Biz bu projeyi kolaylaştırıcı aracı vardı Pelegri laboratuar ve balık tesisi idari personel, üyelerine teşekkür etmek istiyorum. Bu proje için destek FP için NIH R56 GM065303 ve Elw NIH 2 T32 GM007133, NIH CCE 5 F31 GM108449-02 ve NIH 2 T32 GM007133 ve NIH RO1 GM065303 tarafından sağlandı

ilgili ulusal ve / veya yerel hayvan koruma organları tarafından tanımlanan tüm zebra balığı iyi bir hayvan uygulama ile tam uyum içinde ele alınmıştır ve tüm hayvan çalışmaları, uygun komite (Wisconsin-Madison güvence numarası A3368-01 Üniversitesi) tarafından onaylandı. Hayvanlar 26.5 ° C&#39;de standart koşullar altında muhafaza edilmiştir. Kadınların 1. Ön seçim Not: Oositler yetişkin kadın tipik olarak aşamasından I ila V, gelişim aşamalarında bir aralığı kapsar (Şekil 2). Yeni gelişen oositler kohort 3, 14 olarak göründükleri gibi başarılı bir doğal çiftleşme yoluyla önceden var olan oositlerin dişileri Purging, oosit evreleme senkronizasyonunu arttırır. 8 gün sonra tasfiye içinde, en oositler in vitro olgunlaşması başlatılması için en uygun olan erken evre IV içindedir. Bu senkronizasyon oosit tha verim artarT deney idare edilmesini kolaylaştıran, in vitro olgunlaşması tam süreç boyunca gidebilir. Eşleştirilmiş çiftleşmesinden ve balık suyu bileşimi (burada balık kadar ayarlanması için önceki açıklamaları 13 bakınız, okyanus tuzu 14 g ters-osmoz suyu 1,000 L başına NaHCO 3 150 g, pH 6.5-8.5 (tercih edilen aralığı: 6.8 -7.5) ve 180-360 uS iletkenlik). Marka ve diğ. Ek tarifleri için 13. <ol><li> Sekiz ila on gün In vitro kültür manipülasyon öncesi, bir çiftleşme tankına istenilen türün bir adet erkek ve tek kadın balık aktarmak için bir balık ağı kullanır. Çifti birden setleri. çiftleşme tankı gecede bunları bırakın. Onları akşam sırasında ve ertesi gün öğleden yoluyla çiftleşmeye izin verin. </li><li> Çiftleşme sırasında yumurta verim ve ayrı tanka yerleştirin dişileri ayrı bir balık ağını kullanın. Bir gıda karışımı ile günde iki kez bu kadın Yem containituzlu su karidesi ve balık yemi pulların yaklaşık eşit miktarda ng. Gıda miktarı besleme süresi yaklaşık 20 dakika, ama fazla sağlamak için yeterli olmalıdır. </li></ol> Olgunlaşma Orta 2. Hazırlık NOT: dişi oosit çıkarılması 1 saat içinde in vitro olgunlaşması deney gününde olgunlaşma ortamının hazırlanması (bölüm 3). <ol><li> steril koşullar altında 50 ml konik tüp, L-glutamin, pH 7.0 ile Leibovitz L-15 ortamına 20 mL ekleyin. 10 N NaOH ile pH 9.0&#39;a getirmek. </li><li> 2 ayrı ayrı 50 ml konik tüplere Leibovitz L-15 ortamına, pH 9.0, 9 mL ekleyin. Etiket 1 tüp &quot;+ DHP&quot; ve diğer &quot;-DHP.&quot; </li><li> + DHP bir tüp içinde, 17α-20β-dihidroksi-4 pregnen-3-on, 10 uL (DHP), dH 2 O 490 uL, ve% 10 büyükbaş hayvan serum albümini, 500 uL (BSA) ilave edin. </li><li> -DHP bir tüp içinde, 10 mg / ml gentamisin, 400, 100 mcL81; dH 2 O, L ve% 10 BSA, 500 uL. </li></ol> 3. OOSİT Diseksiyon ve İn Vitro Kültür Başlatma NOT: In vitro kültür deneyi doğal çiftleşme yoluyla yumurta serbest 8-10 gün sonra önceden seçilmiş dişilerle gerçekleştirilir. Aynı gün yapılan olgunlaşma ortamı kullanın (bakınız bölüm 2). Diseksiyon muhtemelen doğal çiftleşme yoluyla meydana gelen süreçleri taklit (balık tesisinde önceden ayarlanmış yapay ışıkla laboratuarda belirlenen) balık gündüz döngüsü 13 sonuna yakın başlamış ise oositler uygun olgunlaşır. Bu balık, standart ışık döngüsüne sahip bir tesise ev sahipliği eğer protokolde en adımlar akşam yapılması gerekir ima (örneğin bir 8:00 ila 10 pm ışık süresi ile bir tesiste 6 pm adım 3.2 başlayarak), diğer çalışma zaman periyotları, uygun bir şekilde zaman kaydırmalı ışık döngüsü olası olmakla birlikte. <ol><li> 1 M Tris, pH 9.0 ile pH 7.0&#39;a ayarlanmış olan dH 2 O bir% 0.2 tricaine stok çözelti hazırlayın, ve 4 ° C &#39;de bu çözüm tutun. Bu vaktinden hazırlanabilir. </li><li> imkan günlük ışık çevriminin sonundan önce deney 0-4 saat başlatın. 250 mL&#39;lik bir beher içine, balık 80 mL su ile, 0.2% tricaine stok çözeltisi, pH 7.0, 20 mL ilave edilir ve karıştırılır. </li><li> tricaine çözümüne önceden seçilmiş kadın aktarın ve aşırı maruz onları euthanize. solungaç hareketi kesildikten sonra 15 dakika boyunca tricaine çözeltide dişileri bırakın. </li><li> Bir kaşık kullanarak, tricaine çözeltisinden ötenazi balık toplamak ve balık suda kısaca durulayın. fazla suyu emmesi için kağıt havlu üzerine balık yerleştirin. </li><li> pektoral yüzgeç düzeyinde ötenazi balık başını kesmek için temiz bir jilet kullanın. kesme makasları kullanılarak, anal bölgeye ön ucundan uzanan, balık ventral tarafında uzunlamasına bir kesi yapmak. </li><li&gt; Olay ışığı ile bir mikroskop altında bir petri balık yerleştirin. diseksiyon forseps bir çift kullanılarak, 4 mL Leibovitz L-15 ortamı + DHP ihtiva eden bir 35 x 10 mm kültür çanağı için yumurtalık kısımları aktarın. NOT: Gelişmekte oosit ihtiva Yumurtalıklar, iç vücut boşluğunda opak ve clumpy yapılar gibi görünecektir. </li><li> diseksiyon forseps kullanarak, yavaşça foliküler kitlelerden oosit ayırmak. Sıralama erken evre IV oosit (Şekil 2B; yakın maksimum ebat GV arıza öncesi ve koyu, opak sitoplazma ve oosit içinde asimetrik bir şekilde yer kolaylıkla anlaşılacaktır GV ile karakterize edilir). Önceki aşamada (Şekil 2A) ve (DHP tedavi öncesi yumurtalıklarda Şekil 2C&#39;de, bu ancak mevcut benzer) saydam, olgun evre V yumurtaları oosit atın. NOT: Oositler erken evre IV, olgun, sahne V oocyt sonuçlanır erken aşamada olgunlaşması için seçilirlerin vitro kültür koşullarında (Şekil 2C ve D) sonra es 3. Evre IV oositler aktif ürünler üretmek olduğundan, bu aşamada işleme RNA enjeksiyon yoluyla ya da kişiye MOS ile gen fonksiyonunun indirgenmesi için ekzojen ürünlerin sentezlenmesi için izin verir. </li><li> 4 ml Leibovitz L-15 ortamı + DHP içeren ikinci bir 35 x 10 mm plastik kültür tabağına, erken evre IV oosit aktarmak için bir cam Pasteur pipeti kullanarak. + DHP çözeltisi içeren çanak -DHP ortamı az miktarda aktarın. </li></ol> 4. Yumurta Mikroenjeksiyonlar Not: in vitro olgunlaşması ile yapılan İzole evre IV oosit fonksiyonel manipülasyon ya da etiketli protein ekspresyonu için reajanlann eklenmesi mikro enjekte edilebilir. MRNA ve MOS (bölüm 4) gibi reaktifler, bir mikro-enjeksiyon, tipik olarak, oositler in vitro Matu geçiren zaman gerçekleştirilir+ DHP ortamda katyon önce defolliculation için. Arzu edildiği takdirde, oosit olgunlaşması önce işler gerçekleştirmeden için daha fazla zaman izin vermek için, enjeksiyonlar da en az 2 saat boyunca, önceden olgunlaşmasına, -DHP ortamında gerçekleştirilebilir. Bunlar sonradan + DHP ortamına aktarılabilir. <ol><li> Standart bir sentezleme kiti kullanılarak mRNA&#39;lar hazırlayın. 50-500 ug / uL nihai konsantrasyonda, enjeksiyon için 100-500 pg / ml stok olarak -80 ° C&#39;de tutun RNA dereceli su (200 ug / uL tavsiye edilir). imalatçının talimatlarına göre, su içinde bir 4 ng / uL konsantrasyonunda MOS hazırlayın. 2 ng nihai konsantrasyonlarda bunları enjekte / uL (ya da deneysel olarak belirlenmiştir). Not: enjeksiyon, tipik olarak (5. bölümde nota bakınız) defolliculation önce + DHP ortamında gerçekleştirilir. </li><li> mRNA enjekte ise, enjeksiyondan hemen önce, 0.1 M KCl bir nihai solüsyon elde etmek için RNA, dereceli ters osmoz su ve 0.2 M KCI ile mRNA seyreltin.</li><li> MOS enjekte ise, enjeksiyondan hemen önce, 0.1 M KCl bir nihai solüsyon elde etmek için ters ozmoz su ve 0.2 M KCI ile istenen konsantrasyona MOS seyreltin. </li><li> El ile ince forseps ile oosit tutun ve bir çekilmiş kılcal cam pipet ile yapılmış bir iğne kullanılarak, vahşi tip evre IV oositlerine yaklaşık 1 nL enjekte edilir. <ol><li> Daha önce zebra balığı erken embriyolar 15 içine standart enjeksiyon için protokoller de tarif edildiği gibi, ısıtılmış cam kılcal boruları çekme enjekte edilecek çözelti yükleme ve forseps ile iğne ucu kırılması ile cam iğneler hazırlayın. NOT: İğne kademeli bir şev ziyade ani bir tane sahip olması yararlı olur; Bu iğne ucu içinde mola yeri açısından daha fazla esneklik sağlar ve aynı zamanda enjekte embriyo zarar vermemek için yardımcı olur. Aynı iğne ve embriyo enjeksiyon için solüsyon kullanarak, önceden belirlenerek enjekte edilen hacim ayarlamaİstenen hacmi üretmek mikroenjektör basınç ayarları. Bu ayarlar belirlenebilir sahte-enjeksiyon, daha önce tarif edildiği gibi 15, bir mikroskop kademesi kalibrasyon sürgünün (0.01 mm) ve enjekte edilen çözelti bolus istenen çapı elde etmek için mikroenjektör ayarlarını mineral yağ damla halinde. </li></ol></li></ol> 5. Oosit Olgunlaştırma ve Defolliculation NOT: oosit olgunlaşması sırasında, oosit başarılı kültür koşullarının değerlendirilmesi için izin veren giderek saydam hale gelecektir. <ol><li> 26.5 ° C ve + DHP ortamda oosit oositler bozulmamış kalmasını sağlamak için periyodik olarak (her 30 dakika), kontrol ve kademeli olarak saydam hale gelerek doğru olgunlaşmasını geçiren (bakınız Şekil 2C) (uygun olduğunda, enjekte edildiğinde ve) ve olgunlaşmamış inkübe devam . <ol><li> Pasteur pipeti ile herhangi lysing oosit çıkarın ve atınBir laboratuar atık behere ortamın kalitesini korumak için. Oosit liziz miktarına bağlı olarak, berrak bir çözelti sağlamak için taze + DHP ortamının yaklaşık yarım hacme sahip bir kültür ortamının değiştirin. </li><li> Oosit büyük bir kısmı saydam hale gelir ve artık belirgin bir GV sahiptir (DHP tedavisinde yaklaşık olarak 2 saat, D ile karşılaştırıldığında bakınız Şekil 2C) kadar in vitro olgunlaşması devam izin verin. geçen ışık optikli bir mikroskop altında bunları gör. </li></ol></li><li> Her bir olgun oosit, en dış foliküler membran çıkarın. oosit ve membran arasındaki artan boşluk ile bir bölgede foliküler zarında gözyaşı yapmak için ekstra ince forseps kullanın. membranın bir kısmının kalkmasına ve soyulmuş parçası basılı tutarak membran üzerinden oosit döndürün. Not: Temel koryonik membran, bu işlem sırasında yumurta ile yakın ilişki içinde kalır tipik olarak; Yumurta eylemi sonrasıivation, embriyon için koruyucu bir tabaka oluşturmak için genişler. </li><li> (Tipik olarak en az 20 uL yaklaşık 5-10 olgun oosit transferi) orta bir minimal hacimde sonra soyuldular oosit transfer kültür (+ DHP) aracı maddesi, bir kaç damla bir petri kabı ve gübreleme ile devam edin. </li></ol> In vitro kültürlü OOSİT 6. Fertilizasyon NOT: buz üzerinde sperm çözeltisi, yaklaşık 2 saat için gücünü korur, aşağıda hazırlanan. <ol><li> Daha önce 16, 17 tarif edilen şekilde, Hanks çözeltisi, 500 uL beş erkeklerden kullanılarak testisler defolliculation için oosit olgunlaştırma aşamasının sonunda ve önceden yakın sperm çözeltisi hazırlayın. </li><li> + DHP kültür ortamında defollikulize Oositlere sperm çözeltisi 10-50 uL ekleyin. 10 s bekleyin. </li><li> Bir pipet kullanarak, Oositlere embriyonik (E3) orta birkaç damla ekleyin. pl 1 dk bekleyin ve selE3 orta ile yedi. Not: 5 mM NaCI, 0.17 mM KCI, 0.33 mM CaCl2, 0.33 mM MgSO 4 ve% 1-5 Metilen Mavisi 13: aşağıdaki gibi E3 orta bileşimi. </li><li> Tekrar döllenmiş embriyolar daha çok sayıda elde etmek için 5.3, 6.2 ve 6.3 adım. </li><li> döllenmiş embriyo geliştirmek için izin verin. Daha önce döllenme 17 ve 18 evreleme için açıklandığı şekilde, başarılı döllenme sağlamak için bölünme aşamalarında ilerlemeyi gözlemlemek için iletilen ışık optikli bir diseksiyon mikroskobu kullanın. </li></ol>

