El yazmaları hakkındaki yorumları için Nipun Basrur, Adriana K. Rosas Villegas, Nadav Shai ve Trevor Sorrells'e ve teknik yardım için Zhongyan Gong ve Kyrollos Barsoum'a teşekkür ederiz. Şekil 1'dekullanılan fotoğraflar için Alex Wild'a teşekkür ederiz. K.V., Boehringer Ingelheim Fonds doktora bursu tarafından desteklendi. V.J. kısmen NIH T32-MH095246 tarafından desteklendi. Bu çalışma kısmen Howard Hughes Tıp Enstitüsü'nden The Rockefeller Üniversitesi'ne James H. Gilliam İleri Çalışma Bursları programı aracılığıyla V.J.'ye verilen bir hibe ile desteklendi. Bu materyal, Ulusal Bilim Vakfı Lisansüstü Araştırma Burs Programı tarafından Hibe No. NSF DGE-1325261'den V.J.'ye Bu materyalde ifade edilen herhangi bir görüş, bulgu ve sonuç veya öneri yazar(lar)ın görüşleridir ve Ulusal Bilim Vakfı'nın görüşlerini yansıtmak zorunda değildir.

<ol>
	<li>Bhatt, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+global+distribution+and+burden+of+dengue.">The global distribution and burden of dengue.</a> Nature. 496 (7446), 504-507 (2014).</li><li>Rogers, D. J., Wilson, A. J., Hay, S. I., Graham, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+global+distribution+of+yellow+fever+and+dengue.">The global distribution of yellow fever and dengue.</a> Advances in Parasitology. 62 (05), 181-220 (2006).</li><li>Chouin-Carneiro, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+susceptibilities+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+from+the+Americas+to+Zika+virus.">Differential susceptibilities of Aedes aegypti and Aedes albopictus from the Americas to Zika virus.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 10 (3), (2016).</li><li>Guerbois, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Outbreak+of+Zika+virus+infection,+Chiapas+State,+Mexico,+2015,+and+first+confirmed+transmission+by+Aedes+aegypti+mosquitoes+in+the+Amercias.">Outbreak of Zika virus infection, Chiapas State, Mexico, 2015, and first confirmed transmission by Aedes aegypti mosquitoes in the Amercias.</a> Journal of Infectious Diseases. 214 (9), 1349-1356 (2016).</li><li>Weaver, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zika+virus:+history,+emergence,+biology,+and+prospects+for+control.">Zika virus: history, emergence, biology, and prospects for control.</a> Antiviral Research. 130, 69-80 (2016).</li><li>Attardo, G. M., Hansen, I. A., Raikhel, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nutritional+regulation+of+vitellogenesis+in+mosquitoes:+implications+for+anautogeny.">Nutritional regulation of vitellogenesis in mosquitoes: implications for anautogeny.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (7), 661-675 (2005).</li><li>Duvall, L. B., Ramos-Espiritu, L., Barsoum, K. E., Glickman, J. F., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small-molecule+agonists+of+Ae.+aegypti+neuropeptide+Y+receptor+block+mosquito+biting.">Small-molecule agonists of Ae. aegypti neuropeptide Y receptor block mosquito biting.</a> Cell. 176 (4), 687-701 (2019).</li><li>Dimond, J. B., Lea, A. O., Hahnert, W. F., DeLong, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+amino+acids+required+for+egg+production+in+Aedes+aegypti.">The amino acids required for egg production in Aedes aegypti.</a> The Canadian Entomologist. 88 (2), 57-62 (1956).</li><li>Guerrero, D., Cantaert, T., Miss&#233;, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aedes+mosquito+salivary+components+and+their+effect+on+the+immune+response+to+arboviruses.">Aedes mosquito salivary components and their effect on the immune response to arboviruses.</a> Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 1-11 (2020).</li><li>Raquin, V., Lambrechts, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dengue+virus+replicates+and+accumulates+in+Aedes+aegypti+salivary+glands.">Dengue virus replicates and accumulates in Aedes aegypti salivary glands.</a> Virology. 507, 75-81 (2017).</li><li>Farjana, T., Tuno, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+blood+feeding+and+host-seeking+behavior+in+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+(diptera:+Culicidae).">Multiple blood feeding and host-seeking behavior in Aedes aegypti and Aedes albopictus (diptera: Culicidae).</a> Journal of Medical Entomology. 50 (4), 838-846 (2013).</li><li>Scott, T. W., Takken, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+strategies+of+anthropophilic+mosquitoes+result+in+increased+risk+of+pathogen+transmission.">Feeding strategies of anthropophilic mosquitoes result in increased risk of pathogen transmission.</a> Trends in Parasitology. 28 (3), 114-121 (2012).</li><li>Ross, P. A., Lau, M. J., Hoffmann, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Does+membrane+feeding+compromise+the+quality+of+Aedes+aegypti+mosquitoes.">Does membrane feeding compromise the quality of Aedes aegypti mosquitoes.</a> PLoS ONE. 14 (11), 1-19 (2019).</li><li>Ross, P. A., Axford, J. K., Richardson, K. M., Endersby-Harshman, N. M., Hoffmann, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintaining+Aedes+aegypti+mosquitoes+infected+with+wolbachia.">Maintaining Aedes aegypti mosquitoes infected with wolbachia.</a> Journal of Visualized Experiments. 2017 (126), 1-8 (2017).</li><li>Briegel, H., Hefti, M., DiMarco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lipid+metabolism+during+sequential+gonotrophic+cycles+in+large+and+small+female+Aedes+aegypti.">Lipid metabolism during sequential gonotrophic cycles in large and small female Aedes aegypti.</a> Journal of Insect Physiology. 48 (5), 547-554 (2002).</li><li>McMeniman, C. J., Corfas, R. A., Matthews, B. J., Ritchie, S. A. S., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multimodal+integration+of+carbon+dioxide+and+other+sensory+cues+drives+mosquito+attraction+to+humans.">Multimodal integration of carbon dioxide and other sensory cues drives mosquito attraction to humans.</a> Cell. 156 (5), 1060-1071 (2014).</li><li>Pakes, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , (2011).</li><li>Deng, L., Koou, S. Y., Png, A. B., Ng, L. C., Lam-Phua, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mosquito+feeding+system+for+routine+blood-feeding+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus.">A novel mosquito feeding system for routine blood-feeding of Aedes aegypti and Aedes albopictus.</a> Tropical Biomedicine. 29 (1), 169-174 (2012).</li><li>Gunathilaka, N., Ranathunge, T., Udayanga, L., Abeyewickreme, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficacy+of+blood+sources+and+artificial+blood+feeding+methods+in+rearing+of+Aedes+aegypti+(Diptera:+Culicidae)+for+sterile+insect+technique+and+incompatible+insect+technique+approaches+in+Sri+Lanka.">Efficacy of blood sources and artificial blood feeding methods in rearing of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) for sterile insect technique and incompatible insect technique approaches in Sri Lanka.</a> BioMed Research International. 2017, 3196924 (2017).</li><li>Costa-da-Silva, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glytube:+a+conical+tube+and+parafilm+M-based+method+as+a+simplified+device+to+artificially+blood-feed+the+Dengue+vector+mosquito,+Aedes+aegypti.">Glytube: a conical tube and parafilm M-based method as a simplified device to artificially blood-feed the Dengue vector mosquito, Aedes aegypti.</a> PLoS ONE. 8 (1), 53816 (2013).</li><li>Carvalho, D. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mass+production+of+genetically+modified+Aedes+aegypti+for+field+releases+in+Brazil.">Mass production of genetically modified Aedes aegypti for field releases in Brazil.</a> Journal of Visualized Experiments. 83 (83), 1-10 (2014).</li><li>Kogan, P. H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Substitute+blood+meal+for+investigating+and+maintaining+Aedes+aegypti+(Diptera:+Culicidae).">Substitute blood meal for investigating and maintaining Aedes aegypti (Diptera: Culicidae).</a> Journal of Medical Entomology. 27 (4), 1-4 (1990).</li><li>Gonzales, K. K., Hansen, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+diets+for+mosquitoes.">Artificial diets for mosquitoes.</a> International Journal of Environmental Research and Public Health. 13 (12), (2016).</li><li>Baughman, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+highly+stable+blood+meal+alternative+for+rearing+Aedes+and+Anopheles+mosquitoes.">A highly stable blood meal alternative for rearing Aedes and Anopheles mosquitoes.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 11 (12), 0006142 (2017).</li><li>Galun, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+stimuli+and+artificial+feeding.">Feeding stimuli and artificial feeding.</a> Bulletin of the World Health Organization. 36, 590-593 (1967).</li><li>Galun, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+response+in+Aedes+aegypti:+stimulation+by+adenosine+triphosphate.">Feeding response in Aedes aegypti: stimulation by adenosine triphosphate.</a> Science. 142, 1674-1675 (1963).</li><li>Jov&#233;, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+Discrimination+of+Blood+and+Floral+Nectar+by+Aedes+aegypti+Mosquitoes.">Sensory Discrimination of Blood and Floral Nectar by Aedes aegypti Mosquitoes.</a> Neuron. 108, 1-18 (2020).</li><li>Petersen, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+the+age+of+first+blood+meal+and+Zika+virus+infection+on+Aedes+aegypti+egg+production+and+longevity.">The impact of the age of first blood meal and Zika virus infection on Aedes aegypti egg production and longevity.