German Research Foundation (FOR2240 "(Lymph) Angiogenesis and Cellular Immunity in Inflammatory Diseases of the Eye" to CC and LMH; HE 6743/2-1 and HE 7643/3-1 to LMH; CU47/6-1 to CC), German Cancer Aid (to LMH and CC), GEROK program University of Cologne (to SLS and LMH), and EU COST BM1302 "Joining Forces to Corneal Regeneration" (to CC).

insan dokularının kullanılması gözden geçirilmiş ve bir kurumsal inceleme kurulu veya eşdeğeri tarafından onaylanmalıdır. Burada anlatılan çalışma yerel etik komitesi tarafından onaylanmış ve bilimsel inceleme için onay aldı. Bu çalışma Helsinki Bildirgesi göre yapıldı. İnsan skleral örnekleri Göz Hastalıkları Anabilim Dalı Göz Bankası, Köln Üniversitesi, Almanya&#39;da (maksimum postmortem süresi 24 saat) küre vericilerden gözlerinden elde edilmiştir. 1. Deneysel hazırlanması <ol><li> % 96 etanol hazırlayın ve farklı tüplerde tamponlu tuz (PBS) fosfat. PBS,% 2 sığır serum albümini (BSA) ihtiva eden Tavsiye edilen seyreltme birincil antikorların hazırlanması ve buz üzerinde tüm çözümler tutun. örnek başına 100 ul hazırlayın. </li><li> bütün aletleri temizleyin ve keskin neşter kullanın. Aynı neşter ile kesim tekrarlanır sonra neşteri değiştirin. </li><li> 1-2 colibri forseps, düz mikro kesme makasları, bir 10. neşter eldeOftalmik neşter mikro tüy ve dört 26 G iğne veya. </li><li> Bir polistiren plaka etrafında alüminyum folyo sarın veya doku sabitlemek için bir mantar plaka kullanın. binoküler stereo mikroskop altında çalışın. Gerekirse bir laminer hava akımı altında steril çalışın. </li></ol> 2. sklera hazırlayın <ol><li> Yavaşça ampul tutun ve korneoskleral parçası üzerinde delme öldüğünü keşfetmek gerçekleştirmek, sonra Trepan döndürün. eşit yuvarlak kesim gerçekleştirmek için yüzeye dikkatlice ve eşit Trepan döndürün. 15,5 mm büyüklüğünde Trepan kullanın. kavisli makas ile kalan ekleri kesin. korneoskleral öldüğünü keşfetmek çıkarın. Bu öne açılan ampul neden olacaktır. <ol><li> yukarı açık bölümü ile bir bez üzerinde sklerasına koyun. sklera her iki katmanları (retina ve uvea) koparmak için colibri forseps kullanarak, retinaya ve uvea çıkarın. İç sklera pigmente uvea bırakmayın. papilladan retina ve uvea kaldırmak için kavisli makas kullanın. rem kaldırTahliye konjonktiva, göz dışı kaslar ve yüzeysel skleradan Tenon kapsülü. </li></ol></li><li> düz tip makas ve colibri forseps kullanarak gerekli boyutta skleral örnek çıkarın. Yaklaşık 2 cm farklı yerlerden 2 boyutlu skleral örnekler alabilir. Çünkü küçük boyutu, nazikçe sklera tutun ve düz tip makas kullanarak kareler olarak gerekli boyut kesip. korneoskleral trepanasyon skleral numune ön kenar tanımlar. <ol><li> tekrarlanan yakaladı doku konfokal mikroskopi analiz için uygun değildir alanı olarak forseps ile kapma kaçının. Ve kullanılan antikorların miktarı (Şekil 1 karşılaştırmak, örneğin anterior vs posterior) deney türüne bağlı olarak numunelerin gerekli sayıda hazırlayın. </li></ol></li><li> daha sonra kullanmak için 1.5 ml tüpler örnekleri koyun. 15 dakika boyunca 1.5 ml% 96 ​​etanol içerisinde örnekleri saptamak, ve daha sonra 5 dakika boyunca her üç kez yıkayınçalkalayıcı üzerinde 1.5 ml PBS içerisinde. Dondurulmuş doku ile çalışıyorsanız, ek donma önce bu adımı gerçekleştirin. </li><li> Taze doku kullanın. Bu mümkün değil ise, ancak, ek sıvı azot içinde sklera dondurmak ve daha sonra kullanılmak üzere -20 ° C&#39;de saklayın. dondurulmuş doku kullanımdan önce çözülme ile çalışma durumunda. Tekrarlanan çözülme ve donma döngüleri kaçının. </li><li> 2 saat boyunca oda sıcaklığında 1.5 ml 5% BSA ihtiva eden PBS içinde, her bir örnek tutun. Bu adım Lamine için yararlıdır örnek bir şişmesine neden ve aynı zamanda belirsiz bağlama engeller. </li><li> Numuneler kabarmış sonra, laminasyon skleral kareler hazırlamak. Örneğin bir binoküler stereo mikroskop mikroskop altında çalışın. alüminyum folyo veya 26 G iğneler kullanılarak mantar plaka sarılı polistiren zarı arka skleral örnekleri yapıştırın. </li><li> onlar mikroskop altında görme alanı karışmaz, böylece iğne kenarlarını bükün. </li><li> tam kalınlıkta skleral samp Laminatles. <ol><li> İlk olarak, colibri forseps kullanılarak ön skleral kenarına tutun. Sonra dikkatlice 10. neşteri, oftalmik neşter mikro tüy veya spatula bıçak kullanarak yüzeysel sklera ince bir tabaka kesti. yatay neşter tutun ve alttaki katmanla itibaren ince mümkün olduğunca yüzeysel katmanı kesti. </li><li> skleral meydanına ince bir skleral tabaka teşrih. Standart cerrahi teknikler trabekülektomiye sırasında kanat hazırlamak ve 30-80 um kalınlığında tabakalar (Şekil 2 ile karşılaştırınız) ile sonuçlanmalıdır Bu yöntem karşılaştırılabilir. </li></ol></li><li> Örneğin, 50 ul PBS bir pipet kullanılarak doku PBS küçük miktarlarda eklenmesi ile sklera kurumasını önler. </li><li> Su geçirmez renk örn ve katman (yüzeysel ve derin) (extern ve stajyer doğru) 96 plaka PBS 100 ul halinde kesilmiş katmanları koyun ve yönünü hem de etiket. </li><li> Doku tamamen lamine kadar tekrarlayın 2.7-2.9 adımları tekrarlayın. &lt;/ Li&gt; </ol> 3. İmünohistokimya gerçekleştirin <ol><li> Tavsiye edilen seyreltme halinde gerekli birincil antikor 100 ul ekle. Burada, örneğin kullanımı CD 31 (monoklonal, fare anti-insan) ve LYVE1 antikor (tavşan anti insan), 1 seyreltme hem de: (% 2 BSA içeren) PBS içinde 100 ve gece boyunca 4 ° C&#39;de inkübe edin. 96 oyuklu bir plaka içerisinde orta değiştirmek üzere, iyi duvarına pipet tutun ve sıvıyı. </li><li> Sonraki gün, bir karıştırıcı üzerinde 200-300 ul PBS ile 5 dakika için numuneler üç kez yıkayın. karşılık gelen sekonder antikor, 100 ul ilave et; Burada keçi anti fare floresein izotiosiyanat (FITC) ve keçi anti tavşan siyanin boyası 3 (Cy3) kullanın ve 1-2 saat için oda sıcaklığında örnekleri inkübe edin. İkincil antikorlar 1 seyreltilir: 300 PBS,% 2 keçi serumu ihtiva eden. </li><li> çalkalayıcıda 200-300 ul PBS içinde 5 dakika boyunca tekrar üç kere, her numune durulayın. </li><li> Çekirdek boyama gerçekleştirin, örneğin </&gt; Em. 4 &#39;, 6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) (seyreltme oranı: 1: 2.000, her biri 100 ul de ve oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edilir), daha sonra bir karıştırıcı üzerinde 200-300 ul PBS içinde tekrar 2 kez yıkayın. </li><li> , Mikroskop lamı üzerine örnekleri aktarın embed onları floresan montaj orta 1-2 damla, bir lamel eklemek, şeffaf vernik ile kenarları kaplayarak mühür ve mağaza 4 ° C&#39;de daha sonra kullanmak üzere veya doğrudan konfokal ile slaytlar incelemek mikroskop. </li><li> örnekleri analiz etmek için bir konfokal mikroskop (veya eşdeğeri) kullanın. İstenilen büyütme, örneğin 10-40X büyütme kullanın. </li><li> Örneklerin kalınlığı doğrulamak için, konfokal mikroskopi Z-Yığınlar kullanarak ölçün. kalınlık ekvatorial ve posterior (giriş karşılaştırın) farklıdır mümkün skleral bölümlerin miktarı, sklera konumuna bağlıdır. </li></ol>

