erhaltene Belichtungs über- oder unterbelichtet ist, können die Objektträger in einen neuen Film für eine kürzere und / oder längere Zeit zu erreichen, um die gewünschte Belichtung erneut ausgesetzt werden. Densitometrische Bildanalyse kann durch ein proprietäres Bilderzeugungssystem durchgeführt werden, der eine umfangreiche Kompendium der Anwendungen für die Autoradiographie sowie andere Anwendungen. Kalibrierungsstandards sind in fmol / g nasses Gewebe Gewicht (ein spezifisches Gewicht von einer für das Gewebe unter der Annahme). Jede Standard-Set zusammen mit einem Hintergrund wird eine Standardkurve zu erzeugen. Es gibt mehrere Kurvenanpassung Algorithmen mit und ohne Gewichtung zur Verfügung um eine Standardkurve aus der relativen optometrischer d zu erzeugen,ichte (ROD) Werte für die verschiedenen Kalibrierungsstandards. bietet keine relativen Fehlerwerte für die verschiedenen Standardkurven Auswahl der Kurve, die am besten die Daten repräsentiert wird empirisch als die Subroutine zur Kurvenanpassung durchgeführt. Bei UOVs bis ~ 0,6, ist die Standardkurve pseudolinear. Jedoch beginnt die Folie über diesen Punkt hinaus zu sättigen, eine Kurve bilden, die um 0,8 bis 0,9 Einheiten ROD Asymptoten. Wenn die Standards, die die Proben über 0,9 ROD Einheiten Klammerung, wird empfohlen, den Film für eine kürzere Zeitperiode erneut zu belichten zuverlässigere Werte fmol / g Bindung der Proben näher zu dem pseudolinear Bereich des Standards zu erhalten, Kurve. Werte in dieser Extrem der Standardkurve abgeleitet wird für wesentlich größere Unterschiede in Radioligand-Bindungs ​​in kleine Unterschiede in ROD führen. Daraus ergibt sich die Möglichkeit, Änderungen in Bindung sinkt zu erfassen, wie der Film seinen Sättigungspunkt nähert. Bei Messungen der spezifischen Regionen,empfohlenen Maßnahmen sind &quot;Dichte&quot; in fmol / g, &#39;Scan - Bereich &quot;in Pixeln und&#39; Total Zielgebiet &#39;in Pixel (Abbildung 9). Es ist wichtig , einen Schwellwert so nahe wie möglich bei Null (Abbildung 10) , weil Schwankungen der Filmdichte oder der beliebigen Aspekt der Standardkurve aus den Kalibrierungsstandards abgeleitet setzen manchmal Werte geben kann kleiner als Null ist . Wenn solche Werte für alle Pixel in der Scanbereich gemittelt würde es einen künstlich niedrigen Wert abzuleiten. Die Kriterien, Bereiche zu identifizieren, mit der Bindung kann sehr subjektiv sein, so ist es am besten, die Kontrolle und die experimentellen Gehirn so viel wie möglich zu eng koppeln die Häufigkeit von subjektiven Fehler zu reduzieren. Eine weitere Herausforderung besteht darin, zu entscheiden, wie viele Abschnitte im Durchschnitt eine letzte Lesung zu bekommen. Ein guter Indikator für die Abschnitte analysieren kann durch Anschluss an eine akzeptierte Rattenhirnatlas, zusammen mit den gefärbten Histologiepräparaten bestimmt werden. Die Größe des Abtastbereichs kann auch eine sein,Problem. Um zu kompensieren, kann eine Vorlage erstellt werden, für jede beliebige Größe Unstimmigkeiten zu korrigieren. Die Behandlung der Teile kann auch einen Bereich der Struktur beeinflussen, die hohe Bindungs ​​hat und während der Analyse berücksichtigt werden. Dies erfordert eine alternative Nutzung des &quot;Thresholding&quot; Werkzeug im proprietären Abbildungssystem mit einem Dichteumfang von über einen beliebigen Wert zu setzen, um die anatomischen Merkmale des Gehirns Region darstellen wird innerhalb eines Sampling-Tool wie paraventricularis Kern des Hypothalamus abgetastet dass umfasst die Region von Interesse (Abbildung 11, Panel C). Es ist auch möglich, die Flächenmessung in die Bestimmung der Menge der Bindung aufzunehmen. Dies kann durch Multiplizieren des Wertes für den spezifischen Bindungs ​​mal der Anzahl von Pixeln durchgeführt werden, die gemessen wurden. Pixel kann durch die Abbildung ein Lineal in zwei Ebenen oder ein Rechteck mit bekannten Abmessungen in metrische Einheiten umgewandelt werden. Die Anzahl der Pixel, die auf die entsprechenLänge oder Fläche des Rechtecks ​​kann dann in metrischen Einheiten ausgedrückt werden. Bei 2.400 dpi Auflösung, ~ 9.000 Pixel = 1 mm 2 in unserem System. Obwohl die Verwendung von radioaktiven Liganden ist nicht mehr eine weit verbreitete Technik; es ist eine der wenigen Möglichkeiten, um die physikalische Verteilung der Rezeptoren zu visualisieren in das Gewebe selbst als funktionelle (binden kann, seine angeborene Ligand) Proben. Zusätzlich kann es die Anzahl der Rezeptoren Quantifizieren Auswertung von Änderungen der funktionellen Rezeptor - Expression zwischen den Behandlungsgruppen, zwischen verschiedenen Gehirnregionen oder andere Strukturen, zwischen verschiedenen Stämmen von Tieren oder Tieren unterschiedlichen Alters zu ermöglichen usw. Alternative Verfahren zur Verfügung zu charakterisieren neuroanatomische Aspekte des AT 1 Rezeptorexpression, jedoch haben sie begrenztem Wert. In - situ - Hybridisierung von mRNA für AT 1 Rezeptoren