<ol><li>Lindeman, R., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vertebrate+maternal-effect+genes%3A+insights+into+fertilization%2C+early+cleavage+divisions%2C+and+germ+cell+determinant+localization+from+studies+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Rep+Dev%22%5BJournal%5D)">Vertebrate maternal-effect genes: insights into fertilization, early cleavage divisions, and germ cell determinant localization from studies in the zebrafish.</a> Mol Rep Dev. 77 (4), 299-313 (2010).</li>
<li>Abrams, E. W., Mullins, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+zebrafish+development%3A+it%27s+in+the+maternal+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Early zebrafish development: it's in the maternal genes.</a> Curr Opin Genet Dev. 19 (4), 396-403 (2009).</li>
<li>Nair, S., Lindeman, R. E., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+oocyte+culture-based+manipulation+of+zebrafish+maternal+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">In vitro oocyte culture-based manipulation of zebrafish maternal genes.</a> Dev Dyn. 242 (1), 44-52 (2013).</li>
<li>Selman, K., Petrino, T. R., Wallace, R. A. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/jez.1402690607/abstract">Experimental conditions for oocyte maturation in the zebrafish, Brachydanio rerio.</a> J Exp Zool. 269 (6), 538-550 (1994).</li>
<li>Fauvel, C., Omnes, M. H., Suquet, M., Normant, Y. <a target="_blank" href="https://www-sciencedirect-com.remotexs.ntu.edu.sg/science/article/pii/004484869390127K">Reliable assessment of overripening in turbot (Scophtalmus maximus) by a simple pH measurement.</a> Aquaculture. 117 (1-2), 107-113 (1993).</li>
<li>Lahnsteiner, F., Weismann, T., Patzner, R. A. <a target="_blank" href="https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00899767/document">Composition of the ovarian fluid in 4 salmonid speices: Onchorhynchus mykiss, Salmo trutta flacustris, Salvelinus alpinus and Husho hucho.</a> Reprod Nutr Dev. 35 (5), 465-474 (1995).</li>
<li>Patiño, R., Bolamba, D., Thomas, P., Kumakura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+external+pH+on+hormonally+regulated+ovarian+follicle+maturation+and+ovulation+in+Atlantic+croaker%5BTitle%5D)+AND+%22Gen+Comp+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Effects of external pH on hormonally regulated ovarian follicle maturation and ovulation in Atlantic croaker.</a> Gen Comp Endocrinol. 141 (2), 126-134 (2005).</li>
<li>Seki, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+reliable+in+vitro+maturation+system+for+zebrafish+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction%22%5BJournal%5D)">Development of a reliable in vitro maturation system for zebrafish oocytes.</a> Reproduction. 135 (3), 285-292 (2008).</li>
<li>Selman, K., Wallace, R. A., Sarka, A., Qi, X. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/jmor.1052180209/abstract">Stages of oocyte development in the zebrafish, Brachydanio rerio.</a> J Morphol. 218 (2), 203-224 (1993).</li>
<li>Clelland, E., Peng, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endocrine%2Fparacrine+control+of+zebrafish+ovarian+development%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Endocrine/paracrine control of zebrafish ovarian development.</a> Mol Cell Endocrinol. 312 (1-2), 42-52 (2009).</li>
<li>Kane, D. A., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+zebrafish+midblastula+transition%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The zebrafish midblastula transition.</a> Development. 119 (2), 447-456 (1993).</li>
<li>Kanagaraj, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Souffle%2FSpastizin+controls+secretory+vesicle+maturation+during+zebrafish+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Souffle/Spastizin controls secretory vesicle maturation during zebrafish oogenesis.</a> PLoS Genet. 10 (6), e1004449(2014).</li>
<li>Brand, M., Granato, M., Nüsslein-Volhard, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBrand%2C+M+%22Keeping+and+raising+zebrafish%2CZebrafish+-+A+Practical+Approach%22">Keeping and raising zebrafish,Zebrafish - A Practical Approach</a>. Nüsslein-Volhard, C., Dahm, R. , Oxford University Press. Oxford. 7-37 (2002).</li>
<li>Connoly, M. H., Dutkosky, R. M., Heah, T. P., Sayler, G. S., Henry, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+dynamics+of+oocyte+growth+and+vitellogenin+gene+expression+in+zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Temporal dynamics of oocyte growth and vitellogenin gene expression in zebrafish (Danio rerio).</a> Zebrafish. 11 (2), 107-114 (2014).</li>
<li>Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microinjection+of+zebrafish+embryos+to+analyze+gene+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function.</a> J Vis Exp. (25), e1115(2009).</li>
<li>Pelegri, F., Mullins, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+screens+for+mutations+affecting+adult+traits+and+parental-effect+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Meth+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic screens for mutations affecting adult traits and parental-effect genes.</a> Meth Cell Biol. 104, 83-120 (2011).</li>
<li>Baars, D. L., Takle, K. A., Heier, J., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ploidy+manipulation+of+zebrafish+embryos+with+Heat+Shock+2+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Ploidy manipulation of zebrafish embryos with Heat Shock 2 treatment.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
<li>Kimmel, C., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullman, B., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+embryonic+development+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Stages of embryonic development in the zebrafish.</a> Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).</li>
<li>Eisen, J. S., Smith, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+morpholino+experiments%3A+don%27t+stop+making+antisense%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Controlling morpholino experiments: don't stop making antisense.</a> Development. 135 (10), 1735-1743 (2008).</li>
<li>Schulte-Merker, S., Stainier, D. Y. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Out+with+the+old%2C+in+with+the+new%3A+reassessing+morpholino+knockdowns+in+light+of+genome+editing+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Out with the old, in with the new: reassessing morpholino knockdowns in light of genome editing technology.</a> Development. 141 (16), 3103-3104 (2014).</li>
<li>Dekens, M. P. S., Santoriello, C., Vallone, D., Frassi, G., Whitmore, D., Foulkes, N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+regulates+the+cell+cycle+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Light regulates the cell cycle in zebrafish.</a> Curr Biol. 13 (23), 2051-2057 (2003).</li>
<li>Sakai, N., Burgess, S., Hopkins, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+in+vitro+fertilization+of+zebrafish+eggs+in+Hank%27s+saline+containing+bovine+serum+albumin%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Mar+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Delayed in vitro fertilization of zebrafish eggs in Hank's saline containing bovine serum albumin.</a> Mol Mar Biotechnol. 6 (2), 84-87 (1997).</li>
<li>Pelegri, F., Mullins, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+screens+for+mutations+affecting+adult+traits+and+parental-effect+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Meth+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic screens for mutations affecting adult traits and parental-effect genes.</a> Meth Cell Biol. 135, (2016).</li>
<li>Lindeman, R. E., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localized+products+of+futile+cycle%2Flrmp+promote+centrosome-nucleus+attachment+in+the+zebrafish+zygote%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Localized products of futile cycle/lrmp promote centrosome-nucleus attachment in the zebrafish zygote.</a> Curr Biol. 22 (10), 843-851 (2012).</li>
<li>Nair, S., Marlow, F., Abrams, E., Kapp, L., Mullins, M., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chromosomal+passenger+protein+Birc5b+organizes+microfilaments+and+germ+plasm+in+the+zebrafish+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genetics%22%5BJournal%5D)">The chromosomal passenger protein Birc5b organizes microfilaments and germ plasm in the zebrafish embryo.</a> PLoS Genetics. 9 (4), e1003448(2013).</li>
<li>Eno, C., Solanki, B., Pelegri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((aura+%28mid1ip1l%29+regulates+the+cytoskeleton+at+the+zebrafish+egg-to-embryo+transition%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">aura (mid1ip1l) regulates the cytoskeleton at the zebrafish egg-to-embryo transition.</a> Development. 143 (9), 1585-1599 (2016).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi mali çıkarlarını var.

