Rattenmodell der Leber Partition zuordnen und Pfortader Ligation inszenierten Hepatektomie (ALPPS) Verfahren

Induktion schnelle Leber Hypertrophie mit Leber-Partition zuordnen und Pfortader Ligatur für eine Hepatektomie bereitgestellt wurde (ALPPS) für die Resektion von borderline entfernbaren Lebertumoren vorgeschlagen. Dieses Modell kann schnelle Hypertrophie Mechanismen aufzuklären und ermöglicht die Prüfung von Betäubungsmitteln, die fördern oder blockieren die Beschleunigung der Regeneration.

Aktuelle klinische Daten unterstützen ein aggressives chirurgisches Vorgehen zu primären und metastatischen Tumoren der Leber. Für einige Indikationen wie kolorektalen Lebermetastasen die Menge des Lebergewebes zurückgelassen, nachdem Leber Resektion der wichtigste begrenzende Faktor Resectability der große oder mehrere Tumoren der Leber geworden ist. Eine minimale Menge an Funktionsgewebe ist erforderlich, um zu vermeiden, die schwere Komplikation des Post-Hepatektomie Leberversagen, die hohe Morbidität und Mortalität hat. Induktion Leber Wachstum des zukünftigen Überrestes vor Resektion hat mehr in der Leberchirurgie, entweder in Form der Pfortader Embolisation von interventionellen Radiologen oder in Form von Pfortader Ligatur mehrere Wochen vor der Resektion etabliert. Vor kurzem zeigte sich, dass die Leberregeneration ist umfangreicher und schneller, wenn die parenchymatösen Durchtrennung Pfortader Ligatur in einem ersten Schritt, und dann, nach nur einer Woche des Wartens, Resektion durchgeführt in einer zweiten Phase (Zuordnen von Leber Partition hinzugefügt wird und Pfortader Ligatur für bereitgestellt Hepatektomie = ALPPS). ALPPS ist schnell auf der ganzen Welt populär geworden, aber seine hohe Perioperative Mortalität kritisiert worden. Der Mechanismus der beschleunigten und umfangreiche Wachstum induziert durch dieses Verfahren ist nicht gut verstanden worden. Tiermodelle wurden entwickelt, um die physiologischen und molekularen Mechanismen der beschleunigten Leberregeneration in ALPPS zu erkunden. Dieses Protokoll stellt eine Rattenmodell, die mechanistische Erforschung der beschleunigte Regeneration ermöglicht.

Es begrenzt die Größe der Leber Überrest der Resectability von Tumoren der Leber. ¹ im Allgemeinen, wenn weniger als 25 % Leber Gewebe zurückbleibt, der Patient ist erhöhtes Risiko für Tod durch akutes Leberversagen aufgrund des Fehlens der metabolischen Funktion für den gesamten Organismus ("zu klein für die Größe-Syndrom"). ² diese Post-Hepatektomie Leberversagen ist die verheerendsten Komplikation nach der Leber Resektion. Daher haben Ärzte versucht, Leberregeneration vor der Resektion der Leber durch die Manipulation des Fluss der die Pfortader zu induzieren. ³ es wurde festgestellt, dass sobald die Pfortader verdeckt ist, der restliche Teil mit Pfortader Fluss beginnt mit einer langsamen Rate wachsen, und bis zu 60 % in der Größe dadurch kann. ⁴ chirurgische Ligatur⁵ oder interventionelle Pfortader Okklusion haben beide klinisch nachgewiesen. ⁴ die Zunahme Volumen und Funktion der Leber ist zuverlässig, aber die Wachstumsrate der Leber nach Portal Okklusion nur etwa ein Fünftel ist im Vergleich zum Wachstum der Leber Überrest nach teilweise Hepatektomie. ⁶

