Name: heterotopic cervical heart transplantation in mice
Uploaded: 2015-08-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice at JoVE.com

M.-A. Deutsch is supported by Dr. Rusche Forschungsprojekt (2014) Deutsche Stiftung f&#252;r Herzforschung and Deutsche Gesellschaft f&#252;r Thorax- Herz- und Gef&#228;&#223;chirurgie. M. Krane is supported by Deutsche Stiftung f&#252;r Herzforschung (F/37/11), Deutsches Zentrum f&#252;r Herz Kreislauf Forschung (DZHK B 13-050A; DZHK B 14-013SE) and Deutsche Forschungsgemeinschaft (KR3770/7-1; KR3770/9-1)

وتمت الموافقة على جميع التجارب من قبل مركز القلب الألماني ميونيخ وحكومة بافاريا، ألمانيا (جي زد. 55.2-1-54-2532.3-17-13). وتم إيواء الحيوانات في منشأة معينة الممرض الحر وتلقى رعاية الإنسان في الامتثال مع &quot;مبادئ مختبر رعاية الحيوان&quot; التي وضعتها الجمعية الوطنية للطب والبحوث &quot;دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية&quot; التي تقدمها الأكاديمية الوطنية العلوم ونشرها من قبل المعاهد الوطنية للصحة (NIH النشر رقم 86-23، نقح 1985). ملاحظة: وهناك مجموعة كاملة من أدوات المجهرية العقيمة، من بينهم اثنان من ملقط المنحنية وdilatators السفينة، ضرورية لإجراء العملية (الشكل 2A). العلاج الوقائي بالمضادات الحيوية المحيطة بالجراحة ليست ضرورية بشكل روتيني ولكن يجوز أن يبين في الحيوانات المناعة. تمت التضحية الحيوانات باستخدام استنشاق الأيزوفلورين المحطة. إعداد المانحة والكسب غير المشروع الحصاد &lt;رأ&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الحيوان قبل داخل الصفاق (IP) حقن ميدازولام (5.0 ملغ / كلغ)، medetomidine (0.5 ملغ / كلغ) والفنتانيل (0.05 ملجم / كجم من وزن الجسم). ضع الماوس في موقف ضعيف في مجال الجراحة وتأكيد التسامح الجراحية التي منعكس دواسة الانسحاب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطهير الجلد ثلاث مرات مع الكلورهيكسيدين وإجراء شق البطن خط الوسط. سحب الأمعاء مع الشاش الرطب إلى اليسار لفضح الوريد الأجوف السفلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حقن 50 وحدة دولية من الهيبارين المخفف في 0.4 مل المالحة من خلال الوريد الأجوف السفلي لمنع تخثر الدم. شق دقيقة السفينة 1 بعد تنقص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فتح الحجاب الحاجز وأداء بضع الصدر الثنائي لفضح القلب. وينعكس جدار الصدر الأمامي متفوق والذي عقد في مكان مع المشبك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الغدة الصعترية وبصراحة تشريح النسيج الضام بين الشريان الأبهر والجذع الرئوي. شق اليمين الوريد الأجوف العلوي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ثقب الشريان الأبهر الصاعد تعبئتها على مستوىالجذع العضدي الرأسي مع 30 G الإبرة التي شنت على حقنة 5 مل وببطء يروي قلب retrogradually دون الضغط المفرط مع 3 مل من 4 ° C حل شلل القلب البارد. تجنب دخول الهواء إلى الدورة الدموية التاجية. قطرة محلول ملحي بارد مثلج على الكسب غير المشروع إلى تعزيز السكتة القلبية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المسح الشامل الشريان الأورطي قريب إلى أصل الجذع العضدي الرأسي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate في الأجوف السفلي، وكلا الأوردة متفوقة على مقربة من القلب مع 8-0 الحرير والمسح الشامل لهم بشكل أقصى للالأربطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح مجانا الجذع الرئوي كما بشكل أقصى وقت ممكن. Ligate الشرايين الرئوية على مقربة من التشعب مع 8-0 الحرير والمسح الشامل لهم بشكل أقصى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate الأوردة الرئوية عن جنبا إلى جنب مع واحد ضمد 8-0 الحرير والمسح الشامل لهم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة القلب من المتبرع وتخزينه في الجليد الباردة حل شلل القلب حتى الزرع. </li></ol> 2. إعداد مستلم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعدادالأصفاد لanastomoses عن طريق قطع أنابيب بوليميد مع مشرط رقم 11 أو مقص تحت المجهر. تتكون الكفة من جسم اسطواني وملحق (1/3 من محيط) لوضع المشبك الأوعية الدموية، ولكل من يبلغ طوله 1 مم (الشكل 2B). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الحيوان وتأكيد التسامح الجراحية كما هو موضح أعلاه. حقن 0.25 مل المالحة الدافئة الحل تحت الجلد (SC) لاستبدال السوائل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الشعر من منطقة عنق الرحم الصحيحة باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية، ووضع الحيوان في موقف ضعيف على وسادة دافئة. تأمين الساقين مع خيوط الشريط مع تجنب الإفراط في أطرافه الأمامية وهذا يمكن أن تضر التنفس. تغطية العيون باستخدام مرهم للعين لمنع جفاف. تطهير موقع الجراحية ثلاث مرات مع الكلورهيكسيدين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل شق الجلد عرضية من زاوية الفك السفلي الأيمن إلى الشق الوداجي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعبئة بصراحة تحويلةحبل الوريد ernal. يكوي فروع جنب مع ملقط القطبين والمسح الشامل لهم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تقسيم الوريد الوداجي الخارجي بين الحروف المركبة على مستوى التقاء مع الوريد من الغدة تحت الفك السفلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب الوريد الوداجي الخارجي من خلال الكفة وتسد الأوعية قريب عن طريق وضع المشبك الأوعية الدموية على تمديد الكفة. إزالة ضمد وري التجويف السفينة مع 1:10 المالحة heparinized. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إيفرت جدار الوعاء الدموي على الكفة واصلاحها مع مسبقا كفافي 8-0 الحرير ربطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الجزء السطحي للعضلة القصية الترقوية الخشائية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعبئة الأيمن الشريان السباتي المشترك والمسح الشامل السفينة بين الحروف المركبة دون التشعب الشريان السباتي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب الشريان السباتي عن طريق الكفة وتسد الأوعية قريب عن طريق وضع المشبك Yasargil بشأن تمديد الكفة. إزالة ضمد وري التجويف السفينة مع 1:10 المالحة heparinized. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> dilat بلطفالبريد التجويف الشرياني مع dilatator السفينة، إيفرت جدار الوعاء الدموي على الكفة واصلاحها مع مسبقا كفافي 8-0 الحرير ربطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للحصول على مساحة كافية لزرع الكسب غير المشروع، وإزالة الفص الأيمن من الغدة تحت الفك السفلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحفاظ على المجال العملي رطبة حتى الزرع. </li></ol> 3. زرع الكسب غير المشروع <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الكسب غير المشروع في منطقة عنق الرحم المتلقي رأسا على عقب مع الشريان الأورطي الموجه إعلامي والشريان الرئوي أفقيا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب الشريان الأورطي من الكسب غير المشروع على الكفة مع الشريان السباتي وتأمين مفاغرة مع كفافي ضمد 8-0 الحرير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شق الجذع الرئوي على جانبها الأمامي وتسحبه على الكفة مع الوريد الوداجي الخارجي. تأمين مرة أخرى مفاغرة مع كفافي ضمد 8-0 الحرير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة المشبك على حبل الوريد الخارجي، وبعد بواسطة unclamping من الشريان السباتي. قلوب تملأ فورا مع الدم. لتعزيز صeperfusion إسقاط 37 درجة مئوية محلول ملحي دافئ على الكسب غير المشروع. عادة قلب يتطور الجيبي خلال دقيقة واحدة. إزالة الملحق صفعة في موقع الوريدي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضمان موقف الكسب غير المشروع الصحيح، يجب أن تكون خالية من التوتر anastomoses والسفن دون التواء. لا الأوعية أكتوي من الجلد لأن ذلك قد يؤدي إلى ضعف التئام الجروح. النزيف عادة ما يتوقف من تلقاء أنفسهم. إغلاق الجلد مع واحدة 8-0 خياطة مستمرة. </li></ol> 4. بعد العملية الجراحية العناية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حقن 0.25 مل دافئ الشوري محلول ملحي لاستبدال السوائل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استعداء المخدرات حقن النالوكسون (1.2 ملغ / كلغ)، فلومازينيل (0.5 ملغ / كلغ) وatipamezol (2.5 ملغم / كغم من وزن الجسم) الشوري اليسار الحيوان على وسادة دافئة حتى استعاد وعيه أنه كاف للحفاظ على الاستلقاء القصية. مراقبة الحيوانات لمدة ساعة إضافية واحدة على الأقل لتسجيل أي سلوك غير طبيعي. لا يعودون الحيوان الذي خضع لعملية جراحية للشركة من الحيوانات الأخرى حتى يتعافى تماماالأحمر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> توفير تسكين وقائية مع البوبرينورفين (0.05 ملغ / كغ الشوري ثلاث مرات في اليوم) أو تسكين البديل وفقا لبروتوكول المؤسسات المحلية لمدة لا تقل عن 72 ساعة بعد العملية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الجراح وطبيب بيطري يجب أن نرى الحيوانات بانتظام. في حالة فقدان الوزن&gt; 15٪، واللامبالاة، وتورم أو الجراحية الحيوانات عدوى الجانب يصرح باستخدامها باستخدام استنشاق الأيزوفلورين المحطة. </li></ol>

