检查蛋白酶体大会与重组古菌蛋白酶体和非变性PAGE:该案例相结合的办法

该协议使用两个亚基共表达和postlysis亚基重组蛋白酶组件的更彻底的检查混合。

蛋白酶在生活的各个领域中。它们提供了细胞内的蛋白质分解的真核生物的主要途径，尽管它们的装配是不完全理解。所有蛋白酶含有一个结构上保守的芯颗粒（CP）或20S蛋白酶，含有夹在两个七聚体α亚基环之间的两个七聚体β亚基环。相比，他们的真核同行古20S蛋白酶体在成分简单，但他们都有着共同的组装机理。因此，古细菌20S的蛋白酶体继续是真核蛋白酶体组件重要的模型。具体来说，再加上非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）古20S蛋白酶体的重组表达已经取得了许多重要见解蛋白酶体生物合成。在这里，我们讨论来改善古蛋白酶体α的共表达通常的战略手段和nondenaturiβ亚基前NG PAGE。我们表明，虽然快速，高效，单独共表达的方式可能会错过关键总成的中间体。在蛋白酶体中的情况下，共表达可能不允许检测半蛋白酶体，中间包含一个完整的α型环和一个完整的β型环。然而，该中间体易于通过裂解物混合进行检测。我们建议用裂解液混合相结合共同表达产生一种方法，是在分析装配更彻底，但仍然劳动nonintensive。这种方法可以用于其它重组多蛋白复合物的研究是有用的。

多蛋白复合开展众多关键的细胞活动^1。对于许多这些配合物，进一步被知道关于其结构和功能大于约他们的组件^2,3。蛋白酶体就是这样的一个复杂的，在生活的各个领域中找到。在真核生物中，这种分子机是在泛素/蛋白酶体系统（UPS）的核心，并提供了细胞内蛋白质的降解⁴的主要途径。真核蛋白酶体（简称为26S蛋白酶体）包括两个主要的子组件:一个20S蛋白酶，或核颗粒（CP）的^5，可以在通过一个19S调节颗粒^（RP）6的一端或两端封端。

20S蛋白酶是一个大的条块蛋白酶。其四级结构跨越所有生活领域绝对保守和由含有两种类型的结构上相关的亚基四七元环的栈，α;和^β5,7,8。在真核生物中，这两个外圈各自包括的七个不同的α亚基和两个内环各自包括的七个不同的β亚基;蛋白水解活性驻留三个β亚基的范围内。相比之下，古细菌和细菌的CP环通常仅包括一种类型的α和一种类型的β亚基组成。古菌蛋白酶提供了一个重要的模型系统来研究蛋白酶体装配，由于双方的成分简单，他们与真核同行^9-13共享一个共同的组装机理。简言之，α亚基组装成α环第一，它作为其上β亚基组装的支架。所得半蛋白酶_（α7β7）二聚化，从而产生完全组装的_{CP（α7β7β7α7）。}在二聚化，前肽提出关于β亚基被自催化除去，露出催化N-末端苏氨酸。利用古蛋白酶体模型组装经常需要生产中大肠杆菌重组古蛋白酶蛋白质的优势。这是一个值得的方法，因为它使在不同的组合要生产的亚单位，因为WT和突变的版本中，在不产生其自身的蛋白酶的宿主生物体。

监测多蛋白质复合物的装配生化需要某种用于分隔组件的中间体和前体的完全组装络合物分馏方法。由于其优越的解决容量，非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）已被证明是在各种大型多蛋白复合物^14-17的分馏特别有用。重组古蛋白酶生产和非变性PAGE的结合已成为一个dissectin强大的方法摹蛋白酶装配^{9,11,12,18。}然而，通过此方法应用于（ 即通过α和β亚基的重组共表达）通常的方法有一个重要的缺点。大会的反应是合作，并强烈浓度依赖性^3。鉴于在细胞内的蛋白质浓度是非常高的^19中 ，由于排除体积效果，装配反应在体内迅速进行。因此，它有可能错过重要组件中间体当α和β亚基同时表达。

在这里，我们主张用重组古蛋白酶体亚基组装蛋白酶的研究组合的方法。在这种方法中，采用两个共表达和溶胞产物混合方法。前者允许组装的快速分析，因为共同表达是低劳动强度。后者取决于α和β亚基，接着混合的分开的表达。虽然这requi水库比共表达多一点努力，其大于补偿用于通过检测被共表达时错过中间体的能力。总之，这两个方法可以提供蛋白酶组件的更全面的了解。