Die notwendige Zeit für die Leber zu wachsen ist Wochen bis Monate, obwohl die Leber mit einer viel schnelleren Rate nach der Resektion regenerieren kann. Die Leber ist das einzige Organ, das wächst wieder auf den normalen Betrieb nach Entfernen eines Teils davon. ⁷ eines neuartigen Verfahrens induzierende Leberregeneration in einem ähnlichen Tempo wie nach teilweiser Hepactectomy entwickelt wurde von einer Gruppe von Chirurgen, die entdeckt, dass das Hinzufügen einer Durchtrennung zwischen den verschlossenen und nicht verdeckt Teil der Leber Leber induziert auf die gleiche Wachstumsrate als Hypertrophie, nach der Resektion der Leber, aber vor der Resektion. ⁹ das Verfahren leitet schnelle Hypertrophie von 80 % innerhalb von einer Woche in Zukunft Leber Überrest, wodurch die Resektion des umfangreichen, primär inoperablen, Leber-Tumoren innerhalb einer Woche. Die Prozedur aufgerufen wurde "Associating Partition Leber und Pfortader Ligatur für bereitgestellt Hepatektomie = ALPPS" und wurde schnell populär in der ganzen Welt. ¹⁰ mehrere Berichte unterstützt eine Erweiterung der Resectability von borderline entfernbaren Lebertumoren erreicht durch die neue Technik,¹¹ während der komplexen chirurgische Eingriff auch für seine hohe Komplikationsrate kritisiert wurde. ^{12 , 13}

Die Entwicklung von einem Nagetier und auch große Tiermodellen der langsamen und schnellen Hypertrophie hat seit der Veröffentlichung des ALPPS 2012 erlauben eine bessere histologische Charakterisierung und Verständnis der Mechanismen und Drogenwirkungen auf Test versucht wurde die unterschiedliche Wachstumsraten des Lebergewebes bei Tieren. Die erste Tiermodell entwickelt wurde einem Rattenmodell. In diesem Modell schnelle Hypertrophie nach parenchymatösen Durchtrennung zwischen dem rechten und den linken Teil der mittlere Lappen beschleunigt Regeneration des Rechts mittlere Lappens. ¹⁴ ein anderes Modell wurde später in der Maus eingeführt. In diesem Modell wurde der linke seitliche Lappen reseziert und die Pfortader Zweige zu jeder Leberlappen mit Ausnahme der linke mittlere Lappen gebunden waren. ¹⁵ In der Zwischenzeit wurden große Tiermodellen der ALPPS bei Schweinen sowie beschrieben. ¹⁶

Für die Untersuchung der physiologischen Mechanismen wie Veränderungen der Strömung und Druck in der Pfortader, Durchblutung und Sauerstoffversorgung des Lebergewebes ist der Rattenmodell überlegen, das Modell der ALPPS bei Mäusen. Ein weiterer Vorteil der Ratte über das Mausmodell ist, dass in der Rattenmodell gibt es keine Notwendigkeit für eine Resektion des linken seitlichen Lappens,¹⁵ , die die Auswirkungen der Leber Resektion mit denen der ALPPS verunreinigen kann. Die Rattenmodell im Gegensatz verringert nicht die Leber Zellmasse. Ein Schwein-Modell nutzt den rechten hinteren Lappen als des wachsenden Lappens, aber die Schwein Leber ist stark gelappt. Daher ist es schwierig, eine Durchtrennung Flugzeug in die bereits dünne Gewebe-Brücke zwischen den rechten hinteren und der rechten vorderen Lappen zu erstellen. Im Gegensatz dazu der mittlere Lappen bei Ratten bestehen aus zwei Teilen, die separat durch eine Pfortader versorgt werden und ein Parenchym Durchtrennung Flugzeug kann einfach zwischen den beiden mit mikrochirurgischen Techniken erstellt werden. Die Verfügbarkeit/kleine Tier Computertomographie (CT) oder Magnet-Resonanz-Tomographie (MRT) ermöglicht die sehr genaue Quantifizierung der volumetrischen Wachstum zwischen Pfortader Ligatur allein und Pfortader Ligatur und die zusätzliche Durchtrennung, was wichtig ist für die Validierung von irgendwelchen schnellen Leber Hypertrophie.

Die hier vorgestellten Protokoll beschreibt die Operationstechnik und Verfahren für die volumetrische Validierung und physiologische Charakterisierung des Modells der langsamen und schnellen Hypertrophie nach Unterbindung der Pfortader und Pfortader Ligatur mit Durchtrennung, bzw. bei Ratten.