</a> PLoS ONE. 13 (7), 1-15 (2018).</li><li>Sissoko, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Frequent+sugar+feeding+behavior+by+Aedes+aegypti+in+Bamako,+Mali+makes+them+ideal+candidates+for+control+with+Attractive+Toxic+Sugar+Baits+(ATSB).">Frequent sugar feeding behavior by Aedes aegypti in Bamako, Mali makes them ideal candidates for control with Attractive Toxic Sugar Baits (ATSB).</a> PLoS ONE. 14 (6), 0214170 (2019).</li><li>Houseman, J. G., Downe, A. E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+of+measuring+blood+meal+size+and+proteinase+activity+for+determining+the+effects+of+mated+state+of+digestive+processes+of+female+Aedes+aegypti+(L.)+(Diperta:+Culicidae).">Methods of measuring blood meal size and proteinase activity for determining the effects of mated state of digestive processes of female Aedes aegypti (L.) (Diperta: Culicidae).</a> The Canadian Entomologist. 18, 241-248 (1986).</li><li>Redington, B. C., Hockmeyer, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+estimating+blood+meal+volume+in+Aedes+aegypti+using+a+radioisotope.">A method for estimating blood meal volume in Aedes aegypti using a radioisotope.</a> Journal of Insect Physiology. 22 (7), 961-966 (1976).</li><li>Gonzales, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+SkitoSnack,+an+artificial+blood+meal+replacement,+on+Aedes+aegypti+life+history+traits+and+gut+microbiota.">The effect of SkitoSnack, an artificial blood meal replacement, on Aedes aegypti life history traits and gut microbiota.</a> Scientific Reports. 8 (1), 1-14 (2018).</li><li>Klowden, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+endogenous+regulation+of+mosquito+reproductive+behavior.">The endogenous regulation of mosquito reproductive behavior.</a> Experientia. 46 (7), 660-670 (1990).</li><li>Liesch, J., Bellani, L. L., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+and+genetic+characterization+of+neuropeptide+Y-like+receptors+in+Aedes+aegypti.">Functional and genetic characterization of neuropeptide Y-like receptors in Aedes aegypti.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (10), 22486 (2013).</li><li>Frances, S. P., Sithiprasasna, R., Linthicum, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+evaluation+of+the+response+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+uninfected+and+infected+with+Dengue+virus+to+Deet.">Laboratory evaluation of the response of Aedes aegypti and Aedes albopictus uninfected and infected with Dengue virus to Deet.</a> Journal of Medical Entomology. 48 (2), (2011).</li><li>Dennis, E. J., Goldman, O. V., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aedes+aegypti+mosquitoes+use+their+legs+to+sense+DEET+on+contact.">Aedes aegypti mosquitoes use their legs to sense DEET on contact.</a> Current Biology. 29 (9), 1551-1556 (2019).</li><li>Harrington, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterogeneous+feeding+patterns+of+the+Dengue+vector,+Aedes+aegypti,+on+individual+human+hosts+in+rural+Thailand.">Heterogeneous feeding patterns of the Dengue vector, Aedes aegypti, on individual human hosts in rural Thailand.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 8 (8), 3048 (2014).</li><li>Hol, F. J., Lambrechts, L., Prakash, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=BiteOscope,+an+open+platform+to+study+mosquito+biting+behavior.">BiteOscope, an open platform to study mosquito biting behavior.</a> eLife. 9, 1-24 (2020).</li></ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Birçok laboratuvar uygulaması için yapay membran besleyiciler, araştırmacılara yemeğin içeriğini doğrudan manipüle etme olanağı sağlayarak canlı konakçılara kıyasla farklı faydalar sunar. Yapay membran besleme için birden fazla yöntem mevcut olsa da, burada açıklanan yöntem esneklik, maliyet ve verimde avantajlar sunar. Diğer ticari membran besleyicilere kıyasla, Glytube tahlili küçük bir yemek hacmi gerektirir, bu da onu 7,35gereken toplam hacmi en aza indirerek ilaçlar veya patojenler de dahil olmak üzere pahalı reaktifler için verimli bir teslimat mekanizmasıhalinegetirir. Hem protein içermeyen tuzlu su hem de yapay kan yemekleri engorgement'i teşvik ettiği için, bileşikler veya patojenler her iki öğüne de enjeksiyonlara yüksek verimli ve invaziv olmayan bir alternatif olarak eklenebilir. Ayrıca, Glytube'un her bileşeni, besleme cihazının çapraz kirlenmesi olmadan birden fazla yemek türünü teslim etmek ve ölçmek için kolayca yıkanabilir, değiştirilebilir veya ölçeklendirilebilir.
Sivrisinekler tarafından tüketilen yemek hacimlerini ölçmek için, floresan bazlı yöntem, sivrisinekleri beslenmeden önce ve sonra tartmaya göre daha hassas yemek boyutu nicelemesi sağlar. Bu yöntemin bir bitiş noktası tahlil olduğu unutulmamalıdır. Buna karşılık, tartım sivrisineklerin daha fazla deney için canlı tutulmasını sağlar. Bir plaka okuyucu kullanarak, floresan tabanlı yöntem, yüzlerce bireysel kadın tarafından tüketilen öğünlerin yüksek verimli nicelemesi için kolayca ölçeklendirilebilir.
Yüksek beslenme oranları elde etmek için, kadın konakçı arama davranışını etkinleştirmek ve dişileri besleyiciye çekmek için yeterli konak ipuçlarının bir kombinasyonu bulunmalıdır. Sivrisinekler Glytube'un altında kalabalık değilse, yemek düzgün ısıtılamayabilir veya CO2 teslimatı yeterli olmayabilir. Membran yüzeyine insan kokusu eklenmesi, yapay zarın çekiciliğini güvenilir bir şekilde arttırır. Sivrisinekler Glytube'un altında görülürse, ancak beslenemezse, yemek bileşimi hatalı olabilir. Dişiler, yemeğin kendisi sıcak değilse, kan çok eskiyse veya yemeğe katkı maddeleri özünde averatifse veya istenmeyen bir kimyasal reaksiyona neden olursa beslenmeyebilir36. Ek ATP ayrıca beslenme oranlarını güvenilir bir şekilde artırır ve sağlanan tariflerin her birinde 2 mM'lik son konsantrasyona kadar ölçeklendirilebilir. Parafilm Glytube kapağı boyunca gergin çekilmezse dişiler beslenmeyebilir; parafilm düzgün bir şekilde şeffaf olmalı ve tokalanmamalıdır, çünkü bu, dişinin parafilm'i tarzıyla etkili bir şekilde delebilmesini önler. Yemek Glytube'dan örgüye sızarsa, parafilm germe işlemi sırasında yırtılmış olabilir ve değiştirilmelidir.
Yemek bileşimini değiştirmek, araştırmacıların yemeği midgut'tan temizlemek için gereken süreyi ve sonraki konakçı arama davranışını manipüle etmelerine de izin verebilir. Burada sunulan yemekler, hayvansal türevi kana benzer 7 sindirim için24-36 saat gerektirir. Bu yemeklerden herhangi birini besledikten sonra, dişiler sindirim süresi boyunca konakçı arayışını bastıracaktır. Tuzlu yemek proteinden yoksun olduğundan, dişiler yemek temizlendikten sonra ev sahibi arayışına geri dönerler. Daha hızlı bir geri dönüş isteniyorsa, araştırmacılar yaklaşık 6 saat27içinde atılan alternatif "hızlı temizleme" tuzlu su öğünlerini seçebilirler. Burada sunulan tuzlu yemeğin bileşimi, sonuçları yapay kan unu ile doğrudan karşılaştırmak için eşleştirilirken, "hızlı temizleme" unu omurgalı kanda bulunan fizyolojik tuz seviyeleriyle daha yakından eşleşir.
Burada açıklanan yöntemler, araştırmacının deneysel hedeflerine en uygun tahlilleri seçmeden önce dikkate alınması gereken sınırlamalara sahiptir. Açıklanan floresan ölçümleri, sivrisineklerin ek deneyler için tekrar kullanılmasına izin vermez. Bununla birlikte, floresan tahlil kullanılarak öğün büyüklüğü ölçümü öncesinde ağırlık ölçümleri yapılabilir. Kilo ve yemek boyutu belirli bir yemek için birden fazla denemede tutarlıysa, ağırlık gelecekteki deneylerde proxy olarak kullanılabilir. Ayrıca, bu protokol konak aramadaki açıklarla kan besleme davranışı arasındaki ayrımı yapmaz; membran besleyicinin bulunmasında bozukluklar gösteren sivrisineklerin beslenme oranlarında ve/veya yemek boyutunda bir azalma olacaktır. Araştırmacılar, test boyunca davranışı kaydetmek için bir kamera ekleyerek, dişilerin Glytube'u bulup bulamadıklarını veya Glytube'u bulup bulamadıklarını, ancak beslenmediklerini belirleyebilirler.
Burada açıklanan test, sivrisineklerde beslenme davranışı ile ilgili birçok olağanüstü soruyu araştırmak için uyarlanabilir. Örneğin, belirli kan proteinlerinin katkısı, bileşen proteinlerin oranını veya yapay kan unundaki toplam protein konsantrasyonu değiştirilerek araştırılabilir. Birden fazla besleme etkinliğinden yemek boyutlarını değerlendirmek için, öğünleri benzersiz kaynaklardan ayırt etmek için farklı floresan spektrumlu boyalar eklenebilir37. Bu protokol ayrıca kanı algılayan ve yutulması için kullanılan iç ağız partilerini (yani stile) ve sivrisinek kan beslemeye başlamak için inerken cilde (yani labium, bacaklara) temas eden kemosentory ekleri ayrı ayrı uyarmak için de değiştirilebilir36. Örneğin, ligandlar doğrudan yemeğe eklenirse, membran sadece stylet tarafından delindiği için labium ve bacaklarla temas etmezler. Bunun yerine parafilm'in dış yüzeyine ligandlar eklenirse, yemekten ayrı kalırlar ve labium ve bacaklar ile temas edebilir36. Son olarak, kan besleme davranışının ayrıntılı kinetiği iyi anlaşılmamıştır ve burada sunulan yöntem, yüksek çözünürlüklü izlemeyi makine öğrenimi araçlarıyla birleştirerek hareket, duruş ve besleme dinamiklerinin davranışsal okumalarını çıkarmak içindeğiştirilebilir 38.
Bu protokol, sivrisinek kanı besleme ve kan sonrası besleme davranışlarını incelemek için farmakolojik ve genetik manipülasyonlar kullanan araştırmacılara hizmet etme yeteneği ile kullanıcı dostu ve uygun maliyetli olmayı amaçlamaktadır.

