太平洋水母干细胞样细胞的荧光原位杂交和5-乙炔基-2'-脱氧尿苷标记

在这里，我们描述了一种用于可视化水母 Cladonema中干细胞样增殖细胞的协议。与干细胞标记物的全安装荧光 原位 杂交可以检测干细胞样细胞，5-乙炔基-2'-脱氧尿苷标记可以鉴定增殖细胞。一起，可以检测到活跃增殖的干细胞样细胞。

刺胞动物，包括海葵、珊瑚和水母，表现出不同的形态和生活方式，表现为无柄息肉和自由游泳的美杜莎。正如 在Hydra 和 Nematostella等已建立的模型中的例子，干细胞和/或增殖细胞有助于刺胞珊瑚虫的发育和再生。然而，大多数水母的潜在细胞机制，特别是在美杜莎阶段，在很大程度上尚不清楚，因此，开发一种用于识别特定细胞类型的稳健方法至关重要。本文描述了一种可视化水生动物水母 Cladonema pacificum 中干细胞样增殖细胞的方案。 Cladonema medusae拥有分枝触手，在整个成虫阶段不断生长并保持再生能力，为研究增殖和/或干细胞样细胞协调的细胞机制提供了一个独特的平台。使用干细胞标记物的全安装荧光 原位 杂交（FISH）可以检测干细胞样细胞，而使用S相标记物5-乙炔基-2'-脱氧尿苷（EdU）进行脉冲标记可以鉴定增殖细胞。结合FISH和EdU标记，我们可以检测固定动物上活跃增殖的干细胞样细胞，并且该技术可以广泛应用于其他动物，包括非模型水母物种。

刺胞动物被认为是一种基部分支的后生动物门，包含具有神经和肌肉的动物，使它们处于了解动物发育和^{生理学进化}的独特位置1^，2。刺胞动物分为两大类:花生动物（例如海葵和珊瑚）仅拥有扁平幼虫和无柄息肉阶段，而Medusozoa（水生动物，Staurozoa，Scyphozoa和Cubozoa的成员）通常采取自由游泳的水母或水母的形式，以及扁平幼虫和息肉。刺胞动物通常表现出很高的再生能力，其潜在的细胞机制，特别是它们拥有成体干细胞和增殖细胞，引起了人们的广泛关注^3，4。最初在Hydra中鉴定，水生干细胞位于外胚层上皮细胞之间的间质空间中，通常称为间质细胞或i细胞³。

水生动物i细胞具有共同的特征，包括多能性，广泛保守的干细胞标志物（例如，纳米，Piwi，Vasa）的表达和迁移潜力³，⁵，⁶，^7，8。作为功能性干细胞，i细胞广泛参与水生动物的发育、生理和环境反应，这证明了它们的高再生能力和可^塑性3。虽然干细胞与i细胞相似，尚未在水生动物之外发现，即使在已建立的模式物种Nematostella中，增殖细胞仍然参与体细胞组织的维持和再生以及生殖系⁹。由于刺胞动物发育和再生的研究主要在息肉型动物（如Hydra，Hydractinia和Nematostella）上进行，因此水母物种中干细胞的细胞动力学和功能在很大程度上仍未得到解决。

水生动物水母 Clytia hemisphaerica是一种 世界性水母物种，在世界各地（包括地中海和北美）具有不同的栖息地，已在几项发育和进化研究中被用作实验模型动物¹⁰。 Clytia 体积小、易于处理、卵大，适用于实验室维护，以及引入遗传工具，例如最近建立的转基因和敲除方法¹¹，为详细分析水母生物学背后的细胞和分子机制提供了机会。在 Clytia medusa 触手中，i细胞位于称为球茎的近端区域，线虫等祖细胞迁移到远端尖端，同时分化成不同的细胞类型，包括线细胞¹²。

在水母的口腔器官Clytia manubrium的再生过程中，存在于性腺中的Nanos1 ⁺ i细胞迁移到手稿因损伤而丢失的区域，并参与手稿^的再生7。这些发现支持了Clytia中的i细胞也表现为参与形态发生和再生的功能性干细胞的观点。然而，鉴于i细胞的性质在具有代表性的息肉型动物（如Hydra和Hydractinia³）之间有所不同，因此干细胞的特征和功能可能在水母物种中多样化。此外，除了Clytia之外，其他水母的实验技术受到限制，增殖细胞和干细胞的详细动力学未知¹³。

