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Hier zeigen wir, wie man ein kostengünstiges Volt-Amperemeter mit programmierbarer Ausgangsfrequenz aufstellt, das mit handelsüblichen Essstäbchenelektroden für transepitheliale/endotheliale elektrische Widerstandsmessungen verwendet werden kann.
Transepitheliale/endotheliale elektrische Beständigkeit (TEER) wird seit den 1980er Jahren verwendet, um die Konfluenz und Durchlässigkeit von In-vitro-Barrieremodellsystemen zu bestimmen. In den meisten Fällen werden Essstäbchenelektroden verwendet, um die elektrische Impedanz zwischen dem oberen und unteren Fach eines Zellkulturfiltereinsatzsystems zu bestimmen, das zelluläre Monolayer enthält. Die Filtermembran ermöglicht es den Zellen, durch den Bau enger Knoten zu haften, zu polarisieren und zu interagieren. Diese Technik wurde mit einer Vielzahl von verschiedenen Zelllinien beschrieben (z. B. Zellen der Blut-Hirn-Schranke, Blut-Zerebrospinal-Flüssigkeitsbarriere, oder Magen-Darm-und Lungentrakt). TEER Messgeräte können leicht von verschiedenen Laborgerätelieferanten bezogen werden. Es gibt jedoch kostengünstigere und anpassbare Lösungen, die sich vorstellen können, wenn ein geeignetes Voltammeter selbst montiert wird. Das übergeordnete Ziel dieser Publikation ist die Einrichtung eines zuverlässigen Gerätes mit programmierbarer Ausgangsfrequenz, das mit handelsüblichen Essstäbchenelektroden für die TEER-Messung verwendet werden kann.
Epithel- und Endothelzellen fungieren als zelluläre Grenzen, die die apikalen und basolateralen Seiten des Körpers trennen. Wenn sie durch enge Knoten verbunden sind, wird die passive Substanzdiffusion durch die parazellulären Räume eingeschränkt1, was zur Bildung einer selektiv durchlässigen Barriere führt. Mehrere künstliche Barrieresysteme wurden2 mit mikrovaskulären Endothelzellen (HBMEC, Blut-Hirn-Schranke3,4,5,6,7), Aderhautplexus entwickelt Epithelzellen (HIBCPP/PCPEC, Blut-Zerebrospinalflüssigkeitsbarriere8,9,10,11,12,13,14), kolorektalen Adenokarzinomzellen (Caco-2, Gastrointestinale Modelle15), oder Atemwegs-/Alveolarzelllinien (Lungenmodelle16,17). Diese Systeme bestehen in der Regel aus Zellen, die in einer Monoschicht auf durchlässigen Membranen (d. h. Filtereinsatzsystemen) angebaut werden, um den Zugang zu den apikalen und basolateralen Seiten zu ermöglichen. Es ist wichtig, dass die Integrität des Modellsystems den in vivo-Bedingungen entspricht. Daher wurden verschiedene Techniken entwickelt, um die Barrierefunktion zu analysieren, indem parazelluläre Diffusion von Tracerverbindungen über die Zellschicht gemessen wird. Zu diesen Stoffen gehören radioaktiv markierte Saccharose, farbstoffmarkiertes Albumin, FITC-markiertes Inulin oder mit Farbstoff gekennzeichnetes Dextrans2. Chemische Farbstoffe können jedoch Zellen für weitere Experimente unbrauchbar machen. Zur Nichtinvasiven Überwachung von Barrieresystemen kann die Messung des transepitheliaalen/transendotheliaalen elektrischen Widerstands (TEER) über eine zelluläre Monoschicht2,18,19verwendet werden. Da bipolare Elektrodensysteme durch die Elektrodenpolarisationsimpedanz an der Elektroden-Elektrolyt-Schnittstelle beeinflusst werden, werden tetrapolare Messungen in der Regel verwendet, um diese Einschränkung zu überwinden20. Die Unterlagetechnik ist eine vierterminale Sensorik (4T), die erstmals 1861 von William Thomson (Lord Kelvin)21beschrieben wurde. Kurz gesagt, wird der Strom durch ein Paar stromtragender Elektroden injiziert, während ein zweites Paar spannungsempfindlicher Elektroden verwendet wird, um den Spannungsabfall20zu messen. Heute bestehen sogenannte Essstäbchenelektroden aus einem Paar Doppelelektroden, die jeweils ein Silber/Silberchlorid-Pellet zur Spannungsmessung und eine Silberelektrode zum Passieren des Stroms2enthalten. Die elektrische Impedanz wird zwischen dem apikalen und dem basolateralen Fach mit der Zellschicht dazwischen gemessen (Abbildung 1). An den äußeren Elektroden wird ein Rechtecksignal mit einer Frequenz von typischerweise 12,5 Hz aufgebracht und der resultierende Wechselstrom (AC) gemessen. Zusätzlich wird der potenzielle Tropfen über die Zellschicht durch das zweite (innere) Elektrodenpaar gemessen. Die elektrische Impedanz wird dann nach Ohms Gesetz berechnet. TEER-Werte werden durch Multiplikation der Impedanz und der Zellschichtoberfläche normalisiert und werden in der Regel in der Zeit als cm2ausgedrückt.