Değiştirilmiş kan yemeklerini yapay bir membran besleyici kullanarak Aedes aegypti sivrisineklerine beslemek ve her bir sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini hassas bir şekilde ölçmek için bir protokol sunuyoruz. Bu protokol, yemeğin içeriğini değiştirmek veya farklı deneysel sivrisinek grupları tarafından tüketilen yemek hacmini karşılaştırmak için esnek bir şekilde uyarlanabilir.
Ae. aegypti sivrisinek, sarıhumma, dang humması, chikungunya ve Zika 1, 2 ,3,4,5gibi hastalıklara nedenolanpatojenleri yayarak küresel sağlığı tehdit eder. Ae. aegypti dişileri zorunlu kan besleyicilerdir; yumurta gelişimi için gerekli proteini elde etmek için omurgalı kan tüketmelidirler ve her bir yumurta debriyajı en az bir konak6, 7,8'dentam bir kan unu gerektirir. Dişi sivrisinek ilk olarak cildi stylet ile delerek ve konağın bağışıklık tepkisini tetikleyen bileşikler içeren tükürük enjekte ederek konağını ısırır9. Daha sonra midgut'una stile kan pompalayarak beslenir. Enfekte bir konaktan bir kan unu tüketirken, kan kaynaklı patojenleriyutabilir 6,8, daha sonra sivrisinek midgutundan tükürük bezlerine göç edebilir10. Bu şekilde enfekte olan dişi sivrisinekler, sonraki konakları ısırırken tükürükle birlikte patojen enjekte ederek hastalık yayabilir11,12. Kan besleme davranışının mekanizmalarını anlamak ve ölçmek, sivrisinek kaynaklı hastalıkların bulaşmasını kontrol etmede çok önemli adımlardır.
Sivrisinek yetiştirme ve deneyler için birçok laboratuvar protokolü, fareler, kobaylar veya insanlar dahil olmak üzere canlı hayvanları kan kaynağı olarak kullanır13,14,15,16. Canlı hayvanların kullanımı, etik kaygıların yanı sıra personel eğitimi, hayvan barınması ve bakımı ve Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) politikalarına uyum için karmaşık gereksinimler getirmektedir. Ayrıca sivrisineklere teslim edilebilecek bileşik türlerini sınırlar, bu da gerçekleştirilebilecek çalışmaları kısıtlar17.
Tipik olarak konakçı cildi simüle etmek için bir membran sistemi kullanan yapay kan besleme aparatları, canlı konakçıların bakımı ihtiyacını atlatan kan besleme davranışlarını incelemek için yararlı araçlardır. Tam kan bir dizi satıcıdan satın alınabilir ve ısıtılmış, su ceketli yapay membran besleyiciler veya benzeri cihazlar kullanılarak sivrisineklere beslenebilir18,19. Bu protokolde, "Glytubes" olarak adlandırdığımız küçük, tek kullanımlık membran besleyicilerin kullanımını gösteriyoruz. Daha önce Costa-da-Silva ve ark. (2013)20tarafından yayınlanan bu membran besleyici, standart laboratuvar ekipmanlarından kolayca monte edilebilir, bu da kan yemeklerini ılımlı sayıda sivrisineklere ulaştırmak için idealdir ve daha büyük grupları veya birden fazla yemek formülasyonunu test etmek için ölçeklendirmek için basittir. Glytube, daha büyük yemek hacimleri gerektirebilecek ve tek bir öğün formülasyonunda büyük sivrisinek gruplarını toplu olarak beslemek için daha uygun olan diğer ticari yapay besleyicilere ucuz ve verimli bir alternatiftir21.
Bu protokol iki bölüm içerir: yapay yemeklerin hazırlanması/sunulması ve tüketimin ölçülmesi. İlk bölümde, Glytube'lar manipüle edilmiş diyetler sunmak için etkili bir araç olarak kullanılır. Bütün kan, bir kan unu yerine kan ikamelerinin etkilerini karşılaştırmak için tamamen yapay bir yemekle ikame edilebilir. Kogan (1990)22'den uyarlanan bir tarif burada sunulmaktadır, ancak birden fazla yapay yemek formülasyonu geliştirilmiştir23,24. Ayrıca, beslenme, farmakolojik bileşikleri enjeksiyondan daha az invaziv ve daha az zahmetli bir yöntemdir. Her öğün için gereken düşük toplam hacim (1-2 mL) nedeniyle, bu protokol pahalı reaktiflerin miktarlarını azaltmak için cazip bir teslimat yöntemi sağlar. Ae. aegypti dişiler kolayca adenozin ile tuzlu çözelti proteinsiz yemekler tüketin 5′-trifosfat (ATP)25,26, hangi tek öğün bileşenlerinin etkilerini ölçmek için bir taban çizgisi sağlar. Örneğin, Ae. aegypti'deki Neuropeptide Y benzeri reseptör 7 'nin (NPYLR7), protein bakımından zengin bir kan yemeğinden sonra konak arayan baskılamaya aracılık ettiği bilinmektedir ve NPYLR7 agonistleri proteinsiz bir tuzlu yemeğe eklendiğinde, dişi sivrisinekler tam kan tüketenlere benzer konak arayan baskılama sergilerler7.
İkinci bölümde, bireysel bir dişi sivrisinek tarafından tüketilen her yemeğin hacmini ölçmek için adımlar sunulmaktadır. Bu test floresan bazlıdır ve sadece karın distansiyonunun görsel değerlendirmesine dayanarak kadınların "beslenen" veya "beslenmemiş" olarak sınıflandırıldığı yöntemlerden daha yüksek çözünürlükte beslenme durumunu yakalar. Beslenmeden önce yemeğe floresan eklenerek, bireyler tarafından yutulan yemek hacimleri, her sivrisinek 96 kuyulu bir tabakta homojenleştirilerek ve floresan yoğunluğu okuma olarak ölçülerek ölçülebilir. Bu tahlil, yemek bileşimi veya sivrisineklerin genetik arka planı gibi değişkenlere yanıt olarak beslenme dinçliğindeki farklılıkları ölçebilir. Kesin niceleme ara öğün boyutları için kritik öneme sahiptir, örneğin kadınlara beslenme caydırıcıları içeren yetersiz yemekler sunulduğunda veya değişken boyutlarda sakkaroz yemekleri tükettiğinde27. Beslenen sivrisinekler, yemek büyüklüğü ölçülmesi sonrasında sonraki davranışsal tahliller için gerekliyse, bunun yerine anestezi edilmiş dişilerin gruplar halinde tartılması ve birey başına ortalama artan kütlenin tahmin edilmesiyle yemek büyüklüğü hesaplanabilir. Floresan işaretinden daha az kesin olmasına rağmen, tartım hala öğün hacminin toplu bir tahminini sağlar ve yemeğin doğurganlık veya sonraki konak cazibesi gibi aşağı akış süreçleri üzerindeki etkisinin incelenmesine izin verir. Kan unu boyutu değişkendir ve burada açıklanan yöntemlerle ölçülen11,28,29,yutmuş yemek boyutlarının sayısız faktöründen etkilenebilirken, önceki nicelemeler 7 ,30,31ile tutarlıdır.