entspricht nicht immer mit AT 1 Rezeptorexpression oder Verteilung in derGehirn. Während immunologischen Techniken Unterschiede in Rezeptorexpression approximieren kann auf die Intensität der Färbung von Gewebeschnitten basiert, ist es nicht möglich, eine Standardkurve für die Färbung zu erzeugen, für eine numerische Bestimmung der Rezeptor-Expression zu ermöglichen. Rezeptor-Autoradiographie liefert auch einen Grad an Spezifität für Rezeptoren (oder andere Ziele, die spezifisch Radioliganden binden), die keine immunologischen Techniken gewährleistet werden kann. Im Jahr 2009 wurden eine Reihe von Artikeln 37-43 veröffentlicht, die die Gültigkeit von 49 Antikörper in Frage gestellt , die 18 verschiedene G - Protein-gekoppelten Rezeptoren und einen transient receptor potential (TRP) Kanal zu beurteilen , werden verwendet. Im Wesentlichen markierte Antikörper identische Banden auf Western-Blots von Wildtyp und Knockout-Mäuse für die Rezeptoren in Frage. Anschließend wurden verschiedene Gruppen ähnliche Beobachtungen AT 1 und AT 2 - Rezeptor - Antikörper 44-49 im Handel erhältlich unter Verwendung gemacht. Die Verwendung eines bacterial künstlichen Chromosoms , die ein Reportermolekül erzeugt, beispielsweise grün fluoreszierendes Protein, angetrieben durch den AT 1 - Promotor ist ein indirektes Mittel , um die Anwesenheit oder Abwesenheit von AT - 1 - Rezeptor-exprimierenden Zellen in Maus - Bestimmung (aber nicht Ratte) Gehirnen basierend auf ihrer mit ein funktionelles AT 1 -Rezeptor - Promotor 50. Es ist möglich , &quot;positive cells&quot; in mikroskopisch identifiziert Hirnregionen zu zählen, nicht jedoch Änderungen in der Intensität der Expression des AT 1 -Rezeptor in diesen Regionen zu quantifizieren. So zu diesem Zeitpunkt die einzigen validierten Techniken, die direkt sind Ang II-Rezeptor-Expression messen Radioligand Bindungsmethoden zur Verfügung. Und wenn anatomische Auflösung von funktionellen AT 1 Rezeptorprotein auf einer mikroskopischen Ebene erforderlich ist, Rezeptor - Autoradiographie ist die einzige Technik für eine solche direkte Messung. Rezeptor-Autoradiographie ist nicht ohne Einschränkungen. Der große concern ist, dass die Anforderungen erfüllt werden radioaktive Stoffe in einer Forschungseinrichtung zu verwenden. Es ist notwendig, ein Strahlungssicherheitsprogramm mit strengen Richtlinien an Ort und Stelle, um die Sicherheit von Forschern, die mit radioaktiven Stoffen und die sichere Anordnung der radioaktiven Materialien arbeiten zu gewährleisten. Dies eskaliert die Kosten der Forschung unter Verwendung von radioaktivem Material zu einem Punkt, dass ihre Verwendung in vielen Forschungs Einstellungen ausschließt. Zusätzlich können die Kosten für die Radioliganden erheblich sein. Somit wird ein Experiment Rezeptor-Autoradiographie, in dem eine große Anzahl von Objektträger angebrachten Gewebeschnitten in Behältern von Radioligand inkubiert werden können Hunderte verwenden, wenn nicht Tausende von Dollar an Radioligand. Eine weitere Einschränkung besteht darin, dass Gewebe vor gefroren werden muss auf einem Kryostat dem Schneiden für einen Zeitraum gelagert und schnell ausgespült und getrocknet nach Inkubation mit Radioliganden, von denen alle die Fähigkeit der Rezeptoren oder Protein von Interesse beeinträchtigt die Radioligand-Bindung . Für Liganden, die eine schnelle Arschereinigung / Dissoziationskinetik, kann es nicht möglich sein, die Bindung des Radioliganden an den Rezeptor während der Zeit wegzuspülen unspezifisch gebundene Radioligand erforderlich beizubehalten. Auch bei geringen Mengen an Radioligand lange Zeiträume Filmbelichtungs Bindung - einem Monat oder mehr - erforderlich sein, bevor eine meßbare Bild auf dem Film bilden kann. Eine weitere Herausforderung ist, dass die Zugabe von Jod-125 an einen Liganden die Fähigkeit des Liganden an seinen Zielrezeptor oder Protein zu binden, beeinträchtigen kann aufgrund sterischer Hinderung. Die Verwendung eines kleineren Moleküls, beispielsweise Tritium (3 H) beseitigt das Problem der sterischen Hinderung, aber Tritium hat eine solche niedrige Energie und niedrige spezifische Aktivität (bezogen auf Jod-125) , dass es extrem schwierig ist , ein Filmbild für die meisten zu erzeugen , Rezeptorpopulationen. Angesichts dieser Probleme gibt es viele Situationen, in denen Rezeptor-Autoradiographie nicht in der Lage ist, Rezeptoren oder andere molekulare Strukturen von Interesse zu identifizieren. Trotz seiner limitations, Rezeptor - Autoradiographie spezifische Strukturen innerhalb eines Gewebes zu identifizieren, beispielsweise Hirnregionen in Reaktion auf experimentellen Variablen verändert im Vergleich zu einem normalen Kontroll Gehirn. Dieses Wissen kann helfen , die Rolle des AT 1 R für Ang II oder einem anderen Rezeptor oder Enzyme in der Pathologie der Krankheit zu bestimmen. Dieses Wissen hat wertvolle pharmakologische Auswirkungen, da es Bereiche für mögliche Therapien Ziel angibt.

