Method Article
Burada, denizanası Cladonema'daki kök benzeri çoğalan hücreleri görselleştirmek için bir protokol açıklıyoruz. Bir kök hücre belirteci ile tam montajlı floresan in situ hibridizasyon, kök benzeri hücrelerin tespit edilmesine izin verir ve 5-etinil-2'-deoksiüridin etiketlemesi, çoğalan hücrelerin tanımlanmasını sağlar. Birlikte, aktif olarak çoğalan kök benzeri hücreler tespit edilebilir.
Deniz anemonları, mercanlar ve denizanası da dahil olmak üzere Cnidarian'lar, sapsız poliplerde ve serbest yüzme medusalarında ortaya çıkan çeşitli morfoloji ve yaşam tarzları sergilerler. Hydra ve Nematostella gibi yerleşik modellerde örneklendiği gibi, kök hücreler ve / veya proliferatif hücreler cnidarian poliplerin gelişimine ve yenilenmesine katkıda bulunur. Bununla birlikte, çoğu denizanasında, özellikle medusa aşamasında, altta yatan hücresel mekanizmalar büyük ölçüde belirsizdir ve bu nedenle, spesifik hücre tiplerini tanımlamak için sağlam bir yöntem geliştirmek kritik öneme sahiptir. Bu yazıda, hidrozoan denizanası Cladonema pacificum'daki kök benzeri çoğalan hücreleri görselleştirmek için bir protokol açıklanmaktadır. Cladonema medusae, yetişkin evreleri boyunca sürekli büyüyen ve rejeneratif kapasiteyi koruyan dallanmış dokunaçlara sahiptir ve çoğalan ve / veya kök benzeri hücreler tarafından düzenlenen hücresel mekanizmaları incelemek için eşsiz bir platform sağlar. Bir kök hücre belirteci kullanan tam montajlı floresan in situ hibridizasyon (FISH), kök benzeri hücrelerin tespit edilmesine izin verirken, bir S faz belirteci olan 5-etinil-2'-deoksiüridin (EdU) ile nabız etiketlemesi, çoğalan hücrelerin tanımlanmasını sağlar. Hem FISH hem de EdU etiketlemesini birleştirerek, sabit hayvanlar üzerinde aktif olarak çoğalan kök benzeri hücreleri tespit edebiliriz ve bu teknik, model olmayan denizanası türleri de dahil olmak üzere diğer hayvanlara geniş çapta uygulanabilir.
Cnidaria, sinir ve kasları olan hayvanları içeren temel olarak dallanan bir metazoan filum olarak kabul edilir ve onları hayvan gelişiminin ve fizyolojisinin evrimini anlamak için benzersiz bir konuma yerleştirir 1,2. Cnidarians iki ana gruba ayrılır: Anthozoa (örneğin, deniz anemonları, mercanlar) sadece planula larvalarına ve sapsız polip aşamalarına sahipken, Medusozoa (Hydrozoa, Staurozoa, Scyphozoa ve Cubozoa üyeleri) tipik olarak serbest yüzme medusae veya denizanası ile planula larvaları ve polipleri şeklini alır. Cnidarians genellikle yüksek rejeneratif kapasite sergiler ve altta yatan hücresel mekanizmaları, özellikle yetişkin kök hücrelere ve proliferatif hücrelere sahip olmaları, çok dikkat çekmiştir 3,4. Başlangıçta Hydra'da tanımlanan hidrozoan kök hücreler, ektodermal epitel hücreleri arasındaki interstisyel boşluklarda bulunur ve genellikle interstisyel hücreler veya i-hücreleri3 olarak adlandırılır.