<table><tbody><tr><td>15 mL conical tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-70C</td><td></td></tr><tr><td>3 mm diameter borosilicate solid-glass bead</td><td>MilliporeSigma</td><td>Z143928</td><td>For use for bead mill homogenizer; not required if using pellet pestle grinder</td></tr><tr><td>32 oz. high-density polyethylene (HDPE) plastic cup</td><td>VWR</td><td>89009-668</td><td>Example mosquito container used for feeding assays shown; alternate options can be used</td></tr><tr><td>50 mL conical tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-49A</td><td></td></tr><tr><td>96-well black polystyrene plate</td><td>ThermoFisher</td><td>12-566-09</td><td></td></tr><tr><td>96-well PCR plate sealing film</td><td>Bio-Rad</td><td>MSB1001</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>96-well PCR plates</td><td>Bio-Rad</td><td>HSP9621</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Adenosine 5&amp;prime;-triphosphate (ATP) disodium salt hydrate</td><td>MilliporeSigma</td><td>A6419</td><td></td></tr><tr><td>Albumin (human serum)</td><td>MilliporeSigma</td><td>A9511</td><td></td></tr><tr><td>Aluminum foil</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-213</td><td>Alternate options can be used to block light entering fluorescein container</td></tr><tr><td>Balance</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-911</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Bead mill homogenizer</td><td>Qiagen</td><td>85300</td><td>Not required if using pellet pestle grinder</td></tr><tr><td>Cotton ball</td><td>Fisher Scientific</td><td>22456880</td><td>For nectar-feeding; alternate options can be used</td></tr><tr><td>Defibrinated sheep blood</td><td>Hemostat Laboratories</td><td>DSB100</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Drosophila CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; fly pad</td><td>Tritech Research</td><td>MINJ-DROS-FP</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Fluorescein</td><td>MilliporeSigma</td><td>F6377</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescence plate-reader</td><td>ThermoFisher</td><td>VL0000D0</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Gamma-globulin (human blood)</td><td>MilliporeSigma</td><td>H7379</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>MilliporeSigma</td><td>G7893</td><td></td></tr><tr><td>Hemoglobin (human)</td><td>MilliporeSigma</td><td>G4386</td><td></td></tr><tr><td>Laboratory wrapping film - parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374</td><td></td></tr><tr><td>Magnetic stirrer</td><td>Fisher Scientific</td><td>90-691</td><td>Alternate magnetic stirrers can be used</td></tr><tr><td>Microcentrifuge for 96-well plate</td><td>VWR</td><td>80094-180</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Microcentrifuge Tubes</td><td>MilliporeSigma</td><td>2236412</td><td>Alternate options can be used</td></tr><tr><td>Pellet pestle grinder</td><td>VWR</td><td>KT749521-1500</td><td>Not required if using bead mill homogenizer</td></tr><tr><td>Phosphate buffered solution (PBS)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BW17-516F</td><td>Optional</td></tr><tr><td>Razor blades</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-640</td><td>Alternate options can be used, such as a lathe for better consistency of cutting</td></tr><tr><td>Rubber bands</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silicone tubing</td><td>McMaster Carr</td><td></td><td>Needed if using a fly pad for CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; delivery</td></tr><tr><td>Sodium bicarbonate (NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;)</td><td>Fisher Scientific</td><td>S233</td><td></td></tr><tr><td>Sodium chloride (NaCl)</td><td>MilliporeSigma</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>Stir bars</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-512</td><td>Alternate magnetic stir bars can be used</td></tr><tr><td>Translucent polypropylene storage box with removable lid</td><td></td><td></td><td>Example box used for feeding assays shown</td></tr><tr><td>Vortex mixer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Water bath</td><td></td><td></td><td>Alternate heating device may be used</td></tr><tr><td>White 0.8 mm polyester mosquito netting</td><td>American Home &amp;amp; Habit Inc.</td><td>F03A-PONO-MOSQ-M008-WT</td><td>Alternate options can be used</td></tr></tbody></table>

feeding and quantifying animal-derived blood and artificial meals in aedes aegypti mosquitoes