Yukarıdaki protokol böylece erken zebra balığı embriyo maternal gen ürünlerinin çalışması için izin Fertilizasyondan önce gen ürünlerinin işlenmesi için olan. Daha önce yapılan çalışmalar vitro 4&#39;te oosit olgunlaşması mümkün olmuştur; Bu protokol, oositler 8 olgunlaşmış in vitro daha sonra döllenmesi amacıyla izin vermek için modifiye edilmiştir. Bu da, embriyonun erken dönemine 3&#39;te anne tarafından miras kalan ürünlerin fonksiyonel manipülasyon ve görselleştirme için reaktifler enjeksiyonuna olanak tanır. Bu yöntemle elde edilen embriyolar yaşayabilir olabilir ve bereketli yetişkin olmayı yaşayabilir. Sağlıklı, bereketli yetişkin (yayınlanmamış gözlemler) haline yaklaşık yarısı bu aşamada en yüzme kesesi enflasyonu ile değerlendirilen ön deneylerde, bu prosedürün türetilmiş döllenmiş embriyo yaklaşık yarısı, geliştirme 5. gününde yaşayabilir idi. vardırkritik adımlar protokolde dikkate almak. uygun bir aşamada Oositler dişi son şeklindeki olup olmadığını zenginleştirilebilir olgunlaşmasını (erken evre IV) başlatır, ancak önce 8 DPP için. Son zamanlarda çiftleşmemiş olması balık kullanma olgunlaşma uğramayacağını yumurta 14 yozlaşan neden olabilir. Az 8 gün içinde çiftleşen dişiler evre III veya daha az yumurta çoğunluğu sağlayarak ve böylece, yumurta in vitro düzgün olgun olmayacaktır. 8 gün önce şeklindeki kadınlarda Yumurtalıkların erken evre IV oosit optimal fraksiyonu olacaktır. Bunlar opaklık ve dış merkezli bir konumda (Şekil 2B) GV mevcudiyeti ile fark edilebilir. Oosit, bir mikroskop altında kademeli bir mikrometre slayta yerleştirildi ve standart hazırlama kılavuzlar (Tablo 1) ile karşılaştırıldığında ile Oosit aşaması belirlenmesi de, boyut ölçümü ile destekli olabilir. Ancak, erken evre IV oositlerin yakın maksimal boyutu olgun kıyasla sahip(göreli şeffaflık ve GV eksikliği tarafından tanınan; Şekil 2C) oositleri, genel olarak doğrudan oosit boyutu ölçüm ihtiyacını ortadan kaldırır, yukarıda tarif edildiği gibi ve kolay bir şekilde, kabul edilmektedir. In vitro olgunlaşması dişi oosit donör ortama alıştırılır kaldığı gün ışığı döngüsü sonuna birkaç saat içinde başlaması gerekir. Oositler ışık döngüsünün sabah döneminde kültürlendirilmiş, kötü fertilizasyon oranlarında yansıyan, düzgün olgun olmayacaktır. In vitro oosit olgunlaştırma yöntemi sirkadiyen bağımlılık sebebi anlaşılacaktır ancak büyük olasılıkla oogenez 21 sırasında devir daim gen ekspresyonunu içeren, in vivo yumurta olgunlaşması altta yatan sirkadiyen sapmaları gösterir değildir. Uygun oosit evreleme rağmen, in vitro olgunlaşması başarılı geçmesi için başarısız oositler için yaygın bir nedeni, DHP süresi olmasıdır. DHP hormonu genellikle bir yıl sonra sona eriyor ve etkisini sigortaive olgunlaşma, işçi toplu kullanımda 9 ay içinde değiştirilmelidir. yöntemin amacı anne ürünlerin fonksiyonel manipülasyon olduğunda oositlerin enjeksiyon başka önemli bir adımdır. Bu prosedür, 0-30 MPF&#39;e döllenmiş yumurta standart enjeksiyonlar için farklılık gereksinimleri vardır. Oosit enjeksiyon önemli bir faktör, örneğin Leibovitz L-15 ortamına 22, 23 olduğu gibi, erken yumurta aktivasyonuna yol açmayan koşullar altında enjekte gerçekleştirmek için ihtiyaç vardır. onlar yumurtalıkların gömülü olduğundan, olgunlaşan oositlerin da enjeksiyon bazı özel zorluklarla. Protokol Yukarıdaki ilk yumurtalık oosit ayrışan ve daha sonra enjekte ederken her bir forseps ile ayrı ayrı oosit ayrışmış tutma göstermektedir. Bu teknik, minimum tutma ile uygun bir aşamada ön ayırma oosit iyi çalıştı ve olanak sağlamaktadır. Alternatif yöntemler de kullanılabilir, örneğini) standart enjeksiyon halinde yerleştirilmesi oositler agaroz, in vitro bir matürasyon ortamında muhafaza ederken bu alternatif yöntemde çukur destek enjeksiyonu sırasında, oosit dikey duvarlarının (oositler enjeksiyon plakalara transfer gereken 15) ve ii oluklara: olarak ) oositler, oositler, her iki için enjeksiyondan sonra ayrışmış gerekmektedir Bu yaklaşımda enjekte oosit ile temas (önlemek için enjeksiyon sırasında forseps ile tutulabilir yumurtalık kütle, bağlı DHP kalmasını kolaylaştıracak kalması ve defolliculation izin vermek için izin kendisi IVF için gerekli). Bu aşamada koryonik membranı tamamen 9 gelişmiş değildir, çünkü bu özel sorun olmasına rağmen, evre IV oositleri kolaylıkla bir enjeksiyon iğnesi ile muhtemelen nüfuz edilebilir. Mevcut olgunlaşma protokolünün bir sınırlama in vitro olgunlaşması koşullarında uygun oosit gelişimi teşvik bu yanioosit olgunlaştırma aşaması IV daha erken aşamalarda başlatıldığında oluşturulamaz. Oositler bunlar (340 ila-690-mikron aralığına karşılık gelen vitellogenez) evre III sırasında ortaya 520 um bir çapa, ulaştıklarında olgunlaşmasını geçerek DHP yanıt hakim olmak 9. Bununla birlikte, döllenme 3 yetkili olmayan oositlerde evre III oosit sonuç kültürü. Ürünü sadece in vitro kültür aşaması IV (Şekil 2B) başlatılır, olgun, evre V oosit (Şekil 2C ve D) dönüşebilir oosit. Bu evre III vitellogenez ve oosit gelişimi 9 için gerekli olmasından ile ilişkili olabilir. Bu nedenle, bu yazıda, in vitro oosit olgunlaştırma işlemi sadece IV oosit (B) ve en erken aşamalarında oosit (etaplı bir tablanın bir başlangıç popülasyonu ile kullanılmalıdır - III; Figür E <strong&gt; 2A). Aynı nedenle, bu prosedür aşaması IV ya da daha az ifade edilen genlerin sınırlıdır. Ürünler daha önce ifade edilen genlerin işlevsel manipülasyonu yerine genetik yöntemlerde (aşağıya bakınız) dayanmak zorunda olabilir. In vitro kültür olgunlaşma yöntemlerine İyileştirmeler gelecekte bu nedenle in vitro olgunlaşma yaklaşımın gücünü genişleterek, daha erken aşamalarda oosit Kulturlemenin başlatılması için izin verebilir. Yöntemin bir başka sınırlama gübreleme dahil sonraki aşamalar için gerekli olduğunu defolliculation şu anda, prosedürde hız sınırlayıcı bir adımdır olup. foliküler membran Gelişen oositi çevreleyen şeffaf bir katman, ve kaldırma sıkıcı olabilir. Bu zar tam kaldırılmazsa, yumurta tam etkinleştirilmiş ve döllenmiş olmaz. Bu genişletmek için koryon yetmezliği ve düzensiz yerleştirilmiş, karık benzeri st gelişimi ile belirgin yapılırdöllenmemiş embriyoların 11 karakteristik sı (pseudocleavages). Xenopus kullanılan kolajenaz gibi enzimatik defolliculation yöntemleri, denenmiştir. Ancak, bizim elimizde, bu teknik başarılı olmamıştır, ve bu yüzden manuel defolliculation güveniyor. Manuel defolliculation emek yoğun ve zaman alıcı olduğundan, in vitro oosit olgunlaşması sonra döllenmiş yumurtaların büyük gruplar elde etmek zordur. Nedeniyle manuel defolliculation dayattığı zamansal sınırlama, şu anda 5-10 yumurta küçük gruplar halinde, bir seferde birkaç defolike, olgun yumurtaları döller. Bu prosedür ile enzimatik defolliculation dahil edilmesi olası önemli ölçüde verim ve genel kullanım kolaylığını arttırır. In vitro -matured fertilizasyonu sonra üretilen embriyolar canlı yetişkinler olmakta, ancak biz IVF sonrası, embriyoların bir kısmı bunu unutmayın<html> Normalde ya zamanında bölmek değil. Biz şu anda, yayılma bu yöntemle elde edilen embriyolar gelişme daha sağlam desen neden olabilir, in vitro oosit olgunlaşma mermi içerir hatları için seçiyoruz. Prosedür mutasyonlar 24, 25, bir dizi için açık kurtarma veya protein lokalizasyonu görselleştirme için izin verdi. Enjekte mRNA tarafından ifade edilen ürünler değişik sonuçlar 26 yol açabilir, fakat bazı genler için, ürün ekspresyonunun düzenlenmesi, çok önemli olabilir. Tüm kontroller (örneğin, sadece nötr proteinleri kodlayan bu tür kontrol mos gibi bir etki gösterdi henüz tahmin edilmektedir deneyde kullanılanlara benzer özelliklere sahip reaktifler veya RNA&#39;lar ile enjekte edilen embriyolar, bu tür dikkatli olmak da önemlidir GFP gibi), altta yatan değişkenlik uygunsuz sonuçlara neden olabileceğinden. nt &quot;&gt; döllenme ve ardından in vitro yönetimini içeren bir yaklaşım, etkili bir şekilde ürünleri azaltmayabilir döllenmiş yumurtanın içine RNA, MOS veya proteini enjekte standart yöntem zaten yumurta biriken anne biriken ürün, durumunda özellikle faydalıdır. örneğin CRISPR yer mutant oluşumu gibi diğer son zamanlarda geliştirilen yöntemler, aynı zamanda, maternal olarak ifade edilen genlerin 26 mutant koşulları oluşturmada etkilidir. Bununla birlikte, bu yöntem, çeşitli balık nesillerin gelişimini gerektirir., in vitro oosit olgunlaştırma tekniği hızlı fonksiyonel müdahaleye imkan verir kurtarma ve anne-etki mutasyonların fenokopisi, hem de erken embriyo RNA ve protein ekspresyonu dahil olmak üzere, maternal olarak ifade edilen genlerin, fonksiyonu çalışma.