1.细菌表达。

注意:在此研究中所用的表达质粒在表1中描述。在这项研究中使用的解决方案，媒体，和缓冲液在表2中描述。古菌蛋白酶体亚基基因的克隆和表达质粒的产生在其他地方^18,20描述。总之，对于亚基共表达重组质粒采用双顺反子操纵子的策略，这有助于获得各个亚基^18,20可比表达水平。下面列出的表达式参数为凭经验确定为是最佳的本研究中的蛋白酶体亚基。可能有必要，以优化表达为其它蛋白酶的突变体，对蛋白酶体从其他古细菌物种，或者用于其它重组蛋白质复合物（见讨论）。

1. 变换的利益表达质粒导入化学感受大肠杆菌 BL21（DE3）细胞。
2. 加入1 - 质粒2微升（一般为50 - 100纳克）到DE3细胞的等分该被新鲜在冰上解冻，并继续在冰上孵育20分钟。
3. 热休克的细胞在42℃下45秒，并返回管到冰上additionl 2分钟。
4. 加入1毫升的LB培养基中，并在37℃用1小时摇动（150rpm）下孵育。
5. 价差100 - 200μL转化混合物的到LB-kan平板（含固体LB培养基，辅以卡那霉素片（在本研究中编码的电阻用于这种抗生素所有质粒））。在37ºCO / N板。
6. 第二天早上，接种从LB-Kan平板的单一菌落到3mL的液体LB根介质中的玻璃培养管中。在37ºC孵育约2.5摇动（150转） - 3小时，或观察到混浊。
7. 测量在分光光度计600纳米（OD _600）的培养物的光密度。稀释细胞崇拜茜与预热的LB根介质的适量的6ml的终体积的0.4的OD _600。恢复在37ºC振摇40分钟。
8. 通过从原液加入IPTG到1mM的终浓度诱导在液体培养物的蛋白质表达。在37ºC孵育约6振荡（150转） - 7小时。
9. 在收获的全部细菌细胞培养到1.5毫升离心管。
10. 添加1.5毫升培养成离心管中。离心机以10,000×g的1分钟。
11. 弃上清，另一个1.5mL的相同培养物添加到粒料。离心机以10,000×g的1分钟。
12. 重复步骤1.11，直到整个文化收集到离心管。
13. 在-80℃，直到裂解存储诱导粒料。

2.细菌裂解和裂解液混合。

注意: 的对于通过共表达研究的样本，请按照2.1节（及其子段）。对于需要裂解液混合样品，请按照2.2节（及其子段）。被包括在该协议中的TSP（共，可溶性，球团）的分析是优化蛋白质表达有用，它可以帮助确保α和β亚基裂解物混合（见讨论）期间被组合的大约相等量。它还提供了一个重要的控制，如果下游的结果并不如预期（ 即它验证蛋白表达和可溶性）。因此，我们强烈建议包括TSP分析，初步。一旦最佳协议已被用于特定亚基组合实现，TSP分析没有严格要求这就是为什么它被描述为以下可选的。

1. 细菌细胞和制备可溶性部分的裂解。
   1. 在冰上解冻的诱导细胞沉淀5分钟。重悬在裂解缓冲液的600微升沉淀。
   2. 公司乌瓦特在30°C以上的悬浮液振荡（150rpm）下进行30分钟，以产生总的粗裂解物。
      注意:下面的步骤和随后的小节是可选的。
   3. 从总的原油裂解成单独的1.5毫升离心管中取出两台25微升等分并进行分析TSP如下。
      1. 在两个25微升等分试样中的一个中，添加5X SDS样品缓冲液为1X的终浓度。标签管带"T"的"总原油裂解液"。
      2. 孵育100ºC"T"型样品5分钟以完全变性蛋白质。
      3. 同时，在第二个25微升等份，并在10,000×G下离心它10分钟。小心取出上清液，而不会干扰细小颗粒，并将其转移到一个新的1.5 ml离心管。标签"可溶部分"这一新管"S"。
      4. 要细小颗粒离开behi次在前面的工序中，添加裂解缓冲液和旋涡的25μL到重悬。标签此管"P"为"颗粒部分"。
      5. 添加6 5XμL的SDS样品缓冲液以"S"和"P"的管，并如上所述在100ºC孵育。
         注意:如果TSP样本将不被使用的那一天来分析表达，它们可在-20 C，直到需要冷冻。一旦解冻，它们必须在100ºC被重新培养，如上所述，立即加载之前在12％和/或15％的标准SDS-PAGE凝胶。
   4. ，同时TSP分析进行时，离心机以10,000×g的10分钟（如果TSP分析不进行或总粗裂解物的整个600微升）剩余550微升总粗制裂解物。收集上清在一个新的1.5 ml离心管。这是将被用于纯化可溶性裂解物。
2. 裂解液混合。
   1. 在步骤2.1.1和2.1.2以上描述进行裂解。
   2. 从表达来自表达所需β亚基细菌总粗裂解物的600微升的所需α亚基细菌混合总粗裂解物的600微升。在37ºC孵育缓慢振荡30分钟。
      注意:可能需要优化的温育时间，实现裂解物混合期间最大组件（见讨论）。的时间，此处提供温度是最佳的用于本研究的重组蛋白并¹⁸别处测定。
   3. 离心机以10,000×g的10分钟的混合溶解物可溶的材料从不溶的沉淀分离。将上清转移到新的1.5毫升离心管中。使用蛋白质纯化这种混合溶于裂解液。