Bazı sivrisinek türlerinin dişileri, yumurta gelişimi için gerekli protein bakımından zengin kan yemekleri elde etmek için omurgalı konakları ısırırken hastalıkları yayabilir. Laboratuvarda araştırmacılar, yemek kompozisyonunun manipülasyonuna izin veren membran besleyiciler aracılığıyla sivrisineklere hayvansal türevli ve yapay kan yemekleri teslim edebilir. Burada, Aedes aegypti sivrisineklerine kan ve yapay kan yemeklerini beslemek ve bireysel dişiler tarafından tüketilen hacmi ölçmek için yöntemler sunuyoruz.
Yapay / kan yemeklerinin hedefli beslenmesi ve nicelleştirilmesi, yemek bileşenlerinin sivrisinek davranışı ve fizyolojisi üzerindeki etkilerini test etmek, enjeksiyon olmadan farmakolojik bileşikler sunmak ve sivrisinekleri belirli patojenlerle enfekte etmek de dahil olmak üzere geniş kullanım alanlarına sahiptir. Beslenmeden önce yemeğe floresan boyası eklemek, sonraki öğün boyutunun ölçülmesini sağlar. Sivrisinekler tarafından tüketilen yemek hacmi, dişiler daha sonra davranış deneyleri için kullanılacaksa, ağırlıkla veya 96 kuyulu tabaklarda tek tek kadınları homojenleştirerek ve bir plaka okuyucusu test olarak bir plaka okuyucu kullanarak floresan seviyelerini ölçerek ölçülebilir. Yemek boyutu nicelemesi, yemek bileşenlerinin değiştirilmesinin yutlanan yemek hacmini değiştirip değiştirmediğini veya yemek tüketiminin sivrisinek suşları arasında farklılık gösterip değiştirmediğini belirlemek için kullanılabilir. Hassas yemek boyutu nicelemesi, konak cazibesi veya doğurganlık üzerindeki etkileri ölçenler gibi aşağı akış tahlilleri için de kritik öneme sahiptir. Burada sunulan yöntemler, günler boyunca yemek sindirimini izlemek veya her yemeğin tek bir sivrisinek tarafından tüketimini ölçmek için farklı öğünlere (nektar ve kan gibi) eklenen birden fazla ayırt edilebilir belirteç içerecek şekilde daha da uyarlanabilir.
Bu yöntemler, araştırmacıların yüzlerce bireysel sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini karşılaştırmak için tek başına yüksek verimli ölçümler yapmalarına izin verir. Bu nedenle bu araçlar, çeşitli biyolojik soruları yanıtlamak için sivrisinek araştırmacıları topluluğu için geniş ölçüde yararlı olacaktır.