水生动物水母 Cladonema pacificum 是一种新兴的模式生物，可以在没有水泵或过滤系统的情况下保存在实验室环境中。Cladonema medusa具有分支触手，这是 Cladonematidae 家族的共同特征，并且在灯泡¹⁴附近的外胚层上有一个称为ocellus的感光器官。触手分支过程发生在沿着触手的近轴侧出现的新分支部位。随着时间的流逝，触手继续伸长并分枝，较老的枝条被推向尖端¹⁵。此外， Cladonema 触手可以在截肢后的几天内再生。最近的研究表明增殖细胞和干细胞样细胞在 Cladonema^16，17的触手分支和再生中的作用。然而，虽然传统的 原位 杂交（ISH）已被用于可视化 Cladonema中的基因表达，但由于其分辨率低，目前很难在细胞水平上详细观察干细胞动力学。

本文描述了一种通过FISH可视化Cladonema中的干细胞样细胞并与细胞增殖标志物EdU共染色的方法¹⁸。我们通过FISH可视化了干细胞标记⁵，17Nanos1的表达模式，这允许在单细胞水平上鉴定干细胞样细胞分布。此外，Nanos1表达与EdU标记的共染色使得区分活跃增殖的干细胞样细胞成为可能。这种监测干细胞样细胞和增殖细胞的方法可以应用于广泛的研究领域，包括触手分支、组织稳态和克拉多内玛的器官再生，类似的方法可以应用于其他水母物种。