Kardiovaskuläre Erkrankungen weiterhin die häufigste Ursache für Tod und Behinderung in den Vereinigten Staaten zu sein, im Jahr 2011 1 mehr als 30% der Todesfälle in den USA verursacht. Aus den jüngsten Statistiken von der American Heart Association zeigen , dass mehr als eine Person in drei hat ein oder mehr Art von kardiovaskulären Erkrankungen. Kardiovaskuläre Forschung weiterhin Fortschritte gegen das Verständnis dieser Krankheit zu machen, aber als Generationen beginnen immer älter es ist zwingend notwendig, diese Bemühungen fortzusetzen. Das Renin-Angiotensin - System (RAS) spielt eine zentrale Rolle bei der Regulation des kardiovaskulären Systems in erster Linie von Atherosklerose, Entzündung, systemische Vasokonstriktion, und die Aktivierung des sympathischen Nervensystems (Figur 1) 2-8 fördern. Der RAS ist ein Hormonsystem, das aktiviert wird, wenn juxtaglomerulären Zellen der Niere in den Blutstrom Renin in Reaktion absondern, um Blutdruck verringert, erhöht sympathetic Stimulation oder verminderte Natriumfluss durch die Macula densa. Renin-Angiotensinogen metabolisiert (in der Leber synthetisiert) Angiotensin I zu bilden (Ang I). Ang I wird dann durch das Angiotensin-Converting-Enzym (ACE), ein Ektoenzym auf der luminalen Seite des vaskulären endothelialen Zellen metabolisiert, hauptsächlich in den Lungen und Nieren, Angiotensin II zu bilden (Ang II), das Haupt Effektor Peptid der RAS. Ang II ist in der Lage aktivierenden zwei Rezeptorsubtypen; der Typ 1 - Rezeptor (AT 1 R) und der Typ - 2 - Rezeptor (AT 2 R), die beide die das kardiovaskuläre System zu regulieren, beibehalten Flüssigkeits- und Elektrolyt Homöostase und sind nun die kognitive Funktion zu beeinträchtigen , und neurodegenerative Krankheitsprozessen 8,9 betrachtet. Eine lokale, gehirnspezifische RAS wird berichtet, Ang II unabhängig zu synthetisieren. Im Gehirn wird das Vorläuferprotein Angiotensinogen in Astroglia 10 durch ein Renin-ähnliches Enzym zu Ang I 3 möglicherweise Prorenin umgewandelt synthetisiert, gebunden an den Rezeptor Prorenin11 und überführt anschließend durch das Angiotensin-Converting - Enzym zu Ang II , die reichlich auf der extrazellulären Oberfläche von Neuronen im Gehirn 12 exprimiert wird. Diese intrabrain erzeugt Ang II ist der Agonist für das Gehirn AT 1 und AT 2 Rezeptoren , die von durch Blut übertragbaren Ang II isoliert sind. Während die AT 1 R eine wichtige physiologische Rolle spielt, ist es für seine pathophysiologischen Wirkungen im ganzen Körper besser bekannt ist , in erster Linie das Herz - Kreislauf - System und die Nieren (Abbildung 2) zu beeinflussen. Wenn Ang II an den R AT 1 bindet, verursacht es eine Vasokonstriktion; zunehmende Resistenz des Blutdrucks, um den Blutfluss und erhöht. Es fördert auch die Synthese und Sekretion von Aldosteron und Vasopressin, zu einer erhöhten Natrium- und Wasserretention führt. Diese Effekte können auch ischämischer Hirnschädigung und kognitiven Störungen induzieren und an der Parkinson-Krankheit, Alzheimer-Krankheit und Diabetes sowie kürzlich Lernen und Gedächtnis beeinflussen 13-15 identifiziert. Es gibt eine Rückkopplungsschleife in der RAS daß AT 1 R auf den juxtaglomerulären Zellen in der Niere inhibiert Renin - Sekretion. Interessanterweise im Allgemeinen die AT 2 R Gegen regelt die Wirkung von AT 1 R, was zu Vasodilatation, Neuritenwachstum, axonalen Regeneration, Anti-Proliferation und cerebroprotection unter vielen anderen 16-20. Der R AT 2 hat auch als Ziel für Anti-Bluthochdruck und vor kurzem, anti-Krebsmittel 21 identifiziert. Die Bestimmung der Lokalisierung und Dichte von Ang II-Rezeptoren in verschiedenen Geweben und wie werden sie durch verschiedene Behandlungen und Krankheitszuständen mit quantitativen densitometrischen Rezeptor Autoradiographie die Rolle spielt, die RAS in bestimmten Krankheiten aufdecken helfen beeinflusst. Rezeptor-Autoradiographie wurde seit über 30 Jahren als wirksames Verfahren zum Anzeigen der Anwesenheit von Angiotensin I verwendetI - Rezeptoren und andere Komponenten der RAS im Gehirn und anderen Geweben der Ratte, Maus, Meerschweinchen, Hund und Mensch unter einer Vielzahl von experimentellen Bedingungen 22-34. Die Bedeutung Ang II - Rezeptoren der Lokalisierung innerhalb des Gehirns ist , dass eine funktionelle Neuroanatomie zu den Aktionen der Ang II im Gehirn anwenden kann, beispielsweise auf das Vorhandensein von AT 1 R in paraventricularis Nukleus des Hypothalamus (PVN) eine Funktion von Ang II im Gehirn zu stimulieren Vasopressin, Oxytocin oder Corticotropin-Releasing-Hormon (CRH) Freisetzung oder Aktivierung des sympathischen Nervensystems. So Medikamente, die den AT 1 R blockieren könnten mit Überaktivität des Gehirns RAS assoziiert einige dieser PVN-vermittelte Effekte zu verringern. Unfertige legt nahe , dass die Verwendung von AT 1 R - Antagonisten posttraumatische Belastungsstörung (PTSD) -induzierte Freisetzung von CRH verringern und lindern die Symptome von PTSD (Hurt et al., Zur Veröffentlichung eingereicht). Der PVN, subfornicalOrgel (SFO) und Amygdala zur Regulierung der Homöostase, Appetit / Durst, Schlaf, Gedächtnis, emotionale Reaktionen bekannt, und sind die Zielgebiete dieser Demonstration Studie. Diese Regionen wurden durch Sammeln Koronalschnitte eines Gehirns auf Mikroskop-Objektträger untersucht, und Behandeln der Schnitte mit spezifischen Inhibitoren zusammen mit einem spezifischen Radioligand für Ang II-Rezeptoren. In dieser Studie wurden alle Materialien und Reagenzien zusammen mit vorgeschlagen Anbieter aufgelistet sind, wurde Jod-125 verwendet , um einen Ang