Hayvan gelişimi esnasında, yumurtanın içine ana yatakları gen ürünleri (örneğin, RNA, protein ve diğer biyomoleküllerin); bu ürünler derhal döllenme 1, 2 Aşağıdaki erken hücresel süreçleri için önemlidir. Döllenmiş yumurta 3 içine reaktiflerin enjeksiyonu için bir standart yaklaşım kullanıldığında anne ürünleri ifade ve işleminin işleme tipik olarak etkisizdir. En RNA ve proteinler oogenez sırasında oositin tarafından üretilen, yani önceden yüklenmiş anne ürünler zaten olgun yumurta mevcut olmasıdır. MOs mRNA, döllenme esnasında yumurta içinde halihazırda mevcut değildir, önceden mevcut hedef protein için bu tür önceden mevcut ürünler, örneğin Morfolino antisens oligo (MOS) gen hedefleme ajanları, fonksiyonel devirme karşı dayanıklıdır. Ayrıca birçok erken embriyonik süreçler döllenme influen edilemeyecek kadar kısa bir süre sonra gerçekleşmesiRNA, embriyojenez ilk olayları etkileme yeterince hızlı üretilmiş olmayabilir olarak, döllenmiş yumurtanın içine enjekte RNA&#39;dan türetilen protein ürünleri ced. Aynı nedenle, erken embriyo etkin rol oynayan sırasında görüntüleme zamanında üretilmiş olmayabilir döllenmiş yumurtanın içine bir mRNA enjeksiyon yoluyla ifade edilen protein füzyonlarını etiketli. Yumurta aktivasyonundan önce ekstrüde olgun oosit içine enjeksiyon mümkündür ancak benzer teknik konuları kapsamaktadır: bu olgun yumurta zaten anne protein ile önceden yüklenmiş ve bunlar yumurta sonrasına kadar (yani eksojen transkript proteini üretmek için) translasyonel olarak aktif olmazlar aktivasyonu. Bu nedenlerle, embriyojenezin ilk safhalarında hareket anne gen ürünlerinin işleme tipik olarak olgunlaşma oosit oogenezisin sırasında gerçekleştirilebilir gerekmektedir. Solüsyonu ° olgunlaşması için izin nitro olgunlaşma yöntemleri, bu engellerin üstesinden bir yaklaşım olarak,ytes evre IV yumurta oluşumuna, zebra balığı kurulmuştur. Erken yöntemler in vitro olgunlaşma olarak izin verilir, ancak ortaya çıkan olgun yumurta döllenme 4 yetkili değildi. Daha sonra in vitro olgunlaşması 7, 8 sonra güvenilir in vitro fertilizasyon (IVF) için izin verilen balık türleri 5, 6 bulunan ovaryan sıvının alkalin pH, taklit pH 9.0&#39;a nötr kültür koşulları manipülasyonu. Gerçekten de, in vitro -matured oositler 3, 8 verimli olan yetişkinliğe hayatta ve embriyo verebilir. Bu geliştirilmiş yöntem olup, ayrıca mat olarak yıkmak fonksiyonel aracılı MO anne genlerin fonksiyonel manipülasyon ekzojen sentezlenmesiyle zebra balığı oogenez sırasında etiketli proteinlerin ekspresyonunu ve ihtiva etmek üzere adapte edilmişuring evre IV oositler 3 (Şekil 1). Balığı oogenez olgun oosit 9 (Oogenezinde çeşitli aşamalarına hızlı bir kılavuz için Tablo 1 &#39;e bakınız) oluşumuna yol açan karakteristik bir dizi aşamadan sergiler. Kısaca, oosit gelişimi evre I oositler tarafından başlatılır ve mayoz profaz I diploten aşamasında tutuklandı. Oositler, (aynı zamanda evre II sırasında başlatılan kortikal granüller olarak da bilinir) kortikal alveollerin oluşumu (aşamaları IA ve IB sırasında başlatılan) aktif transkripsiyon yoluyla büyüme ve vitellogenez (evre III sırasında başlatılan) tabi tutulur. Oosit büyüme ı devam ettiğinde mayoz, oosit çekirdeğinin sökme sonuçlanan torbacığı (GV) olarak ifade evre IV sırasında tamamlanır. Daha sonra, mayoz metafaz II tekrar tutuklandı. Evre IV sırasında, oosit gelişimi ve mayoz arrest tamamlanması olgun evre V, örneğin yol açar9 g. Foliküler membran uzaklaştırılması yumurtalık 10 lümenine oositin açığa çıkmasıyla ve döllenme ve uygun yumurta aktivasyonu için gereklidir. Yumurta doğal çiftleşme sırasında anneden kalıptan edildikten sonra, aktif hale gelir. Zebrabalıkları olarak, suya maruz kalma bağımsız sperm 11 varlığı nedeniyle, tam yumurta aktivasyon için yeterlidir. İn vitro koşullarda nedeniyle şu anda birikimine büyüklüklerine (690-730 um), asimetrik bir pozisyonda geniş bir GV varlığında ve tamamen opak bir görünüm tarafından kabul edilebilir IV erken aşamada oositlerin olgunlaşması için izin tam demonte GV protein işleme 12 (Şekil 2C) sarısı nedeniyle saydam bir görünüm ile karakterize edilen, olgun evre V yumurta sarısı -to proteinleri (Şekil 2B). Bu yaklaşımda, bütün yumurtalık devamgelişimin farklı aşamalarında Aining oosit kadınlarda kaldırılır. Oositler 17α-20β-dihidroksi-4 pregnen-3-on (DHP), etkili bir olgunlaşma indükleyici hormon 8 gelişmelerine izin verilmiştir. Bu süre boyunca, olgunlaşan oosit ekspresyon enjeksiyon (örneğin kapatılmış, in vitro -transcribed mRNA) ya da ters genetik maddeler (örneğin, ay) manipüle edilebilir. foliküler tabaka kendiliğinden olgunlaşma döneminin sonuna doğru dökmez, bu nedenle elle kaldırılmalıdır. Defolliculation sonra, in vitro fertilizasyon (embriyonik (E3) bir ortam içinde mevcut olan), su 13 yumurta maruziyeti ve sperm çözelti içinden yumurta aktivasyonunu tetiklenmesi ile elde edilir. Elde edilen zigotlar embriyo gelişimini geçmesi ve (anne gen işlevini değiştirmek için tedavilerin yeteneğinin değerlendirilmesi için ve görselleştirme ve etiketli anne ürünlerin analizi için izin <strong&gt; Şekil 3).