Alle Experimente in diesem Protokoll wurden genehmigt durch die Veterinärbehörden des Kantons Zürich, Schweiz (Nr. 60/2014). Darüber hinaus wurden alle experimentellen Schritte in strikter Übereinstimmung mit den Leitlinien für Experimente mit Tieren von der Schweizerischen Akademie der medizinischen Wissenschaften (SAMW) und Richtlinien von der Föderation der Europäischen Labor Tier Wissenschaft Verbände (FELASA) durchgeführt. .

1. Tierhaltung, OP-Geräte und Instrumente, Anästhesie

1. Halten Sie männliche Wistar-Ratten mit einem Gewicht von 250-300 g in belüfteten Käfigen unter Standardbedingungen Pathogen-freies in einem 12/12 h hell/dunkel-Zyklus. Den Tieren freien Zugang zu Nahrungsmitteln und Trinkwasser bei einer Umgebungstemperatur von 22 ± 1 ° C.
2. Induzieren Anästhesie in einer Box, wo Isofluran, mit 5 Vol-% für 30 geleert wird s (Abbildung 1A), gefolgt von einer Isofluran-Konzentration von 3 vol%, bis das Tier Tiefe Narkose ist. Bestätigen Sie das Niveau der Anästhesie reflexartig die Zehen-Prise.
3. Bieten Sie Analgesie subkutan mit Buprenorphin (0,01 mg/kg) während des chirurgischen Eingriffs, gefolgt von 0,02 mg/kg alle 12 Std. in der postoperativen Phase für 48 h angewendet.
4. Übertragen Sie das Tier zum Arbeitsplatz, wo sie spontan atmen sind, ein Gasgemisch aus 1,0-2,5 Vol % Isofluran in Sauerstoff ausgesetzt (Flow: 600 mL/min).
5. Schließen Sie die Augen des Tieres und verwenden Sie eine Salbe, um die Augen zu schützen. 5 mL Kochsalzlösung subkutan zu injizieren, die Hälfte davon auf jeder Seite des Bauches, gefolgt von 0,1 mg Atropin.
6. Operieren Sie mit einem Operationsmikroskop in einem Raum der Mikrochirurgie.
7. Halten Sie das Tier in volatilen Betäubung mit Hilfe einer Lüftung-Maske, bestehend aus einem Latex Membran (Abbildung 1 b), wodurch die Ratte Schnauze geschoben wird. Befestigen Sie die Enden mit Klebeband (Abbildung 1 b).
8. Legen Sie die chirurgischen Instrumente in sterilen Mode auf einem Beistelltisch: Kochsalzlösung und Betadine getränkte Schwämme (Abbildung 2A), abdominale Wand Retraktoren (Abb. 2 b) sowie 3-0 Nahtmaterial für das Einfahren der Bauchwand und Xiphoid, Schere, Adson Zangen, feinen Spitzen Mikrozangen gerade und gebogen und vorgeschnitten Seidenkrawatten 6-0 für die Ligatur Verfahren (Abbildung 2).
9. Verwenden Sie nicht kleben bipolare Mikrozangen für Durchtrennung der hepatischen Parenchym. Schließen Sie die Bauchdecke und Haut mit 3: 0 Seide Nähte mit SH-1 Nadeln und 5-0 Maxon (Abb. 2D). Verwenden Sie eine bipolaren Pinzetten für Blutstillung.

2. Beginn der Operation

1. Rasieren Sie den Bauch des Tieres mit einer kleinen Tier Haarschneider aus dem Xiphoid an den Genitalien mit einer 2-cm-Bereich seitlich der Mittellinie. Das Haar gründlich zu entfernen.
2. Diesem Bereich 3 Mal mit Betadine getränkte Schwämme zu desinfizieren.
3. Führen Sie eine Mittellinie Inzision mit einem Skalpell für die Haut, und verwenden Sie chirurgische Scheren, um den Bauch zu öffnen.
4. Zurückziehen der rechten und linken Bauchwand und Xiphoid mit 3: 0 seidenen Fäden (Abbildung 3A).
5. Zurückziehen Sie, Magen, Dickdarm und Dünndarm aus das Hepatoduodenal Ligament der Ratte mit selbstgebauten kleinen Draht Retraktoren (Abb. 3 b).