II - Rezeptor - Antagonist radioaktiv zu markieren, Sarcosin 1, Isoleucin 8 Ang II (SI Ang II), die dann als mono 125 I gereinigt wurde -SI Ang II Methoden unter Verwendung von HPLC wie zuvor 35 beschrieben. Die Verwendung dieser hohen spezifischen Aktivität Radioligand ermöglicht die Visualisierung von Bereichen mit niedriger, mittlerer und hoher Rezeptordichte nach dem Belichten der radiomarkierten Abschnitte Röntgenfilm. Durch den Film mit Gehirn Paste Standards kalibriert bekannten Mengen von Jod-125 enthält, die spezifische MengeRezeptor Ang II in einem Bereich Bindung kann quantifiziert werden. In experimentellen Untersuchungen kann die Ang II-Rezeptor in den Gehirnen von Versuchspersonen Bindung in den Gehirnen von Kontrollpersonen, die verglichen werden. Dies kann angeben, ob die Wirkungen von Ang II in Reaktion auf eine genetisch bedingte Erkrankung verändert sind, phänotypische Abnormalität, Krankheitszustand oder medikamentöse Behandlung. Dieses Wissen kann dann zur Entwicklung von Therapien angewendet werden, Krankheiten, die mit Dysregulation des RAS verbunden zu behandeln. Alternative Techniken , die Rezeptor identifizieren Bindungsstellen, aber mit reduzierter anatomischen Auflösung sind Bindungsassays , die Gewebemembran - Zubereitungen verwenden aus Gewebehomogenisate abgeleitet, die mit dem Radioligand über einen Bereich von Konzentrationen Radioligand - Bindungsaffinität als die Dissoziationskonstante (K D zu bewerten inkubiert ) und die maximale Bindungskapazität (B max) des Gewebes von Interesse. Das hier beschriebene Protokoll kann in fünf Haupt Co gebrochen werdenmponents: Vorbereiten Gewebeschnitten für Receptor Autoradiographie; Rezeptor-Autoradiographie; Filmbelichtung und Entwicklung; Histologie; und Densitometrische Bildanalyse.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>500ml Plastic Beakers</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>02-591-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24mm x 60mm Coverslips</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22-050-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoradiography Imaging Film 24x30cm</td>
			<td>Carestream-Biomax MR Film</td>
			<td>891-2560</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacitracin (from Bacillus licheniformis)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B-0125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cardboard Sheet 8x11</td>
			<td>Crescent Illustration Board #201</td>
			<td>201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coplin Jars</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>E94</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Commercial hair dryers</td>
			<td>Conair</td>
			<td>Model SD6X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable Culture Tubes</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-961-26</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA (Disodium salt, Dihydrate)</td>
			<td>USB Corporation</td>
			<td>15-699</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>16-100-210&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formulary Substitute for D-19 Developer</td>
			<td>Photographers Formulary, Inc.&#160;</td>
			<td>01-0036</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glacial Acetic Acid</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>A38 SI-212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Histoprep / OCT</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>SH75-125D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Film Fixer</td>
			<td>Kodak</td>
			<td>5160320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Photo flo</td>
			<td>Kodak</td>
			<td>1464502</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Losartan</td>
			<td>Fisher/Tocris</td>
			<td>37-985-0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MCID&#8482; Core 7.0</td>
			<td>MCID</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>S271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peel-A-Way slide grips</td>
			<td>VWR</td>
			<td>48440-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Permount</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>SP15-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PD123319</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>13-615-0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Premium Charged Slides , Fine Ground Edge</td>
			<td>Premiere Microscope Slides</td>
			<td>9308W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>125I Ligands</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>NEX- 248</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>125SI-Ang II&#160;</td>
			<td>George Washington University</td>
			<td>Radioiodinated by Dr. Speth</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slide Mailers</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>HS15986</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Dibasic Phosphate Anhydrous (Na2PO4)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>RDCS0750500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Acetate (Anhydrous)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>BP333-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thionin&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>T409-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>X-Ray Casette (10 x 12)</td>
			<td>Spectronics Corporation</td>
			<td>Four Square</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene</td>
			<td>Fisher&#160;</td>
			<td>X3P-1GAL</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