Hidrozoan i-hücreleri, çok yönlülük, yaygın olarak korunan kök hücre belirteçlerinin ekspresyonu (örneğin, Nanolar, Piwi, Vasa) ve göç potansiyeli 3,5,6,7,8 gibi ortak özellikleri paylaşır. Fonksiyonel kök hücreler olarak, i-hücreler hidrozoan hayvanların gelişimine, fizyolojisine ve çevresel tepkilerine yoğun bir şekilde katılır ve bu da yüksek rejeneratif kapasitelerini ve plastisitelerini kanıtlar3. I-hücrelerine benzer kök hücreler, hidrozoanların dışında, yerleşik model türü Nematostella'da bile tanımlanmamış olsa da, proliferatif hücreler hala somatik dokunun ve germ hattı9'un bakımı ve yenilenmesinde rol oynamaktadır. Cnidarian gelişimi ve rejenerasyonu ile ilgili çalışmalar ağırlıklı olarak Hydra, Hydractinia ve Nematostella gibi polip tipi hayvanlar üzerinde yapıldığından, denizanası türlerinde kök hücrelerin hücresel dinamikleri ve işlevleri büyük ölçüde ele alınmamıştır.
Akdeniz ve Kuzey Amerika da dahil olmak üzere dünya çapında farklı habitatlara sahip kozmopolit bir denizanası türü olan hidrozoan denizanası Clytia hemisphaerica , çeşitli gelişimsel ve evrimsel çalışmalarda deneysel bir model hayvan olarak kullanılmıştır10. Küçük boyutu, kolay kullanımı ve büyük yumurtaları ile Clytia , laboratuar bakımı için ve yakın zamanda kurulan transgenez ve nakavt yöntemleri11 gibi genetik araçların tanıtılması için uygundur ve denizanası biyolojisinin altında yatan hücresel ve moleküler mekanizmaların ayrıntılı analizi için fırsat yaratır. Clytia medusa dokunaçlarında, i-hücreleri ampul adı verilen proksimal bölgede lokalize olur ve nematoblastlar gibi progenitörler, nematositler12 de dahil olmak üzere farklı hücre tiplerine farklılaşırken distal uca göç eder.
Denizanasının oral organı olan Clytia manubriumunun yenilenmesi sırasında, gonadlarda bulunan Nanos1 + i-hücreleri, hasara yanıt olarak manubriumun kaybolduğu bölgeye göç eder ve manubrium7'nin yenilenmesine katılır. Bu bulgular, Clytia'daki i-hücrelerinin aynı zamanda morfogenez ve rejenerasyonda rol oynayan fonksiyonel kök hücreler gibi davrandığı fikrini desteklemektedir. Bununla birlikte, i-hücrelerinin özelliklerinin Hydra ve Hydractinia 3 gibi temsili polip tipi hayvanlar arasında farklılık gösterdiği göz önüne alındığında, kök hücrelerin özelliklerinin ve işlevlerinin denizanası türleri arasında çeşitlendirilmesi mümkündür. Ayrıca, Clytia hariç, diğer denizanaları için deneysel teknikler sınırlandırılmıştır ve proliferatif hücrelerin ve kök hücrelerin ayrıntılı dinamikleri bilinmemektedir13.
Hidrozoan denizanası Cladonema pacificum, su pompası veya filtreleme sistemi olmadan laboratuvar ortamında tutulabilen yeni bir model organizmadır. Cladonema medusa, Cladonematidae ailesinde ortak bir özellik olan dallanmış dokunaçlara ve ampul14'ün yakınındaki ektodermal tabakada ocellus adı verilen bir fotoreseptör organına sahiptir. Dokunaç dallanma süreci, dokunaçların adaksiyal tarafı boyunca görünen yeni bir dallanma bölgesinde meydana gelir. Zamanla, dokunaçlar uzamaya ve dallanmaya devam eder, eski dallar uç15'e doğru itilir. Ek olarak, Cladonema dokunaçları amputasyondan sonra birkaç gün içinde yenilenebilir. Son zamanlarda yapılan çalışmalar, Cladonema16,17'de dokunaç dallanmasında ve rejenerasyonunda çoğalan hücrelerin ve kök benzeri hücrelerin rolünü ortaya koymuştur. Bununla birlikte, geleneksel in situ hibridizasyon (ISH), Cladonema'daki gen ekspresyonunu görselleştirmek için kullanılırken, düşük çözünürlüğü nedeniyle, kök hücre dinamiklerini hücresel düzeyde ayrıntılı olarak gözlemlemek şu anda zordur.