<ol>
	<li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+transplantation+in+congenic+strains+of+mice.">Heart transplantation in congenic strains of mice.</a> Transplant Proc. 5, 733-735 (1973).</li><li>Chen, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+of+cervical+heterotopic+heart+transplantation+in+mice.">A technique of cervical heterotopic heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 52, 1099-1101 (1991).</li><li>Martins, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+graft+function+in+rodent+models+of+heart+transplantation.">Assessment of graft function in rodent models of heart transplantation.</a> Microsurgery. 28, 565-570 (2008).</li><li>Schramm, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+subepicardial+microcirculation+in+heterotopically+transplanted+mouse+hearts:+an+intravital+multifluorescence+microscopy+study.">The subepicardial microcirculation in heterotopically transplanted mouse hearts: an intravital multifluorescence microscopy study.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 134, 210-217 (2007).</li><li>Liu, F., Kang, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+heart+transplantation+in+mice.">Heterotopic heart transplantation in mice.</a> J Vis Exp : JoVE. 238, (2007).</li><li>Gong, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Introduction+of+modified+cervical+cardiac+transplant+model+in+mice.">Introduction of modified cervical cardiac transplant model in mice.</a> Exp Clin Transplant. 10, 158-162 (2012).</li><li>Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+mouse+cervical+heart+transplantation+using+a+cuff+technique.">Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique.</a> Transplantation. 51, 896-898 (1991).</li><li>Chen, H., Zhang, Y., Zheng, D., Praseedom, R. K., Dong, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+kidney+transplantation+in+mice:+technique+using+cuff+for+renal+vein+anastomosis.">Orthotopic kidney transplantation in mice: technique using cuff for renal vein anastomosis.</a> PloS one. 8, e77278 (2013).</li><li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+technique+for+heterotopic+vascularized+pancreas+transplantation+in+mice+to+assess+ischemia+reperfusion+injury+and+graft+pancreatitis.">A novel technique for heterotopic vascularized pancreas transplantation in mice to assess ischemia reperfusion injury and graft pancreatitis.</a> Surgery. 141, 682-689 (2007).</li><li>Sucher, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+hind-limb+transplantation+in+rats.">Orthotopic hind-limb transplantation in rats.</a> J Vis Exp : JoVE. , (2010).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">Orthotopic liver transplantation in rats.</a> J Vis Exp : JoVE. , (2012).</li><li>Okazaki, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+of+orthotopic+vascularized+aerated+lung+transplantation.">A mouse model of orthotopic vascularized aerated lung transplantation.</a> Am J Transplant. 7, 1672-1679 (2007).</li><li>Suzuki, H., Fan, L., Wilkes, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+obliterative+bronchiolitis+in+a+murine+model+of+orthotopic+lung+transplantation.">Development of obliterative bronchiolitis in a murine model of orthotopic lung transplantation.</a> J Vis Exp : JoVE. , (2012).</li><li>Zou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+model+of+venous+bypass+graft+arteriosclerosis.">Mouse model of venous bypass graft arteriosclerosis.</a> Am J Pathol. 153, 1301-1310 (1998).</li><li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant.">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8, 245-249 (2010).</li><li>Niimi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+technique+for+heterotopic+cardiac+transplantation+in+mice:+experience+of+3000+operations+by+one+surgeon.">The technique for heterotopic cardiac transplantation in mice: experience of 3000 operations by one surgeon.</a> J Heart Lung Transplant. 20, 1123-1128 (2001).</li><li>Arras, M., Autenried, P., Rettich, A., Spaeni, D., Rulicke, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+of+intraperitoneal+injection+anesthesia+in+mice:+drugs,+dosages,+adverse+effects,+and+anesthesia+depth.">Optimization of intraperitoneal injection anesthesia in mice: drugs, dosages, adverse effects, and anesthesia depth.</a> Comp Med. 51, 443-456 (2001).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