(3) Pfortader Ligation (PVL)

1. Zugriff auf die Pfortader und seine Äste durch seitliche Retraktion des Magens und des Dünndarms (Abb. 3 b).
2. Die Pfortader unverblümt durch das Bauchfell mit den Mikrozangen aufnehmen und langsam schälen es medial zu sezieren.
3. Sezieren die Pfortader Zweige (Abb. 3) in der folgenden Reihenfolge: (1) Recht posterior, (2) links lateral und linke mittlere Zweig zusammen, und (3) caudatus Zweig.
   1. Zuerst ziehen Sie das Bauchfell mit kleinen, nicht zu energischen Bewegungen zu vermeiden, reißen die kleinen arterielle Zweige, die Leber Lappen, die direkt unter die peritoneale Deckung ausgeführt.
   2. Sobald die wichtigsten Pfortader entblößt ist, umschließen die Zweige mit langsam nach vorne schieben und ausladenden Bewegungen und ziehen Sie 1 cm Stück 6-0 Seide um den jeweiligen Pfortader Ast binden und verbinden es.
4. Verbinden Sie den rechten hinteren Lappen Zweig. (Abbildung 3) Die technische Schwierigkeit des rechten hinteren Ast besteht in der Tatsache, die die Arterie an der rechten hinteren Lappen in der rechten hinteren Pfortader-Zweig ausgeführt wird.
   1. Ziehen Sie die Arterie cranially zusammen mit das Peritoneum, den rechten Pfortader Zweig mit der gebogenen Mikrozangen verfügbar zu machen.
   2. Verbinden Sie dem rechten hinteren Lappen Zweig mit der Pre-Cut 6-0 Seidenkrawatte. Der rechten hintere Lappen wird sichtlich blass, sobald die Pfortader ligiert ist.
   3. Vermeiden Sie Druck gegen Widerstand in den Kreisen um zu verhindern, reißen die Arterie oder der Pfortader. Im Falle von Blutungen, Druck für mindestens eine Minute mit einem sterilen Wattestäbchen und dann neu zu bewerten. Wenn Blutung nicht aufhört, das Tier zu opfern.
5. Verbinden Sie den linken seitlichen (LLL) und linke mittlere Lappen (LML) Niederlassungen. Diese Zweige haben einen gemeinsamen Stamm. (Abbildung 3). Die linke mittlere Lappen Filiale ergibt sich aus der Pfortader in das Parenchym der LLL.
   1. Verbinden Sie die Pfortader führt sowohl LLL, wie auch die Liebe mein Leben-Zweig zusammen mit der Pre-Cut 6-0 Seidenkrawatte.
   2. Vermeiden Sie Verletzungen der Arterien führt zu LLL und Liebe mein Leben, läuft innerhalb der peritonealen Schicht. Solange das Bauchfell wieder sorgfältig geschält ist, bleiben sie intakt. Die LLL und Liebe mein Leben drehen sichtbar blass sobald die Zweige ligiert werden.
6. Verbinden Sie den Lobus caudatus Zweig (Abbildung 3). Die Pfortader führt zu einer etwas separate caudatus Lappen bei Ratten startet von der Hauptader Portal nach distal und medial auf die Abnahme des Ortsverbandes rechten Lappen von der Hauptader Portal (nicht streng inferior bei Menschen oder größere Tiere wie).
   1. Sezieren Sie, und umschließen Sie es durch das Peritoneum plus Gallengang und Arterien von der Hauptader Portal anheben.
   2. Umschließen Sie caudatus Pfortader Zweig mit einem gebogenen Mikrozangen seitlich aus. Die zwei caudatus Lappen erbleichen sichtbar, sobald der Lobus caudatus Zweig mit 6-0 Seide ligiert ist.
7. Binden diese drei Zweige der Pfortader führt zu exklusiven Pfortader Durchblutung des Rechts mittlere Lappens (RML), die durch eine deutliche Trennlinie zwischen der rechten und linken mittleren Lappen sichtbar ist.