receptor autoradiography protocol for the localized visualization of angiotensin ii receptors

Dieses Protokoll beschreibt Rezeptorbindungsmuster für Angiotensin II (Ang II) im Gehirn der Ratte ein Radioligand spezifisch für Ang II-Rezeptoren Rezeptor unter Verwendung von Autoradiographie-Mapping durchzuführen. Gewebeproben werden geerntet und bei -80 ° C gelagert. ist ein Kryostat das Gewebe (Gehirn) und Auftauen montieren die Schnitte auf geladene Objektträger zu koronalen Abschnitt verwendet. Die Objektträger angebrachten Gewebeschnitte werden in 125 I-SI-Ang II inkubiert Ang II - Rezeptoren radioaktiv zu markieren. Benachbarte Objektträger werden in zwei Gruppen unterteilt: &quot;unspezifische Bindung&quot; (NSP) in Gegenwart eines Rezeptor sättigenden Konzentration von nicht-radioaktiv markierten Ang II oder ein AT1 - Ang II - Rezeptor - Subtyp (AT 1 R) selektive Ang II - Rezeptor - Antagonist und ohne AT 1 R - Antagonisten &quot;Gesamtbindung&quot;. Einer sättigenden Konzentration von AT 2 Ang II - Rezeptor - Subtyp (AT 2 R) Antagonist (PD123319, 10 uM) ist auch in der incubatiauf Puffer 125 I-SI-Ang II - Bindung an den AT 1 R Subtyp zu begrenzen. Während eines 30 min Vorinkubation bei ~ 22 ° C, NSP Rutschen ausgesetzt sind 10 uM PD123319 und Losartan, während &quot;Gesamtbindung&quot; Dias 10 uM PD123319 ausgesetzt sind. Die Objektträger werden dann mit 125 I-SI-Ang II in Gegenwart von PD123319 für &quot;Gesamtbindung&quot; und PD123319 und Losartan für NSP in Assay - Puffer, gefolgt von mehreren &quot;wäscht&quot; in Puffer inkubiert und Wasser zu entfernen Salz und nicht spezifisch gebundene Radioligand. Die Folien werden mit Schlag-Trockner getrocknet und dann einer Autoradiographie Film belichtet eine spezielle Folie und Kassette. Der Film wird entwickelt und die Bilder werden in einen Computer gescannt für visuelle und quantitative Densitometrie ein proprietäres Bilderzeugungssystem und eine Tabelle verwendet wird. Ein zusätzlicher Satz von Dias werden für die histologische Vergleiche Thionin-gefärbt. Der Vorteil der Rezeptor-Autoradiographie unter Verwendung ist die Fähigkeit, zu visualisierenAng II - Rezeptoren in situ, in einem Abschnitt einer Gewebeprobe, und anatomisch den Bereich des Gewebes zu identifizieren , indem es zu einem benachbarten histologischen Bezugsabschnitt zu vergleichen.