3.通过固定化钴亲和树脂蛋白纯化（ICAR）。

1. 平衡的树脂。
   1. 通过反转瓶彻底重悬树脂并传输的浆液的50微升到1.5mL离心管中。离心机在700×g下2分钟以沉淀树脂。小心吸上清。
      注意:我们开展使用蓝1毫升枪头除去大部分液体的移液器吸出。白2尖μL用于去除剩余的上清液的精细控制，留下一个非常薄的覆盖珠液层。
   2. 加1缓冲液A混合的溶液轻轻地在700×g下悬浮树脂和离心2分钟以沉淀树脂。小心吸上清，重复此清洗步骤一次。
2. 适用于部分2.1或2.2的平衡树脂先前获得的可溶性裂解液。孵育轻轻旋转管中于4ºC60分钟。离心管中，在700×g下</ em>的5分钟，然后小心地吸出上清液。
3. 洗涤树脂如下除去非特异性结合的蛋白质。
   1. 用1mL的缓冲液A和悬浮树脂孵育在4ºC温和摇动10分钟。离心在700×g下离心管5分钟，并小心地吸出上清液。重复该洗涤步骤一次。
   2. 用1毫升缓冲液B（缓冲液A 5 mM咪唑）悬浮树脂并在4ºC轻轻摇动5分钟孵育。离心在700×g下离心管5分钟，并小心地吸出上清液。重复该洗涤步骤一次。
   3. 用1毫升缓冲液C（缓冲带10毫米咪唑）悬浮树脂并在4ºC轻轻摇动5分钟孵育。离心在700×g下离心管5分钟，并小心地吸出上清液。
4. 加入400缓冲液E的μL（缓冲液A与200毫米咪唑）洗脱蛋白质Ť澳树脂。在4ºC轻轻摇动5分钟孵育。离心机在700×g下5分钟。
5. 传输含有纯化蛋白上清至新的1.5毫升离心管中。
6. 通过串行离心脱盐纯化的蛋白质如下。
   1. 400μL纯化蛋白，加入100微升缓冲液A（这减少了从200毫米到160毫米咪唑浓度）。应用纯化的蛋白至0.5毫升超离心过滤器，用10 kDa的分子量截止。离心机在14000×g下5分钟。
   2. 弃滤液，加入400μL缓冲液A再次稀释截留和离心机。继续离心/稀释的循环，直至咪唑浓度低于4毫米。作为一个例子，如果每个离心浓缩500微升至〜70微升（或约7倍），那么两个周期将减少开始160 mM咪唑浓度（7×7 = 49倍）到大概oximately 3.3毫米。
   3. 测量使用BCA测定法²¹脱盐样品的蛋白质浓度。
      注意:脱盐需要减少到容限以下为BCA测定咪唑水平，如在制造商的说明。我们的实验室更喜欢BCA测定，因为它是敏感，有一个大的动态范围，并且表现出少得多的蛋白质与蛋白质的变化。但是，其它的方法来确定蛋白质浓度可以取代的BCA测定。关键是要了解每种方法的优点和局限性。
7. 添加5X天然样品缓冲液为1X的终浓度，然后继续电泳。另外，店内样品在-20ºC供以后分析。