(4) Pfortader Ligation mit Durchtrennung (PVL + T)

1. Führen Sie die Durchtrennung entlang der Demarkationslinie zwischen RML und Liebe mein Leben nach PVL (Abbildung 3D).
2. Verwenden Sie eine nicht kleben bipolar silberne Zange mit einer sehr feinen neurochirurgischen Spitze, um das Lebergewebe erstellen einen 1 mm Kauterisation Streifen entlang der Demarkationslinie precauterize.
3. Mit einer Schere schneiden Sie vorsichtig das precauterized Gewebe. Es ist ziemlich schwierig, die Tiefe der die Durchtrennung richtig einschätzen zu können. Das Ziel ist es, so nah wie möglich, die untere Hohlvene verlaufenden intrahepatically in Ratten. Verletzung der Vena Cava wird durch umfangreiche Blutungen begleitet, kann in der Regel nicht gestoppt werden.
4. Im Falle einer Verletzung üben Sie sanften Druck mit einem Wattestäbchen, aber wenn die Blutung nicht innerhalb von ca. 3-4 min aufhört, Opfern Sie das Tier zu. Versuche an der Reparatur der Vena Cava mit Fäden sind in der Regel erfolglos gewesen. Ratten sind sehr empfindlich auf Luft-Embolie, die gelegentlich auftreten und zum Herzstillstand führen kann.

5. intraoperative Messung der Pfortader Druck und Volumenstrom

1. Bewerten Sie Pfortader Druck durch direkte Kanülierung mit einer G30-Nadel mit einem Druckwächter (Abbildung 4A) verbunden.
2. Verwendung die 2 mm Volumen-Durchfluss-Sonde seitlich platziert an der Flow-Gerät für die Direktmessung des Portals Volumenstrom über 2 min (Abbildung 4 b) angeschlossen. Nur Daten mit stabilen Messqualität wie auf dem Computer-Display angezeigt.
3. Bewerten Sie Pfortader Durchfluss und Druck separat nach der Gruppe von Schritten, die das jeweilige Verfahren, d.h. das Binden von drei Äste der Pfortader oder die aus den drei Niederlassungen der Pfortader binden plus durchführen die parenchymatösen Durchtrennung definieren zwischen der RML und die Liebe meines Lebens.

6. die letzten Schritte der Operation

1. Stellen Sie sicher, dass der Dünndarm in der Bauchhöhle vor Schließung richtig platziert ist.
2. Schließen Sie das Bauchfell und Bauchwand mit 3: 0 Seide Nähte mit SH-1 Nadeln.
3. Schließlich Naht der Haut mit Maxon 5-0.
4. Desinfizieren Sie die Haut wieder.
5. Wenden Sie erneut 5 mL Kochsalzlösung subkutan in das subkutane Gewebe seitlich auf den Bauch.

(7) Leber Volumetrie bei Ratten mit kleinen Tier CT

1. 24 h vor der ersten CT-Bildgebung injizieren 200 μL des Kontrastmittels in die Vene der Rute durch eine G26 intravenöse Katheter.
2. Verwenden Sie eine Mikro-CT, um die Ratten zu scannen. Legen Sie das Tier in eine Plexiglasbox induzieren Vollnarkose (zuerst Spülen mit 5 Vol-% für 30 s, gefolgt von einer Isofluran Konzentration von 2-3 vol%, bis das Tier in Narkose und in der gesamten Scannen über ein Schlauchsystem zu erhalten). Für optimale Bildqualität synchronisieren der CT-Scan mit der Atmung des Tieres.
3. Exportieren Sie die digitale Bildverarbeitung und Kommunikation in der Medizin (DICOM) Dateien und analysieren sie mit Hilfe der Public Domain imaging Plattform OsiriX 8.0. Verwenden Sie das Tool "geschlossenes Polygon" zeichnen die Lappen Grenzen basierend auf der Radiodensitiy der Nanopartikel Kontrast in der Leber und die Region of Interest (ROI) Menü verwenden, um Leber Teilvolumina berechnen (siehe Abb. 2A in Schadde Et al. ( ¹⁷)
4. Lassen Sie in der Standardausführung die Leber zu wachsen über 3 Tage und erhalten täglich CT-Scans zur Volumenzunahme Beurteilung zu