<ol>
	<li>Schlereth, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enrichment+of+lymphatic+vessel+endothelial+hyaluronan+receptor+1+(LYVE1)-positive+macrophages+around+blood+vessels+in+the+normal+human+sclera.">Enrichment of lymphatic vessel endothelial hyaluronan receptor 1 (LYVE1)-positive macrophages around blood vessels in the normal human sclera.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (2), 865-872 (2014).</li><li>Schlereth, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Absence+of+lymphatic+vessels+in+the+developing+human+sclera.">Absence of lymphatic vessels in the developing human sclera.</a> Exp Eye Res. 125, 203-209 (2014).</li><li>Hos, D., Cursiefen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lymphatic+vessels+in+the+development+of+tissue+and+organ+rejection.">Lymphatic vessels in the development of tissue and organ rejection.</a> Adv Anat Embryol Cell Biol. 214, 119-141 (2014).</li><li>Hos, D., Schlereth, S. L., Bock, F., Heindl, L. M., Cursiefen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antilymphangiogenic+therapy+to+promote+transplant+survival+and+to+reduce+cancer+metastasis:+what+can+we+learn+from+the+eye.">Antilymphangiogenic therapy to promote transplant survival and to reduce cancer metastasis: what can we learn from the eye.</a> Semin Cell Dev Biol. , (2014).</li><li>Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immune+privilege+as+the+result+of+local+tissue+barriers+and+immunosuppressive+microenvironments.">Immune privilege as the result of local tissue barriers and immunosuppressive microenvironments.</a> Curr Opin Immunol. 5 (3), 428-432 (1993).</li><li>Streilein, J. W., Niederkorn, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+anterior+chamber-associated+immune+deviation+requires+an+intact,+functional+spleen.">Induction of anterior chamber-associated immune deviation requires an intact, functional spleen.</a> J Exp Med. 153 (5), 1058-1067 (1981).</li><li>Streilein, J. W., Yamada, J., Dana, M. R., Ksander, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anterior+chamber-associated+immune+deviation,+ocular+immune+privilege,+and+orthotopic+corneal+allografts.">Anterior chamber-associated immune deviation, ocular immune privilege, and orthotopic corneal allografts.</a> Transplant Proc. 31 (3), 1472-1475 (1999).</li><li>Keeley, F. W., Morin, J. D., Vesely, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+collagen+from+normal+human+sclera.">Characterization of collagen from normal human sclera.</a> Exp Eye Res. 39 (5), 533-542 (1984).</li><li>Lee, R. E., Davison, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collagen+composition+and+turnover+in+ocular+tissues+of+the+rabbit.">Collagen composition and turnover in ocular tissues of the rabbit.</a> Exp Eye Res. 32 (6), 737-745 (1981).</li><li>Moses, R. A., Grodzki, W. J., Starcher, B. C., Galione, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elastin+content+of+the+scleral+spur,+trabecular+mesh,+and+sclera.">Elastin content of the scleral spur, trabecular mesh, and sclera.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 17 (8), 817-818 (1978).</li><li>Foster, C. S., Sainz de la Maza, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The sclera. , (2012).</li><li>Kiss, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Der+Blutkreislauf+des+Auges.">Der Blutkreislauf des Auges.</a> Ophthalmologica. 106, 225 (1943).</li><li>Ashton, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+study+of+Schlemm's+canal+and+aqueous+veins+by+means+of+neoprene+casts.+Part+I.+Aqueous+veins.">Anatomical study of Schlemm's canal and aqueous veins by means of neoprene casts. Part I. Aqueous veins.</a> Br J Ophthalmol. 35 (5), 291-303 (1951).</li><li>Ashton, N., Smith, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+study+of+Schlemm's+canal+and+aqueous+veins+by+means+of+neoprene+casts.+III.+Arterial+relations+of+Schlemm's+canal.">Anatomical study of Schlemm's canal and aqueous veins by means of neoprene casts. III. Arterial relations of Schlemm's canal.</a> Br J Ophthalmol. 37 (10), 577-586 (1953).</li><li>Ashton, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+study+of+Schlemm's+canal+and+aqueous+veins+by+means+of+neoprene+casts+II.+Aqueous+veins.">Anatomical study of Schlemm's canal and aqueous veins by means of neoprene casts II. Aqueous veins.</a> Br J Ophthalmol. 36 (5), 265-267 (1952).</li><li>Hayreh, S. S., Scott, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescein+iris+angiography.+II.+Disturbances+in+iris+circulation+following+strabismus+operation+on+the+various+recti.">Fluorescein iris angiography. II. Disturbances in iris circulation following strabismus operation on the various recti.</a> Arch Ophthalmol. 96 (8), 1390-1400 (1978).</li><li>Virdi, P. S., Hayreh, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anterior+segment+ischemia+after+recession+of+various+recti.+An+experimental+study.">Anterior segment ischemia after recession of various recti. An experimental study.</a> Ophthalmology. 94 (10), 1258-1271 (1987).</li><li>Bron, A. J., Easty, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescein+angiography+of+the+globe+and+anterior+segment.">Fluorescein angiography of the globe and anterior segment.</a> Trans Ophthalmol Soc U K. 90, 339-367 (1970).</li><li>Ikegami, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescein+angiography+of+the+anterior+ocular+segment.+Part+1.+Hemodynamics+in+the+anterior+ciliary+vessels+(author's+transl).">Fluorescein angiography of the anterior ocular segment. Part 1. Hemodynamics in the anterior ciliary vessels (author's transl).</a> Nihon Ganka Gakkai Zasshi. 78 (7), 371-385 (1974).</li><li>Banerji, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=LYVE-1,+a+new+homologue+of+the+CD44+glycoprotein,+is+a+lymph-specific+receptor+for+hyaluronan.">LYVE-1, a new homologue of the CD44 glycoprotein, is a lymph-specific receptor for hyaluronan.</a> J Cell Biol. 144 (4), 789-801 (1999).</li><li>Breiteneder-Geleff, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Angiosarcomas+express+mixed+endothelial+phenotypes+of+blood+and+lymphatic+capillaries:+podoplanin+as+a+specific+marker+for+lymphatic+endothelium.">Angiosarcomas express mixed endothelial phenotypes of blood and lymphatic capillaries: podoplanin as a specific marker for lymphatic endothelium.</a> Am J Pathol. 154 (2), 385-394 (1999).</li></ol>