لقد أنجزنا أكثر من 200 عملية زرع القلب مع نسبة نجاح أكثر من 90٪ في مختلف البيئات التجريبية. مع تقنية الموضحة هنا، يمكن أن يتم الإجراء الكامل في غضون 60 دقيقة بواسطة جراح من ذوي الخبرة. من خلال إعداد الأوعية عنق الرحم قبل الشراء الجهاز، ومجموع وقت الكسب غير المشروع نقص التروية يمكن أن تقتصر على 20 دقيقة. الوقت لزرع (دافئ الوقت نقص التروية) هو أقصر بكثير باستخدام تقنية صفعة مقارنة مع تقنية خياطة 16. بدلا من مجرد استئصال قلب كما هو موضح سابقا 5،17، ونحن لحث على السكتة القلبية التي كتبها perfusing الكسب غير المشروع مع حل شلل القلب المستخدمة سريريا وانخفاض حرارة الجسم. الحل Custodiol HTK شبه البلوري يحتوي على 10 مليمول / لتر والبوتاسيوم بتركيزات منخفضة من الصوديوم والكالسيوم والمغنيسيوم، والاعتقالات بشكل فعال في القلب. المضافات الحامض الاميني، التربتوفان وكيتوغلوتارات لحد من الحماض، وتوفير ATP وحماية أغشية الخلايا دوحلقة نقص التروية. هذا يشبه حالة سريرية من السكتة القلبية التي تسيطر عليها أثناء جراحة القلب المفتوح، ويجعل هذا المثل الأعلى نموذج للتحقيق في عضلة القلب I / R-الاصابة. وعلاوة على ذلك، فإنه يسمح تطبيق كلاء الدوائية في حل شلل القلب في بداية نقص التروية الباردة. تخزين الطعوم في 0-4 ° C ممكن لفترة زمنية الأقصى من 4 ساعات. زمن نقص التروية لفترة طويلة قد يؤدي إلى hypocontractility عضلة القلب تعقدت المفرط من حجرات القلب اليمنى ونزيف. في تجربتنا، وبضع نقاط رئيسية الحرجة تسهيل عودة التوعي ناجحة. من خلال تعبئة كاملة من الشريان السباتي واستخدام الانظار Yasargil المشبك أقصى طول vassel لمفاغرة يمكن الحفاظ عليها. بالتشنج يمكن تجنبها من خلال إسقاط 01:10 بابافيرين المخفف على الشريان. لتجنب إعاقة للجهاز العصبي هو ligated الشريان السباتي دون التشعب للحفاظ على دوران رادف لر<html> انه الشريان السباتي الداخلي. والمتوسعة التجويف سفينة بعناية مع dilatator السفينة مع رقيق (0.2 مم) طرف مع تجنب تمزق من الجدار. في تجربتنا موضع الغرز عقد كما هو موضح سابقا 7 ليست إلزامية. اختيار حجم الكفة أمر حاسم لإعادة التوعي ناجحة. يجب أن يكون قطر صفعة الداخلي للمفاغرة شريانية أكبر إلى حد ما من خارج القطر من الشريان السباتي المشترك (250-300 ميكرون) لحساب عدم تطابق مع الأبهر الصاعد أكبر من الكسب غير المشروع. بالنسبة للفئران وزنها 20-25 غ استخدام الأصفاد 22-24 G (داخل القطر الكفة 0،510-0،643 مم) لالشريان السباتي والأصفاد 19-21 G (داخل القطر الكفة 0،724-0،912 مم) لحبل الوريد الخارجي . نحن نفضل مواد خياطة الجروح polyfilament (الحرير)، وهذا يسهل الغزل. يتم وضع المشبك الاوعية الدموية الدقيقة على تمديد الكفة. هذا يشل السفينة ويسهل انقلاب للخارج الجدار. ove_content &quot;&gt; انخفاض حرارة الجسم ويجب تجنب بعناية لأنه يطيل التعافي ويشكل سببا رئيسيا للوفيات المحيطة بالجراحة. تسكين تطميني Antagonizable باستخدام ميدازولام، medetomodine ويوفر الفنتانيل التسامح الجراحي الجيد وتسمر الانتعاش مقارنة مع الكيتامين / زيلازين 18. على الرغم من أن عنق الرحم نموذج زرع القلب هو غير فيزيولوجي، نموذج غير محملة القلب بسبب اتجاهها فريد من تدفق الدم داخل القلب، هو أداة لا غنى عنها في زرع القلب التجريبية. التفاصيل الفنية هو مبين في هذه الورقة الفيديو يجب أن تسمح الأبحاث لإنشاء هذا النموذج من السهل نسبيا في مختبراتهم.

كثيرا ما يستخدم نموذج زرع القلب للتحقيق I / R-الإصابة، رفض المزروع، في مرحلة ما بعد الزرع اعتلال وعائي وكفاءة وكلاء الجهاز المناعي. نماذج الماوس تجمع بين العديد من المزايا مثل المناعية المعروفة وخلفيات وراثية، وتوافر العديد من السلالات الفطرية والمعدلة وراثيا وتكاليف التجريبية منخفضة نسبيا. في عام 1973، وقد وصفت تقنية زرع القلب في البطن في الفئران أول من كوري وآخرون 1. في هذا النموذج يتم revascularized الطعوم بنهاية إلى جنب anastomoses من الأبهر الصاعد إلى الشريان الأورطي البطني المستلم والشريان الرئوي الرئيسي إلى الوريد الأجوف السفلي. في عام 1991، وقد وصفت تقنية خياطة لزرع القلب عنق الرحم في الفئران عن طريق تشن وآخرون (2). في هذا النموذج يتم تأسيس الوراء الشريان التاجي نضح من قبل مفاغرة من الشريان السباتي المستلم إلى الأبهر الصاعد للغرامالخلف. يتم إخراج مصارف الدم الوريدي عبر الجيب التاجي في الأذين الأيمن، والبطين الأيمن والشريان الرئوي عبر إلى المستلم الوريد الوداجي الخارجي (الشكل 1). بالمقارنة مع الكسب غير المشروع غرس البطن نموذج عنق الرحم أقل الغازية وموقع سطحي من الكسب غير المشروع تمكن الوصول السهل جدا للامتحانات المتابعة إضافية (مثل الجس، القلب، حيوي داخلي المجهري مضان) 3،4. على الرغم من التحسينات الفنية 5،6، واستخدام أوسع لهذا النموذج كان محدودا بسبب الصعوبات التقنية لأداء anastomoses خياطة الأوعية الصغيرة مع وجود نسبة عالية من التسرب مفاغرة وتجلط الدم. في عام 1991، ماتسورا وآخرون. أدخلت هذه التقنية الكفة التي يتم فيها مقلوبة جدار الوعاء الدموي على اسطوانة الاصطناعية، مما يسهل كثيرا من نموذج زرع القلب عنق الرحم 7. وكانت هذه التقنية فواعتمد rther لمختلف النماذج التجريبية من بينها زرع الكلى 8، 9 البنكرياس، أطرافهم 10، 11،12 الكبد والرئة والأوعية الدموية 13،14 زرع 15. وبالمقارنة مع تقنية خياطة الوقت اللازم لanastomoses، وبالتالي، فإن الوقت نقص التروية الدافئ هو أقصر، وهناك مضاعفات أقل بكثير الأوعية الدموية باستخدام تقنية صفعة 16. وعلاوة على ذلك، فإنه يمكن الجراحين مع قليل من التدريب في جراحة لتنفيذ العملية مع نسبة نجاح عالية. عيوب تقنية صفعة هو ربط المتطلبات المسبقة من الشريان السباتي المشترك، الأمر الذي قد يغير التروية الدماغية. في هذه الورقة الفيديو نقدم محسنة ومبسطة تقنية صفعة لعملية زرع قلب عنق الرحم في الفئران.