Zwei verschiedene chirurgische Eingriffe Pfortader Ligatur (PVL) und PVL mit Durchtrennung (PVL + T) führen zu unterschiedlichen Wachstum Kinetik. PVL induziert moderate Anstieg innerhalb von 3 Tagen, während in PVL + T ein viel größerer rechts mittlere Lobus (RML) werden kann (Abbildung 5) zu sehen. Dies kann durch tägliche Volumetrie überprüft werden. Das Volumen der RML verdoppelt sich etwa innerhalb von 3 Tagen in PVL, während es in PVL + T.¹⁷ verdreifacht

Durchflussmessungen in die Pfortader offenbaren eine stabile Strömung, trotz der reduzierten Durchfluss-Bereich in der PLV und auch der PVL + T (siehe Abbildung 3A in Schadde Et Al. ¹⁷). Dies deutet darauf hin, dass der gesamte Portal Blut Volumenstrom durch etwa 26 % der vorherigen Leberparenchym, wodurch "Portal Hyperflow" geleitet wird.

Druckmessung in die Pfortader zeigt eine akute Erhöhung der mittleren Pfortader Druck von 5 MmHg, 9 MmHg in PVL und PVL + T (siehe Abb. 3 b in Schadde Et al. ¹⁷). Dies ist wahrscheinlich ein Ergebnis der Portal Hyperflow. Durchtrennung allein führt nicht zu einer akuten Portal Druckerhöhung, da das Volumen des Lebergewebes nicht verringert wird. ¹⁷ wiederholte Messungen zeigen, dass die Druckerhöhung für 24 Std.¹⁷ stabil bleibt

Abbildung 1 : Anästhesie. (A) nach dem Spülen einer Box mit Isofluran (5 Vol%), Narkose für das Tier zu induzieren, ist Isofluran verdampfte (600 mL Sauerstoff/min) für die Wartung einer Vollnarkose. (B) die Tiere sind auf eine sterile Arbeitsfläche unter einem Operationsmikroskop fixiert. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 2 : Sterile Ausrüstung. (A) Sterile feuchte Schwämme für die Belichtung und Retraktion. (B) Draht Mini-Traktoren mit Gummibändern verbunden. (C) bipolare Pinzetten, Potts Schere; gebogene Mikrozangen, gerade Microdissectors dienen zur Dissektion der Pfortader Zweige. (D) größere Schere, Nadelhalter und Nadeln dienen zum Öffnen und schließen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 3 : Dissektion. (A) die Seiten des Abdomen und der Xiphoid sind mit 3-0 seidenen Fäden nach Mittellinie Laparotomie eingefahren. (B) durch Zurückziehen des Magens, kleinen und großen Darm seitlich der Gastroduodenal Ligament in Ratten und die hepatische Hilum ausgesetzt sein kann. (C) In die Pfortader Ligatur (PVL), die Pfortader Verzweigung zu den rechten Lappen (1), der linke seitliche Lappen (2) und die caudatus Lappen (3) sind mit 6-0 Seidenkrawatten (links) ligiert. In PVL mit Durchtrennung (PVL + T) ist darüber hinaus die ischämischen Demarkationslinie zwischen direkt Median Lobe (RML) und linke mittlere Lappen (LML) (rechts) durchtrennten. (D) das Foto zeigt die deutliche Abgrenzung zwischen Liebe meines Lebens und RML (links). Diese Linie ist für die Durchtrennung mit einer bipolaren Mikrozangen für PVL + T (rechts) gefolgt. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 4 : Intraoperative Messung der Pfortader Druck und Volumenstrom. (A) während des Verfahrens wird eine Nadel Druckaufnehmer in exponierten Pfortader eingefügt. (B) die 2 mm Volumen fließen Sonde wird verwendet, um die Volumenströme in den wichtigsten Pfortader zu messen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 5 : Leber Volumetrie. Die Leber erhöht sich mehr in der Größe nach PVL + T als nach PVL allein. Die Abbildung zeigt tägliche Volumetrie für digitale Bildverarbeitung und Kommunikation in der Medizin (DICOM) Dateien mit einer Ratte Micro CT-Scanner erhalten und mit Hilfe der Public Domain imaging Plattform ausgeführt. Der Unterschied ist offensichtlich auf die axiale Bilder zeigt quantitative Volumetrie wie in einem früheren Bericht¹⁷, einen signifikanten Unterschied im Wachstum Kinetik. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Dieses Protokoll stellt einem Tiermodell der ALPPS mit seiner schnellen Hypertrophie induziert durch PVL + T, die Volumenzunahme innerhalb von 3 Tagen im Vergleich zu PVL allein etwa verdoppelt. ¹⁷ der rechten mittlere Leber-Lappen als ein Modell für die wachsende Leber Lappen verwendet, da der mittlere hepatische Lappen eine zusammenhängende Parenchym Masse geliefert von zwei separaten Portal Adern auf der linken Seite und auf der rechten Seite ist, wie in Abbildung 1 in ein vor kurzem veröffentlichtes Werk. ¹⁷ im Vergleich zu anderen Berichten, bietet das Modell einige Vorteile. Anatomisch, stellt die Wahl des besten mittleren Lappens die menschliche Leber als eine zusammenhängende Parenchym Masse, die Durchtrennung und damit Auslöschung der Sicherheiten fließen kann. Die Verzweigung der Pfortader, der linke mittlere Lappen (LML) innerhalb der linken seitlichen Lappen (LLL) ermöglicht eine kombinierte Ligatur der Liebe meines Lebens und LLL.