Bu yazıda Cladonema'daki kök benzeri hücrelerin FISH ile görselleştirilmesi ve hücre proliferasyonunun bir belirteci olan EdU ile birlikte boyanması için bir yöntem açıklanmaktadır18. Bir kök hücre belirteciolan 5,17 olan Nanos1'in ekspresyon paternini, tek hücre düzeyinde kök benzeri hücre dağılımının tanımlanmasına izin veren FISH tarafından görselleştiriyoruz. Ek olarak, Nanos1 ekspresyonunun EdU etiketlemesi ile birlikte boyanması, aktif olarak çoğalan kök benzeri hücrelerin ayırt edilmesini mümkün kılar. Hem kök benzeri hücreleri hem de proliferatif hücreleri izlemek için kullanılan bu yöntem, dokunaç dallanması, doku homeostazı ve Cladonema'da organ rejenerasyonu dahil olmak üzere çok çeşitli araştırma alanlarına uygulanabilir ve benzer bir yaklaşım diğer denizanası türlerine de uygulanabilir.
NOT: Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, reaktifler ve ekipmanlarla ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosuna bakın.
1. Prob sentezi
2. EdU kuruluşu ve tespiti
3. Floresan in situ hibridizasyon
Kladonoma dokunaçları, morfogenez ve rejenerasyonun hücresel süreçlerini incelemek için bir model olarak kullanılmıştır15,16,17. Tentacle yapısı, kök benzeri hücrelerin veya i-hücrelerinin, dokunaç ampulü adı verilen proksimal bölgede bulunduğu ve ampulün distal bölgesinin arkasına adaksiyal taraf boyunca sırayla yeni dalların eklendiği bir epitel tüpünden oluşur (Şekil 3A)15. Önceki raporlar, hücre proliferasyonunun hem dokunaç ampulünde hem de16,17 etiketli EdU veya BrdU kullanılarak yeni dallanma bölgelerinde aktif olduğunu göstermiştir. Bununla birlikte, in situ hibridizasyonun çözünürlüğü nedeniyle, kök benzeri hücrelerin gerçekten proliferatif olup olmadığı belirsizdir. Hem kök benzeri hem de proliferatif hücreleri hücresel düzeyde aynı anda görselleştirmek için, kök hücre belirteçleri (Nanos1 veya Piwi) için FISH ve aynı örneklerdeki S faz hücreleri için EdU etiketlemesi gerçekleştirdik.
FISH tarafından hücresel çözünürlükte, Nanos1'in ekspresyonu dokunaç ampulünde ve yeni dallanma bölgesinde lokalize edildi (Şekil 3B). Piwi ayrıca dokunaç ampulünde ve yeni dallanma bölgesinde Nanos1'inkine benzer bir desende ifade edildi (Şekil 3C). Bu sonuçlar,7 günlük bir medusa'nın tomurcuklanan dalının Nanos1 ve Piwi tarafından neredeyse eşit şekilde etiketlendiği önceki bir rapor 17'deki tam montajlı in situ hibridizasyondan elde edilen gözlemlerle tutarlıydı. Kök benzeri hücrelerin birikiminin başlangıcını görselleştirmek için, 5 günlük bir medusanın yeni dallanma bölgesini izledik. Nanos1 ekspresyonu ve EdU-pozitif hücrelerin birlikte etiketlenmesi, dokunaçtaki kök benzeri hücrelerin ve proliferatif hücrelerin uzamsal modelini ortaya çıkardı (Şekil 4A). EdU + ve Nanos1 + hücrelerinin brüt dağılımları önceki raporlar16,17 ile tutarlı olmasına rağmen, EdU + hücreleri dokunaç ampulü boyunca, en azından dallanmanın başlangıcında daha yaygın olarak dağılırken, Nanos1 + hücreleri dokunaç ampulünde ve yeni dallanma bölgesinde daha lokal olarak birikmiştir (Şekil 4A ve Şekil 4E ). Bu gözlemler, kök benzeri hücrelerin ve çoğalan hücrelerin farklı dağılımlarının, gelişimsel zamanlamaya ve farklı aşamalara bağlı olarak tespit edildiğini göstermektedir.