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Receptor Autoradiography Protocol for the Localized Visualization of Angiotensin II Receptors

Here we present a protocol to describe the localization of angiotensin II Type 1 receptors in the rat brain by quantitative, densitometric, in vitro receptor autoradiography using an iodine-125 labeled analog of angiotensin II.

Rezeptor-Autoradiographie-Protokoll für die Lokalisierte Visualisierung von Angiotensin II-Rezeptoren

This protocol describes receptor binding patterns for Angiotensin II (Ang II) in the rat brain using a radioligand specific for Ang II receptors to ...

receptor-autoradiography-protocol-for-localized-visualization

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

17.8K Aufrufe.  Nova Southeastern University. Here we present a protocol to describe the localization of angiotensin II Type 1 receptors in the rat brain by quantitative, densitometric, in vitro receptor autoradiography using an iodine-125 labeled analog of angiotensin II. 

Serie: Receptor Autoradiography Protocol for the Localized Visualization of Angiotensin II Receptors

The NeuroStar TMS Device: Conducting the FDA Approved Protocol for Treatment of Depression

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic fields. These rapidly alternating fields induce electrical currents within localized, targeted regions of the cortex which are associated with various physiological and functional brain changes.1,2,3
In 2007, O'Reardon et al., utilizing the NeuroStar device, published the results of an industry-sponsored, multisite, randomized, sham-stimulation controlled clinical trial in which 301 patients with major depression, who had previously failed to respond to at least one adequate antidepressant treatment trial, underwent either active or sham TMS over the left dorsolateral prefrontal cortex (DLPFC). The patients, who were medication-free at the time of the study, received TMS five times per week over 4-6 weeks.4
The results demonstrated that a sub-population of patients (those who were relatively less resistant to medication, having failed not more than two good pharmacologic trials) showed a statistically significant improvement on the Montgomery-Asberg Depression Scale (MADRS), the Hamilton Depression Rating Scale (HAMD), and various other outcome measures. In October 2008, supported by these and other similar results5,6,7, Neuronetics obtained the first and only Food and Drug Administration (FDA) approval for the clinical treatment of a specific form of medication-refractory depression using a TMS Therapy device (FDA approval K061053).
In this paper, we will explore the specified FDA approved NeuroStar depression treatment protocol (to be administered only under prescription and by a licensed medical profession in either an in- or outpatient setting).

In this article, we examine the methodology and considerations relevant to the FDA approved depression treatment protocol using the Neuronetics NeuroStar TMS device.

Die Neurostar TMS Device: Die Durchführung der FDA genehmigten Protokoll für die Behandlung von Depression

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic ...

Forschung

Neurowissenschaften

Automated Interactive Video Playback for Studies of Animal Communication

Video playback is a widely-used technique for the controlled manipulation and presentation of visual signals in animal communication. In particular, parameter-based computer animation offers the opportunity to independently manipulate any number of behavioral, morphological, or spectral characteristics in the context of realistic, moving images of animals on screen. A major limitation of conventional playback, however, is that the visual stimulus lacks the ability to interact with the live animal. Borrowing from video-game technology, we have created an automated, interactive system for video playback that controls animations in response to real-time signals from a video tracking system. We demonstrated this method by conducting mate-choice trials on female swordtail fish, Xiphophorus birchmanni. Females were given a simultaneous choice between a courting male conspecific and a courting male heterospecific (X. malinche) on opposite sides of an aquarium. The virtual male stimulus was programmed to track the horizontal position of the female, as courting males do in the wild. Mate-choice trials on wild-caught X. birchmanni females were used to validate the prototype's ability to effectively generate a realistic visual stimulus.

Video playback is a widely used technique in animal behavior. We created and evaluated a program that applies rules-based, interactive playback of 3-D computer animations in response to real-time, automated data on subject behavior.

Automatisierte Interactive Video Playback für Studies of Animal Communication

Video playback is a widely-used technique for the controlled manipulation and presentation of visual signals in animal communication. In particular, ...

Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication

Development of neural circuitries and locomotion can be studied using neonatal rodent spinal cord central pattern generator (CPG) behavior. We demonstrate a method to fabricate suction electrodes that are used to examine CPG activity, or fictive locomotion, in dissected rodent spinal cords. The rodent spinal cords are placed in artificial cerebrospinal fluid and the ventral roots are drawn into the suction electrode. The electrode is constructed by modifying a commercially available suction electrode. A heavier silver wire is used instead of the standard wire given by the commercially available electrode. The glass tip on the commercial electrode is replaced with a plastic tip for increased durability. We prepare hand drawn electrodes and electrodes made from specific sizes of tubing, allowing consistency and reproducibility. Data is collected using an amplifier and neurogram acquisition software. Recordings are performed on an air table within a Faraday cage to prevent mechanical and electrical interference, respectively.

A demonstration of the fabrication and use of an extracellular suction electrode used to measure electrophysiological recordings of neonatal rodent spinal cords in vitro

Spinal Cord Elektrophysiologie II: Extrazelluläre Saugelektrode Fabrication

Development of neural circuitries and locomotion can be studied using neonatal rodent spinal cord central pattern generator (CPG) behavior. We demonstrate ...

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other insects proprioception is provided by specialized sensory organs termed chordotonal organs (ChOs) 2. Like many other organs in Drosophila, ChOs develop twice during the life cycle of the fly. First, the larval ChOs develop during embryogenesis. Then, the adult ChOs start to develop in the larval imaginal discs and continue to differentiate during metamorphosis.
The development of larval ChOs during embryogenesis has been studied extensively 10,11,13,15,16. The centerpiece of each ChO is a sensory unit composed of a neuron and a scolopale cell. The sensory unit is stretched between two types of accessory cells that attach to the cuticle via specialized epidermal attachment cells 1,9,14. When a fly larva moves, the relative displacement of the epidermal attachment cells leads to stretching of the sensory unit and consequent opening of specific transient receptor potential vanilloid (TRPV) channels at the outer segment of the dendrite 8,12. The elicited signal is then transferred to the locomotor central pattern generator circuit in the central nervous system.
Multiple ChOs have been described in the adult fly 7. These are located near the joints of the adult fly appendages (legs, wings and halters) and in the thorax and abdomen. In addition, several hundreds of ChOs collectively form the Johnston's organ in the adult antenna that transduce acoustic to mechanical energy 3,5,17,4.
In contrast to the extensive knowledge about the development of ChOs in embryonic stages, very little is known about the morphology of these organs during larval stages. Moreover, with the exception of femoral ChOs 18 and Johnston's organ, our knowledge about the development and structure of ChOs in the adult fly is very fragmentary.
Here we describe a method for staining and visualizing ChOs in third instar larvae and pupae. This method can be applied together with genetic tools to better characterize the morphology and understand the development of the various ChOs in the fly.

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

A method to immunostain and visualize chordotonal organs in larvae and pupae of Drosophila melanogaster is described.

Visualisierung von Propriozeptoren in<em&gt; Drosophila</em&gt; Larven und Puppen

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

Whole Mount Immunolabeling of Olfactory Receptor Neurons in the Drosophila Antenna

Odorant molecules bind to their target receptors in a precise and coordinated manner. Each receptor recognizes a specific signal and relays this information to the brain. As such, determining how olfactory information is transferred to the brain, modifying both perception and behavior, merits investigation. Interestingly, there is emerging evidence that cellular transduction and transcriptional factors are involved in the diversification of olfactory receptor neuron. Here we provide a robust whole mount immunological labeling method to assay in vivo olfactory receptor neuron organization. Using this method, we identified all olfactory receptor neurons with anti-ELAV antibody, a known pan-neural marker and Or49a-mCD8::GFP, an olfactory receptor neuron specifically expressed in Nba neuron using anti-GFP antibody.

Whole Mount Immunolabeling of Olfactory Receptor Neurons in the Drosophila Antenna

Herein we describe the process of whole mount immunostaining of Drosophila antennae, which enables us to better understand the molecular mechanisms involved in the diversification of olfactory receptor neurons (ORN)s.

Ganze Berge Immunmarkierung der olfaktorischen Rezeptorneuronen in der<em&gt; Drosophila</em&gt; Antennen

Odorant molecules bind to their target receptors in a precise and coordinated manner. Each receptor recognizes a specific signal and relays this ...

High-throughput Analysis of Mammalian Olfactory Receptors: Measurement of Receptor Activation via Luciferase Activity

Odorants create unique and overlapping patterns of olfactory receptor activation, allowing a family of approximately 1,000 murine and 400 human receptors to recognize thousands of odorants. Odorant ligands have been published for fewer than 6% of human receptors1-11. This lack of data is due in part to difficulties functionally expressing these receptors in heterologous systems. Here, we describe a method for expressing the majority of the olfactory receptor family in Hana3A cells, followed by high-throughput assessment of olfactory receptor activation using a luciferase reporter assay. This assay can be used to (1) screen panels of odorants against panels of olfactory receptors; (2) confirm odorant/receptor interaction via dose response curves; and (3) compare receptor activation levels among receptor variants. In our sample data, 328 olfactory receptors were screened against 26 odorants. Odorant/receptor pairs with varying response scores were selected and tested in dose response. These data indicate that a screen is an effective method to enrich for odorant/receptor pairs that will pass a dose response experiment, i.e. receptors that have a bona fide response to an odorant. Therefore, this high-throughput luciferase assay is an effective method to characterize olfactory receptors&#8212;an essential step toward a model of odor coding in the mammalian olfactory system.