<table><tbody><tr><td>Forceps JFC-7.2</td><td>S&amp;amp;T</td><td>P-00036</td><td>Curved tip 0.20 mm</td></tr><tr><td>Vessel dilatator D-5a</td><td>S&amp;amp;T</td><td>S-00124</td><td></td></tr><tr><td>Adventita scissor</td><td>S&amp;amp;T</td><td>S-00102</td><td></td></tr><tr><td>Vascular clamp B-1V</td><td>S&amp;amp;T</td><td>S-00396</td><td></td></tr><tr><td>Yasargil Clip</td><td>Peter Lazic</td><td>65,097</td><td>3.5 mm lenght</td></tr><tr><td>Bipolar forceps</td><td>Micromed</td><td>148-100-011</td><td>tip 0.25 mm</td></tr><tr><td>Polyimide tubes</td><td>River Tech Medical</td><td></td><td>19-24 gauge</td></tr><tr><td>8.0 silk ligatures</td><td>Catgut</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Custodiol HTK solution</td><td>Essential Pharmaceuticals</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

heterotopic cervical heart transplantation in mice

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies this model by avoiding challenging suture anastomoses of small vessels thereby reducing warm ischemia time. In comparison to abdominal graft implantation the cervical model is less invasive and the implanted graft is easily accessible for further follow-up examinations. Anastomoses are performed by pulling the ascending aorta of the graft over the cuff with the recipient&#8217;s common carotid artery and by pulling the main pulmonary artery over the cuff with the external jugular vein. Selection of appropriate cuff size and complete mobilization of the vessels are important for successful revascularization. Ischemia-reperfusion (I/R) injury can be minimized by perfusing the graft with a cardioplegic solution and by hypothermia. In this article, we provide technical details for a simplified and improved cuff technique, which should allow surgeons with basic microsurgical skills to perform the procedure with a high success rate.