<table><tbody><tr><td>Zebrafish mating boxes</td><td>Aqua Schwarz</td><td>SpawningBox1</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td>S3264</td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;-7H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma</td><td>63138</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>Tricaine</td><td>Western Chemical</td><td>Tricaine-D (MS 222)</td><td>FDA approved (ANADA 200-226)</td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Sigma</td><td>77-86-1</td><td>to prepare 1 M Tris pH 9.0</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Sigma</td><td>920-1</td><td>to prepare 1 M Tris pH 9.0</td></tr><tr><td>Fish net (fine mesh) (4 - 5 in)</td><td>PennPlax</td><td>(ThatFishThatPlace # 212370)</td><td>available in ThatFishThatPlace</td></tr><tr><td>Plastic spoon</td><td></td><td></td><td>available in most standard stores</td></tr><tr><td>Dissecting scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>14091-09</td><td></td></tr><tr><td>Dissecting forceps</td><td>Dumont</td><td>SS</td><td>available from Fine Science Tools</td></tr><tr><td>Dissecting stereoscope (with transmitted light source)</td><td>Nikon</td><td>SMZ645</td><td>or equivalent</td></tr><tr><td>Reflective light source (LED arms)</td><td>Fostec</td><td>KL1600 LED</td><td>or equivalent</td></tr><tr><td>Petri plates 10 cm diameter</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Eppendorf tubes 1.5 mL</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Ice bucket</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Narrow spatula</td><td>Fisher</td><td>14-374</td><td></td></tr><tr><td>Depression glass plate</td><td>Corning Inc</td><td>722085 (Fisher cat. No 13-748B)</td><td>available from Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Paper towels</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>06-666-11</td><td>available from Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Timer stop watch</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Wash bottle</td><td>Thermo Scientific</td><td>24020500</td><td>available from Fisher Scientific</td></tr><tr><td>beakers, 250 mL (2)</td><td>Corning Inc.</td><td>1000250</td><td>available from Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Leibovitz&#039;z L-15 medium</td><td>Thermofisher</td><td>11415064</td><td></td></tr><tr><td>NaOH&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>221465</td><td>for pH&#039;ing</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A2058</td><td></td></tr><tr><td>17alph-20beta-dihyroxy-4-pregnen-3-one (DHP)</td><td>Sigma</td><td>P6285</td><td></td></tr><tr><td>gentamicin</td><td>Sigma</td><td>G1272</td><td></td></tr><tr><td>Injection Apparatus</td><td>Eppendorf</td><td>FemtoJet</td><td>or equivalent</td></tr><tr><td>Capillary Tubing for injection needles</td><td>FHC</td><td>30-30-1</td><td>or equivalent, Borosil 1.0 mm OD x 0.5 mm ID with fiber, 100 mm</td></tr><tr><td>Needle puller</td><td>Sutter Instruments</td><td>Model P-87</td><td>any maker</td></tr><tr><td>Micropipetor (1 - 20 &amp;micro;L range) with tips</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Micropipetor (20 - 200 &amp;micro;L range) with tips</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Micropipetor (100 - 1000 &amp;micro;L range) with tips</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Conical tubes 15 mL</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Conical tubes 50 mL</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>plastic pipette 10 mL with bulb</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>plastic pipette 20 mL with bulb</td><td></td><td></td><td>any maker</td></tr><tr><td>Microscope stage Calibration Slide 0.01 mm</td><td>AmScope</td><td>MR095</td><td>or equivalent</td></tr><tr><td>Reagents for fish water:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Instant Ocean Salt</td><td>Drs. Foster &amp;amp; Smith</td><td>&amp;nbsp;CD-116528</td><td></td></tr><tr><td>Sodium bicarbonate (cell culture tested)</td><td>Sigma</td><td>S5761-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Reagents for E3 medium:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S5886-1KG</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P5405-500G</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;, dihydrate</td><td>Sigma</td><td>C7902-500G</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, heptahydrate</td><td>Sigma</td><td>63138-250G</td><td></td></tr><tr><td>Methylene Blue</td><td>Sigma</td><td>M9140-25G</td><td></td></tr><tr><td>Fish Food:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Frozen brine shrimp</td><td>Brine Shrimp Direct</td><td>FBSFKG50</td><td></td></tr><tr><td>Tetramin Flakes</td><td>Drs. Foster &amp;amp; Smith</td><td>16623</td><td></td></tr></tbody></table>

functional manipulation of maternal gene products using in vitro oocyte maturation in zebrafish

Hayvan embriyonik gelişimin erken safhalarında sırasında gerçekleşecek Hücresel olayların gelişmekte oosit içine yatırılır maternal gen ürünleri tarafından tahrik edilmektedir. Bu etkinlikler, genellikle yumurta içinde döllenme yani; önceden kısa bir süre sonra hareket anne ürünler dayandıklarından, döllenmiş yumurtanın içine reaktiflerin enjeksiyonunu içeren ekspresyon ve fonksiyonel indirgenmesi için standart yaklaşımlar tipik olarak etkisizdir. Bunun yerine, bu tür kullanımlar, önce ya da anne ürünlerin birikmesi sırasında, oogenezis sırasında gerçekleştirilmelidir. Bu makalede, erişkin için hayatta embriyo elde ayrıntılı olarak olgunlaşmamış zebrabalıkları oositlerin in vitro olgunlaşması ve bunların daha sonraki in vitro döllenme için bir protokol açıklamaktadır. Bu yöntem, bu tür fenotipik kurtarma ürünleri ve etiketli yapı görselleştirme ifadesi olarak Oogenezinde maternal ürünleri, fonksiyonel manipülasyonuna izin hem de birters-genetik maddeler ile gen işlevinin azaltılmasını s.