注意:有关本协议中使用的所有材料，试剂和设备的详细信息，请参阅 材料表 。

1. 探针合成

1. 核糖核酸提取
   1. 使用切断吸头的 3.1 mL 移液管将三个在人工海水 （ASW） 中培养的活水母在 1.5 mL 管中，并尽可能多地去除 ASW。
      注意:ASW是通过用氯中和剂将矿物盐混合物溶解在自来水中制备的;最终比重（S.G.）为1.018或千分之几（ppt）为~27。
   2. 将 1.5 mL 管冷冻在液氮中以抑制 RNase 活性。从总RNA分离试剂盒中加入30 μL裂解缓冲液，其中添加了2-巯基乙醇（1 μL/100 μL裂解缓冲液），并使用匀浆器均质裂解缓冲液中的样品。
      注意:为避免缓冲液和样品从试管中溢出，建议使用少量裂解缓冲液进行均质化。
   3. 加入 570 μL 裂解缓冲液，按照总 RNA 分离试剂盒的方案提取总 RNA（图 1）。
   4. 使用分光光度计测量提取的RNA的浓度，并储存在-80°C直至使用。
2. cDNA合成
   1. 使用试剂盒，使用从水母中提取的总RNA作为模板合成cDNA（图 1和 表1）。
   2. 在65°C孵育5分钟。
   3. 在冰上迅速冷却。
   4. 使用步骤1.2.1中的混合物进行cDNA合成（表1）。通过移液充分混合并在42°C下孵育60分钟。
   5. 在95°C孵育5分钟。
   6. 在冰上迅速冷却。
   7. 使用分光光度计测量合成的cDNA的浓度，并储存在-20°C或以下直至使用。
3. PCR产物合成
   1. 要创建PCR模板，请使用引物-BLAST设计特异性引物。从NCBI数据或RNA-seq数据中获取参考序列。
      注意:有关本协议中使用的引物，请参阅 材料表 。
   2. 为了扩增靶序列，请进行TA克隆，这不需要使用限制性内切酶。要获得在3'端添加腺嘌呤的PCR产物，请使用以下设置:98°C2分钟;35个循环，98°C10秒，55-60°C30秒，72°C1分钟。 使用Taq DNA聚合酶进行反应（表1）。
      注意:要确定PCR条件，请遵循要使用的DNA聚合酶随附的方案，该方案通常提供推荐的退火温度和延长时间。
   3. 通过1%琼脂糖凝胶运行PCR产物并切出感兴趣的条带。使用凝胶提取试剂盒从切割的凝胶中提取PCR产物。
4. 结扎
   1. 通过混合试剂（表1）并在37°C下孵育30分钟，将PCR产物与3'胸腺嘧啶突出的载体连接（图1）。
      注意:载体:PCR的分子比例应为1:>3。pTA2 载体大小约为 3 kb。如果PCR产物（插入片段）为A（kb）和B（ng/μL），则要采集的插入片段（ 表1中的X）的体积可以通过（[50 ng载体×插入片段的A kb]）/（3 kb载体×[1/3]）= 50·插入的 ng。如果插入片段浓度为B ng/μL，则取体积为50·A / B μL插入物。
5. 转化和电镀
   1. 为了转化，在冰上解冻感受态细胞并将它们分配到每个 20 μL 等分试样中。加入 1 μL 含有 PCR 产物的质粒（小于感受态细胞体积的 5%）并涡旋 1 秒。在冰上孵育5分钟，然后在42°C下孵育45秒，涡旋1秒。
   2. 向感受态细胞中加入 180 μL 具有分解代谢抑制 （SOC） 培养基（营养丰富的细菌培养基）的超级最佳肉汤，并在 37 °C 下孵育 30 分钟。30分钟后，将感受态细胞散布到含有氨苄西林，5-溴-4-氯-3-吲哚基-β-D-半乳糖吡喃糖苷（X-gal）和异丙基-β-d-1-吡喃硫代半乳糖苷（IPTG）的琼脂平板上，并在37°C孵育12-16小时（图1）。
      注意:X-gal和IPTG用于选择蓝色和白色菌落。
6. 液体培养
   1. 从盘子上的白色和蓝色菌落中挑选一个白色菌落。将其加入3-5mL含有氨苄青霉素的LB培养基中，并在37°C下在摇床上孵育12-16小时（图1）。
7. 迷你准备
   1. 使用质粒小制备从LB培养基中提取质粒（图1）。
   2. 使用分光光度计定量质粒浓度。
8. 阅读序列。
   1. 要读取质粒的DNA序列，请将质粒发送进行Sanger测序，然后使用软件将其与基因组/转录组序列进行比对，以确认靶序列是否正确合成，并评估靶序列插入质粒的方向（5'至3'或3'至5'）。
      注意:如果将靶序列从靠近3'端的RNA聚合酶结合位点以5'至3'方向插入质粒中，则可以通过 体外 转录产生反义探针。如果以相反的3'至5'方向插入目标序列，则可以生成检测探针（阴性对照）。如果使用pTA2等载体，则可以根据目的使用两个转录结合位点。
9. 体外 转录
   1. 通过使用质粒中RNA聚合酶结合位点（例如T7 / T3结合位点）外的引物进行PCR，从创建的质粒制备DNA模板（图1）。
      注意:通用引物（如M13-20正向引物和M13反向引物）可用于制备包含RNA聚合酶结合位点的DNA模板。
   2. PCR扩增后使用凝胶/ PCR提取试剂盒纯化模板。
   3. 混合如下所示的试剂，并在37°C下进行转录反应3小时（图 1和 表1）。
   4. 加入 1.5 μL 脱氧核糖核酸酶并在 37 °C 下孵育 30 分钟。
   5. 加入 10 μL 不含 RNase 的水，并使用净化柱从转录反应溶液中纯化探针。
   6. 通过将 1 μL 上样到 1% 琼脂糖凝胶上来检查合成 RNA 的大小，并使用分光光度计确定浓度。
      注意:合成的RNA探针的浓度应至少为100 ng / μL。
   7. 加入 30 μL 甲酰胺，在 −20 °C 或以下储存。

2. 教育合并和固定

1. 使用 3.5 mL 移液管将 Cladonema medusae（每管 5-10 只动物）放入 1.5 mL 管中，并加入 ASW 至总体积为 500 μL。 加入 7.5 μL 10 mM EdU 储备溶液，并将样品在 22 °C 下孵育 1 小时（图 2）。EdU最终浓度为150μM。
   注意:使用5-7天大的美杜莎监测第三分支的形成（图3A）。水母从息肉上分离的那一天算作第 1 天，在第 5 天，水母通常开始在其主触手上展示第三个分支。
2. 1小时后，尽可能多地去除含有EdU的ASW。
3. 为了麻醉水母，在H₂O中加入7%MgCl₂并孵育5分钟。
4. 在H₂O中除去7%MgCl 2，并在ASW中用4%多聚甲醛（PFA）在4°C下固定水母过夜（图2）。
   注意:在没有EdU掺入的情况下进行FISH时，可以像麻醉后用EdU处理的样品一样固定样品（步骤2.3-2.4）。