فريق العمل لدينا يمكن أن تؤدي بنجاح تقنية الموضحة بعد ما يقرب من 20 عملية جراحية التدريب. أصعب جزء هو إيفرت جدار الوعاء الدموي في الشريان السباتي على الكفة، لأنها تقلب بسهولة مرة أخرى ويمكن أن تؤدي محاولات متعددة لتمزق من الجدار. بعد فترة التدريب، كان متوسط ​​إجمالي الوقت المنطوق 60 ± 8 دقيقة. ويلزم حوالي 20 دقيقة للحصاد المانحة، 25 دقيقة لإعداد سفن عنق الرحم و 15 دقيقة لanastomoses وإغلاق الجلد. للتحقيق في عضلة القلب I / R-إصابة أجرينا أكثر من 200 عملية في مسانج C57BL / 6 الفئران في مختلف البيئات التجريبية مع نسبة نجاح العمليات الجراحية من 92٪. وكان سبب الوفاة المبكرة بسبب الصعوبات في أداء anastomoses (ن = 3)، تسرب تفاغري (ن = 2) وفشل القلب (ن = 10). كان الموت الرحيم واحد الحيوانات بعد الشفاء بسبب إعاقة للجهاز العصبي. بين الناجين المحيطة بالجراحة، وبقاء الكسب غير المشروع&gt; 95٪ في7 أيام (الشكل 4). وقد أبقى عدد من المتلقين مسانج الكسب غير المشروع على قيد الحياة لأكثر من 3 أشهر. على الرغم من عدم استخدام الوقاية باستخدام المضادات الحيوية، ونحن لم نلاحظ أي مضاعفات معدية. في المجموعة الأولى، تم زرع 12 مسانج C57BL / 6 الفئران لاجراء فحوص لأمراض أنسجة الجسم (الشكل 3). تعرضت الطعوم إلى 4 ساعات من نقص التروية بارد من قبل التخزين على الجليد في 4 درجات مئوية قبل الزرع. تم حصاد الزرع بعد 7 أيام من ضخه وملطخة في الهيماتوكسيلين ويوزين (H &amp; E) وسيريوس الأحمر. الحيوانات Nontransplanted (ن = 6) بمثابة الضوابط. I / R تؤدي إلى رد فعل التهابي قوي مع وذمة الأنسجة، واحتقان، الكريات البيض التسلل، الاوعية الدموية الدقيقة انسداد والتليف الخلالي. في هذه السلسلة في وقت مبكر قتل حيوان واحد بعد الحقن المتكررة من الكيتامين / زيلازين. هذه المضاعفات يمكن تجنب مزيد باستخدام التخدير antagonizable بالكامل بما في ذلك ميدازولام، medetomodine والفنتانيل. &lt;<html> / P&gt; <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/52907/52907fig1.jpg" /> الشكل 1: (أ) توضيح تخطيطي من تدفق الدم في منتبذ عنق الرحم القلب زرع. الدم من التدفقات الشريان السباتي المستلم إلى الوراء في الأبهر الصاعد وداخل الشرايين التاجية ليروي الكسب غير المشروع القلبية. المصارف الدم الوريدي إلى الأذين الأيمن عن طريق الجيب التاجي، يملأ البطين الأيمن ويتم إخراج من خلال الشريان الرئوي إلى الخارجي حبل الوريد المستلم. يتم تجاوز البطين الأيسر تماما. (ب) جراحة داخلية منظر Anastomoses. يتم سحبها الأبهر الصاعد (2) على الكفة مع الشريان السباتي (1) والجذع الرئوي (3) على الكفة مع الوريد الوداجي الخارجي (4). في الصورة لم يتم بعد الانتهاء من مفاغرة وريدية.JPG &quot;الهدف =&quot; _ فارغة &quot;&gt; الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم. <img alt="الرقم 2" src="/files/ftp_upload/52907/52907fig2.jpg" /> الشكل 2: (أ) مطلوب مجموعة كاملة من الأدوات المجهرية العقيمة من بينهم اثنان من ملقط المنحنية واثنين dilatators السفينة. (ب) بالنسبة للanastomoses الأصفاد 19-24 G مع ملحق والاوعية الدموية الدقيقة المشابك تستخدم. <img alt="الشكل (3)" src="/files/ftp_upload/52907/52907fig3.jpg" /> الرقم 3: النسيجي العينات إظهار عضلة I / R-الاصابة في مسانج C57BL / 6 الفئران H &amp; E تلطيخ (20X التكبير) من قلوب من الحيوانات التحكم (أ) و من الحيوانات بعد 4 ساعة نقص التروية الباردة و7 أيام من ضخه (ب). / R أدى لفترات طويلة وأنا في رد فعل للالتهابات قوية مع الأنسجة إدEMA، تبيغ، التسلل الكريات البيض والاوعية الدموية الدقيقة انسداد. في نفس الإعداد التجريبية سيريوس تلطيخ الأحمر (40X التكبير) أظهرت تميز ترسب الكولاجين خلالي بعد I / R (د) مقارنة مع مجموعة التحكم (ج). <img alt="الرقم 4" src="/files/ftp_upload/52907/52907fig4.jpg" /> الرقم 4: القلب المزروع البقاء على قيد الحياة كابلان ماير المؤامرة التي تظهر بقاء الكسب غير المشروع في مسانج C57BL / 6 الفئران. الحيوانات وير الموت الرحيم في يوم ما بعد الجراحة (7) لفحص الأنسجة.

Watch this Scientific Journal Video about Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice at JoVE.com

Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice

The cuff technique shortens and facilitates the model of heterotopic cervical heart transplantation in mice by avoiding technically challenging suture anastomoses of small vessels. The technical details shown in this video paper should allow researches to establish this model in their laboratories.

منتبذ عنق الرحم القلب زرع في الفئران

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies ...

heterotopic-cervical-heart-transplantation-in-mice

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

11.1K Views.  German Heart Center Munich, Technische Universität München. The cuff technique shortens and facilitates the model of heterotopic cervical heart transplantation in mice by avoiding technically challenging suture anastomoses of small vessels. The technical details shown in this video paper should allow researches to establish this model in their laboratories.

Video: Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice

Heterotopic Heart Transplantation in Mice

The mouse heterotopic heart transplantation has been used widely since it was introduced by Drs. Corry and Russell in 1973. It is particularly valuable for studying rejection and immune response now that newer transgenic and gene knockout mice are available, and a large number of immunologic reagents have been developed. The heart transplant model is less stringent than the skin transplant models, although technically more challenging. We have developed a modified technique and have completed over 1000 successful cases of heterotopic heart transplantation in mice. When making anastomosis of the ascending aorta and abdominal aorta, two stay sutures are placed at the proximal and distal apexes of recipient abdominal aorta with the donor s ascending aorta, then using 11-0 suture for anastomosis on both side of aorta with continuing sutures. The stay sutures make the anastomosis easier and 11-0 is an ideal suture size to avoid bleeding and thrombosis.
When making anastomosis of pulmonary artery and inferior vena cava, two stay sutures are made at the proximal apex and distal apex of the recipient s inferior vena cava with the donor s pulmonary artery. The left wall of the inferior vena cava and donor s pulmonary artery is closed with continuing sutures in the inside of the inferior vena cava after, one knot with the proximal apex stay suture the right wall of the inferior vena cava and the donor s pulmonary artery are closed with continuing sutures outside the inferior vena cave with 10-0 sutures. This method is easier to perform because anastomosis is made just on the one side of the inferior vena cava and 10-0 sutures is the right size to avoid bleeding and thrombosis. In this article, we provide details of the technique to supplement the video.