Ampulün ve yeni dallanma bölgesinin daha ayrıntılı bir görünümü, EdU sinyallerinin nükleer boyama ile birleştiğini, oysa Nanos1 ekspresyonunun, önceki bir rapor5 ile tutarlı olarak, çekirdeği çevreleyen sitoplazma ile sınırlı olduğunu ortaya koymuştur (Şekil 4B, C). Hücrelerin bir kısmı (%19.79) EdU ve Nanos1'un (EdU+ Nanos1+; Şekil 4B, C, sarı ok uçları ve Şekil 4D), bu hücrelerin aktif olarak çoğalan bir kök hücre popülasyonu olduğunu düşündürmektedir. İlginç bir şekilde, hücrelerin% 14.46'sının ampulün ortasında ve yeni dallanma bölgesinde EdU + Nanos1 - olduğu bulundu, bu da kök benzeri olmayan proliferatif hücrelerin varlığını düşündürdü (Şekil 4B, C, beyaz oklar ve Şekil 4D). Buna karşılık, hücrelerin% 26.32'sinin ampulün tabanında ve yeni dallanma bölgesinde EdU-Nanos1 + olduğu gözlendi, bu da yavaş döngülü veya sessiz bir kök hücre popülasyonunun varlığını gösteriyordu, bunların hiçbiri EdU nabız etiketlemesi ile tespit edilmedi (Şekil 4B, C, sarı oklar ve Şekil 4D).
Şekil 1: İn situ hibridizasyon için prob sentezinin şeması. Medusadan total RNA'nın ekstraksiyonu ve total RNA'dan cDNA sentezi. Nanos1'e özgü PCR ürünleri cDNA'dan sentezlendi. PCR ürünleri vektörlere bağlandı ve güçlendirilmiş vektörler yetkin hücre kültürü yoluyla toplandı. RNA polimeraz bağlanma bölgelerine sahip PCR ürünleri, plazmidler şablon olarak kullanılarak sentezlendi. DIG etiketli RNA probları in vitro transkripsiyon ile sentezlendi. Kısaltmalar: DIG = digoxigenin. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: EdU şeması ve floresan in situ hibridizasyon ko-boyama. Medusae, 1 saat boyunca 150 μM EdU ile inkübe edildi. Daha sonra, medusaeH2 O'da% 7 MgCl 2 ile uyuşturuldu (dokuyu gevşetmek için) ve4 ° C'de% 4 PFA O.N. ile sabitlendi. Fiksasyondan sonra, numuneler 55 ° C'de 20-24 saat boyunca bir prob ile HB Buffer ile hibridize edildi. Hibridizasyon reaksiyonundan sonra, numuneler 4 ° C'de anti-DIG-POD çözeltisi O.N. ile yıkandı ve inkübe edildi. Medusae 10 dakika boyunca Cy5-tiramid çözeltisi ile boyandı, ardından 30 dakika boyunca EdU'nun tespiti ve 30 dakika boyunca Hoechst 33342 ile boyandı. Tüm boyama işlemleri tamamlandıktan sonra, medusae cam slayt üzerine monte edildi ve konfokal mikroskopla görüntüler elde edildi. Kısaltmalar: EdU = 5-etinil-2'-deoksiüridin; FISH = floresan in situ hibridizasyon; PFA = paraformaldehit; O.N. = geceleme; HB = hibridizasyon. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Resim 3: Cladonema medusa dokunaçlarının proksimal adaksial tarafındaki nanos1 ve Piwi ekspresyon kalıpları. (A) Bir Cladonema medusa ve dokunaçlarının şeması. Dokunaçların adaksiyal tarafı: yeni dallanma bölgesinde sırayla oluşturulan yeni dallara sahip dokunaç ampulü (en proksimal bölge). İç kısım (kesikli kare), konfokal görüntü tarafından yakalanan alanı gösterir. (B) 7 günlük bir Cladonema medusa'nın dokunaçlarının proksimal, adaksiyal tarafından Nanos1 gen ekspresyonunun FISH görüntüleri. (C) 7 günlük bir Cladonema medusa'nın dokunaçlarının proksimal, adaksiyal tarafından Piwi gen ekspresyonunun FISH görüntüleri. DNA: yeşil, Nanos1: macenta. Sadece Nanos1 FISH görüntüleri için B'-C'. Ölçek çubukları = 100 μm (B,C). Kısaltma: FISH = floresan in situ hibridizasyon. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 4: Cladonema medusa dokunaçlarının proksimal, adaksiyal tarafındaki EdU ve Nanos1 ekspresyon kalıpları. (A-C) Cladonema medusa dokunaçlarının proksimal adaksiyal tarafının Nanos1 ekspresyonu ve EdU ile birlikte etiketlenmiş görüntüleri; 5 günlük medusae kullanıldı. (A) Dokunaçlara genel bakış. Sarı kesikli kareler B ve C alanlarını gösterir. (B) Dokunaç ampulünün büyütülmesi. (C) Yeni bir dallanma alanının büyütülmesi. Sarı ok uçları, hem EdU hem de Nanos1 için pozitif olan hücreleri gösterir. Sarı oklar sadece Nanos1 için pozitif olan hücreleri gösterir. Beyaz oklar, hücrelerin yalnızca EdU için pozitif olduğunu gösterir. A-C panelleri, DNA (mavi), EdU (yeşil) ve Nanos1 (macenta) için birleştirilmiş görüntülerdir. A'-C' yalnızca EdU görüntüleri için panellerdir; A''-C'' sadece Nanos1 FISH görüntüleri içindir. Ölçek çubukları = 100 μm (A), 50 μm (B, C). (D) Dokunacın bazal tarafındaki EdU ve / veya Nanos1 pozitif hücrelerin nicelleştirilmesi (nicelleştirme alanı = 30.10 μm2 kare, n = 6, toplam 249 hücre). EdU + Nanos1 − hücreleri,% 14.46; EdU + Nanos1 + hücreleri,% 19.79; EdU− Nanos1+ hücreler, %26,32; EdU-Nanos1-hücreler,% 39.44. (E) Adoksiyal taraftan bir Cladonema medusa dokunaçlarının şeması. EdU + hücrelerinin ve Nanos1 + hücrelerinin genel dağılımı sırasıyla E ve E ' olarak gösterilmiştir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Tablo 1: Bu protokolde farklı PCR reaksiyonlarının ve tamponlarının bileşimi. Ligasyon reaksiyonundaki PCR ürününün (X μL) hacmini hesaplamak için, protokol adım 1.4'ten sonraki nota bakın. Bu tabloyu indirmek için lütfen tıklayınız.
Proliferasyon yapan hücreler ve kök hücreler morfogenez, büyüme ve rejenerasyon gibi çeşitli süreçlerde önemli hücresel kaynaklardır21,22. Bu yazıda kök hücre belirteci Nanos1'in Cladonema medusae'de FISH ve EdU etiketlemesi ile birlikte boyanması için bir yöntem açıklanmaktadır. EdU veya BrdU etiketlemesini kullanan önceki çalışmalar, proliferatif hücrelerin dokunaç ampulleri16,17'ye lokalize olduğunu, ancak moleküler özelliklerinin belirsiz olduğunu öne sürdü. Bu çalışma, proliferatif hücrelerin dağılımının ve Nanos1+ kök benzeri hücrelerin lokalizasyonunun eşzamanlı olarak belirlenmesini göstermektedir (Şekil 4). Sonuçlar, bazı proliferatif hücrelerin Nanos1'u ifade ettiğini, ancak diğer hücrelerin sadece EdU ile işaretlendiğini ve Nanos1'u ifade etmediğini, kök hücre heterojenliğinin veya potansiyel olarak diğer proliferatif hücrelerin varlığını gösterdiğini gösterdi. Cladonema'da dokunaç dallanması, doku homeostazı, organ rejenerasyonu ve germ hücresi bakımı dahil olmak üzere farklı işlemler sırasında ayrıntılı kök hücre dağılımını incelemek ilginç olacaktır.