4.非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）。

注意:未聚合丙烯酰胺是一种神经毒素。穿戴适当的保护GEA河

1. 准备非变性PAGE胶如下。
   1. 准备凝胶盒使用清洁玻璃板铸造，铸造立场。放置在一个小磁力搅拌器之上梯度壶和放置一个微小的搅拌棒到每个室。
   2. 用40％（重量/体积）丙烯酰胺和2％（重量/体积）二丙烯酰胺储备液，制备5％和10％（重量/体积）在天然解决缓冲丙烯酰胺凝胶溶液。确保总丙烯酰胺到双丙烯酰胺之比为37.5:1。冰浴前浇筑。
      注意:这里使用的非变性PAGE系统对拉姆力SDS-PAGE系统基本相同，与SDS省略^22。
   3. （（从10％（重量）在水中制备/ v）的原液）中添加过硫酸铵的丙烯酰胺溶液以引发聚合。过硫酸铵的最终浓度为0.1％（重量/体积）。
   4. 倾丙烯酰胺溶液进入梯度制造者的两个腔室。随着出口管插入between凝胶盒的板，激活磁力搅拌器和打开梯度制造者阀。倒入5 - 10％非变性梯度凝胶。
   5. 浇一次，覆盖所述凝胶与异丙醇的薄层，并允许凝胶聚合30分钟。在此期间，准备在当地解决缓冲新鲜的5％丙烯酰胺凝胶的解决方案。凝胶集后，倒出异丙醇和从喷射瓶冲洗用去离子水凝胶的顶部。
   6. 向上述制备的5％的凝胶溶液中，添加过硫酸铵（恰好在4.1.3中描述），并在聚合的凝胶的顶部倾直到玻璃板是满的。将凝胶梳子。允许重叠凝胶聚合另外30分钟。
   7. 一旦凝胶聚合，组装胶盒插入电泳仪。可替代地，存储在4ºC凝胶，包裹在湿纸上的毛巾和保鲜膜，直到准备使用。
2. 一旦非变性PAGE凝胶上被组装到电子角trophoresis设备，填补1X本地运行缓冲罐准备从10X本地运行缓冲库存的新鲜。
3. 纯化的蛋白质的负载10微克，在段3的端部获得的，向每孔用玻璃注射器。
4. 负载2微升的高分子量天然蛋白质标准（在1X天然运行缓冲液稀释）插入孔中的一个。
5. 在55 V和4ºC运行凝胶，直到染料前沿跑出凝胶（约4 - 4.5小时）。
6. 除了非变性凝胶，分析由标准的SDS-PAGE ²²纯化蛋白质的等分试样。
   1. 混合纯化的蛋白质样品，在段3的端部获得的，具有5X的SDS样品缓冲液的等分试样（10微克）至1X的终浓度。
   2. 孵育100ºC5分钟，并加载到标准的12％，和/或15％SDS-PAGE凝胶^22。
   3. 在80V持续20分钟，运行，然后在120伏，直到染料前沿跑出凝胶（这大约是一个附加itional 75分钟为12％的凝胶，和120分钟为15％的凝胶）。

5.可视化活性和蛋白质染色。

1. 电泳后，仔细分离的玻璃板和非变性凝胶转移到含有50毫升的去离子水的凝胶托盘。冲洗凝胶轻轻摇动5分钟。倒掉水，重复此清洗步骤三次。
2. 如下执行基板覆盖法。
   1. 添加1毫升显影含有荧光肽底物SUC-LLVY-AMC缓冲液中，均匀地分布在凝胶中。在37ºC30分钟。
      注意:玻璃棒或凝胶释放器（用来分离玻璃板塑料小楔）可用于在凝胶分散液。
   2. 小心地将凝胶转印到凝胶成像系统的紫外透射并观察荧光由于裂解的肽底物。记录图像。小心地转移凝胶巴放至凝胶托盘。
   3. 用50毫升去离子水5分钟温和摇动冲洗凝胶的两倍。
   4. 染色用10mL胶体考马斯染色试剂的凝胶60分钟温和摇动。用50毫升水凝胶脱色直到背景变得清晰。此染色步骤适用于标准SDS-PAGE凝胶，以及。

蛋白酶体组件（ 图1）开始时，α亚单位结合形成环^9。这可以在从古海藻甲烷球菌 S2α亚基在大肠杆菌中被表达为C末端六组氨酸标签（his标记）衍生物（ 表1）加以说明。当重组体α-他的蛋白质通过ICAR纯化，并分析了非变性PAGE中，观察到（ 图2A，泳道1）两个频带。之前我们已经证实，这些对应的单α环（SR）和双α-戒指^{（DR）18。} DR是穷途末路的物种，是不是生产为随后的装配^9,18。