The mouse heterotopic heart transplantation model has been proven by many investigators to be an important method for studying mechanisms of rejection and immune response. However, the techniques involved are still challenging. By modifying standard techniques we have had success with more than 1000 transplants.

منتبذ زرع القلب في الفئران

The mouse heterotopic heart transplantation has been used widely since it was introduced by Drs. Corry and Russell in 1973. It is particularly valuable ...

Biology

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are available to perform mechanistic in vivo studies. While heart transplantation models using a suture technique were first successfully developed in rats, the translation into an equally widespread used murine equivalent was never achieved due the technical complexity of the microsurgical procedure. In contrast, non-suture cuff techniques, also developed initially in rats, were successfully adapted for use in mice1-3. This technique for revascularization involves two major steps I) everting the recipient vessel over a polyethylene cuff; II) pulling the donor vessel over the formerly everted recipient vessel and holding it in place with a circumferential tie. This ensures a continuity of the endothelial layer, short operating time and very high patency rates4.
Using this technique for vascular anastomosis we performed more than 1,000 cervical heart transplants with an overall success rate of 95%. For arterial inflow the common carotid artery and the proximal aortic arch were anastomosed resulting in a retrograde perfusion of the transplanted heart. For venous drainage the pulmonary artery of the graft was anastomosed with the external jugular vein of the recipient5.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

The murine cervical heart transplantation model is well suited for immunological as well as ischemia reperfusion injury studies. We modified the procedure using a non-suture cuff technique and performed more than 1,000 successful transplants with this approach.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

الفئران عنق الرحم القلب زرع نموذج باستخدام أزرار وتقنيات التعديل

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion

Mice are often used as heart transplant donors and recipients in studies of transplant immunology due to the wide range of transgenic mice and reagents available. A difficulty is presented due to the small size of the animal and the considerable technical challenges of the microsurgery involved in heart transplantation. In particular, a high rate of technical failure early after transplantation may result from recipient death and post-operative complications such as hind limb paralysis or a non-beating heart. Here, the complete technique for heterotopic mouse heart transplantation is demonstrated, involving harvesting the donor heart and its subsequent implantation into a recipient mouse. The donor heart is harvested immediately following in situ perfusion with cold heparinized saline and transection of the ascending aorta and pulmonary artery. The recipient operation involves preparation of the abdominal aorta and inferior vena cava (IVC), followed by end-to-side anastomosis of the donor aorta with the recipient aorta using a single running 10-0 microsuture and a similar anastomosis of the donor pulmonary artery with the recipient IVC. Following the operation the animal is injected with 0.6 ml normal saline subcutaneously and allowed to recover on a 37&#160;&#176;C heating pad. The results from 227 mouse heart transplants are summarized with a success rate at 48 hr of 86.8%. Of the 13.2% failures within 48 hr, 5 (2.2%) experienced hind limb paralysis, 10 (4.4%) had a non-beating heart due to graft ischemic injury and/or thrombosis, while 15 (6.6%) died within 48 hr.

A technique is demonstrated for the microsurgical procedure for heterotopic transplantation of hearts in mice, including simplified methods for donor harvesting and recipient vessel anastomosis.

وهناك طريقة معدلة لغيري مكاني ماوس القلب Transplantion

Mice are often used as heart transplant donors and recipients in studies of transplant immunology due to the wide range of transgenic mice and reagents ...

Murine Heterotopic Heart Transplant Technique

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique was developed and reported in 2001 by Niimi. Described here are the techniques that have evolved over more than a decade in the hands of three surgeons (Plenter, Grazia, Pietra) in our center. These techniques are now being passed on to a younger generation of surgeons and researchers.
Based largely on the Niimi experience, the procedures used have evolved in the fine details - details which we will endeavor to relate here in such a way that others may be able to use this very useful model. Like Niimi, we have found that a video aid to learning is a priceless resource for the beginner.

The manuscript describes the steps required to perform the heterotopic heart transplant in the mouse.

الفئران غيري مكاني القلب زرع تقنية

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become ...

A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression must be pursued. Employing vascularized bone marrow transplantation and co-transplantation of the thymus have shown promise in this regard in various animal models.1-11 Vascularized bone marrow transplantation allows for the uninterrupted transfer of donor bone marrow cells within the preserved donor microenvironment, and the incorporation of thymus tissue with vascularized bone marrow transplantation has shown to increase T-cell chimerism ultimately playing a supportive role in the induction of immune regulation. The combination of solid organ and vascularized composite allotransplantation can uniquely combine these strategies in the form of a novel transplant model. Murine models serve as an excellent paradigm to explore the mechanisms of acute and chronic rejection, chimerism, and tolerance induction, thus providing the foundation to propagate superior allograft survival strategies for larger animal models and future clinical application. Herein, we developed a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique. The experience in syngeneic and allogeneic transplant settings is described for future broader immunological investigations via an instructional manuscript and video supplement.

To study combined solid organ and vascularized composite allotransplantation, we describe a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique.