3. 荧光原位 杂交

1. 蛋白酶治疗和固定后
   1. 取出PFA，用含有0.1%吐温-20（PBST）的PBS洗涤样品3 x 10分钟。每次洗涤使用 300-500 μL PBST。
      注意:从此步骤到杂交结束，实验应在无RNA酶的环境中进行，戴手套和口罩。此步骤中的 1x PBS 必须使用 DEPC 处理过的水制成。杂交后，可以使用未经DEPC处理的水制成的1x PBS。一些ISH和FISH方案使用甲醇步骤使样品脱水，这使得可以将固定样品保存在-20°C直至使用。为了避免多余的工作，该方案省略了脱水过程，特别是因为样品可以在PBST中保存长达几天。
   2. 固定后，将样品放入摇床上的 1.5 mL 管中，抗 DIG-POD 抗体 O.N. 孵育步骤除外（步骤 3.4.2）。洗涤后，在PBST中加入10mg / mL蛋白酶K储备溶液，并将美杜莎与蛋白酶K（终浓度:10μg/ mL）在37°C孵育10分钟。
   3. 取出蛋白酶K溶液，用PBST洗涤样品2 x 1分钟。
   4. 为了后缀美杜莎，在1x PBS中加入4%PFA，并在37°C下孵育15分钟。
   5. 取出PFA溶液，用PBST洗涤样品2 x 10分钟。
      注意:如果靶基因高表达且背景信号低，则可以跳过步骤3.1.2-3.1.5。
2. 杂交
   1. 取出PBST并加入杂交缓冲液（HB缓冲液， 表1）。将样品在室温（RT）下在HB缓冲液中孵育15分钟。使用 300-400 μL HB 缓冲液，可为成功杂交提供足够的体积。
      注意:HB缓冲液，洗涤缓冲液1和洗涤缓冲液2用20x SSC储备制备。HB缓冲液储存在-20°C或以下，使用前必须置于室温。
   2. 移除 HB 缓冲液并添加新的 HB 缓冲液。在杂交培养箱中在55°C下预杂交至少2小时。
   3. 取出HB缓冲液，并与含有步骤1.9.7中储存的探针的HB缓冲液一起孵育（最终探针浓度:HB缓冲液中的0.5-1ng / μL）。在杂交培养箱中在55°C下杂交18-24小时（图2）。
      注意:FISH 信号强度和特异性可能因靶基因表达以及探针长度和特异性而异。为了增加强度，可以调整杂交持续时间（18-72小时）和温度（50-65°C）等参数，并且可以测试不同的探针。为了避免非特异性信号，可以修改蛋白酶K处理（浓度和持续时间）¹⁹。
3. 探头移除
   1. 取出含有探针的HB缓冲液，然后加入洗涤缓冲液1（表1）。用洗涤缓冲液1在55°C下洗涤样品2 x 15分钟。 使用 300-400 μL 洗涤缓冲液。
      注意:含有探针的HB缓冲液可以重复使用，最多约十次。不要丢弃，而是将含有探针的HB缓冲液储存在−20°C或以下。 使用前在55°C下预热洗涤缓冲液1，洗涤缓冲液2，2x SSC和PBST。
   2. 取出洗涤缓冲液1，然后加入洗涤缓冲液2（表1）。用洗涤缓冲液2在55°C下洗涤样品2 x 15分钟。
   3. 取出洗涤缓冲液 2，然后加入 2x SSC。在55°C下用2x SSC洗涤样品2 x 15分钟。
   4. 取出 2x SSC，然后加入预热的 PBST。在室温下用PBST洗涤样品1 x 15分钟。
4. 抗DIG抗体孵育
   1. 去除 PBST，然后加入 1% 封闭缓冲液。将样品在室温下孵育至少1小时，同时在摇杆上缓慢摇动。
      注意:通过稀释5%封闭缓冲液储备液新鲜制备1%封闭缓冲液（表1）。在下一次抗体反应之前检查样品，因为样品由于摇晃而容易粘在盖子的背面或壁上。
   2. 封闭后，除去1%封闭缓冲液，加入抗DIG-POD溶液（1:500，在1%封闭缓冲液中），并将样品在4°C孵育（图2）。
      注意:注意将孵育时间保持在12-16小时内，以防止检测到非特异性信号。
5. 检测DIG标记的探针
   1. 取出抗DIG-POD溶液，然后加入Tris-NaCl-吐温缓冲液（TNT， 表1）。用TNT在室温下洗涤样品3 x 10分钟。
      注意:使用酪胺信号放大（TSA）技术可针对辣根过氧化物酶标记的试剂（例如抗DIG-POD）提供更好的分辨率图像。
   2. 在扩增稀释缓冲液中稀释荧光染料偶联酪胺（Cy5-酪酰胺）储备溶液（1:50），制成活性Cy5-酪酰胺溶液（图2）。
   3. 尽可能多地去除TNT，然后加入活性Cy5-酪酰胺溶液。将样品在黑暗中孵育10分钟。
   4. 用PBST在黑暗中洗涤样品3 x 10分钟。
6. 检测教育
   注意:EdU试剂盒将掺入的EdU检测为荧光信号（图2）。
   1. 要制备EdU检测混合物，请如 表1所示混合组分。每个样品使用 100 μL EdU 检测混合物。
      注意:用超纯水稀释10x反应缓冲液添加剂，制备1x反应缓冲液添加剂。
   2. 删除 PBST，然后添加 EdU 检测鸡尾酒。在黑暗中孵育30分钟。
   3. 用PBST在黑暗中洗涤3 x 10分钟。
7. 脱氧核糖核酸染色
   1. 在PBST中稀释Hoechst 33342（1:500）以制备Hoechst溶液。删除 PBST，然后添加 Hoechst 解决方案。将样品在黑暗中孵育30分钟（图2）。
   2. 用PBST在黑暗中洗涤样品3-4 x 10分钟。
8. 安装
   1. 在载玻片上做一个银行，以防止样品被压碎。将乙烯基胶带涂在载玻片上并挖空中心。
   2. 使用切断吸头的 3.1 mL 转移移液器将水母转移到载玻片上的岸边。
      注意:注意不要让触手重叠。
   3. 用P200移液器取出任何PBST，然后缓慢加入70%甘油作为封片剂（图2）。
      注意:可以使用抗褪色封片剂代替70%甘油，以防止荧光褪色。
   4. 用镊子轻轻地将盖玻片放在水母上，并用透明的指甲油密封盖玻片的侧面。
   5. 如果不立即进行显微镜观察，请将载玻片保持在4°C的黑暗中。
9. 成像
   1. 使用激光扫描共聚焦显微镜获取图像。对于单细胞分辨率，请使用 40 倍油性镜头或更高放大倍率的镜头。
   2. 图像采集后，使用ImageJ / FIJI软件打开图像，并通过多点工具²⁰对EdU ⁺和/或Nanos1 ⁺阳性的细胞进行计数。