Yukarıda anlatılan prosedür, başarılı ise, embriyolar hem de sonrası fertilizasyon (HPF), 24 saat olduğu gibi, basmakalıp erken embriyo klivaj paterni 18 görünümünü teyit etmek için bölünme aşamalarında gözlemlenebilir belirlemek için uygun gelişim teyit etmek için temel vücut planının. Bu prosedür, oosit gelişimi esnasında, mRNA ve mos gibi reaktifler enjeksiyonu yoluyla fonksiyonel çalışmalar için anne ürün müdahale edilebilmesini sağlar. Fonksiyonel çalışmalar için anne ürünlerin manipülasyonu: Yabani tip ve mutasyona uğramış ürünleri için mRNA kodlaması mayoz ve erken evrelerinde anne gen fonksiyonunun manipülasyon etkisini test etmek için in vitro olgunlaşması oosit içine enjekte edilebilir. Örneğin, vahşi tip embriyolar wi enjekte edilebilirld tip mRNA ürün aşırı ifadesinin etkisini test etmek için, veya mutant RNA ile bu işlemlerde olası hakim (örneğin, fonksiyon--kazanmak ve antimorphic) etkilerini test etmek için. Oogenezisin evre IV kültür koşulları başlatmak sadece oositler (olgun evre V oositlerine Şekil 2B geliştirmek, ancak in vitro kültür içinde Oositler, enjekte edilen mRNA&#39;dan GFP ekspresyonu ile gösterildiği gibi, oosit gelişimi boyunca eksojen mRNA&#39;dan proteini üretebilecek olan -2D) aynı zamanda, Nair vd.: 3. Enjekte mRNA yoluyla vahşi tip ürününün ifadesi de ayrıca pozisyonel klonlama 3, 24 boyunca gen kimliği teyit etmek için ana-etki mutasyonlar kurtarılması için aracı olduğunu. Bu durumda, yabani tip mRNA vahşi tip ürünler, mutant fenotipi kurtarma olup olmadığını test etmek için, homozigoz mutant dişilerin oositlerin içerisine enjekte edilir. Bu genetik kurtarma gösterilmiş olup &lt;AurB mRNA enjekte güçlü&gt; Şekil 3A-3C, karşılık gelen gen, hücre adanın (cei) (Şekil 3A-3C) bir mutasyon fenotipik etkilerini kurtarmak için gösterilmiştir. Bir kontrol grubu embriyolar, karşılık gelen mutant fenotipi 3 göstermek için gelişmeye bırakıldı. Mutant RNA da Mutasyona uğratılmış ürün, vahşi tip ürünün neden olduğu edilene kurtarma derecesini karşılaştırarak kısmi fonksiyonunu muhafaza olmadığını test etmek için, mutant oosit içine enjekte edilebilir. Gelişmekte olan oositlerin enjekte mRNA&#39;dan Protein ifadesi, çok az veya hiç gecikme ile meydana gelir gibi görünmektedir. Güçlü GFP bağımsız oosit 3 gelişim aşamasında, karşılık gelen mRNA enjekte 2 saat içinde gözlenir (Şekil 2B-2B;. Ayrıca Nair ve diğerleri 3). Böyle mCherry gibi ürünler:Sas6 ve Birc5b (Alacalı) GFP döllenmeden sonra ve birinci embriyonik hücre döngüsü 3, 25 boyunca hemen gözlenebilir. Oogenez sırasında mRNA enjeksiyonu, aynı zamanda hücre ada / aurB 3, sonuçsuz döngü / lrmp 24 maternal ürünler durumunda gösterildiği gibi, ne olursa olsun, kaynaşık etiketli yarımının, hemen sonra gübreleme fonksiyonel proteini üretimine yol açan ve alacalı / bir5b 25. Tercüme engelleme / dhx16 3 imkansız misyon olduğu gibi, nafile döngü / Lrmp 3 ve embriyogenez ileriki aşamalarında gösterilen MOs da hemen döllenmeden sonra bir etkiye sahiptir. olgunlaşan oositlerinde enjekte edildiğinde Bağlayıcı-bloke MOS, evre IV oositlerde olası nedeniyle zaten mevcut olgun anne transkript, anne fonksiyonu üzerinde bir etkisi olmayabilir &lt;sup class = &quot;xref&quot;&gt; 3. morphants oluşması: önceden tanımlanan mutasyonu olan bir gene tekabül eden bir MO kullanırken, morphant fenotip fenotipe taklit etmesi beklenmektedir. Morphants MO kontrol enjekte yapılmamış embriyolar ve bir standart ile enjekte edilen karşılaştırılır. Karşılık gelen mutasyon mutant fenotipi nafile döngü (Şekil 3D-F) taklit eden oositlere Lrmp MO enjeksiyonu ile gösterildiği gibi, bir çeviri-bloke morfolino enjeksiyonu başarıyla bilinen mutant fenotipi 3 fenokopya olabilir. MOS spesifikliği (daha önce yorumlanan) embriyolara MOS 19, 20 enjekte kullanılan aynı yaklaşımlarla tespit edilebilir. floresan etiketli füzyon proteinlerinin ekspresyonu: Şekil 3G mRNA floresan protein (örneğin GFP ve mCherry) erimiş ilgi duyulan gen ürünleri kodlayan, aynı zamanda, vahşi tip ya da erken bir embriyonun içindeki karşılık gelen ürünler görselleştirmek üzere mutant oosit (yani, bir hücre içi lokalizasyonu modelini yansıtan ya da enjekte edilebilir ve 3 H). Benzer füzyonlar kodlayan ama mutant alleli içeren mRNA&#39;lar Benzer mutasyon, herhangi bir potansiyel hücre içi lokalizasyonu etkileyip etkilemediğini test etmek üzere ifade edilebilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55213/55213fig1.jpg" /> Şekil 1: İn Vitro Oosit Matürasyon. İn vitro oosit olgunlaşmasında yer alan çeşitli aşamalarım gösteren şematik diyagramı. Yetişkin dişiler için önceden seçilmiş olan yumurtlama çoktan olgunlaşmış ve pro zorunda yumurta onları temizlemek için, prosedüre 8 gün önceYeni oosit gelişimi zerre. Yumurtalıklar, gelişmekte olan oositleri içeren, kadınlarda çıkarılır ve in vitro olarak, oosit matürasyonunu teşvik hormon DHP içeren bir ortama transfer edilir. kadın ve hemen önce ya da oosit olgunlaşması sırasında çıkarıldıktan sonra, oositler maternal faktörlerin fonksiyonel manipülasyonu için RNA ürünleri ve diğer reaktifler ile enjekte edilebilir. Olgun oositler el sonra soyuldular ve döllenmiş, embriyo elde etmek için, bir sperm çözeltisi ile in vitro olarak fertilize edilmiştir. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55213/55213fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için buraya tıklayın.</a> <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/55213/55213fig2.jpg" /> İn vitro Oosit Matürasyon ve enjekte mRNA&#39;dan Ürünlerin İfadesi: Şekil 2. (A) yumurtalık gözlenen aşamaları I-III, oositleredişiler 4 gün sonrası temizleme (dpp). (B), kadınlarda 8 DPP yumurtalıklar gözlenen, evre IV oositlere. germinal vesicle (GV, ok başı) açıkça görülmektedir ve eksantrik bir konumda bulunmaktadır. Evre III oosit (A) &#39;da kolayca anlaşılacaktır GV sergiler, ancak oosit ortalanmış miktarda bulunmaktadır. (B) &#39;de Evre IV oositler olgun oosit (C) ile karşılaştırıldığında maksimal yakın olan bir boyuta sahiptir. (C ve D) mRNA transkripsiyonu, in vitro (Cı, görünür ışık bölgesindeki, aşama V (oosit olgunlaşması) (B) &#39;deki gibi, evre IV başlatılır ve GFP-kodlama olgunlaşma sırasında enjekte in vitro olgunlaşması koşullarında 2 saat sonra oositler yalnızca D, görünür ışık ve GFP floresan) arasında kaplaması. GV da evre IV oositler daha az opak evre V oosit, artık belirgindir. Enjekte edilen oositler, GFP proteini (D) ifade etmektedir. Olgun evre IV oositlerin Defolliculation des olanprotokol bölümünde açıklanan şekilde. Ölçü bar = 300 um. Tüm paneller Nair ve arkadaşları 3&#39;ten, izniyle, yeniden üretildi. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55213/55213fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için buraya tıklayın.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/55213/55213fig3.jpg" /> Şekil 3: İn Vitro Oosit olgunlaştırma ile Manipülasyon ve Maternal ürünlerin görselleştirilmesi. (A - C) evre IV cei / aurB oositlerine vahşi tip aurB mRNA enjeksiyon yoluyla hücresel ada / aurora B bir mutasyonun neden olduğu ana-etki fenotipin kurtarma. membranlar (yeşil) vurgulamak için, anti-B-katenin antikorları ile görselleştirilmiştir 65 mpf sabit blastodiscs hayvan Gösterim gösteren birleştirilmiş görüntü, bir anti-α-tubulin antikor (mikrotübül belirtmek içinkırmızı), ve DAPI DNA (mavi) belirlemek için. Normal karık olgunlaşma gösterge vahşi tip embriyolar (A) β-katenin birikimi. (B) bir enjeksiyon yapılmamış cei / aurB evre IV oositten bir cei / aurB embriyo β-katenin birikmez kısmi temel oluklar gösterir. Yabani tip aurB mRNA çizilerde sağlam β-katenin birikimini gösteren enjekte edilen bir cei / aurB oosit (C) bir kurtarıldı cei / aurB embriyosu. (D - F) morfolino evre IV oosit içine Lrmp enjeksiyonu ile nafile döngü / lrmp bir mutasyonun neden olduğu ana-etkisi Fenokopisi. Anti-γ-tubulin antikor ile görselleştirilmiştir 70 mpf sabit blastodiscs, hayvan görüntülerini gösteren birleştirilmiş görüntü DNA (mavi) belirlemek için sentrozom (kırmızı) ve DAPI gösterir. Yabani tip embriyolar, γ-tubulin, centrosomal malzeme için bir marker ile her çekirdek ortakları (D). (Anne etki FUE mutantlarında E), pronükleer füzyon füzyonla birleştirilmemiş ana ön-çekirdek ve mayoz II polar gövdesine karşılık gelen DNA etiket iki ya da üç yamaları ile sonuçlanır başarısız olur. Lrmp morphants maternal Lrmp fonksiyonu inhibe edilir burada, çekirdekler Benzer ek olarak, γ-tubulin ile ilişkilendirmek için başarısız, bölmek için başarısız olarak (F). Erken embriyo anne üretilen ürünün (G ve H) Görselleştirme. eksojen mRNA&#39;dan Sass6 mCherry proteini IV oosit Sentriyoller lokalize aşamasında enjekte edildi. sentrozom (yeşil) vurgulamak için, anti-γ-tubulin antikor ile görselleştirilmiştir 40 mpf sabit blastodiscs hayvan incelemeler, MCherry floresan gösteren birleştirilmiş görüntü Sass6 (kırmızı) için, ve DAPI DNA (mavi) belirlemek için. (G) Sass6 mCherry protein çekirdeği (oklar) komşu yerlerde sentrozom markör γ-tübülin etiketli odakları lokalize ifade edilir. (H </stRong&gt;) aynı görüntü, açıklık amacıyla sadece Sass6-mCherry ve DAPI gösteren. (G ve H) embriyolar giderilen, ancak bu MCherry füzyonlar olarak eksprese edilen ürünler, floresans, ayrıca canlı embriyolar gözlemlenebilir (gösterilmemiştir). Ölçek AF bar = 100 um ve G ve H Tüm paneller 10 um ve ark Nair, izni ile yeniden üretilmiştir 3. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55213/55213fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için buraya tıklayın.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Oogenez Aşamaları </td><td> Oosit çapı (um) </td><td> Anahtar dönüm (ler) </td></tr><tr><td> 1A - Prefollicle </td><td> 7-20 </td><td> aktif transkripsiyon başlatma, çekirdekçik birikimi </td></tr><tr><td> 1B - Folikül </strong&gt; </td><td> 20-140 </td><td> kromozomların Dekondenzasyon </td></tr><tr><td> II - Kortikal alveol </td><td> 140-340 </td><td> Kortikal alveoller üretim </td></tr><tr><td> III - vitellogenez </td><td> 340-690 </td><td> sarısı ön-madde proteini ve lipid birikimi ooplazma sergiler koyulaşması </td></tr><tr><td> Erken IV - Oosit olgunlaştırma </td><td> 690 730 (alt aralık) </td><td> torbacığı asimetrik yerleşimi </td></tr><tr><td> Erken IV - Oosit olgunlaştırma </td><td> 690 730 (üst aralık) </td><td> Germinal vezikül metafaz II, tutuklama kaybolur </td></tr><tr><td> V - olgun oosit </td><td> ~ 750 </td><td> Ooplazma sergiler / sarısı saydam hale </td></tr></tbody></table> Tablo 1: Zebra içinde Oosit Geliştirme Merkezibalık.