Hayvanlarda kök hücrelerin görselleştirilmesi için en büyük darboğaz, kök hücre belirteçlerinin ilk tanımlanmasıdır. Cnidarians'ta, kök hücre belirteçleri hidrozoan olmayan3'te tanımlanmamıştır ve bu nedenle, bu aşamada, kök hücre belirteçleri için FISH'in doğrudan uygulanması hidrozoanlarla sınırlı kalmaktadır. Bununla birlikte, FISH, hücresel düzeyde spesifik gen ekspresyonunun tespit edilmesine izin verir ve bu nedenle, probları değiştirerek, bu yöntem, ilgilenilen herhangi bir genin mekansal ekspresyon kalıplarını ayrıntılı olarak gözlemlemek için genişletilebilir. Örneğin, progenitör hücrelerin ve farklılaşmış hücrelerin belirteçlerini kullanarak, Cladonema dokunaçlarındaki spesifik hücre tiplerinin dağılımını doğrulayabiliriz. Bir uyarı olarak, mevcut protokolün, ekspresyon seviyelerindeki ve mRNA stabilitesindeki farklılıklar nedeniyle ilgilenilen genlere bağlı olarak değiştirilmesi gerekebilir. Özellikle, spesifik olmayan sinyaller ve zayıf sinyaller FISH ile ilişkili yaygın sorunlardır. Hibridizasyon süresini ve sıcaklığını değiştirmek, ağartma reaktifleri (formamid veya metanol) kullanmak ve diğer parametreleri ayarlamak (TSA reaksiyon süresi, Proteinaz K işlemi, hibridizasyondan sonra yıkama) daha net sinyaller ve daha az spesifik olmayan sinyalverebilir 23,24. Kullanılan hayvan modeline uygun bir FISH protokolü seçmek de önemlidir, çünkü bir FISH protokolü aynı takson 7,25,26 içinde bile diğer türlere uygulanamayabilir.
EdU etiketlemesi genellikle proliferatif hücreleri tespit etmek için kullanılır, ancak konsantrasyonu ve inkübasyon süresini değiştirerek farklı deneysel amaçlar için kullanılabilir27. Çoğalan hücreleri tespit etmek için, EdU kuruluşu için başarılı bir süre ve konsantrasyon belirlemek çok önemlidir. Bu çalışmada kullanılan nabız etiketlemesinde, sadece kısa bir süre için S fazından geçen proliferatif hücreler işaretlenmiş ve diğer cnidarian'larda çoğalan hücreleri tespit etmek için benzer kısa inkübasyon yöntemleri kullanılmıştır 6,28,29. Buna karşılık, uzun süreli EdU birleşmesi ve Nanos1 FISH'in kombinasyonu, yavaş döngülü veya sessiz kök hücrelerin varlığını ortaya çıkarabilir27. Sadece proliferatif hücreleri değil, aynı zamanda DNA sentezine uğramış endosiklasyon hücrelerini de bölünmeden işaretlemek mümkündür. Ayrıca, EdU etiketli hücreleri daha uzun süre izleyerek, proliferatif hücreler ve hücre soyları 6,30 ile ilişkili göç ve farklılaşma için hücresel kapasiteyi belirleyebiliriz.
FISH ve EdU veya BrdU boyama kombinasyonu 7,31 kullanılırken, burada kurulan yöntem, farklı denizanası türleri de dahil olmak üzere diğer deniz omurgasızlarına ve model olmayan hayvanlara kolayca uygulanabilir. EdU boyama, BrdU boyama18'den daha basit ve daha hassastır ve kısa süreli inkübasyonuyla, uzun süreli hücre etiketleme7 için EdU'yu kullanan önceki çalışmanın aksine, çoğalan hücrelerin tespit edilmesini sağlar. Son yıllarda, yeni nesil dizileme teknolojilerinin ilerlemesiyle, genom ve gen ekspresyon bilgileri birçok tür için kullanılabilir hale gelmiştir. Kök hücrelerin ve proliferatif hücrelerin tanımlanması, kök hücre heterojenliğini ve çeşitliliğini anlamak ve farklı biyolojik fenomenlerin altında yatan hücresel dinamikler hakkında fikir vermek için etkili bir yaklaşım olmaya devam edecektir.