Es gibt Systeme, in denen Zellen und Elektroden ausgefeilter angeordnet sind, aber auch auf dem 4T-Messprinzip basieren und mit den gleichen Messgeräten eingesetzt werden können. EndOhm-Systeme, bei denen der Filter eingesetzt wird, enthalten beispielsweise eine Kammer und eine Kappe mit einem Paar konzentrischer Elektroden mit der gleichen Struktur wie die Esssstiftelektrode. Die Form der Elektroden ermöglicht einen gleichmäßigeren Stromdichtefluss über die Membran, wodurch die Streuung zwischen den Messwerten reduziert wird. Noch komplexer (aber auch genauer) ist eine Ussing-Kammer, in der eine Zellschicht zwei Kammern trennt, die mit Ringers Lösung22gefüllt sind. Die Kammer selbst kann mit Sauerstoff,CO2oderN2vergast und gerührt oder mit Experimentellen Stoffen ergänzt werden. Wenn der Ionentransport über die Zellschicht erfolgt, kann ein potenzieller Unterschied durch zwei spannungsempfindliche Elektroden in der Nähe des Gewebes gemessen werden. Diese Spannung wird durch zwei stromführende Elektroden, die neben der Zellschicht platziert werden, aufgehoben. Der gemessene Strom gibt dann den Netzionentransport und der transepitheliale Widerstand, der die Barriereintegrität widerspiegelt, kann bestimmt werden22. TEER-Messungen können auch auf Body-on-a-Chip-Systeme angewendet werden, die Barrieregewebemodelle23,24darstellen. Diese Systeme imitieren in vivo Bedingungen der Zellen und bestehen oft aus mehreren Arten von Zellen, übereinander in Schichten gestapelt.
Im folgenden Protokoll wird erläutert, wie ein kostengünstiges und zuverlässiges Voltammeter mit programmierbarer Ausgangsfrequenz eingerichtet wird, das keine statistisch signifikanten Unterschiede in TEER im Vergleich zu handelsüblichen Messsystemen erzeugt.
1. Montage eines Grundvolt-Amperemeters zur TEER-Messung
2. Programmierung des Mikrocontrollers
3. Aufzeichnung von Spannungs-Oszillogrammen (optional)
4. Zellkultivierung und TEER-Messung
Um den Betrieb eines selbstmontierten Voltammeters mit seinem handelsüblichen Pendant zu vergleichen, wurde ein Spannungs-Oszillatometer beider Geräte aufgezeichnet.
Wie in Abbildung 2Adargestellt, erzeugte das Referenzinstrument ein Rechtecksignal mit einer Amplitude von 80 mV und einer Schwingungszeit von 80 ms, was einer Frequenz von 12,5 Hz entspricht, wenn es mit einem 1 k-Testwiderstand lastig arbeitet.
Im Gegensatz dazu schaltete der Mikrocontroller des selbstmontierten Gerätes die Versorgungsspannung auf ein Rechtecksignal mit einer Amplitude von 5 V(Abbildung 2B) um, wenn kein Vorwiderstand eingestellt war. Es zeigte sich, dass der resultierende Strom jede Barrierefunktion zerstört und nicht für Zellkulturexperimente anwendbar ist (Daten nicht dargestellt). Ein weiteres Problem ist, dass in diesem Setup ein 1 k' Testwiderstand eine Überlastung mit einem daraus resultierenden Spannungsabfall verursachte (Abbildung 2B). Zusätzlich betrug die effektive Schwingungszeit des Mikrocontrollers 60 ms (Frequenz = 16,7 Hz) und unterschied sich dadurch aufgrund der Ungenauigkeit des Zeitemitters von der programmierten Verzögerungszeit. Wenn ein 120 k-K-Präwiderstand installiert wurde, verringerte sich die Amplitude auf einen Wert von 40 mV, der für die Zellkultur geeignet war (Abbildung 2C). Wie im Oszillogramm zu sehen, wurde das Signal-Rausch-Verhältnis erheblich beeinträchtigt (Abbildung 2C), aber die Messungen wurden nicht spürbar beeinflusst.