Watch this Scientific Journal Video about Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish at JoVE.com

Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish

Anne gen ürünlerinin işlenmesi için kullanılan zebra balığı oositlerin in vitro olgunlaşması için optimize edilmiş bir protokol burada sunulmuştur.

Kullanılması Anne Gen Ürünlerinin Fonksiyonel Manipülasyonu<em&gt; İn Vitro</emZebra balığı&gt; Oosit Olgunlaştırma

Cellular events that take place during the earliest stages of animal embryonic development are driven by maternally derived gene products deposited into ...

functional-manipulation-maternal-gene-products-using-vitro-oocyte

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish

11.3K Görüntüleme.  University of Wisconsin-Madison.  Anne gen ürünlerinin işlenmesi için kullanılan zebra balığı oositlerin in vitro olgunlaşması için optimize edilmiş bir protokol burada sunulmuştur. 

Video: Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish

Manipulation and In Vitro Maturation of Xenopus laevis Oocytes, Followed by Intracytoplasmic Sperm Injection, to Study Embryonic Development

Amphibian eggs have been widely used to study embryonic development. Early embryonic development is driven by maternally stored factors accumulated during oogenesis. In order to study roles of such maternal factors in early embryonic development, it is desirable to manipulate their functions from the very beginning of embryonic development. Conventional ways of gene interference are achieved by injection of antisense oligonucleotides (oligos) or mRNA into fertilized eggs, enabling under- or over-expression of specific proteins, respectively. However, these methods normally require more than several hours until protein expression is affected, and, hence, the interference of gene functions is not effective during early embryonic stages. Here, we introduce an experimental system in which expression levels of maternal proteins can be altered before fertilization. Xenopus laevis oocytes obtained from ovaries are defolliculated by incubating with enzymes. Antisense oligos or mRNAs are injected into defolliculated oocytes at the germinal vesicle (GV) stage. These oocytes are in vitro matured to eggs at the metaphase II (MII) stage, followed by intracytoplasmic sperm injection (ICSI). By this way, up to 10% of ICSI embryos can reach the swimming tadpole stage, thus allowing functional tests of specific gene knockdown or overexpression. This approach can be a useful way to study roles of maternally stored factors in early embryonic development.

Manipulation and In Vitro Maturation of Xenopus laevis Oocytes, Followed by Intracytoplasmic Sperm Injection, to Study Embryonic Development

We describe methods of manipulating Xenopus laevis immature oocytes, in vitro maturation of oocytes to eggs, and intracytoplasmic sperm injection. This protocol allows degradation of some maternal proteins and overexpression of genes of interest at fertilization, and hence is valuable to study roles of specific factors in early embryonic development.

Manipülasyon ve<em&gt; İn Vitro</emVe&gt; Olgunlaşma<em&gt; Xenopus laevis</emIntrasitoplazmik sperm enjeksiyonu izledi&gt; oositler, Embriyonik Geliştirme Çalışması

Amphibian eggs have been widely used to study embryonic development. Early embryonic development is driven by maternally stored factors accumulated during ...

Gelişim Biyolojisi

Microbead Implantation in the Zebrafish Embryo

The zebrafish has emerged as a valuable genetic model system for the study of developmental biology and disease. Zebrafish share a high degree of genomic conservation, as well as similarities in cellular, molecular, and physiological processes, with other vertebrates including humans. During early ontogeny, zebrafish embryos are optically transparent, allowing researchers to visualize the dynamics of organogenesis using a simple stereomicroscope. Microbead implantation is a method that enables tissue manipulation through the alteration of factors in local environments. This allows researchers to assay the effects of any number of signaling molecules of interest, such as secreted peptides, at specific spatial and temporal points within the developing embryo. Here, we detail a protocol for how to manipulate and implant beads during early zebrafish development.

The zebrafish is an excellent model system for genetic and developmental studies. Bead implantation is a valuable tissue manipulation technique that can be used to interrogate developmental mechanisms by introducing alterations in local cellular environments. This protocol describes how to perform microbead implantation in the zebrafish embryo.

Zebra balığı Embriyo microbead İmplantasyonu

The zebrafish has emerged as a valuable genetic model system for the study of developmental biology and disease. Zebrafish share a high degree of genomic ...

Ploidy Manipulation of Zebrafish Embryos with Heat Shock 2 Treatment

Manipulation of ploidy allows for useful transformations, such as diploids to tetraploids, or haploids to diploids. In the zebrafish Danio rerio, specifically the generation of homozygous gynogenetic diploids is useful in genetic analysis because it allows the direct production of homozygotes from a single heterozygous mother. This article describes a modified protocol for ploidy duplication based on a heat pulse during the first cell cycle, Heat Shock 2 (HS2). Through inhibition of centriole duplication, this method results in a precise cell division stall during the second cell cycle. The precise one-cycle division stall, coupled to unaffected DNA duplication, results in whole genome duplication. Protocols associated with this method include egg and sperm collection, UV treatment of sperm, in vitro fertilization and heat pulse to cause a one-cell cycle division delay and ploidy duplication. A modified version of this protocol could be applied to induce ploidy changes in other animal species.

A modified protocol for ploidy manipulation uses a heat shock to induce a one-cycle stall in cytokinesis in the early embryo. This protocol is demonstrated in the zebrafish but may be applicable to other species.

Isıl Şok 2 Tedavi ile Zebra balığı Embriyolar ploidisi Manipülasyon

Manipulation of ploidy allows for useful transformations, such as diploids to tetraploids, or haploids to diploids. In the zebrafish Danio rerio, ...

Microinjection of mRNA and Morpholino Antisense Oligonucleotides in Zebrafish Embryos.

An essential tool for investigating the role of a gene during development is the ability to perform gene knockdown, overexpression, and misexpression studies. In zebrafish (Danio rerio), microinjection of RNA, DNA, proteins, antisense oligonucleotides and other small molecules into the developing embryo provides researchers a quick and robust assay for exploring gene function in vivo. In this video-article, we will demonstrate how to prepare and microinject in vitro synthesized EGFP mRNA and a translational-blocking morpholino oligo against pkd2, a gene associated with autosomal dominant polycystic kidney disease (ADPKD), into 1-cell stage zebrafish embryos. We will then analyze the success of the mRNA and morpholino microinjections by verifying GFP expression and phenotype analysis. Broad applications of this technique include generating transgenic animals and germ-line chimeras, cell-fate mapping and gene screening. Herein we describe a protocol for overexpression of EGFP and knockdown of pkd2 by mRNA and morpholino oligonucleotide injection.

Microinjection is a well-established and effective method for introducing foreign substances into fertilized zebrafish embryos. Here, we demonstrate a robust microinjection technique for performing mRNA overexpression, and morpholino oligonucleotide gene knockdown studies in zebrafish.

Zebra balığı Embriyolar mRNA ve morfolino Antisens Oligonükleotidler Mikroenjeksiyon.

An essential tool for investigating the role of a gene during development is the ability to perform gene knockdown, overexpression, and misexpression ...