Yazarların açıklayacağı bir çıkar çatışması yoktur.
Bu çalışma AMED tarafından JP22gm6110025 Hibe Numarası altında (YN'ye) ve JSPS KAKENHI Hibe Numarası 22H02762 (YN'ye) tarafından desteklenmiştir.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
2-Mercaptoethanol | Wako | 137-06862 | |
3.1 mL transfer pipette | Thermo Scientific | 233-20S | |
5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside (X-Gal) | Wako | 029-15043 | |
anti-DIG-POD | Roche | 11207733910 | |
Cladonema pacificum Nanos1 forward primer | 5’-AAGAGACACAGTCATTATCAAGC GA-3’ | ||
Cladonema pacificum Nanos1 reverse primer | 5’-CGACGTGTCCAATTTTACGTGCT -3’ | ||
Cladonema pacificum Piwi forward primer | 5’- AAAAGAGCAGCGGCCAGAAAGA AGGC -3’ | ||
Cladonema pacificum Piwi reverse primer | 5’- GCGGGTCGCATACTTGTTGGTA CTGGC -3’ | ||
Click-iT EdU Cell Proliferation Kit for Imaging, Alexa Fluor 488 dye | Invitrogen | C10337 | EdU kit |
Coroline off | GEX Co. ltd | N/A | chlorine neutralizer |
DIG Nucleic Acid Detection Kit Blocking Reagent | Roche | 11175041910 | blocking buffer |
DIG RNA labeling mix | Roche | 11277073910 | |
DTT | Promega | P117B | |
ECOS competent cell DH5α | NIPPON GENE | 316-06233 | competent cell |
Fast gene Gel/PCR Extraction kit | Fast gene | FG-91302 | gel extraction kit |
Fast gene plasmid mini kit | Fast gene | FG-90502 | plasmid miniprep |
Formamide | Wako | 068-00426 | |
Heparin sodium salt from porcine | SIGMA-ALDRICH | H3393-10KU | |
Isopropyl-β-D(-)-thiogalactopyranoside (IPTG) | Wako | 096-05143 | |
LB Agar | Invitrogen | 22700-025 | agar plate |
LB Broth Base | Invitrogen | 12780-052 | LB medium |
Maleic acid | Wako | 134-00495 | |
mini Quick spin RNA columns | Roche | 11814427001 | clean-up column |
NaCl | Wako | 191-01665 | |
NanoDrop OneC Microvolume UV-Vis Spectrophotometer with Wi-Fi | Thermo Scientific | ND-ONEC-W | spectrophotometer |
Polyoxyethlene (20) Sorbitan Monolaurate (Tween-20) | Wako | 166-21115 | |
PowerMasher 2 | nippi | 891300 | homogenizer |
Proteinase K | Nacarai Tesque | 29442-14 | |
RNase Inhibitor | TaKaRa | 2313A | |
RNeasy Mini kit | Qiagen | 74004 | total RNA isolation kit |
RQ1 RNase-Free Dnase | Promega | M6101 | |
Saline Sodium Citrate Buffer 20x powder (20x SSC) | TaKaRa | T9172 | |
SEA LIFE | Marin Tech | N/A | mixture of mineral salts |
T3 RNA polymerase | Roche | 11031163001 | |
T7 RNA polymerase | Roche | 10881767001 | |
TAITEC HB-100 | TAITEC | 0040534-000 | Hybridization incuvator |
TaKaRa Ex Taq | TaKaRa | RR001A | Taq DNA polymerase |
TaKaRa PrimeScript 2 1st strand cDNA Synthesis Kit | TaKaRa | 6210A | cDNA synthesis kit |
Target Clone | TOYOBO | TAK101 | pTA2 Vector |
tRNA | Roche | 10109541001 | |
TSA Plus Cyanine 5 | AKOYA Biosciences | NEL745001KT | tyramide signal amplification (TSA) technique |
Zeiss LSM 880 | ZEISS | N/A | laser scanning confocal microscope |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır