Method Article
* Bu yazarlar eşit katkıda bulunmuştur
Burada, hücrelerin reolojik özelliklerini ölçmek için optik cımbız ve defokus mikroskobuna dayanan entegre bir protokol açıklanmaktadır. Bu protokol, değişken fizyo-patolojik koşullar altında eritrositlerin viskoelastik özelliklerinin incelenmesinde geniş uygulanabilirliğe sahiptir.
Eritrositlerin viskoelastik özellikleri bir dizi teknikle araştırılmıştır. Bununla birlikte, bildirilen deneysel veriler farklılık göstermektedir. Bu sadece hücrelerin normal değişkenliğine değil, aynı zamanda hücre yanıtının yöntem ve modellerindeki farklılıklara da atfedilir. Burada, 1 Hz ila 35 Hz frekans aralığında kırmızı kan hücrelerinin reolojik özelliklerini elde etmek için optik cımbız ve bulanıklaştırma mikroskobu kullanan entegre bir protokol kullanılır. Eritrosit-kompleks elastik sabitini ölçmek için optik cımbız kullanılırken, defokus mikroskobu hücre yüksekliği profilini, hacmini ve form faktörünü karmaşık elastik sabitin karmaşık kesme modülüne dönüştürülmesine izin veren bir parametre elde edebilir. Ayrıca, yumuşak camsı bir reoloji modeli uygulanarak, her iki modül için ölçekleme üssü elde edilebilir. Geliştirilen metodoloji, çeşitli fizyolojik ve patolojik durumlar için iyi tanımlanmış deneysel koşullar altında elde edilen viskoelastik parametrelerini karakterize eden kırmızı kan hücrelerinin mekanik davranışlarını keşfetmeye izin verir.
Eritrositler olarak da bilinen olgun kırmızı kan hücreleri (RBC'ler), insan vücudunun en dar kılcal damarlarından geçerken boyutlarının iki katından fazla uzayabilirler1. Bu kapasite, dış yüklere maruz kaldıklarında deforme olma konusundaki benzersiz yeteneklerine atfedilir.
Son yıllarda, RBC yüzeylerinde farklı çalışmalar bu özelliği karakterize etmiştir 2,3. Malzemelerin dış yüklerden kaynaklanan elastik ve viskoz tepkilerini tanımlayan fizik alanına reoloji denir. Genel olarak, bir dış kuvvet uygulandığında, ortaya çıkan deformasyon malzemenin özelliklerine bağlıdır ve enerjiyi dağıtan enerjiyi depolayan elastik deformasyonlara veya viskoz deformasyonlara ayrılabilir4. RBC'ler de dahil olmak üzere tüm hücreler viskoelastik bir davranış sergiler; Başka bir deyişle, enerji hem depolanır hem de dağıtılır. Bir hücrenin viskoelastik tepkisi, karmaşık kesme modülü G * (ω) = G' (ω) + iG "(ω) ile karakterize edilebilir, burada G' (ω) elastik davranışla ilgili depolama modülüdür ve G" (ω), viskozitesi4 ile ilgili kayıp modülüdür. Dahası, hücre tepkilerini tanımlamak için fenomenolojik modeller kullanılmıştır, en çok kullanılanlardan biri, karmaşık kesme modülünün yük frekansı ile güç yasası bağımlılığı ile karakterize edilen yumuşak camsı reoloji modeli5 olarak adlandırılır.
RBC'lerin viskoelastik özelliklerini karakterize etmek için, kuvvet uygulayarak ve dayatılan yükün bir fonksiyonu olarak yer değiştirmeyi ölçerek tek hücreli tabanlı yöntemler kullanılmıştır 2,3. Bununla birlikte, kompleks kesme modülü için literatürde çok az sonuç bulunabilir. Dinamik ışık saçılması kullanılarak, RBC depolama ve kayıp modülü için değerlerin 1-100 Hz6 frekans aralığında 0,01-1 Pa arasında değiştiği bildirilmiştir. Optik manyetik büküm sitometrisi kullanılarak, görünür bir kompleks elastik modülelde edildi 7 ve karşılaştırma amacıyla, çarpım faktörünün muhtemelen tutarsızlıkları açıklığa kavuşturduğu iddia edildi.
Daha yakın zamanlarda, zamana bağlı yükler üzerinde insan eritrositlerinin kesme modüllerinin depolanmasını ve kaybını nicel olarak haritalamak için entegre bir araç olarak optik cımbıza (OT) ve defokus mikroskobuna (DM) dayanan yeni bir metodoloji kuruldu 8,9. Ek olarak, sonuçlara uymak ve RBC'leri karakterize eden bir güç yasası katsayısı elde etmek için yumuşak bir camsı reoloji modeli kullanıldı 8,9.