Biyoloji

Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function

One of the advantages of studying zebrafish is the ease and speed of manipulating protein levels in the embryo.  Morpholinos, which are synthetic oligonucleotides with antisense complementarity to target RNAs, can be added to the embryo to reduce the expression of a particular gene product.  Conversely, processed mRNA can be added to the embryo to increase levels of a gene product.  The vehicle for adding either mRNA or morpholino to an embryo is microinjection.  Microinjection is efficient and rapid, allowing for the injection of hundreds of embryos per hour.  This video shows all the steps involved in microinjection.  Briefly, eggs are collected immediately after being laid and lined up against a microscope slide in a Petri dish.  Next, a fine-tipped needle loaded with injection material is connected to a microinjector and an air source, and the microinjector controls are adjusted to produce a desirable injection volume.  Finally, the needle is plunged into the embryo's yolk and the morpholino or mRNA is expelled.

This video shows how morpholino or mRNA can be injected into zebrafish embryos at the one-cell stage to decrease or increase the level of specific gene products during subsequent development.

Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

One of the advantages of studying zebrafish is the ease and speed of manipulating protein levels in the embryo.  Morpholinos, which are synthetic ...

Determining the Role of Maternally-Expressed Genes in Early Development with Maternal Crispants

Early development depends on a pool of maternal factors incorporated into the mature oocyte during oogenesis that perform all cellular functions necessary for development until zygotic genome activation. Typically, genetic targeting of these maternal factors requires an additional generation to identify maternal-effect phenotypes, hindering the ability to determine the role of maternally-expressed genes during development. The discovery of the biallelic editing capabilities of CRISPR-Cas9 has allowed screening of embryonic phenotypes in somatic tissues of injected embryos or "crispants," augmenting the understanding of the role zygotically-expressed genes play in developmental programs. This article describes a protocol that is an extension of the crispant method. In this method, the biallelic editing of germ cells allows for the isolation of a maternal-effect phenotype in a single generation, or "maternal crispants." Multiplexing guide RNAs to a single target promotes the efficient production of maternal crispants, while sequence analysis of maternal crispant haploids provides a simple method to corroborate genetic lesions that produce a maternal-effect phenotype. The use of maternal crispants supports the rapid identification of essential maternally-expressed genes, thus facilitating the understanding of early development.

Early development is dependent on maternally-inherited products, and the role of many of these products is currently unknown. Herein, we described a protocol that uses CRISPR-Cas9 to identify maternal-effect phenotypes in a single generation.

Maternal Crispantlarla Erken Gelişimde Annelik İfade Edilen Genlerin Rolünün Belirlenmesi

Early development depends on a pool of maternal factors incorporated into the mature oocyte during oogenesis that perform all cellular functions necessary ...

Genetik

Micromanipulation of Gene Expression in the Adult Zebrafish Brain Using Cerebroventricular Microinjection of Morpholino Oligonucleotides

Manipulation of gene expression in tissues is required to perform functional studies. In this paper, we demonstrate the cerebroventricular microinjection (CVMI) technique as a means to modulate gene expression in the adult zebrafish brain. By using CVMI, substances can be administered into the cerebroventricular fluid and be thoroughly distributed along the rostrocaudal axis of the brain. We particularly focus on the use of antisense morpholino oligonucleotides, which are potent tools for knocking down gene expression in vivo. In our method, when applied, morpholino molecules are taken up by the cells lining the ventricular surface. These cells include the radial glial cells, which act as neurogenic progenitors. Therefore, knocking down gene expression in the radial glial cells is of utmost importance to analyze the widespread neurogenesis response in zebrafish, and also would provide insight into how vertebrates could sustain adult neurogenesis response. Such an understanding would also help the efforts for clinical applications in human neurodegenerative disorders and central nervous system regeneration. Thus, we present the cerebroventricular microinjection method as a quick and efficient way to alter gene expression and neurogenesis response in the adult zebrafish forebrain. We also provide troubleshooting tips and other useful information on how to carry out the CVMI procedure.

In this article, we demonstrate a method for manipulation of gene expression in the ventricular cells of the adult zebrafish telencephalon using antisense morpholino oligonucleotides. We present this method as an efficient and quick protocol that can be used for functional studies in the adult vertebrate brain.

Morfolino Oligonükleotidler bir Cerebroventricular Mikroenjeksiyon kullanarak Yetişkin Zebra balığı Beyin Gen İfade Mikromanipülasyon

Manipulation of gene expression in tissues is  required to perform functional studies. In this paper, we demonstrate the  cerebroventricular ...

Nörobilim

Separation of Follicular Cells and Oocytes in Ovarian Follicles of Zebrafish

Zebrafish has become an ideal model to study the ovarian development of vertebrates. The follicle is the basic unit of the ovary, which consists of oocytes and surrounding follicular cells. It is vital to separate both follicular cells and oocytes for various research purposes such as for primary culture of follicular cells, analysis of gene expression, oocyte maturation and in vitro fertilization, etc. The conventional method uses forceps to separate both compartments, which is laborious, time consuming and has high damage to the oocyte. Here, we have established a simple method to separate both compartments using a pulled glass capillary. Under a stereomicroscope, oocytes and follicular cells can be easily separated by pipetting in a pulled fine glass capillary (the diameter depends on the follicle diameter). Compared with the conventional method, this new method has high efficiency in separating both oocytes and follicular cells and has low damage to the oocytes. More importantly, this method can be applied to early-stage follicles including at the pre-vitellogenesis stage. Thus, this simple method can be used to separate follicular cells and oocytes of zebrafish.

Here, we present a simple method for separating follicular cells and oocytes in zebrafish ovarian follicles, which will facilitate investigations of ovarian development in zebrafish.

Zebra Balıklarının Yumurtalık Foliküllerinde Foliküler Hücrelerin ve Oositlerin Ayrılması

Zebrafish has become an ideal model to study the ovarian development of vertebrates. The follicle is the basic unit of the ovary, which consists of ...

Direct Delivery of MIF Morpholinos Into the Zebrafish Otocyst by Injection and Electroporation Affects Inner Ear Development

In recent years, electroporation has become a popular technique for in vivo transfection of DNA, RNA, and morpholinos into various tissues, including the eye, brain, and somites of zebrafish. The advantage of electroporation over other methods of genetic manipulation is that specific tissues can be targeted, both spatially and temporally, for the introduction of macromolecules by the application of electrical current. Here we describe the use of electroporation for transfecting mif and mif-like morpholinos into the tissues of the developing inner ear of the zebrafish. In past studies, mif morpholino injected into embryos at the 1- to 8-cell stage resulted in widespread morphological changes in the nervous system and eye, as well as the ear. By targeting the tissues of the inner ear at later stages in development, we can determine the primary effects of MIF in the developing inner ear, as opposed to secondary effects that may result from the influence of other tissues. By using phalloidin and acetylated tubulin staining to study the morphology of neurons, neuronal processes, and hair cells associated with the posterior macula, we were able to assess the efficacy of electroporation as a method for targeted transfection in the zebrafish inner ear. The otic vesicles of 24hpf embryos were injected with morpholinos and electroporated and were then compared to embryos that had received no treatment or had been only injected or electroporated. Embryos that were injected and electroporated showed a decrease in hair cell numbers, decreased innervation by the statoacoustic ganglion (SAG) and fewer SAG neurons compared with control groups. Our results showed that direct delivery of morpholinos into otocysts at later stages avoids the non-specific nervous system and neural crest effects of morpholinos delivered at the 1-8 cell stage. It also allows examination of effects that are directed to the inner ear and not secondary effects on the ear from primary effects on the brain, neural crest or periotic mesenchyme.

A method to deliver morpholinos directly into the zebrafish otocyst at 24hpf has been developed. Using microinjection of morpholinos into the lumen of otic vesicle and electroporation to effect penetration, we were able to bypass the effect of morpholinos on the brain and obtain effects specific to the inner ear.

Enjeksiyon ve Elektroporasyon Zebra balığı Otocyst içine MIF Morpholinos Stoktan teslim İç Kulak Geliştirme etkiler

In recent years, electroporation has become a popular technique for in vivo transfection of DNA, RNA, and morpholinos into various tissues, including the ...

<meta charset="utf8"></head><body>Granüloza hücresiz evre I zebra balığı oositleri elde etmek için geliştirilmiş prosedür

Rapid Isolation of Stage I Oocytes in Zebrafish Devoid of Granulosa Cells

The study of oocyte development holds significant implications in developmental biology. The zebrafish (Danio rerio) has been extensively used as a model organism to investigate early developmental processes from oocyte to embryo. In zebrafish, oocytes are surrounded by a single layer of somatic granulosa cells. However, separating granulosa cells from oocytes poses a challenge, as achieving pure oocytes is crucial for precise analysis. Although various methods have been proposed to isolate zebrafish oocytes at different developmental stages, current techniques fall short in removing granulosa cells completely, limiting the accuracy of genome analysis focused solely on oocytes. In this study, we successfully developed a rapid and efficient process for isolating pure stage I oocytes in zebrafish while eliminating granulosa cell contamination. This technique facilitates biochemical and molecular analysis, particularly in exploring epigenetic and genome structure aspects specific to oocytes. Notably, the method is user-friendly, minimizes oocyte damage, and provides a practical solution for subsequent research and analysis.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Saf Zebra Balığı Evre I Oositlerini İzole Etmek İçin Gelişmiş Yöntem

This protocol describes a modified procedure for rapidly isolating clean stage I oocytes in zebrafish devoid of granulosa cells, thereby providing a convenient method for oocyte-specific research.

Granüloza hücrelerinden yoksun zebra balıklarında evre I oositlerin hızlı izolasyonu

The study of oocyte development holds significant implications in developmental biology. The zebrafish (Danio rerio) has been extensively used as a model ...

Kullanılması Anne Gen Ürünlerinin Fonksiyonel Manipülasyonu

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Manipülasyon ve