A المجهرية نموذج رواية لمنتبذ، جناح كتلة جدار الصدر، الغدة الصعترية، وزرع القلب في الفئران

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression ...

An Immunological Model for Heterotopic Heart and Cardiac Muscle Cell Transplantation in Rats

Heterotopic heart transplantation in rats has been a commonly used model for diverse immunological studies for more than 50 years. Several modifications have been reported since the first description in 1964. After 30 years of performing heterotopic heart transplantation in rats, we have developed a simplified surgical approach, which can be easily taught and performed without further surgical training or background.
After dissection of the ascending aorta and the pulmonary artery and ligation of superior and inferior caval and pulmonary veins, the donor heart is harvested and subsequently perfused with ice-cold saline solution supplemented with heparin. After clamping and incising the recipient abdominal vessels, the donor ascending aorta and pulmonary artery are anastomosed to the recipient abdominal aorta and inferior vena cava, respectively, using continuous running sutures.
Depending on different donor-recipient combinations, this model allows analyses of either acute or chronic rejection of allografts. The immunological significance of this model is further enhanced by a novel approach of in-ear injection of vital cardiac muscle cells and subsequent analysis of draining cervical lymphatic tissue.

We describe a model of heterotopic abdominal heart transplantation in rats, implying modifications of current strategies, which lead to a simplified surgical approach. Additionally, we describe a novel rejection model by in-ear injection of vital cardiac muscle cells, allowing further transplant immunological analyses in rats.

نموذج مناعي لزرع خلايا القلب الهيترولوجي وخلايا عضلة القلب في الفئران

Heterotopic heart transplantation in rats has been a commonly used model for diverse immunological studies for more than 50 years. Several modifications ...

Immunology and Infection

Optimization of the Cuff Technique for Murine Heart Transplantation

Murine cardiac transplantation has been performed for more than 40 years. With advancements in microsurgery, certain new techniques have been used to improve surgical efficiency. In our lab, we have optimized the cuff technique with two major steps. First, we used the inner tube technique to insert a temporary inner tube into the external jugular vein and carotid artery blood vessel to facilitate eversion of the vessel over the cuff. Second, we performed complete heterotopic cardiac transplantation through the collaboration of two experienced surgeons. These modifications effectively reduced the operation time to 25 minutes, with a success rate of 95%. In this report, we describe these procedures in detail and provide a supplemental video. We believe that this report on the improved cuff technique will offer practical guidance for murine heterotopic heart transplantation and will enhance the utility of this mouse model for basic research.

We introduce an inner tube approach to the cuff technique for mouse cervical heterotopic heart transplantation to help evert the vessel over the cuff. We found that cooperation between two experienced surgeons markedly shortens the operation time.

تحسين تقنية الكفة لزراعة القلب مورين

Murine cardiac transplantation has been performed for more than 40 years. With advancements in microsurgery, certain new techniques have been used to ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

نموذج بورسين ما قبل السريرية لزراعة القلب التقويمي

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Mouse Heterotopic Cervical Cardiac Transplantation Utilizing Vascular Cuffs

Murine models of cardiac transplantation are frequently utilized to study ischemia-reperfusion injury, innate and adaptive immune responses after transplantation, and the impact of immunomodulatory therapies on graft rejection. Heterotopic cervical heart transplantation in mice was first described in 1991 using sutured anastomoses and subsequently modified to include cuff techniques. This modification allowed for improved success rates, and since then, there have been multiple reports that have proposed further technical improvements. However, translation into more widespread utilization remains limited due to the technical difficulty associated with graft anastomoses, which requires precision to achieve adequate length and caliber of the cuffs to avoid vascular anastomotic twisting or excessive tension, which can result in damage to the graft. The present protocol describes a modified technique for performing heterotopic cervical cardiac transplantation in mice which involves cuff placement on the recipient's common carotid artery and the donor's pulmonary artery in alignment with the direction of the blood flow.

Mouse cardiac transplantation models represent valuable research tools for studying transplantation immunology. The present protocol details mouse heterotopic cervical cardiac transplantation that involves the placement of cuffs on the recipient's common carotid artery and the donor's pulmonary artery trunk to allow for laminar blood flow.

زرع قلب عنق الرحم غير المتجانس للفأر باستخدام الأصفاد الوعائية

Murine models of cardiac transplantation are frequently utilized to study ischemia-reperfusion injury, innate and adaptive immune responses after ...

Blood Circuit Reconstruction in an Abdominal Mouse Heart Transplantation Model

The surgical technique of heterotopic abdominal heart transplantation in mice is a standard model for research in transplantation immunology. Here, the established technique for a modified blood circuit reconstruction in a heterotopic abdominal heart transplantation model is presented. This method uses the intrathoracic inferior vena cava (IIVC) instead of the pulmonary artery of the donor heart for the anastomosis to the inferior vena cava of the recipient. It is facilitating and improving success rates for abdominal heart transplantation in mice.

A novel technique for blood circuit reconstruction in a heterotopic abdominal mouse heart transplantation model is demonstrated.

إعادة بناء دائرة الدم في نموذج زرع قلب فأر البطن

The surgical technique of heterotopic abdominal heart transplantation in mice is a standard model for research in transplantation immunology. Here, the ...