Es wurden verschiedene Ratte und einem Mausmodell für ALPPS entwickelt und beschrieben. ¹⁸ viele Ratte Modelle^19,20 und die einzige Maus Modell¹⁵ beschrieben, erfordert eine Leber Massenreduktion. Massenreduktion kann verbesserte Hypertrophie selbstständig auslösen. Dies steht im Gegensatz zu unseren¹⁷ und ähnliche Modelle der Ratte. ^{14 , 21 , 22 , 23} der Vorteil, ein Mausmodell möglicherweise die Verwendung von gentechnisch veränderten Tieren. Alternativ zu diesen kleinen tierischen Modellen, wurde ein Schwein-Modell entwickelt,¹⁶ verwenden eine ähnliche chirurgische Technik wie beim Menschen und führt ähnliche Wachstumsraten. Trotz der Tatsache, dass dies wohl am ehesten der menschlichen Eingriff gleicht kleine Tiermodellen möglicherweise immer noch sehr wichtig, da sie schneller sind, sind leichter zu führen, ermöglichen größere Anzahl von Tieren pro Gruppe und sind weniger kostspielig.

Physiologisch, ermöglicht das Rattenmodell das Studium der Besicherung, Durchblutung und Sauerstoffversorgung leichter als ein Maus-Modell. Diese Studie ist die erste mit der gleichen Methode klinisch beim Menschen zur Volumenänderungen in der Leber, nämlich CT Volumetrie zu beurteilen. Im Gegensatz zu einigen anderen Studien, die eine Kontrollgruppe (z.B. in einem Schwein Modell ALPPS²⁴) gehören noch übernehmen ALPPS Wachstum Kinetik nicht, validiert wir die Hypertrophie durch Vergleich von PVL mit PVL + T. Während unter PVL der RML in innerhalb von 3 Tagen verdoppelt, erhöht PVL + T Hypertrophie. Diese Beschleunigung der Hypertrophie nach 3 Tagen durch die zusätzliche Durchtrennung spiegelt genau die conditio humana, wo eine 46 % Volumenzunahme in eine große Meta-Analyse für PVE und 86 % Zunahme der ALPPS nach 10 Tagen in der ersten großen ALLPS Registrierung Bericht gemeldet wurde von 202 Patienten. ²⁵ beide die Ratte Verfahren PVL + T und menschlichen ALPPS doppelt so viele Hypertrophie in ihren jeweiligen Zeitrahmen für die Typen der beiden Verfahren erreicht.

Wichtige Schritte innerhalb dieses Protokolls gehören die Zerlegung der Pfortader Zweige in PVL und die Durchtrennung der mittlere Lappen in PVL + T. Während die Zerlegung der Pfortader Zweige ist es wichtig, die dünne Schicht des Peritoneums deckt das gesamte Hepatoduodenal Ligament zu stören und nicht die Instrumente gegen Widerstand drücken. Ein versehentliches Riss in der Pfortader kann kann gestoppt werden, durch Druck mit Wattestäbchen allein, aber nicht wieder gutzumachenden und erfordern Opfer des Tieres. Im Allgemeinen muss betont werden, dass Tiere leiden unter einem Blutverlust von mehr als schätzungsweise 10 % des Blutvolumens des Tieres, sollte aus der Studie ausgeschlossen werden, da dies die Ergebnisse der Studie und Ursache unnötige Leiden der Tiere verändern kann.