Cladonema触手已被用作研究形态发生和再生的细胞过程的模型¹⁵，^16，17。触手结构由上皮管组成，其中干细胞样细胞或i细胞位于近端区域，称为触手球，并且沿着近轴侧将新分支依次添加到球茎远端区域的后部（图3A）¹⁵。以前的报告表明，细胞增殖在触手球和新的分支位点使用EdU或BrdU标记^16，17时都是活跃的。然而，由于原位杂交的分辨率，尚不清楚干细胞样细胞是否真的增殖。为了在细胞水平上同时可视化干细胞样细胞和增殖细胞，我们对相同样品中的干细胞标志物（Nanos1或Piwi）进行了FISH和S期细胞的EdU标记。

在FISH的细胞分辨率下，Nanos1的表达定位在触手球和新的分支位点（图3B）。Piwi也在触手球和新的分支位点以类似于Nanos1的模式表达（图3C）。这些结果与之前报告¹⁷中全安装原位杂交的观察结果一致，其中7天大的美杜莎的萌芽分支几乎被Nanos1和Piwi均匀标记。为了可视化干细胞样细胞积累的开始，我们监测了5天大的美杜莎的新分支位点。Nanos1表达和EdU阳性细胞的共标记揭示了触手中干细胞样细胞和增殖细胞的空间模式（图4A）。尽管EdU+和Nanos1⁺细胞的总分布与先前的报告一致¹⁶，^17，但EdU +细胞在整个触手球中分布更广泛，至少在分支开始时是这样^，而Nanos1 ⁺细胞在触手球和新的分支部位局部积累得更多（图4A和图4E ).这些观察结果表明，根据发育时间和不同阶段，检测到干细胞样细胞和增殖细胞的不同分布。