Şekil 1, Glytube'u monte etmek için bir şema sunarken, Şekil 2 burada açıklanan floresan bazlı tahlilleri kullanarak yemek boyutunu ölçmek için deneysel tasarıma genel bir bakış göstermektedir. Şekil 3, kan besleme deneyinden temsili floresan yemek boyutu ölçümleri sağlar. Şekil 4, Şekil 5ve Şekil 6, bu protokol kullanılarak ele alınabilecek biyolojik soruların bir örneğini göstermektedir. Protokolün uygulamaları geniş kapsamlıdır ve kan unu bileşimini değiştirmeyi, farmakolojik bileşikleri beslemeyi, en uygun alt kan yemeklerini veya daha küçük nektar öğünlerini hassas bir şekilde ölçmeyi ve sivrisinek genotipleri arasında beslenme davranışını karşılaştırmayı içerir.
Yemek hacmi hesaplamaları için standart bir eğri oluşturmak için, floresan okumaları, her biri beslenmemiş bir sivrisinek ve % 0.002 floresan içeren bilinen bir yemek hacmi içeren belirlenen referans kuyularından çizilir (Şekil 3A). Gıdasız sivrisineklerin negatif kontrol grubundan veya bir yemek sunan deneysel sivrisinek grubundan sivrisinekler içeren kalan kuyulardan gelen floresan okumaları, her sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini (μL) ölçmek için bu standart eğri ile karşılaştırılır (Şekil 3B). Bu testteki temel okumaları doğrulamak için, kullanılmamış negatif kontrol grubundan sivrisineklere tüketilen μL pozitif bir değer atanmadığını teyit edilmelidir (Şekil 3B, sol). Deneysel gruptaki tüm kadınlara kan unu teklif edilse de, bazı sivrisinekler beslendi (Şekil 3B, orta) ve bazıları yapmadı (Şekil 3B, sağ). Bu sonuç, bu protokolden iki tür veri elde edilebileceğini göstermektedir: 1) belirli bir yemekle beslenen toplam dişilerin yüzdesi ve 2) belirli bir yemekle beslenen dişiler tarafından alınan hacim.
Bu protokol, çeşitli protein bileşimleri ile öğünleri sunmak ve ölçmek için kullanılabilir. Şekil 4A,B, ilave floresan içeren yemekler kullanılarak toplanan verileri gösterir. Beslenen sivrisineklerin oranı ve yutmuş oldukları yemek hacmi sırasıyla floresan okumalarından hesaplanmıştır. Bu okumalar son derece hassastır ve μL'nin hassas bir şekilde ölçülmesine izin verir, ancak sivrisineklerin gelecekteki canlı deneyler için kullanılamayacağı sınırlamasına sahiptir. Şekil 4C,D, floresansız yemekler sunulduktan sonra gözle beslenmiş veya beslenmemiş olarak puanlanan sivrisineklerle yapılan bağımsız bir deneyden toplanan verileri göstermektedir. Yemek büyüklüğü 5 sivrisinek grubundan ortalama ağırlık / dişi olarak hesaplandı. Bu ağırlık ölçümleri floresan ölçümlerinden daha az hassas olmasına rağmen, kadınların daha fazla canlı deney için kurtarılmasına ve kullanılmasına izin verir. Beslenen sivrisineklerin oranı, Şekil 4A ve Şekil 4C'ye yansıdığı gibi farklı deneysel günlerde değişebilir.
Şekil 5, sivrisinek konakçısı arama davranışını düzenleyen ilaçlar içeren öğünlerin tüketilen hacmini göstermektedir. Bu deneylerde, dişilere insan NPY Y2 reseptör agonisti TM30338'in 100 μM'si ile kan, salin + ATP veya salin + ATP yemekleri önerildi. Bu ilaç, Ae. aegypti NPY benzeri reseptörü 7'nin aktivasyonu yoluyla konak arama davranışını değiştirir. Yemek boyutlarının ölçülmesi, bu ilacın kan besleme sonrası davranış üzerindeki etkisini değerlendirmek için deneylerin yorumlanması için kritik öneme sahiptir, çünkü araştırmacının her kadın tarafından tüketilen dozu hesaplamasına izin verir.
Önceki örneklerde, dişiler kan veya yedek kan yemekleriyle beslendi ve bunların hepsi 3-5 μL öğünle sonuçlandı(Şekil 3, Şekil 4, Şekil 5). Bu floresan bazlı test, ortalama grup ağırlığı ölçümlerinden doğru bir şekilde ayırt edilemeyen daha küçük ve/veya daha değişken yemek boyutlarını ölçmek için de kullanılabilir. Şekil 6'da,Glytube'u% 0.002 floresan içeren% 10 sakkaroz ile doymuş bir pamuk topu ile değiştirerek nektar besleme davranışını ölçmek için aynı floresan nicelleştirme protokolü kullanılmıştır. Nektar şekerleri Glytube testinde sunulamaz, çünkü dişiler nektar şekerlerinin varlığını stylet ile tespit edemez ve beslemeye başlamaz27. Bu veriler, araştırmacının şeker yemeklerinin önceki çalışma34 (Şekil 6)ile uyumlu olarak kan yemeklerinden sürekli olarak daha küçük olduğunu belirlemesine izin verir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig1v2.png"> Şekil 1: Sivrisineklere yemek yedirmek için kullanılan Glytube yönteminin kurulumu. (A) Sivrisineklere kan ve diğer öğünleri beslemek için kullanılan yapısız bir Glytube şeması. (B) Bir Glytube şeması, ağ kapaklı bir sivrisinek kabının üzerine sunuldu. Dişi sivrisinekler beslenmek için ağ kapağını delebilir. (C) Glytube tarafından verilen bir yemekte beslenmeden önce, sırasında ve sonra (alttan sağa) Glytube (üstte) ve dişi Aedes aegypti sivrisineklerinin fotoğrafları. Sivrisinekler, membran besleyiciye erişmek için kabını kaplayan ağdan delici olarak gösterilir. (D) Dişi Ae. aegypti sivrisineklerinin görünümünü gösteren fotoğraflar, suni kan unu (sağ, üst) veya salin + ATP yemeği (sağ, alt). Glytube yöntemi daha önce Costa-da-Silva ve ark. (C) ve (D) fotoğraflarında Alex Wild'ın izniyle çekilmiştir. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig1v2large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig2v4.png"> Şekil 2: Glytube kan besleme protokolünden sonra yemek boyutunun nasıl ölçülecek şeması. (A) Sivrisineklere floresan (üst, deneysel grup) veya yemeksiz (alt, bozulmamış negatif kontrol grubu) bir yemek sunulmaktadır. (B) Besleme deneyi sonlandırıldıktan sonra 96 kuyulu bir tabağa tek tek sivrisinekler eklenir. (C) Standart eğri% 0.002 floresan içeren bilinen miktarda yemek kullanılarak oluşturulur. (D) Sivrisinekler tüketilen herhangi bir floresanı serbest bırakmak için homojenize edilir ve her kuyudaki floresan seviyeleri bir plaka okuyucu kullanılarak ölçülür. Bu floresan nicelleştirme yöntemi Liesch ve ark. (2013)34'ten değiştirilmiştir. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig2v4large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig3v2.png"> Şekil 3: Floresan bazlı niceleme ile glytube kan besleme deneyi. (A) %0,002 floresan (y ekseni ölçeği = keyfi birimler) içeren bilinen bir öğün miktarına, el değmemiş kontrol grubundan bir sivrisineğin eklendiği kuyulardan elde edilen standart eğri ölçümleri. (B) Beslenmemiş kontrol grubundaki (sol, siyah, n = 40), kanla beslenen deney grubu (orta, kırmızı, n = 37) ve kanla beslenmeyen deney grubu (sağ, kırmızı, n = 23) için floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler aralıklı ortanca olarak gösterilir. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırması ile test eder, p<0.01. Bu veriler Jové ve ark. (2020)27. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig3v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig4v2.png"> Şekil 4: Farklı protein bileşimine sahip öğünlerin nicelemesi. Dişilere koyun kanı (kırmızı), insan kanı proteinli yapay kan (Kogan (1990)22) (turuncu) veya proteinsiz salin + ATP yemeği (aqua)7yemekleri sunuldu. (A) Beslenen kadınların yüzdesi floresan okumaları kullanılarak puan aldı. Her puan 12-16 kadından oluşan bir grubu temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. (B) Floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, Şekil 4A'dantek bir denemede tek bir dişiden bir ölçümü temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. (C) Yapay membran beslemeden sonra tamamen saran kadınların yüzdesi, gözle puanlandı. Her nokta, 20-30 kadından oluşan gruplardan elde edilen kadınların yüzdesini temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 23. (D) Beslenme durumu göz göre göre puanlandıktan sonra kilo/kadın olarak puanlanan yemek ölçüleri. Ağırlıklar 5 sivrisinek grubunun ortalaması olarak hesaplandı. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 23. A–D: Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırması ile test eder, p<0.05. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig4v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig5v2.png"> Şekil 5: Farmakolojik bileşiklerle öğünlerin nicelemesi. Dişiler aynı büyüklükteki koyun kanı (kırmızı), salin + ATP (aqua) ve salin + ATP + 100 μM doz insan NPY Y2 reseptör agonist TM30338 (koyu mavi) tüketir. Floresan okumalar kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırmasıyla test eder, p<0.05. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig5v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig6v2.png"> Şekil 6: Daha küçük nektar yemeklerinin nicelemesi. (A) Nektar besleme tahlil şeması. (B) Vahşi tip kadınlar için floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi, nektar besleme testinde her biri% 0.002 floresan içeren su (mavi, n = 36) veya% 10 sakkaroz (yeşil, n = 53) yemekleri sundu. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Mann-Whitney testi, p<0.05. Bu veriler Jové ve ark. (2020)27. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/61835/61835fig6v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">Yapay Kan Unu</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mg/mL)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mg/mL)</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">Protein Bileşenleri*</td>
		</tr>
<tr>
<td>γ-Globulinler</td>
			<td>50</td>
			<td>300</td>
			<td>15</td>
		</tr>
<tr>
<td>Hemoglobin</td>
			<td>35</td>
			<td>230</td>
			<td>8</td>
		</tr>
<tr>
<td>Albümin</td>
			<td>300</td>
			<td>340</td>
			<td>102</td>
		</tr>
<tr>
<td>Toplam Protein</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>125</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">Protein Olmayan Bileşenler</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mM)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mM)</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nacl</td>
			<td>γ-globulin stokunda</td>
			<td>-</td>
			<td>5-10</td>
		</tr>
<tr>
<td>NaHCO3
</td>
			<td>γ-globulin stokunda</td>
			<td>-</td>
			<td>120</td>
		</tr>
<tr>
<td>Atp</td>
			<td>200</td>
			<td>5</td>
			<td>1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Su</td>
			<td>-</td>
			<td>125</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">*Protein bileşenleri, 400 mM NaHCO3'te çözünen ve değişken miktarda NaCl (%2-4) içeren γ-Globulinler hariç, çift damıtılmış suyun stok çözeltisinde hazırlanır. üründe.</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: Yapay kan yemekleri hazırlama tarifi (Kogan'dan uyarlanmıştır (1990)22). Yapay kan, insan kanında düzenli olarak bulunan protein ve protein dışı bileşenlerden oluşur ve bu bileşenlerin oranlarını değiştirme seçeneği sunar. Sivrisinekler yapay kanla besledikten sonra yumurta üretebilir7,22.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">Tuzlu Su Yemeği</td>
		</tr>
<tr>
<td>Bileşen</td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mM)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mM)</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nacl</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>NaHCO3
</td>
			<td>400</td>
			<td>300</td>
			<td>120</td>
		</tr>
<tr>
<td>Atp</td>
			<td>200</td>
			<td>5</td>
			<td>1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Su</td>
			<td>-</td>
			<td>695</td>
			<td>-</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 2: ATP ile tuzlu yemek tarifi (Duvall ve ark. (2019) 7'den uyarlanmıştır). Protein içermeyen tuzlu su yemekleri, kan beslemeden sonra meydana gelen karın distansiyonunu taklit ederken, ancak proteinler yutulduğunuzda ortaya çıkan yumurta gelişimini tetiklemeden sivrisineklere ilgi bileşikleri sunmak için kullanılabilir.

Watch this Scientific Journal Video about Feeding and Quantifying Animal-Derived Blood and Artificial Meals in Aedes aegypti Mosquitoes at JoVE.com

Feeding and Quantifying Animal-Derived Blood and Artificial Meals in Aedes aegypti Mosquitoes

Bu protokolün amacı, yapay bir membran besleyici aracılığıyla Aedes aegypti sivrisineklerine hayvansal türevli ve yapay kan yemekleri sunmak ve yutturılan yemek hacmini tam olarak ölçmektir.

Aedes aegypti Sivrisineklerinde Hayvansal Türevli Kan ve Yapay Yemeklerin Beslenmesi ve Ölçülmesi

Females of certain mosquito species can spread diseases while biting vertebrate hosts to obtain protein-rich blood meals required for egg development. In ...

feeding-quantifying-animal-derived-blood-artificial-meals-aedes

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Feeding and Quantifying Animal-Derived Blood and Artificial Meals in Aedes aegypti Mosquitoes

7.7K Görüntüleme.  The Rockefeller University. Bu protokolün amacı, yapay bir membran besleyici aracılığıyla Aedes aegypti sivrisineklerine hayvansal türevli ve yapay kan yemekleri sunmak ve yutturılan yemek hacmini tam olarak ölçmektir.

Video: Feeding and Quantifying Animal-Derived Blood and Artificial Meals in Aedes aegypti Mosquitoes

Alphavirus Transducing System:  Tools for Visualizing Infection in Mosquito Vectors

Alphavirus transducing systems (ATSs) are important tools for expressing genes of interest (GOI) during infection. ATSs are derived from cDNA clones of mosquito-borne RNA viruses (genus Alphavirus; family Togaviridae). The Alphavirus genus contains about 30 different mosquito-borne virus species. Alphaviruses are enveloped viruses and contain single-stranded RNA genomes (~11.7 Kb). Alphaviruses transcribe a subgenomic mRNA that encodes the structural proteins of the virus required for encapsidation of the genome and maturation of the virus. Alphaviruses are usually highly lytic in vertebrate cells, but persistently infect susceptible mosquito cells with minimal cytopathology. These attributes make them excellent tools for gene expression in mosquito vectors. The most common ATSs in use are derived from Sindbis virus (SINV). The broad species tropism of SINV allows for infection of insect, avian, and mammalian cells8. However, ATSs have been derived from other alphaviruses as well9,10,20. Foreign gene expression is made possible by the insertion of an additional viral subgenomic RNA initiation site or promoter. ATSs in which an exogenous gene sequence is positioned 5' to the viral structural genes is used for stable protein expression in insects. ATSs, in which a gene sequence is positioned 3' to the structural genes, is used to trigger RNAi and silence expression of that gene in the insect.
ATSs have proven to be valuable tools for understanding vector-pathogen interactions, molecular details of viral replication and maintenance infectious cycles3,4,11,19,21. In particular, the expression of fluorescent and bioluminescent reporters has been instrumental tracking the viral infection in the vector and virus transmission5,14-16,18. Additionally, the vector immune response has been described using two strains of SINV engineered to express GFP2,9.
Here, we present a method for the production of SINV containing a fluorescent reporter (GFP) from the cDNA infectious clone. Infectious, full-length RNA is transcribed from the linearized cDNA clone. Infectious RNA is introduced into permissive target cells by electroporation. Transfected cells generate infectious virus particles expressing the GOI. Harvested virus is used to infect mosquitoes, as described here, or other host species (not shown herein). Vector competence is assessed by detecting fluorescence outside the midgut or by monitoring virus transmission7. Use of a fluorescent reporter as the GOI allows for convenient estimation of virus spread throughout a cell culture, for determination of rate of infection, dissemination in exposed mosquitoes, virus transmission from the mosquito and provides a rapid gauge of vector competence.

Methods for using alphavirus transducing systems to express fluorescent reporters in vitro and in adult mosquitoes are described. This technique may be adapted to express any protein of interest in lieu of or in addition to a reporter.

Alphavirus uyum Sistemi: Sivrisinek Vektörler Enfeksiyon görselleştirme için Araçlar

Alphavirus transducing systems (ATSs) are important tools for expressing genes of interest (GOI) during infection.  ATSs are derived from cDNA clones of ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Protocol for Mosquito Rearing (A. gambiae)

This protocol describes mosquito rearing in the insectary. The insectary rooms are maintained at 28&deg;C and ~80% humidity, with a 12 hr. day/night cycle. For this procedure, you'll need mosquito cages, 10% sterile sucrose solution, paper towels, beaker, whatman filter paper, glass feeders, human blood and serum, water bath, parafilm, distilled water, clean plastic trays, mosquito food (described below), mosquito net to cover the trays, vacuum, and a collection chamber to collect adults.

Protocol for Mosquito Rearing A. gambiae

This video illustrates the general techniques used to rear Anopheles gambiae in the laboratory. The methods for caring for laboratory mosquitoes are demonstrated through all stages of the organism's life cycle from larvae to pupae to blood-feeding adults.

Sivrisinek Yetiştirme Protokolü (A. gambiae)

This protocol describes mosquito rearing in the insectary. The insectary rooms are maintained at 28&deg;C and ~80% humidity, with a 12 hr. day/night ...

Biyoloji

Reproducible dsRNA Microinjection and Oviposition Bioassay in Mosquitoes and House Flies

Synthetic dsRNAs, used to induce RNA interference, may have dose dependent phenotypic effects. These effects are difficult to define if the dsRNAs are delivered using a non-quantitative method. Accurate delivery of known quantities of nucleic acids or other chemicals is critical to measure the efficacy of the compound being tested and to allow reliable comparison between compounds.
Here we provide a reproducible, quantitative microinjection protocol that ensures accurate delivery of specific doses of dsRNA, reducing the mortality typically induced by injection injury. These modifications include the addition of Rhodamine B, a graduated injection needle, and an improved recovery method borrowed from Isoe and Collins. This method allows calculation of dose responses and facilitates comparisons between compounds. Versions of this method have been successfully used on three genera of mosquitoes as well as house flies to assess the reduction in fecundity resulting from gene silencing of ribosomal RNA transcripts.
This protocol provides strategies to reduce several challenges of small insect microinjection. Together, mechanical delivery of dsRNAs accompanied by visual verification, identification of effective locations for delivery, and inclusion of a post-injection recovery period ensure accurate dosing and low injury mortality. This protocol also describes an oviposition bioassay for uniform determination of effects on fecundity.

This protocol describes a microinjection methodology that we have standardized and used for several years to deliver specific quantities of nucleic acids directly to the hemolymph of mosquitoes and house flies. This protocol results in minimal injection mortality and allows dose correlated measurements of fecundity.

Tekrarlanabilir dsRNA mikroenjeksiyon ve Oviposition Bioassay sivrisinekler ve evi sinekler

Synthetic dsRNAs, used to induce RNA interference, may have dose dependent phenotypic effects. These effects are difficult to define if the dsRNAs are ...

Çevre

Vector Competence Analyses on Aedes aegypti Mosquitoes using Zika Virus

The procedures presented describe a generalized methodology to infect Aedes aegypti mosquitoes with Zika virus under laboratory conditions to determine the rate of infection, disseminated infection, and potential transmission of the virus in the mosquito population in question. These procedures are widely utilized with various modifications in vector competence evaluations globally. They are important in determining the potential role that a given mosquito (i.e., species, population, individual) may play in the transmission of a given agent.

Vector Competence Analyses on Aedes aegypti Mosquitoes using Zika Virus

The presented protocol can determine the vector competence of Aedes aegypti mosquito populations for a given virus, such as Zika, in a containment setting.

Zika Virüsü Kullanan Aedes aegypti Sivrisineklerinde Vektör Yetkinlik Analizleri

The procedures presented describe a generalized methodology to infect Aedes aegypti mosquitoes with Zika virus under laboratory conditions to determine ...