Beide Geräte wurden verwendet, um die Impedanz einer künstlichen Blut-Zerebrospinalflüssigkeitsbarriere zu bestimmen (vereinfachter Schaltplan in Abbildung 2D). HIBCPP-Zellen wurden auf Zellkulturfiltereinsätzen kultiviert und TEER wurde über 6 Tage gemessen: beginnend einen Tag, bevor die Zellen in serumfreie Bedingungen (Tag -1) und bis zu 4 Tage nach dem Wechsel des Mediums (Tag 4) verschoben wurden. Alle Messungen wurden in Vierbeinern mit vier HIBCPP-Filtern durchgeführt, die auf die gleiche Weise vorbereitet wurden. Ähnliche Werte wurden für das Referenzinstrument und das selbstmontierte Voltammeter ermittelt (Abbildung 3). Die Messungen waren reproduzierbar, und die Standardabweichungen lagen im gleichen Bereich. Die TEER-Werte reichten von 20 bis 550 x cm 2. Mit 0,33cm2 Filtern entspricht dies einer absoluten Impedanz von 83 x 1.660 °C.
Abbildung 1: Layoutdiagramm eines Basis-Volt-Amperemeters für teER-Messung. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 2: Oszillogramme und Messaufbau. (A) Kommerziell erhältliche EVOM. (B) Selbstmontiertes Voltammeter ohne Vorwiderstand. (C) Selbstmontiertes Voltammeter mit 120 k Vorwiderstand. (D) Schaltplan der Messeinrichtung. Beachten Sie, dass DieC-Elektrode nur in den elektrischen Schaltkreisen auftritt, wenn bipolare Systeme verwendet werden. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 3: TEER-Messungen von HIBCPP-Zellschichten auf Zellkulturfiltereinsätzen vor dem Wechsel zu einem serumfreien Kulturmedium (Tag -1), am Tag des Umschaltens (Tag 0) und bis zu 4 Tage danach (Tage 1-4). Fehlerbalken zeigen die Standardabweichung der vier HIBCPP-Filter an, die auf die gleiche Weise vorbereitet wurden. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Ergänzende Codierungsdatei 1. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Codierungsdatei 2. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Codierungsdatei 3. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Bevor ein selbstgebautes Voltammeter in einer täglichen Routine verwendet werden kann, ist es wichtig, das Gerät auf die ordnungsgemäße Funktion zu überprüfen. In unserem Fall wurde eine Halbzeitschwingung von 40 ms (12,5 Hz) programmiert, aber die effektive Schwingungszeit betrug 60 ms (16,7 Hz). Diese Ungenauigkeit des Zeitemitters des Mikrocontrollers hatte keine nachweisbaren Auswirkungen auf TEER-Messungen. Es könnte am besten sein, die tatsächliche Frequenz mithilfe der Frequenzeinstellung eines der Multimeter zu bestimmen. Wenn eine Abweichung gefunden wird, kann der Quellcode entsprechend angepasst werden. Darüber hinaus wird dringend empfohlen zu prüfen, ob ein Testwiderstand oder andere definierte Setups korrekte und reproduzierbare Ergebnisse liefern. Wenn Sie mit künstlichen zellulären Barrieresystemen arbeiten, ist es vielleicht am besten, den Molekülfluss immer mit der Impedanzmessung zu korrelieren.
In diesem Fall wurde der aufgebrachte Strom mit einem 120 k- Vorwiderstand begrenzt. Unter der Annahme, dass die typischen TEER-Werte zwischen 100 und 2.000 ° liegen, kann der Spannungsabfall über die Zellschicht auf 4 bis 83 mV berechnet werden. Ein TEER von 1 k' wurde durch einen Testwiderstand simuliert und der resultierende potenzielle Tropfen wurde mit 40 mV bestätigt (Abbildung 2C).
Kommerziell erhältliche Geräte bieten oft einen Messbereich-Schalter, um den Vorwiderstand umzuschalten und so den Ausgangsstrom auf unterschiedliche Werte zu begrenzen. In diesem Fall ist es möglich, verschiedene Vorwiderstände zu installieren oder sogar den Widerstand durch ein Potentiometer zu ersetzen.
Das gezeigte Setup stellt eine kostengünstige Alternative zu handelsüblichen Instrumenten für die TEER-Messung dar. Werte, die mit dem selbstmontierten Voltammeter gemessen wurden, waren über einen weiten Bereich mit dem Referenzgerät vergleichbar. Dasselbe gilt für die Standardabweichungen. Das Rauschen im rechteckigen Wellensignal hatte keinen Einfluss auf die Messungen. Das Protokoll kann Wissenschaftler unterstützen, die durch begrenzte finanzielle Mittel eingeschränkt sind oder Vorexperimente zu niedrigen Kosten durchführen wollen.
Darüber hinaus kann der Mikrocontroller einfach auf verschiedene Ausgangsfrequenzen programmiert werden. Dies kann von Vorteil sein, da die scheinbare Impedanz ausR-Medium, RTEER, sowie der KapazitätC-Zellschicht26 besteht (Abbildung 2D). Zusätzlich trittC-Elektrode auf, wenn bipolare Systeme verwendet werden, während der Einfluss der Elektrodenpolarisationsimpedanz in tetrapolaren Systemen reduziert wird. Dies bedeutet, dass die gemessene Impedanz von RTEER bei niedrigen Frequenzen und, in bipolaren Systemen, von der Kapazität der Elektroden dominiert wird, während bei hohen Frequenzen die Gesamtimpedanz auf den Widerstand des Mediums26konvergiert. 27. Dazwischen wird die Impedanz durch dieC-Zellschichtbeeinflusst, die daher mittels elektrischer Impedanzspektroskopie28zugänglich ist.
Wir stellen zwei (ungetestete) Beispielcodes bereit, um eine Vorstellung davon zu geben, wie das Gerät für verschiedene Anwendungen optimiert oder neu programmiert werden könnte. Zunächst konnte eine sehr grundlegende Impedanzspektroskopie realisiert werden, indem die Ausgangsfrequenz in 20-Sekunden-Intervallen zwischen 12,5, 500 und 5000 Hz abwechselnd abwechselt (zusätzliche Codierungsdatei 2). In diesem Fall könnte eine tetrapolare20,28 oder bipolare27 Elektrode verwendet werden. Die angewandte Frequenz kann durch das eingebaute Multimeter (oder ein beliebiges Display oder eine LED, die mit dem Mikrocontroller verbunden ist) angezeigt werden. Zweitens könnte das Gerät verwendet werden, um die Leitfähigkeit von Puffern und Medien zu messen. Dies geschieht in der Regel mit tetrapolaren Elektroden mit hohen Frequenzen in einem Bereich von 1-110kHz. Der Code in der zusätzlichen Codierungsdatei 3 enthält keine Verzögerungszeit und erzeugte (mit unserem Gerät) eine Frequenz von ca. 70kHz.
Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen oder andere Interessenkonflikte.
Die Autoren danken Herman Liggesmeyer und Marvin Bende für ihre fachkundige Beratung in Elektrotechnik und Informatik.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
120 kOhm resistor | General (generic) equipment | ||
Banana plug cables | General (generic) equipment | ||
Cables | General (generic) equipment | ||
Chopstick electrode | Merck Millicell | MERSSTX01 | |
Chopstick electrode (alternative) | WPI World Precision Instruments | STX2 | |
Crimping tool | General tool | ||
Digispark / ATtiny85 | AZ-Delivery Vertriebs GmbH | Digispark Rev.3 Kickstarter | |
DMEM:F12 | Gibco (Thermo Fisher) | 31330038 | |
Fetal calf serum (FCS)/Fetal Bovine Serum (FBS) | Life Technologies | 10270106 | |
Filter inserts 3µm translucent | Greiner Bioone | 662631 | |
HIBCPP | Hiroshi Ishikawa / Horst Schroten | ||
Insulation stripper | General tool | ||
Luster terminal | General (generic) equipment | ||
Oscilloscope | HAMEG | Digital Storage Scope HM 208 | |
Plotter | PHILIPS | PM 8143 X-Y recorder | |
Software Arduino | https://www.arduino.cc | Arduino 1.8.9 | |
Soldering iron | General tool | ||
Soldering lugs | General (generic) equipment | ||
Telephone cable with RJ14 (6P4C) connector | General (generic) equipment | ||
Test resistor | Merck Millicell | MERSSTX04 | |
True-RMS multimeters | VOLTCRAFT | VC185 | |
USB charger | General (generic) equipment | ||
USB extension cord | General (generic) equipment | ||
Voltohmmeter for TEER measurement | WPI World Precision Instruments | EVOM | |
Voltohmmeter for TEER measurement (alternative) | Merck Millicell | ERS | |
Wire end ferrules | General (generic) equipment |
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