当α-他的亚基用β亚基共表达，表示由该重组古细菌蛋白酶体的组件被测定时，观察到一个新种的670 kDa的大小支架附近迁移通常的方法ARD（ 图2A，泳道3）。本种是蛋白水解活性的（ 图2B，泳道3）和仅包含完全成熟的β亚基（mβ），其前肽已被删除（ 图2C，第3道）。该品种是完全成熟的CP。此示例还含有一些SR物种，这是预期的，因为SR是公知的装配中间体，但没有DR物种。 α-他当缺乏DR和β亚基共表达表明，正确装配正在发生速度不够快，使得β亚基掺入能够outcompete DR的非生产性形成（更详细的分析见^18）。

为了证明共表达方法的限制，并且主张的组合的方法的效用，α-他和β亚基分别在大肠杆菌中表达。以下裂解，可溶性级分混合，并通过ICAR之前纯化的蛋白通过非变性PAGE分析。功能齐全的蛋白酶也通过裂解物混合的方法（ 图2A和图2B，泳道2）中产生，并如预期，也观察到了SR物种。在混合裂解液样品的DR物种的再现表明，一旦形成，β亚基无法可逆拆解;这强调了DR的死胡同性质。有趣的是，一个新的物种也出现了混合裂解液样品中，只迁移CP（称为"半"）所示。最近，我们发现，这个物种相当于半蛋白酶体_{（αβ7 ^7）18。}在这里说明这一点，一个β亚基突变（R166W）的使用。这种突变破坏β-β环相互作用，导致受损的半蛋白酶二聚体^18。由于半蛋白酶是直接前体到CP时，R166W突变应导致半蛋白酶的两个累积DA减少CP的形成。当与α-他和β（R166W）亚基裂解物混合进行，观察到的CP较低水平，并增加了"半"物种的水平（ 图2A，泳道4）。这是与这两个波段的前体 - 产物关系一致，并且印证了"半"物种作为半 - 蛋白酶体的身份。突变样品（泳道4对比泳道2）在半蛋白酶体的速度稍快的迁移可能是由于在R166W突变改变β亚基的质荷比。

相比于细胞内的高蛋白质浓度的可视化裂解物混合期间半蛋白酶的能力，主要是由于在裂解物低得多的蛋白浓度。较低浓度导致更少的高效率（ 即较慢）装配，这使得中间体变得更加填充，从而可检测的。除了半蛋白酶体的外观，一个附加的观察突出裂解物混合期间降低的组装效率:未处理的β亚基，它保留其前肽，成为可检测的（proβ）。由于前肽处理不会发生，直到半蛋白酶二聚化，未成熟proβ形式的外观用半蛋白酶积累水平（比较图2C中，第3道与第2道与第4道）相关。在R166W突变体的情况下，裂解物混合期间前肽处理故障是绝对即使CP少量确实形式。这是因为前肽处理，不仅需要半蛋白酶体二聚化，同时也正确形成β-β环接口²³其中R166W突变也买不起。共表达与裂解液混合的更详细的叙述，因为它涉及到重组蛋白酶体装配，都可以在这里找到^18。

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图1:核心粒子（CP）组件的原理示意图。
所述α亚基可以组装成一个单一的α环第一（SR），其充当β亚基的掺入模板。这导致产生半蛋白酶中间体（一半）的从而迅速二聚化。并发二聚，β亚基前肽（未示出）自催化除去从而产生了全功能芯颗粒（CP）。双α-环（DR）可以从SR产生，并不能胜任组装成CP。它们的形成表示在对比生产装配事件（实线箭头）一个非生产性组件途径（虚线箭头）。 请点击此处查看该图的放大版本。

图2:用于测定蛋白酶体大会相结合的办法。
共表达（C）和裂解物混合（L）被用来从古分枝maripaludis研究重组蛋白酶的装配。蛋白质被固定化钴亲和树脂（ICAR）纯化。 （A，B）纯化的蛋白（10微克）被装载到非变性5 - 10％梯度凝胶。电泳后，肽酶活性是通过用含有荧光肽底物缓冲溶液覆盖在凝胶可视SUC-LLVY-AMC（B）中以染色用胶体考马斯染色试剂（A）中的凝胶之前。黑色箭头表示组装20S核心颗粒（CP），半蛋白酶体中间（一半），双α-环（DR）和单α环（SR）的位置。几个分子大小的标准（以kDa）的迁移右侧表示。 （C） A g>的纯化蛋白（10微克）也装到15％SDS-PAGE凝胶。电泳后，凝胶用胶体考马斯染色试剂染色。 α-他的亚基和完全成熟（mβ）和未成熟（proβ）β亚基的迁移指示。 25 kDa的分子大小标准的位置如右图所示。星号表示截断α-他的亚基裂解过程中从非特异性蛋白水解产生的片段。 请点击此处查看该图的放大版本。