Genel olarak, protokolü aşağıda ayrıntılı olarak açıklanan geliştirilen metodoloji8,9, kuvvet ve deformasyonları RBC yüzeyindeki gerilmeler ve gerinimlerle ilişkilendiren ve farklı kana sahip bireylerden elde edilen RBC'lerin viskoelastik parametrelerini ve yumuşak camsı özelliklerini nicel olarak belirleyebilen yeni bir tanı yöntemi olarak kullanılabilen form faktörü Ff için ölçülen değerleri kullanarak önceki tutarsızlıkları açıklığa kavuşturur Patoloji. Aşağıda açıklanan protokolü kullanarak bu tür bir karakterizasyon, RBC'lerin davranışını mekanobiyolojik bir perspektiften anlamak için yeni olanaklar açabilir.
İnsan kan örnekleri, Rio de Janeiro Federal Üniversitesi Araştırma Etik Komitesi (Protokol 2.889.952) tarafından onaylanan protokollere göre yetişkin erkek ve kadın gönüllüler tarafından sağlanmış ve 88140418.5.0000.5699 CAAE numarası altında Brezilya Platformuna kaydedilmiştir. Tüm gönüllülere yazılı bir onay formu verildi ve onlardan toplandı. Herhangi bir hemoglobinopatisi olan ve / veya kontrollü ilaç kullananlar hariç tutuldu. Tüm süreç, enstitünün etik kurulu tarafından onaylanan yönergeleri takip etti.
1. Numune tutucuların hazırlanması
2. Hücre kültürü
NOT: Aşağıdaki adımlar, insan kanından sağlıklı RBC'lerin nasıl elde edileceğini açıklamaktadır. Numunelerin her deneyden önce taze olarak hazırlanması önemlidir.
3. Optik cımbız mikroskop kurulumu
NOT: OT, mikroskobik nesneleri yakalamak ve pikonewton aralığındaki kuvvetleri ve nanometre ölçeğindeki yer değiştirmeleri ölçmek için oldukça odaklanmış bir lazer ışını kullanan araçlardır. Kullanılan OT lazer (1064 nm dalga boyu), daha önce tarif edildiği gibi düzgün bir şekilde hizalanmalıdır10.
4. DM kurulumu
NOT: DM, mikroskop hafifçe bulanıklaştırıldığında saydam nesnelerin görünür olmasını sağlayan parlak alan tabanlı bir optik mikroskopi tekniğidir11,12. RBC şekil13'ü elde etmek için böyle bir teknik uygulanmıştır. OT sistemi için kullanılan aynı mikroskop, 3D rekonstrüksiyonlar yoluyla bir yükseklik profili elde etmek için DM için kullanılabilir.
5. OT tabanlı reoloji deney ve analizi
NOT: Reoloji deneyi, hücrenin değişen frekanslardaki küçük salınımlara verdiği tepkileri gözlemlemekten ibarettir.
6. Genel hücre form faktörünü elde etmek için DM deneyi ve analizi
7. Yumuşak camsı reoloji modeli ve deneysel analiz
Şekil 1, reoloji ölçümleri için kullanılan OT sisteminin şematiklerini göstermektedir. Şekil 2, her iki küre ile mikroreoloji deneyinin şematiklerini göstermektedir ve temsili bir RBC de gösterilmiştir. Şekil 3, sinüzoidal hareketlerin piezoelektrik aşama tarafından üretildiği zamanın bir fonksiyonu olarak her iki kürenin genlikleri için tipik bir eğri göstermektedir. Referans küre (Şekil 3 - kırmızı eğri) sahne hareketini takiben salınırken, RBC küresi (Şekil 3 - mavi bir eğri) farklı bir genlik ve faz ile salınır. Bu parametreleri ölçerek, numunedeki farklı RBC'ler için karmaşık elastik sabit K* (ω) belirlemek mümkündür. Şekil 4, kayıp elastik sabiti K" (ω) 'nin bir fonksiyonu olarak depolama elastik sabiti K' (ω) için tipik bir grafik göstermektedir. Gözlemlenen doğrusal bağımlılık, RBC yüzeyinin yumuşak camsı bir malzeme olarak kabul edilebileceğini göstermektedir. Daha sonra, genel hücre form faktörü olan Ff'yi elde etmek için bir DM prosedürü gereklidir ve Şekil 5, Şekil 6 ve Şekil 7, amaç için gerekli adımlardan bazılarını içerir. Daha sonra, kuvvetleri ve deformasyonları gerilmelere ve gerinimlere dönüştürmek için, K * (ω) 'yi G * (ω) 'ye dönüştürmek gerekir.