Durchtrennung der mittlere Lappen kann durch sorgfältige Kauterisation von Lebergewebe mit feinen silbernen bipolare Pinzetten und genügend Kochsalzlösung tropft, gefolgt von einfach schneiden mit einer Schere stumpf Gewebe erreicht werden. Die Durchtrennung muss aufgehalten werden, vor der Begegnung mit der Vena Cava, die innerhalb der Leber bei Nagetieren, zur Vermeidung von massiven Blutungen und Luftembolien in die untere Hohlvene läuft. Eintritt von Luft in den Lungenkreislauf führt zu plötzlichen Herzstillstand bei Ratten.

Problembehandlung für dieses Protokoll enthalten alle Änderungen, die zu physiologischen Stress für die Tiere erhöhen führen wie Hypotonie induziert durch Oversedation, Unterkühlung, Blutverlust und zu lange operative mal erhöht. Dieses Protokoll kann auch für andere Nagetierarten wie Mäuse geändert werden. Wir haben die Technik beschrieben in diesem Protokoll bei C57BL/6 Mäusen (Daten nicht gezeigt) erfolgreich durchgeführt.

Eine Einschränkung dieses Protokolls ist die ausschließliche Verwendung dieses Protokolls, die Mechanismen des rapid gegen langsame Hypertrophie zu studieren; Daher ist die zweite Stufe des Verfahrens "ALPPS", die Resektion von allen deportalized Lebergewebe mit Ausnahme der hypertrophierten Leber, nicht in diesem Protokoll beschrieben. Diese Resektion kann jedoch folgende Standardtechnik der Leber Resektion bei Nagetieren, mit Naht Ligatur und dann Entfernung der Leber Lappen mit einer Schere leicht erreicht werden.

Insgesamt ermöglicht dieses aktuelle Modell Experimente Aufklärung des Mechanismus der schnellen Leber Hypertrophie und Erprobung von Medikamenten und Interventionen. Mit Hilfe dieses Modells, es vor kurzem zeigte sich, dass schnelle Hypertrophie der RML auch durch Unterbindung der Pfortader in Verbindung mit Hypoxie signalisieren mit Prolyl-Hydroxylase-Hemmer, was darauf hindeutet, dass Hypoxie signalisieren meiner spielen eine wichtige Rolle bei induziert werden kann die Modulation der Leber Wachstum Kinetik. Medikamente wie Prolyl-Hydroxylase Inhibitoren Leberregeneration beschleunigen können und sollte weiter getestet. ^{17 , 26} Zukunft Anwendungen dieses Modells ist, dass die Rolle der herkömmlichen und neuartigen Chemotherapeutika getestet werden kann und ihre Wirkung auf die Beschleunigung der Leberregeneration weiter aufgeklärt werden kann. Das Modell bietet auch die Möglichkeit zu studieren Leberfunktion z. B. mit Indocyanine grün (ICG) oder Artischockenblättern Iminodiacetic Acid (HIDA) Szintigraphie bei Ratten denn letztlich langsame und schnelle volumetrische Änderungen in Zusammenhang gebracht werden funktionale Leberregeneration seit Leberfunktion ist wichtiger als Lebervolumen. ^{27 , 28} Bewertungen der ALPPS Patienten mit ICG²⁹ und HIDA Szintigraphie^30,31 wurden bisher nur in Retrospektive Kohortenstudien getestet, aber diese dürfen nach wie vor sehr wichtige Werkzeuge für die Beantwortung der Frage ob Volumen oder Funktion Änderungen ähnlich oder unähnlich schnelle Leberregeneration sind.

Zusammenfassend lässt sich sagen präsentieren wir ein gut charakterisiert und standardisierten Modell von schnellen und langsamen Leberregeneration, die zukünftige Studien in regenerative Leberchirurgie ermöglichen.

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