更详细的灯泡和新分支位点的视图显示，EdU信号与核染色合并，而Nanos1表达被限制在细胞核周围的细胞质上，与^{之前的报告一致}5（图4B，C）。一小部分（19.79%）的细胞表现出EdU和Nanos1（EdU ⁺ Nanos1 ⁺;图4B，C，黄色箭头和图4D），表明这些细胞是活跃增殖的干细胞群。有趣的是，在球茎中间和新的分支位点发现14.46%的细胞是EdU ⁺ Nanos1⁻，这表明存在非干细胞样增殖细胞（图4B，C，白色箭头和图4D）。相比之下，在球茎底部和新的分支位点观察到26.32%的细胞是EdU⁻ Nanos1⁺，表明存在慢循环或静止的干细胞群，两者都不能通过EdU脉冲标记检测到（图4B，C，黄色箭头和图4D）。

图1: 用于原位 杂交的探针合成方案。 从水母中提取总RNA，从总RNA中合成cDNA。从cDNA合成纳米 1特异性PCR产物。将PCR产物连接到载体中，并通过感受态细胞培养收集扩增的载体。以质粒为模板合成具有RNA聚合酶结合位点的PCR产物。DIG标记的RNA探针通过 体外 转录合成。缩写:DIG = 地高辛。 请点击此处查看此图的大图。

图 2:EdU 和荧光原位杂交共染方案。将美杜莎与150μM EdU孵育1小时。随后，在H₂O中用7%MgCl₂麻醉（以松弛组织），并在4°C下用4%PFA O.N.固定。 固定后，将样品与HB缓冲液在55°C下用探针杂交20-24小时。 杂交反应后，洗涤样品并与抗DIG-POD溶液在4°C下孵育。 用Cy5-酪胺溶液染色10分钟，然后检测EdU30分钟，用Hoechst 33342染色30分钟。完成所有染色过程后，将水母安装在载玻片上，并用共聚焦显微镜获得图像。缩写:EdU = 5-乙炔基-2'-脱氧尿苷;FISH = 荧光原位杂交;PFA = 多聚甲醛;O.N. = 隔夜;HB = 杂交。请点击此处查看此图的大图。

图 3:Cladonema medusa 触手近端近端的 Nanos1 和 Piwi 表达模式。 （A）克拉多内玛美杜莎和触手的示意图。触手的近轴侧:触手球（最近端区域），在新分支部位依次形成新的分支。插图（虚线正方形）表示共聚焦图像捕获的区域。（B）来自7天龄Cladonema medusa触手近端近端近轴侧的Nanos1基因表达的FISH图像。（C） 来自 7 天大的 Cladonema medusa 触手近端、近端近端、近轴侧的 Piwi 基因表达的 FISH 图像。DNA:绿色，纳米1:洋红色。B'-C' 用于仅限 Nanos1 FISH 的图像。比例尺 = 100 μm （B，C）。缩写:FISH = 荧光原位杂交。请点击此处查看此图的大图。

图 4:Cladonema medusa 触手近端、近端、近轴侧的 EdU 和 Nanos1 表达模式。 （A-C） 与 Nanos1 表达和 EdU 共同标记的 Cladonema 美杜莎触手近端近端近轴侧的图像; 使用5天大的美杜莎。（A）触手概述。黄色虚线方块表示 B 和 C 的区域。（B）触手灯泡的放大。（C） 新分支站点的放大。黄色箭头表示EdU和Nanos1均呈阳性的细胞。黄色箭头表示仅对Nanos1呈阳性的细胞。白色箭头表示仅对 EdU 呈阳性的细胞。A-C面板是DNA（蓝色），EdU（绿色）和Nanos1（洋红色）的合并图像。A'-C' 是仅用于 EdU 图像的面板;A''-C''仅适用于Nanos1 FISH图像。比例尺 = 100 μm （A）， 50 μm （B， C）。（D）触手基底侧EdU-和/或Nanos1阳性细胞的定量（定量面积= 30.10μm²平方，n = 6，共249个细胞）。EdU⁺ 纳米1⁻细胞， 14.46%;EdU+ 纳米1⁺细胞， 19.79%;EdU⁻ 纳米1⁺细胞， 26.32%;EdU−纳米1⁻细胞，39.44%。（E）从近轴侧开始的Cladonema medusa触手示意图。EdU+细胞和Nanos1⁺细胞的总体分布分别以E和E'显示。请点击此处查看此图的大图。