The authors declare no financial disclosures. The contents of this article are solely the responsibility of the authors.

İnsan sklera Laminasyon Bu doku üzerinde eş odaklı mikroskopi gerçekleştirmek için kullanılan bir yöntemdir. Bu süreçte kritik bir adım doku yapıştırılması için etanol kullanımı yerine formalin olduğunu. sabitleme için etanol yerine formalin kullanırken bizim deneyim, daha iyi sonuçlar elde edilmektedir. Blunt neşter prosedürü ağırlaştırmak ve kaçınılmalıdır. Benzer şekilde, sklera kuruması o prosedürü komplike ve görüntülerin kalitesini azaltır, kaçınılmalıdır. İmmünohistokimyasal boyama ile ilgili olarak, burada uygulanan dışındaki antikorları kullanılabilir. Genel olarak, kollajen daha otomatik floresan ve yeşil kanalda arka plan, mavi, bu nedenle kırmızı ve uzak-kırmızı kanalları daha az arka plan ile daha iyi sonuçlar göstermektedir göstermektedir. Ancak, tekniğin çeşitli sınırlamalar vardır. Bir Microsc altında gerçekleştirilen bir mikrocerrahi bir işlemdir olarak sklera lamine, pratik bir sürü gerektirirope. Bu teknik, elle gerçekleştirilir, çünkü tek tabakalı dilim tam olarak aynı boyutta değildir ve doku tek parça kalınlıkları farklıdır. tabakaların kalınlığı yine değişecektir, ancak tam olarak aynı boyutta dokuları sahip olmak için, trepanasyon, alternatif olabilir. skleral bölümler için tam olarak tanımlanmış kalınlığı elde etmek için, bir otomatik mikrokeratomdur gelecek deneyler için bir alternatif olabilir. laminasyon çok kalın tabakalar gerçekleştirilirse, kapak slayt yerinden edebilir, ve doku potansiyel kuruyabilir. episkleraya ve stromada arasında kesin sınırlar laminasyonlar yapılmaktadır kez ayırt etmek zor olabilir. Buna rağmen, sklera lamine mevcut klinik durumda standart bir yöntemdir formalin ile fikse parafine gömülü immünhistokimya ile karşılaştırıldığında, özellikle immunohistokimyasal kullanımında birçok avantajı vardır. sklera lamine konfokal Microsc veriyoropyala, sklera büyük boyutlu alanlarda analiz edilmesi, yapılacak sklera farklı katmanlar olarak, tarama ve doku tarama incelenecek. formalinle sabitlenmiş parafine gömülü örnekleri çalışırken aksine, sklera antijen alımı için ön ısıtma sırasında yardımcı bir şekilde Yoğunluğu değiştirir. Isıtma süreci boyunca, kollajen lifleri shrivel ve doku slayt ile temas kaybeder. Daha önce, episkleraya damar pleksus, sadece değil ama çapraz kesitlerde, anjiyografik teknikleri veya bütün montaj görünümde olmuştur. teknik zorluklar ek olarak, sklera nispeten avasküler ve retina gibi göz diğer dokularda karşılaştırıldığında bağışıklık hücrelerinde nispeten zayıftır. Genellikle 4 mikron kalınlığında, birden slaytlar formalin ile fikse parafine gömülü slaytlar, kullanırken nedenle, sklera olumlu hücreleri algılamak için gereklidir. Son zamanlarda, bu Laminat ile gösterilenİnsan sklera hücresel olmayan değil, kan damarları yaklaşık 1 birikmesine LYVE1 + makrofajlar bol bulunduğu tekniğiyle. lamine skleral bölümlerde konfokal mikroskopi performans Özetlemek gerekirse, bu tür sklerit, üveit, ya da travma gibi gelecekte de patolojik bozukluklar, araştırmak için gelecek vaat eden bir araçtır.

sklera yoğun bağ dokusu yapılmış göz kapakları, sert dış tabakasıdır. Göz içi yapıları korumak için ve göz içi basıncı korumaya yardımcı olur. Böylece, sklera net görüş için gereklidir. Bu lenf damarlarının 1,2 yoksun ve böylece o ve lenfatik serbest gözün iç 3-7 arasında bir dış lenfatik serbest sınırını oluşturur. Aynı zamanda bu sayede tendonların anatomik benzerlik paylaşarak, göz dışı kaslarının için bağlanma siteleri sağlar. Sklera esas tip I kollajenin yoğun demetleri oluşur ve kolajen tip III, IV, V, VI, VIII, 8,9 ve elastin 10,11 daha az sayıda sahip olduğu için, bu doku immünohistokimya için kullanımı kolay değildir. (1) yüzeysel vaskülarize episkleraya, konjonktiva ve tenon kapsülünün altında bulundu ve iki tarafın ve inci doğru: Anatomik olarak, sklera üç ana katmandan ayrılabiliryörüngeye bakan gözün e geri; (2) sklera stroma, sklera ana parçası; ve (3) ile doğrudan uvea üzerinde bulunan ince, pigmentli tabaka, tabakanın fusca. Sklera ile ilgili bizim anatomik bilgi 20. yüzyılın ilk yarısında kaynaklanmaktadır. O zaman, araştırmacılar başta Hindistan mürekkep enjeksiyonları 12 kullanılarak ve damar 13-15 döküm damarsal anatomisi okudu. Daha sonra, bu anjiografik çalışmalar 16-19 yılında araştırılmıştır. O zamandan bu yana, eski teknikler geliştirildi ve yenileri bize önceki anatomik bilgiyi tamamlamak için izin olduğunu geliştirilmiştir. Bu lenfatik damar endotel spesifik hiyalüronan alıcısı-1 (LYVE1) 20 veya podoplanin 21 gibi, güvenilir lenf belirteçleri beri Örneğin, sadece on yıl olmuştur. Mikroskopisi farklı ti anatomik özelliklerini incelemek için yeni imkanlar sunuyorgöz ssues. Birden lekeler hücrelerin işaretleri ayırt etmek için ya da kan damarları ve diğer anatomik yapılara göre hücre lokalizasyonu için kullanılmak üzere bu sağlar. Numune daha büyük bir boyutta olduğunu ve ne zaman belirli bir hücre tipi arama bize örnek üzerinden tarama sağlar zaman bir bakış sağlar. Z yığın tekniği ile, konfokal mikroskopi 100-200 um kadar örnekler için kullanılabilir. Sklera kas eklemeleri arkasında 0.3 mm ve arka kutupta 11 1 mm arasındaki kalınlıklarda farklıdır. kalınlığı ve opaklık hem nedeniyle, sklera geleneksel yöntemlerle konfokal mikroskopi için uygun değildir. Bu durumu düzeltmek için, skleral dokular konfokal mikroskobu ile analiz için izin lamine edilmiştir. Bu teknoloji, insan sklera hem de fizyolojik ve patolojik durumların daha iyi anlamaya için yararlıdır.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>96% ethanol</td>
			<td>Merck Chemicals, Darmstadt, Germany</td>
			<td>P075.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>binocular stereo microscope&#160;</td>
			<td>Motic, Hongkong, China</td>
			<td>n.a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26G needles&#160;</td>
			<td>Terumo, Leuven, Belgium</td>
			<td>303800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15.5mm trepan</td>
			<td>Geuder, Heidelberg, Germany</td>
			<td>n.a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>no.10 scalpel&#160;</td>
			<td>Feather, pfm medical, Osaka, Japan</td>
			<td>2E+08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ophthalmic scalpel micro feather&#160;</td>
			<td>Feather, pfm medical, Osaka, Japan</td>
			<td colspan="2">no. 7657BR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD 31 antibody (monoclonal mouse anti human)</td>
			<td>Dako, USA</td>
			<td>IR610</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LYVE1 antibody&#160; (polyclonal rabbit anti human)</td>
			<td>Zytomed, Germany</td>
			<td colspan="2">RBK014-05</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti mouse FITC antibody</td>
			<td>Sigma Aldrich, Steinheim, Germany</td>
			<td>F0257</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti rabbit Cy3 antibody</td>
			<td>Dianova, Germany</td>
			<td colspan="2">111-165-003</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat Serum normal</td>
			<td>Dako, Glostrup, Denmark</td>
			<td colspan="2">X090710-8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany</td>
			<td>6335.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microscope slides&#160;</td>
			<td>Engelbrecht, Ederm&#252;nde, Germany</td>
			<td colspan="2">WC7695002</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips 24x24mm</td>
			<td>Th. Gayer, Lohmar, Germany</td>
			<td>7695026</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAKO fluorescent mounting medium&#160;</td>
			<td>DAKO, USA</td>
			<td>S3023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LSM Meta 510 confocal microscopy&#160;</td>
			<td>Carl Zeiss AG, Jena, Germany</td>
			<td>n.a</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