表1: 本研究中使用的细菌质粒。 PSMA是古α亚基基因和PSMB是古β亚基基因。

表2:解决方案，在这项研究中使用的介质，和缓冲液。

我们展示相结合的办法的好处通过重组古蛋白酶非变性PAGE分析蛋白酶体装配。蛋白酶体亚基的细菌共表达的常用方法^9,11允许快速分析，但可能不露出键组件的中间体。我们建议用裂解液共表达相结合的混合开发汇编事件更宽阔的视野。

这种结合方法的优点是，尽管要求的α分开的表达和β亚基为裂解物混合，它仍然是相对劳动友好。结果也可以是半定量如果确保了单个蛋白质的可比较的和一致的表达水平。为此，我们建议进行重组蛋白质表达的通常的优化来确定允许之前裂解物混合表达的蛋白质的可比较的水平的条件。优化可以包括不同的感应恬即，诱导温度，诱导时，细菌表达菌株的光密度，并依此类推，直到可溶性蛋白的所需水平得以实现。进行比较的蛋白的野生型和突变的版本时，因为有时突变可以表现出可比的表达水平，但降低的溶解度，这是特别重要的。我们也强调确定ICAR纯化样品的蛋白浓度的重要性加载非变性PAGE之前。即使在地方表达的优化，并采取确保平行样品通过以相同的方式纯化步骤处理最好的照顾，仍可以在不经意间引入方差。的浓度测量确保了总蛋白的相同量的每个样品装载孔。这使得带强度的车道到车道的比较对于给定的迁移物种更有意义。

如果表达的可比性和一致性水平不能lysA的实现TE混合，人们总是可以净化所有组件事先并开展纯蛋白质混合实验。这具有允许更准确的蛋白质测定的优点，从而使该方法的定量。然而，充分纯化的缺点是，过程变得相当多的劳动强度大，它可以排除多个突变同时¹⁸的快速分析。值得一提的最后一个需要注意的是，有时分离α的表达和β亚基可能是不可能的。如果一个突变导致亚基自身表达时成为不溶性的在大肠杆菌中 ，但允许当所述突变体与它的结合配偶表示要恢复的溶解度可能出现这种情况。如果发生这种情况，它会限制分析只共表达。然而，这是可以在一般的重组蛋白质表达过程中产生一个警告，并且不是特定于古细菌蛋白酶体亚基^24,25。

我们选择了根中心提供全方位我们应有的缓解ICAR树脂纯化和承受能力的蛋白酶体的蛋白他标记的衍生物。其它表位标签是可能的，包括那些基于抗体的纯化，我们已经成功地表达，我们的蛋白酶体亚基的纯化Flag标记的版本（未示出）。然而，如果需要纯化同质性（或增加生产规模），在他的标记版本提供了这样做的最快和最具成本效益的手段。

它是一个给定的，与重组蛋白获得的结果，无论是古细菌或在细菌中产生真核蛋白，将进一步获得当与体内观察随访意思。然而， 在体内的方法可能不总是实验立即访问。这是特别真实时研究的主题是一个大的，多亚基复合物如蛋白酶。重组蛋白方法为浮图的重要启动点再实验。在蛋白酶体的情况下，配对重组古蛋白酶生产与非变性PAGE将继续阐明蛋白酶体组装，这是古和真核生物^9,11,12,18之间共享的关键特征非常有效。这样的方法可能是用于研究等大型多蛋白复合物的装配以及有用。最近，我们使用这种策略证明古细菌蛋白酶体可以通过一个以上的通路装配，以及α-环是未组装期间专性中间体，它们被认为是^18。它仍然如果同样适用于真核蛋白酶体真正确定。

The authors have nothing to disclose.

这项工作是部分来自印第安纳大学 - 普渡大学印第安纳波利斯研究扶持资金补助（RSFG），部分由美国心脏协会14GRNT20390154奖，支持ARK