Experimental Viral Infection in Adult Mosquitoes by Oral Feeding and Microinjection

Mosquito-borne viruses (MBVs), which are infectious pathogens to vertebrates, are spread by many mosquito species, posing a severe threat to public health. Once ingested, the viruses must overcome the mosquito midgut barrier to reach the hemolymph, from where they might potentially spread to the salivary glands. When a mosquito bites, these viruses are spread to new vertebrate hosts. Similarly, the mosquito may pick up different viruses. In general, only a tiny portion of viruses may enter the salivary glands via the gut. The transmission efficiency of these viruses to the glands is be affected by the two physical barriers found in different mosquito species: midgut barriers and salivary glands barriers. This protocol presents a method for virus detection in salivary glands of Aedes aegypti&#39;s&#160;following oral feeding and intrathoracic injection infection. Furthermore, determining whether the guts and/or salivary glands hinder viral spread can aid in the risk assessments of MBVs transmitted by Aedes aegypti.

This methodology, which included oral feeding and intrathoracic injection infection, could effectively assess the influence of midgut and/or salivary gland barriers on arbovirus infection.

Yetişkin Sivrisineklerde Oral Beslenme ve Mikroenjeksiyon ile Deneysel Viral Enfeksiyon

Mosquito-borne viruses (MBVs), which are infectious pathogens to vertebrates, are spread by many mosquito species, posing a severe threat to public ...

Forced Salivation As a Method to Analyze Vector Competence of Mosquitoes

Vector competence is defined as the potential of a mosquito species to transmit a mosquito-borne virus (mobovirus) to a vertebrate host. Viable virus particles are transmitted during a blood meal via the saliva of an infected mosquito. Forced salivation assays allow determining the vector potential on the basis of single mosquitoes, avoiding the use of animal experiments. The method is suitable to analyze a large number of mosquitoes in one experiment within a short period of time. Forced salivation assays were used to analyze 856 individual mosquitoes trapped in Germany, including two different Culex pipiens pipiens biotypes, Culex torrentium as well as Aedes albopictus, which were experimentally infected with Zika virus (ZIKV) and incubated at 18 &#176;C or 27 &#176;C for two and three weeks. The results indicated the lack of vector competence of the different Culex taxa for ZIKV. In contrast, Aedes albopictus was susceptible to ZIKV, but only at 27 &#176;C, with transmission rates similar to an Aedes aegypti laboratory colony tested in parallel.

For efficient control of mosquito borne virus transmission, the knowledge of the vector potential of respective mosquitoes is of particular interest. We describe forced salivation as a method to analyze vector competence of Aedes albopictus and three different Culex taxa for the transmission of Zika virus.

Salya vektör yetkinlik sivrisinek analiz etmek için bir yöntem olarak zorla

Vector competence is defined as the potential of a mosquito species to transmit a mosquito-borne virus (mobovirus) to a vertebrate host. Viable virus ...

A Blood-Free Diet to Rear Anopheline Mosquitoes

Malaria research requires large-scale breeding and production conditions for mosquitoes (Anopheles spp.) in captivity. The sustainable and reliable production of mosquitoes is currently inhibited by the supply of fresh vertebrate blood. Alternatives to blood are required to promote efficient control strategies for malaria and other vector borne diseases that are transmitted by blood feeding insects. With this in mind, artificial liquid diets were formulated as substitutes for fresh vertebrate blood. Herein we report a blood-free artificial liquid diet that delivers feeding rates similar to blood and mimics the physiological effects of a fresh vertebrate blood meal. The diet induces ovarian and egg maturation of Anopheles mosquitoes and also produces good larval survival and development of functional adults. The formulated blood-free liquid diet is an important advance towards sustainable mosquito breeding in captivity and will reduce the maintenance costs of mosquito colonies and eliminate the need for fresh vertebrate blood.

A protocol is presented for formulation of a blood-free artificial diet to feed Anopheles mosquitoes in captivity. This diet has a similar performance to vertebrate blood and triggers oogenesis and egg maturation and produces viable adult progeny.

A Blood-Free Diyet Arka Anopheline Sivrisinekler için

Malaria research requires large-scale breeding and production conditions for mosquitoes (Anopheles spp.) in captivity. The sustainable and reliable ...

Improved Fecundity and Fertility Assay for Aedes aegypti using 24 Well Tissue Culture Plates (EAgaL Plates)

Mosquitoes represent a significant public health problem as vectors of various pathogens. For those studies that require an assessment of mosquito fitness parameters, in particular egg production and hatch rates at the individual level, conventional methods have put a substantial burden on investigators due to high labor intensity and laboratory space requirements. Described is a simple method using 24 well tissue culture plate with agarose in each well and digital imaging of each well to determine egg numbers and hatch rates at an individual level with substantially reduced time and space requirements.

Improved Fecundity and Fertility Assay for Aedes aegypti using 24 Well Tissue Culture Plates EAgaL Plates

Described is a time and space-saving method to count eggs and determine hatch rates of individual mosquitoes using 24 well tissue culture plates, which can substantially increase the scale and speed of fecundity and fertility assays.

24 Kuyu Doku Kültürü Plakası (EAgaL Plakaları) kullanılarak Aedes aegypti için Geliştirilmiş Doğurganlık ve Doğurganlık Tahlilleri

Mosquitoes represent a significant public health problem as vectors of various pathogens. For those studies that require an assessment of mosquito fitness ...

A Bacterial Oral Feeding Assay with Antibiotic-Treated Mosquitoes

The mosquito midgut harbors a highly dynamic microbiome that affects the host metabolism, reproduction, fitness, and vector competence. Studies have been conducted to investigate the effect of gut microbes as a whole; however, different microbes could exert distinct effects toward the host. This article provides the methodology to study the effect of each specific mosquito gut microbe and the potential mechanism.
This protocol contains two parts. The first part introduces how to dissect the mosquito midgut, isolate cultivable bacteria colonies, and identify bacteria species. The second part provides the procedure to generate antibiotic-treated mosquitoes and reintroduce one specific bacteria species.

This article presents a protocol to investigate the effect of individual mosquito gut bacteria, including isolation and identification of mosquito midgut cultivable microbes, antibiotic depletion of mosquito gut bacteria, and reintroduce one specific bacteria species.

Antibiyotik Tedavi Sivrisinekler ile Bakteriyel Oral Beslenme Tsay

The mosquito midgut harbors a highly dynamic microbiome that affects the host metabolism, reproduction, fitness, and vector competence. Studies have been ...

Quantifying Fitness Costs in Transgenic Aedes aegypti Mosquitoes

Transgenic mosquitoes often display fitness costs compared to their wild-type counterparts. In this regard, fitness cost studies involve collecting life parameter data from genetically modified mosquitoes and comparing them to mosquitoes lacking transgenes from the same genetic background. This manuscript illustrates how to measure common life history traits in the mosquito Aedes aegypti, including fecundity, wing size and shape, fertility, sex ratio, viability, development times, male contribution, and adult longevity. These parameters were chosen because they reflect reproductive success, are simple to measure, and are commonly reported in the literature. The representative results quantify fitness costs associated with either a gene knock-out or a single insertion of a gene drive element. Standardizing how life parameter data are collected is important because such data may be used to compare the health of transgenic mosquitoes generated across studies or to model the transgene fixation rate in a simulated wild-type mosquito population. Although this protocol is specific for transgenic Aedes aegypti, the protocol may also be used for other mosquito species or other experimental treatment conditions, with the caveat that certain biological contexts may require special adaptations.

Quantifying Fitness Costs in Transgenic Aedes aegypti Mosquitoes

The present protocol describes how to measure common life parameter data in Aedes aegypti mosquitoes, including fecundity, wing size, fertility, sex ratio, viability, development times, male contribution, and adult longevity. These measurements can be used to assess the fitness of transgenic mosquitoes.

Transgenik Aedes aegypti Sivrisineklerinde Kondisyon Maliyetlerinin Ölçülmesi

Transgenic mosquitoes often display fitness costs compared to their wild-type counterparts. In this regard, fitness cost studies involve collecting life ...