表1:本协议中不同PCR反应和缓冲液的组成。 要计算连接反应中PCR产物（X μL）的体积，请参阅方案步骤1.4之后的注释。 请按此下载此表格。

增殖细胞和干细胞是形态发生、生长和再生等各种过程中的重要细胞来源^21，22。本文描述了一种通过FISH和EdU标记在水母乳中对干细胞标记物Nanos1进行共染色的方法。先前使用EdU或BrdU标记的工作表明，增殖细胞定位于触手球¹⁶，^17，但它们的分子特征尚不清楚。本研究显示了增殖细胞分布和Nanos1⁺干细胞样细胞定位的同时测定（图4）。结果表明，一些增殖细胞表达Nanos1，但其他细胞仅用EdU标记，不表达Nanos1，这表明存在干细胞异质性或潜在的其他增殖细胞。剖析Cladonema不同过程中的详细干细胞分布将很有趣，包括触手分支，组织稳态，器官再生和生殖细胞维持。

在动物中可视化干细胞的主要瓶颈是干细胞标志物的初步鉴定。在刺胞动物中，干细胞标志物尚未在非水生动物³中鉴定出来，因此，在现阶段，FISH在干细胞标志物中的直接应用仍然仅限于水生动物。然而，FISH允许在细胞水平上检测特定的基因表达，因此，通过改变探针，该方法可以扩展到详细观察任何感兴趣基因的空间表达模式。例如，使用祖细胞和分化细胞的标记，我们可以验证克拉多尼玛触手中特定细胞类型的分布。需要注意的是，由于表达水平和mRNA稳定性的差异，可能必须根据感兴趣的基因修改本方案。特别是，非特异性信号和弱信号是与FISH相关的常见问题。改变杂交时间和温度，使用漂白试剂（甲酰胺或甲醇）并调整其他参数（TSA反应时间，蛋白酶K处理，杂交后洗涤）可能产生更清晰的信号和更少的非特异性信号^23，24。选择适合正在使用的动物模型的FISH协议也很重要，因为即使在同一个分类单元⁷，²⁵，²⁶中^，一个FISH协议也可能不适用于其他物种。

EdU标记通常用于检测增殖细胞，但可以通过改变浓度和孵育时间²⁷用于不同的实验目的。为了检测增殖细胞，确定EdU掺入的成功持续时间和浓度至关重要。在这项工作中使用的脉冲标记中，仅标记了短时间通过S期的增殖细胞，并且已经使用类似的短孵育方法检测其他刺胞动物6，^28，29中的增殖细胞。相比之下，延长的EdU掺入和Nanos1 FISH的组合可能揭示慢循环或静止干细胞的存在²⁷。不仅可以标记增殖细胞，还可以标记经过DNA合成而没有分裂的内循环细胞。此外，通过更长时间地跟踪EdU标记的细胞，我们可以确定与增殖细胞及其细胞谱系相关的迁移和分化的细胞容量6^，30。

虽然^{已经使用了}FISH和EdU或BrdU染色的组合7，³¹，但这里建立的方法可以很容易地应用于其他海洋无脊椎动物和非模型动物^，包括不同的水母物种。EdU 染色比 BrdU 染色更简单、更灵敏¹⁸，并且孵育时间短，能够检测增殖细胞，这与之前使用 EdU 进行长期细胞标记的研究不同⁷。近年来，随着下一代测序技术的进步，许多物种的基因组和基因表达信息已经可用。鉴定干细胞和增殖细胞将继续是了解干细胞异质性和多样性的有效方法，并提供对不同生物现象背后的细胞动力学的见解。

作者没有利益冲突需要披露。

这项工作得到了AMED的支持，授权号为JP22gm6110025（致Y.N.）和JSPS KAKENHI资助号为22H02762（致Y.N.）。