using a laminating technique to perform confocal microscopy of the human sclera

sklera kapakları ve göz koruyan yoğun bağ dokusu olduğunu. Özellikle yoğun kolajen demetleri (tip I, III, IV, V, VI ve VII) oluşur. Nedeniyle otofloresansı, opaklık, ve kalınlık için, konfokal mikroskopi için uygun bulunmamıştır. Antijen alımı için doku ön ısıtma, özellikle, immünhistokimya için parafine gömüldü formalin ile fikse sklerasına kullanan teknik zorlukları vardır Burada sunulan birine alternatif bir yaklaşım. sklera hücreleri ve damarlar hem de göreceli olarak zayıf olduğu için, daha büyük doku örneklerinin kullanılması bakan hücreleri önlemek ve gemi ve diğer anatomik sitelere ilişkin kendi yerleşimini anlamada yardımcı olmak için araştırılmıştır. konfokal mikroskop altında daha büyük bir doku örneklerinin analizi için izin vermek için, bir laminasyon tekniği sklera ince tabakaları oluşturmak için gerçekleştirilmiştir. CD31 kan damarları ve lenfatik damar endotel hyalu sonuçlarının analizini takibenronan reseptör 1 (LYVE1) Bilimsel inceleme için onay elde edildiği için pozitif hücrelerin, bu yöntemin avantajları ve sınırlılıkları tartışılmıştır.

Burada gerçekleştirilen temsili denemelerde, bu özel laminasyon tekniği kullanılarak elde edilen gösterilebilir faydaları vardır. İlk deneme üç temsilci resim (Şekil 3) episkleral damar pleksusun farklı ağını göstermektedir. gemiler CD31 pozitiftir. İkinci deneme episkleraya ve CD31 pozitif kan damarları olan ilişkilerine özellikle LYVE1 + hücrelerde, bağışıklık hücrelerini gösterir. Burada Z-Yığın teknoloji dokusu ile tarama ve kan damarları ve bağışıklık hücreleri (Şekil 4) üç boyutlu ilişkileri anlamak için 10X büyütmede kullanıldı. Sklera, hem de kapalı bir göz dışı kaslar, kan damarları ya da bağışıklık hücrelerinin varlığı açısından analiz edilebilir. Şekil 5 ŞekilLYVE1 pozitif hücreler ve CD31 pozitif kan damarları. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/53920/53920fig1.jpg" /> Şekil 1:.. İnsan Eye şematik resmi İşte insan gözünün kesitinin şematik olan <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53920/53920fig1large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/53920/53920fig2.jpg" /> Şekil 2:. Laminasyon Tekniği şematik resim sklera dikkatle colibri forseps ile düzenlenen ve bir neşter kullanılarak ince tabakalar halinde lamine edilir. Bu adımı tekrarlayarak konfokal mikroskopi için kullanılabilir ince doku slaytlar yol açar. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53920/53920fig2large.jpg" target="_blank">Bu fi büyük halini görmek için tıklayınız</a>şekil. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/53920/53920fig3.jpg" /> Şekil 3:. C arka yerden ise episkleral Kan Gemi Pleksus, CD31 A ve B için immünopozitif, ön episkleraya türetilmiştir. Ölçek çubuğu 100 mikron belirtir. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53920/53920fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/53920/53920fig4.jpg" /> Şekil 4:. Aralarındaki Anatomik İlişkileri gösteriliyor z-yığın CD31 + Kan damarları ve LYVE1 + Hücreler, Küçük gemiler ve daha büyük olanlar çakışabilir. Ölçek çubuğu 100 mikron belirtir. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53920/53920fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Şekil 5: scleraya Kapalı Ekstraoküler Kaslar vardır Onlar benzer ince kan damarı ağı ve bazı LYVE1 + hücreler içerir.. Ölçek çubuğu 200 mikron belirtir. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53920/53920fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Using a Laminating Technique to Perform Confocal Microscopy of the Human Sclera at JoVE.com

Using a Laminating Technique to Perform Confocal Microscopy of the Human Sclera

Human sclera tissue is mainly collagen; therefore, it is not easily usable for immunohistochemistry. To achieve the goal of performing immunohistochemistry for confocal microscopy of scleral tissue, a laminating technique was used.

İnsan sklera Konfokal Mikroskobu gerçekleştirmek için bir Laminasyon Tekniği


The sclera is a dense connective tissue that covers and protects the eye. It mainly consists of dense collagen bundles (types I, III, IV, V, VI, and ...

using-laminating-technique-to-perform-confocal-microscopy-human

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

7.5K Görüntüleme.  University of Cologne. Human sclera tissue is mainly collagen; therefore, it is not easily usable for immunohistochemistry. To achieve the goal of performing immunohistochemistry for confocal microscopy of scleral tissue, a laminating technique was used. 

Video: Using a Laminating Technique to Perform Confocal Microscopy of the Human Sclera

Corneal Confocal Microscopy: A Novel Non-invasive Technique to Quantify Small Fibre Pathology in Peripheral Neuropathies

The accurate quantification of peripheral neuropathy is important to define at risk patients, anticipate deterioration, and assess new therapies. Conventional methods assess neurological deficits and electrophysiology and quantitative sensory testing quantifies functional alterations to detect neuropathy. However, the earliest damage appears to be to the small fibres and yet these tests primarily assess large fibre dysfunction and have a limited ability to demonstrate regeneration and repair. The only techniques which allow a direct examination of unmyelinated nerve fibre damage and repair are sural nerve biopsy with electron microscopy and skin-punch biopsy. However, both are invasive procedures and require lengthy laboratory procedures and considerable expertise. Corneal Confocal microscopy is a non-invasive clinical technique which provides in-vivo imaging of corneal nerve fibres. We have demonstrated early nerve damage, which precedes loss of intraepidermal nerve fibres in skin biopsies together with stratification of neuropathic severity and repair following pancreas transplantation in diabetic patients. We have also demonstrated nerve damage in idiopathic small fibre neuropathy and Fabry's disease.