Olfactory receptor activation patterns encode odor identity, but the lack of published data identifying odorant ligands for mammalian olfactory receptors hinders the development of a comprehensive model of odor coding. This protocol describes a method to facilitate high-throughput identification of olfactory receptor ligands and quantification of receptor activation.

Hochdurchsatz-Analyse von Säugetiergeruchsrezeptoren: Die Messung der Rezeptoraktivierung über Luciferaseaktivität

Odorants create unique and overlapping patterns of olfactory receptor activation, allowing a family of approximately 1,000 murine and 400 human receptors ...

Direct Visualization of the Murine Dorsal Cochlear Nucleus for Optogenetic Stimulation of the Auditory Pathway

Investigation into the use of virus-mediated gene transfer to arrest or reverse hearing loss has largely been relegated to the peripheral auditory system. Few studies have examined gene transfer to the central auditory system. The dorsal cochlear nucleus (DCN) of the brainstem, which contains second order neurons of the auditory pathway, is a potential site for gene transfer. In this protocol, a technique for direct and maximal exposure of the murine DCN via a posterior fossa approach is demonstrated. This approach allows for either acute or survival surgery. Following direct visualization of the DCN, a host of experiments are possible, including injection of opsins into the cochlear nucleus and subsequent stimulation by an optical fiber coupled to a blue light laser.&#160;Other neurophysiology experiments, such as electrical stimulation and neural injector tracings are also feasible.&#160;The level of visualization and the duration of stimulation achievable make this approach applicable to a wide range of experiments.

The goal of this protocol is to outline a surgical approach to provide direct access to the dorsal cochlear nucleus in a murine model.

Direkte Visualisierung der Murine Rücken Cochlear Nucleus für optogenetische Stimulation der Hörbahn

Investigation into the use of virus-mediated gene transfer to arrest or reverse hearing loss has largely been relegated to the peripheral auditory system. ...

Protocol for Isolating the Mouse Circle of Willis

The cerebral arterial circle (circulus arteriosus cerebri) or circle of Willis (CoW) is a circulatory anastomosis surrounding the optic chiasma and hypothalamus that supplies blood to the brain and surrounding structures. It has been implicated in several cerebrovascular disorders, including cerebral amyloid angiopathy (CAA)-associated vasculopathies, intracranial atherosclerosis and intracranial aneurysms. Studies of the molecular mechanisms underlying these diseases for the identification of novel drug targets for their prevention require animal models. Some of these models may be transgenic, whereas others will involve isolation of the cerebro-vasculature, including the CoW.The method described here is suitable for CoW isolation in any mouse lineage and has considerable potential for screening (expression of genes, protein production, posttranslational protein modifications, secretome analysis, etc.) studies on the large vessels of the mouse cerebro-vasculature. It can also be used for ex vivo studies, by adapting the organ bath system developed for isolated mouse olfactory arteries.

We describe here a reproducible protocol for isolating the mouse circle of Willis.

Protokoll für die Maus Kreis von Willis Trenn

The cerebral arterial circle (circulus arteriosus cerebri) or circle of Willis (CoW) is a circulatory anastomosis surrounding the optic chiasma and ...

In-depth Physiological Analysis of Defined Cell Populations in Acute Tissue Slices of the Mouse Vomeronasal Organ

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory neurons (VSNs) express a specific type of G protein-coupled receptor (GPCR) from at least three different chemoreceptor gene families allowing sensitive and specific detection of chemosensory cues. These families comprise the V1r and V2r gene families as well as the formyl peptide receptor (FPR)-related sequence (Fpr-rs) family of putative chemoreceptor genes. In order to understand the physiology of vomeronasal receptor-ligand interactions and downstream signaling, it is essential to identify the biophysical properties inherent to each specific class of VSNs.
The physiological approach described here allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons using a transgenic mouse line (Fpr-rs3-i-Venus). The use of this protocol, however, is not restricted to this specific line and thus can easily be extended to other genetically modified lines or wild type animals.

Here, we describe a physiological approach that allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons in acute coronal tissue slices of the mouse vomeronasal organ using whole-cell patch-clamp recordings.

In eingehenden Physiologische Analyse definierter Zellpopulationen bei der akuten Gewebeschnitten der Maus Vomeronasalorgans

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

Eine einfache Ein-Schritt-Dissection-Protokoll für Whole-mount Vorbereitung von Adult<em&gt; Drosophila</em&gt; Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...