Corneal Confocal microscopy is a non-invasive clinical technique which may be used to quantify C fibre damage to diagnose and stratify patients with increasing neuropathic severity.

Kornea Konfokal Mikroskop: Periferik Nöropatiler Küçük Fiber Patoloji belirlememize • Bir Roman Non-invaziv Tekniği

The accurate quantification of peripheral neuropathy is important to define at risk patients, anticipate deterioration, and assess new therapies. ...

Tıp

Utilizing Transcranial Magnetic Stimulation to Study the Human Neuromuscular System

Transcranial magnetic stimulation (TMS) has been in use for more than 20 years 1, and has grown exponentially in popularity over the past decade. While the use of TMS has expanded to the study of many systems and processes during this time, the original application and perhaps one of the most common uses of TMS involves studying the physiology, plasticity and function of the human neuromuscular system. Single pulse TMS applied to the motor cortex excites pyramidal neurons transsynaptically 2 (Figure 1) and results in a measurable electromyographic response that can be used to study and evaluate the integrity and excitability of the corticospinal tract in humans 3. Additionally, recent advances in magnetic stimulation now allows for partitioning of cortical versus spinal excitability 4,5. For example, paired-pulse TMS can be used to assess intracortical facilitatory and inhibitory properties by combining a conditioning stimulus and a test stimulus at different interstimulus intervals 3,4,6-8. In this video article we will demonstrate the methodological and technical aspects of these techniques. Specifically, we will demonstrate single-pulse and paired-pulse TMS techniques as applied to the flexor carpi radialis (FCR) muscle as well as the erector spinae (ES) musculature. Our laboratory studies the FCR muscle as it is of interest to our research on the effects of wrist-hand cast immobilization on reduced muscle performance6,9, and we study the ES muscles due to these muscles clinical relevance as it relates to low back pain8. With this stated, we should note that TMS has been used to study many muscles of the hand, arm and legs, and should iterate that our demonstrations in the FCR and ES muscle groups are only selected examples of TMS being used to study the human neuromuscular system.

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive tool to gain insight on the physiology and function of the human nervous system. Here, we present our TMS techniques to study cortical excitability of the upper limb and lumbar musculature.

İnsan Nöromusküler Sistem Eğitim Transkraniyal Manyetik Uyarım kullanımı

Transcranial magnetic stimulation (TMS) has been in use for more than 20 years 1, and has grown exponentially in popularity over the past decade.  While ...

Probe-based Confocal Laser Endomicroscopy of the Urinary Tract: The Technique

Probe-based confocal laser endomicroscopy (CLE) is an emerging optical imaging technology that enables real-time in vivo microscopy of mucosal surfaces during standard endoscopy. With applications currently in the respiratory1 and gastrointestinal tracts,2-6 CLE has also been explored in the urinary tract for bladder cancer diagnosis.7-10 Cellular morphology and tissue microarchitecture can be resolved with micron scale resolution in real time, in addition to dynamic imaging of the normal and pathological vasculature.7
The probe-based CLE system (Cellvizio, Mauna Kea Technologies, France) consists of a reusable fiberoptic imaging probe coupled to a 488 nm laser scanning unit. The imaging probe is inserted in the working channels of standard flexible and rigid endoscopes. An endoscope-based CLE system (Optiscan, Australia), in which the confocal endomicroscopy functionality is integrated onto the endoscope, is also used in the gastrointestinal tract. Given the larger scope diameter, however, application in the urinary tract is currently limited to ex vivo use.11 Confocal image acquisition is done through direct contact of the imaging probe with the target tissue and recorded as video sequences. As in the gastrointestinal tract, endomicroscopy of the urinary tract requires an exogenenous contrast agent&mdash;most commonly fluorescein, which can be administered intravenously or intravesically. Intravesical administration is a well-established method to introduce pharmacological agents locally with minimal systemic toxicity that is unique to the urinary tract. Fluorescein rapidly stains the extracellular matrix and has an established safety profile.12 Imaging probes of various diameters enable compatibility with different caliber endoscopes. To date, 1.4 and 2.6 mm probes have been evaluated with flexible and rigid cystoscopy.10 Recent availability of a &lt; 1 mm imaging probe13 opens up the possibility of CLE in the upper urinary tract during ureteroscopy. Fluorescence cystoscopy (i.e. photodynamic diagnosis) and narrow band imaging are additional endoscope-based optical imaging modalities14 that can be combined with CLE to achieve multimodal imaging of the urinary tract. In the future, CLE may be coupled with molecular contrast agents such as fluorescently labeled peptides15 and antibodies for endoscopic imaging of disease processes with molecular specificity.

Probe-based confocal laser endomicroscopy enables real-time microscopy of the human urinary tract during cystoscopy, providing dynamic, intravital imaging of pathological states such as bladder cancer with cellular resolution. Endomicroscopy may augment the diagnostic accuracy of standard white light endoscopy and provide intraoperative image guidance to improve surgical resection.

İdrar Yolu ve Probe tabanlı Konfokal Lazer Endomikroskopi: Tekniği

Probe-based  confocal laser endomicroscopy (CLE) is an emerging optical imaging technology  that enables real-time in vivo microscopy of mucosal surfaces ...

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As such, primary or &#39;neuronal-like&#39; cell culture systems are commonly utilized. While&#160;these systems are relatively easy to work with, and are useful model systems in which various functional outcomes (such as cell death) can be readily quantified, the examined outcomes and pathways in cultured immature neurons (such as excitotoxicity-mediated cell death pathways) are not necessarily the same as those observed in mature brain, or in intact tissue. Therefore, there is the need to develop models in which cellular mechanisms in mature neural tissue can be examined. We have developed an in vitro technique that can be used to investigate a variety of molecular pathways in intact nervous tissue. The technique described herein utilizes rat cortical tissue, but this technique can be adapted to use tissue from a variety of species (such as mouse, rabbit, guinea pig, and chicken) or brain regions (for example, hippocampus, striatum, etc.). Additionally, a variety of stimulations/treatments can be used (for example, excitotoxic, administration of inhibitors, etc.). In conclusion, the brain slice model described herein can be used to examine a variety of molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

We have developed a brain slice model which can be used to examine molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.&#160;This technique generates viable mature brain tissue and reduces animal numbers required for experimentation, whilst keeping the neuronal circuitry, cellular interactions, and postsynaptic compartments partly intact.

Bir olarak Beyin Microslices arasında excitotoxic uyarılması<em&gt; In vitro</em&gt; İnme Model

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly effective. This video describes the percutaneous biopsy technique using a modified Bergstr&#246;m needle to obtain skeletal muscle tissue samples from the vastus lateralis of human subjects. The Bergstr&#246;m needle consists of an outer cannula with a small opening (&#8216;window&#8217;) at the side of the tip and an inner trocar with a cutting blade at the distal end. Under local anesthesia and aseptic conditions, the needle is advanced into the skeletal muscle through an incision in the skin, subcutaneous tissue, and fascia. Next, suction is applied to the inner trocar, the outer trocar is pulled back, skeletal muscle tissue is drawn into the window of the outer cannula by the suction, and the inner trocar is rapidly closed, thus cutting or clipping the skeletal muscle tissue sample. The needle is rotated 90&#176;&#160;and another cut is made. This process may be repeated three more times. This multiple cutting technique typically produces a sample of 100-200 mg or more in healthy subjects and can be done immediately before, during, and after a bout of exercise or other intervention. Following post-biopsy dressing of the incision site, subjects typically resume their activities of daily living right away and can fully participate in vigorous physical activity within 48-72 hr. Subjects should avoid heavy resistance exercise for 48 hr to reduce the risk of herniation of the muscle through the incision in the fascia.

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Modifiye Bergström Tekniği İnsan İskelet Kası Biyopsi Prosedürleri

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

Construction of Vapor Chambers Used to Expose Mice to Alcohol During the Equivalent of all Three Trimesters of Human Development

Exposure to alcohol during development can result in a constellation of morphological and behavioral abnormalities that are collectively known as Fetal Alcohol Spectrum Disorders (FASDs). At the most severe end of the spectrum is Fetal Alcohol Syndrome (FAS), characterized by growth retardation, craniofacial dysmorphology, and neurobehavioral deficits. Studies with animal models, including rodents, have elucidated many molecular and cellular mechanisms involved in the pathophysiology of FASDs. Ethanol administration to pregnant rodents has been used to model human exposure during the first and second trimesters of pregnancy. Third trimester ethanol consumption in humans has been modeled using neonatal rodents. However, few rodent studies have characterized the effect of ethanol exposure during the equivalent to all three trimesters of human pregnancy, a pattern of exposure that is common in pregnant women. Here, we show how to build vapor chambers from readily obtainable materials that can each accommodate up to six standard mouse cages. We describe a vapor chamber paradigm that can be used to model exposure to ethanol, with minimal handling, during all three trimesters. Our studies demonstrate that pregnant dams developed significant metabolic tolerance to ethanol. However, neonatal mice did not develop metabolic tolerance and the number of fetuses, fetus weight, placenta weight, number of pups/litter, number of dead pups/litter, and pup weight were not significantly affected by ethanol exposure. An important advantage of this paradigm is its applicability to studies with genetically-modified mice. Additionally, this paradigm minimizes handling of animals, a major confound in fetal alcohol research.

We demonstrate the construction of alcohol vapor chambers using readily available materials that simultaneously house 6 mouse cages. We further describe their use in a mouse model of fetal alcohol exposure equivalent to all 3&#160;trimesters of human pregnancy. This paradigm exposes animals during gestation and postnatal days 1-12.

İnsani Gelişim her üç trimesterde Eşdeğeri sırasında Alkol Fare Expose Kullanılan Buhar Odaları İnşaatı

Exposure to alcohol during development can result in a constellation of morphological and behavioral abnormalities that are collectively known as Fetal ...

Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo: A Model of Single Vessel Stroke

In vivo imaging techniques have increased in utilization due to recent advances in imaging dyes and optical technologies, allowing for the ability to image cellular events in an intact animal. Additionally, the ability to induce physiological disease states such as stroke in vivo increases its utility. The technique described herein allows for physiological assessment of cellular responses within the CNS following a stroke and can be adapted for other pathological conditions being studied. The technique presented uses laser excitation of the photosensitive dye Rose Bengal in vivo to induce a focal ischemic event in a single blood vessel. 
The video protocol demonstrates the preparation of a thin-skulled cranial window over the somatosensory cortex in a mouse for the induction of a Rose Bengal photothrombotic event keeping injury to the underlying dura matter and brain at a minimum. Surgical preparation is initially performed under a dissecting microscope with a custom-made surgical/imaging platform, which is then transferred to a confocal microscope equipped with an inverted objective adaptor. Representative images acquired utilizing this protocol are presented as well as time-lapse sequences of stroke induction. This technique is powerful in that the same area can be imaged repeatedly on subsequent days facilitating longitudinal in vivo studies of pathological processes following stroke.

Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo:  A Model of Single Vessel Stroke

Here, we describe a semi-invasive optical microscopy approach for the induction of a Rose Bengal photothrombotic clot in the somatosensory cortex of a mouse in vivo. The technical aspects of the imaging procedure are described from induction of a photothrombotic event to application and data collection.

Konfokal Optik Görüntüleme ile Rose Bengal Fototromboz<em&gt; In Vivo</em&gt;: Tek Gemi İnme Bir Model

In vivo imaging techniques have increased in utilization due to recent advances in imaging dyes and optical technologies, allowing for the ability to ...

Development of an Algorithm to Perform a Comprehensive Study of Autonomic Dysreflexia in Animals with High Spinal Cord Injury Using a Telemetry Device

Spinal cord injury (SCI) is a debilitating neurological condition characterized by somatic and autonomic dysfunctions. In particular, SCI above the mid-thoracic level can lead to a potentially life-threatening hypertensive condition called autonomic dysreflexia (AD) that is often triggered by noxious or non-noxious somatic or visceral stimuli below the level of injury. One of the most common triggers of AD is the distension of pelvic viscera, such as during bladder and bowel distension or evacuation. This protocol presents a novel pattern recognition algorithm developed for a JAVA platform software to study the fluctuations of cardiovascular parameters as well as the number, severity and duration of spontaneously occurring AD events. The software is able to apply a pattern recognition algorithm on hemodynamic data such as systolic blood pressure (SBP) and heart rate (HR) extracted from telemetry recordings of conscious and unrestrained animals before and after thoracic (T3) complete transection. With this software, hemodynamic parameters and episodes of AD are able to be detected and analyzed with minimal experimenter bias.

The catheter of a telemetry device is implanted into the abdominal aorta in order to continuously collect beat-by-beat hemodynamic data from animals pre and post-high thoracic spinal cord transection. A novel JAVA software was employed to analyze hemodynamic parameters as well as frequency and intensity of spontaneous episodes of autonomic dysreflexia.

Bir Algoritma Geliştirme Telemetri Cihazı Kullanımı Yüksek Omurilik Yaralanmalı Hayvanlarda otonomik disrefleksi kapsamlı bir çalışma gerçekleştirmek için

Spinal cord injury (SCI) is a debilitating neurological condition characterized by somatic and autonomic dysfunctions. In particular, SCI above the ...

Topical Airway Anesthesia for Awake-endoscopic Intubation Using the Spray-as-you-go Technique with High Oxygen Flow

A patient&#39;s willingness to cooperate is an absolute precondition for successful awake intubation of the trachea. Whilst drug-sedation of patients can jeopardize their spontaneous breathing, topical anesthesia of the airway is a popular technique. The spray-as-you-go technique represents one of the simplest opportunities to anesthetize the airway mucosa. The application of local anesthetic through the working channel of the flexible endoscope is a widespread practice for anesthetists as well as pulmonologists. There is neither need for additional devices nor special training as a pre-requisite to perform this technique. However, a known clinical problem is the coughing and gagging reflex that may occur when the liquid anesthetic strikes the airway mucosa and other sensitive structures like the vocal cords. This can be avoided by the use of oxygen applied through the working channel with the aim of fogging the local anesthetic into finer particles. Furthermore, the oxygen flow provides a higher oxygen supply and contributes to a better view, dispersing mucus secretions and blood away from the lens. Using an atomizer with a high oxygen flow of 10 L/min we maximized these benefits, caused less coughing and had more satisfied and therefore cooperative patients. Possible, but very rare complications of using oxygen flow including gastric insufflation, organ rupture or barotrauma did not arise. We attribute the complication-free use of high oxygen flow to the design of the set, which permits flow and pressure release.

The topical anesthetic lidocaine was atomized using a high oxygen flow through the working channel of a flexible intubating endoscope to achieve topical airway anesthesia for awake endotracheal intubation. We prefer this modified spray-as-you-go technique for endoscopic intubation to classical bolus application because of higher patient satisfaction and better compliance.

Topikal Havayolu Anestezi Kullanımı Awake-endoskopik entübasyon için yüksek oksijen Flow ile Tekniği Sprey-as-you-go

A patient&#39;s willingness to cooperate is an absolute precondition for successful awake intubation of the trachea. Whilst drug-sedation of patients can ...

Second Harmonic Generation Signals in Rabbit Sclera As a Tool for Evaluation of Therapeutic Tissue Cross-linking (TXL) for Myopia

Methods to strengthen tissue by introducing chemical bonds (non-enzymatic cross-linking) into structural proteins (fibrillar collagens) for therapy include photochemical cross-linking and tissue cross-linking (TXL) methods. Such methods for inducing mechanical tissue property changes are being employed to the cornea in corneal thinning (mechanically weakened) disorders such as keratoconus as well as the sclera in progressive myopia, where thinning and weakening of the posterior sclera occurs and likely contributes to axial elongation. The primary target proteins for such tissue strengthening are fibrillar collagens which constitute the great majority of dry weight proteins in the cornea and sclera. Fortuitously, fibrillar collagens are the main source of second harmonic generation signals in the tissue extracellular space. Therefore, modifications of the collagen proteins, such as those induced through cross-linking therapies, could potentially be detected and quantitated through the use of second harmonic generation microscopy (SHGM). Monitoring SHGM signals through the use of a laser scanning microscopy system coupled with an infrared excitation light source is an exciting modern imaging method that is enjoying widespread usage in the biomedical sciences. Thus, the present study was undertaken in order to evaluate the use of SHGM microscopy as a means to measure induced cross-linking effects in ex vivo rabbit sclera, following an injection of a chemical cross-linking agent into the sub-Tenon&#39;s space (sT), an injection approach that is standard practice for causing ocular anesthesia during ophthalmologic clinical procedures. The chemical cross-linking agent, sodium hydroxymethylglycinate (SMG), is from a class of cosmetic preservatives known as formaldehyde releasing agents (FARs). Scleral changes following reaction with SMG resulted in increases in SHG signals and correlated with shifts in thermal denaturation temperature, a standard method for evaluating induced tissue cross-linking effects.

Second Harmonic Generation Signals in Rabbit Sclera As a Tool for Evaluation of Therapeutic Tissue Cross-linking TXL for Myopia

This protocol describes techniques for evaluating chemical cross-linking of the rabbit sclera using&#160;second harmonic generation imaging and differential scanning calorimetry.

Tavşan sklera bir araç olarak ikinci harmonik üretimi sinyalleri tedavi doku (TXL) için miyopi Cross-linking değerlendirilmesi için

Methods to strengthen tissue by introducing chemical bonds (non-enzymatic cross-linking) into structural proteins (fibrillar collagens) for therapy ...