Karmaşık RBC elastik sabiti K* (ω) = K' (ω) + iK" (ω) olarak tanımlanır. Ayrıca, K* (ω), RBC kompleks kesme modülü G* (ω) = G' (ω) + iG" (ω) ile ilişkilidir. G' (ω) ve G" (ω) sırasıyla RBC kesme depolama ve kayıp modülüdür. K* (ω) ve G* (ω) arasındaki ilişki şu şekilde verilir:
burada F, daha önce de belirtildiği gibi RBC geometrisine bağlı bir form faktörüdür ve ζ, daha önce ζ = (0,087 ± 0,009) μm 8,15 olarak belirlenen RBC membran kalınlığıdır.
Ayrıca, depolama G' (ω) ve G" (ω) kayıp kesme modülü,sırasıyla 8,9 denklemleri aracılığıyla depolama K' (ω) ve kayıp K" (ω) elastik sabitleri ile ilişkilidir
ve
Sırasıyla G' (ω) ve G" (ω), Err G' ve Err G" için standart hataları bulmak için, aşağıdaki denklemlere göre 8,9'a göre, belirsizlikler denklemlerinin K' (ω) ve K " (ω) sonuçlarıyla yayılmasını kullanın:
.
Yumuşak camsı reoloji teorisine göre, RBC'ler emülsiyonlar, macunlar ve bulamaçlargibi viskoelastik malzemeler gibi davranırlar 8,9 ve depolama ve kayıp modülleri aşağıdaki denklemlere uyar:
Böylece, G m'nin hücre zarı kesme modülü olduğu yerde, G 0 düşük frekanslı depolama modülüdür Γ orandır, α yumuşak camsı reoloji modelinin güç yasası üssüdür ve ω0 = 1 rad / s 8,9'dur.
Ff ve ayrıca RBC yüzey kalınlığı ζ için bulunan değerler kullanılmıştır (87 ± 8 nm 8,9,15 olarak tahmin edilmektedir). Sonuçlar Şekil 8, Şekil 9 ve Şekil 10'da gösterilmiştir. Yine, G' ve G" arasındaki doğrusal bağımlılık, RBC yüzeylerinin yumuşak camsı malzemeler olarak modellenebileceği hipoteziyle uyumludur. Ayrıca, bu grafiğin doğrusal uyumundan G m değeri elde edilebilir ve bu değeri G" nin yumuşak camsı reoloji eğrisi uyumuna sokarak, G0 ve α değerleri belirlenir (Şekil 11 - mavi bir eğri). Ayrıca, G0 için elde edilen sonucu kullandıktan ve G' nin yumuşak camsı reoloji eğrisi uyumuna ekledikten sonra, hata çubukları içinde üs için aynı değer türetilir (Şekil 11 - yeşil bir eğri).
Resim 1: OT mikroskobunun şematik gösterimi. Tüm sistem titreşim önleyici bir masa üzerine inşa edilmiştir. Lazer, en az iki farklı dikroik ayna (beyaz) kullanılarak hizalanır ve başka bir dikroik ayna (açık mavi) kullanılarak mikroskop objektif lensinin arka girişine yönlendirilir. Piezoelektrik bir sahne ve bir bilgisayara bağlı dijital bir bilimsel kamera da gereklidir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: Mikroreoloji deneyinin şematiği. Referans küre (koyu gri) kapak kaymasına tutturulur ve RBC küresi (mavi) eritrosit yüzeyine (kırmızı) tutturulur ve OT tarafından tutulur (lazer açıkken şeftali üçgenleri ile gösterilir). ρ , RBC küresinin tuzaktaki denge konumudur; ξ , numunenin sinüzoidal hareketidir ve x, hücre deformasyonudur. Şematik görüntü Biorender'da oluşturuldu. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3: Piezoelektrik aşama tarafından sinüzoidal hareketler üretildiğinde her iki kürenin zaman içindeki genliklerini (μm) gösteren grafik. Referans küre (kırmızı eğri) sahne hareketini takiben salınırken, RBC küresi (mavi eğri) farklı bir genlik ve faz ile salınır. Sağdaki yeşil ok veri seçim aracını, sarı ok ise yakınlaştırma seçim aracını gösterir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 4: RBC mikroreoloji sonuçları. Elastik sabiti, numunedeki farklı RBC'ler için kayıp elastik sabitinin bir fonksiyonu olarak saklayın (n = üç farklı numuneden 10 farklı hücre). Veri noktaları, hem K ' (y ekseni) hem de K" (x ekseni) ortalama değerlerini, deney kurulumunda kullanılan her açısal frekans için elde edilen ilgili hata çubuklarıyla (ortalamanın standart hatası) temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 5: Bir RBC'ye uygulanan DM . (A) Bulanıklaştırılmış görüntü, boyut = 2 μm. (B) Netlemedeki görüntü. (C) Arka plan resmi. Her görüntüyü (A) ve (B) arka plan görüntüsüne (C) bölerek ve ardından her görüntünün ortalama gri değeri ile çarparak, (D) ve (E) görüntülerini elde etmek mümkündür. Ölçek çubuğu: 5 μm. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 6: Arka plan gri seviyesi N0. Temsili görüntüyü ImageJ (A) içinde açtıktan sonra, arka plan gri düzeyinin ve sonucun (B) ortalama değerini elde etmek için kullanılan bir bölge (RBC hücresinin etrafındaki sarı geometrik şekil) seçin. A'da sarı seçimi gerçekleştirmek için, Resim J'nin çokgen seçim aracını kullanın (yeşil okla gösterilir). Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 7: Deforme olmuş RBC için yükseklik profili. Görüntünün dikey sarı çizgisi (sağda) boyunca temsil edilen yükseklik profili (solda). Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 8: Analiz yazılımındaki tipik bir sonuç tablosunun temsili ekran görüntüsü. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 9: RBC viskoelastik parametreleri. Kesme modülünü, numunedeki farklı RBC'ler için kayıp kesme modülünün bir fonksiyonu olarak saklayın (n = üç farklı numuneden 10 farklı hücre). Veri noktaları, deneylerde kullanılan her açısal frekans için elde edilen ilgili hata çubuklarıyla (ortalamanın standart hatası) hem G' (y ekseni) hem de G " (x ekseni) ortalama değerlerini temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 10: G " (Pa)'nın bir fonksiyonu olarak G ' (Pa)'nın eğri uyumu. Doğrusal siyah çizgi, veri noktaları için uygun eğridir. N = Üç farklı örnekten 10 farklı hücre. Hata çubukları, ortalamanın standart hatasını temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 11: Yumuşak camsı reoloji modelinin sonuçlara göre ayarlanması. Numunedeki farklı RBC'ler için açısal frekans ω'un bir fonksiyonu olarak karmaşık kesme modülü (G*). Grafikteki yeşil daireler G'nin ortalama değerlerini temsil ederken, mavi daireler G'nin ortalama değerlerini temsil eder. Sürekli yeşil ve mavi çizgiler, yumuşak camsı reoloji modeli için eğri bağlantı parçalarını temsil eder. m1, m2ve m3parametreleri grafikte belirtilmiştir. m1 G0 iken, m2 ve m3üs oluştururken, α. N = üç farklı örnekten 10 farklı hücre. Hata çubukları, ortalamanın standart hatasını temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Ek Dosya 1: ImageJ eklentisi DivideQ2.class. Bu Dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.
Ek Dosya 2: ImageJ, form faktörünü elde etmek için makroyu özelleştirdi. Bu Dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.
Bu protokolde, RBC'lerin viskoelastik özelliklerini nicel olarak haritalamak için optik cımbız ve defokus mikroskobuna dayanan entegre bir yöntem sunulmaktadır. depolama ve kayıp kesme modülü için sonuçlar, RBC'nin yumuşak camsı reolojisini karakterize eden ölçekleme üssü ile birlikte belirlenir. Bu protokolün, fizyolojik durum8'de veya P. falciparum intra-eritrositik siklus9'un her aşaması boyunca olduğu gibi farklı deneysel koşullar için uygulanması zaten gerçekleştirilmiştir.
Literatürdeki referanslar, RBC reolojisindeki tutarsızlıklara işaret etmekte olup, kısmen ölçümler sırasında uygun şekilde dikkate alınmayan hücre morfolojisindeki değişikliklere atfedilmektedir 6,7. Dinamik ışık saçılması kullanılarak, RBC depolama ve kayıp modülü için değerler, 1-100 Hz6 frekans aralığında 0,01-1 Pa arasında değişen değerler bildirilmiştir. Başka bir çalışmada, optik manyetik büküm sitometrisi kullanılarak, görünür kompleks elastik modül7 olarak belirlendi, ancak dinamik ışık saçılma değerlerinden ayrıldı; Böylece, karşılaştırmalı amaçlar için 84'lük bir çarpma faktörü kullanılmıştır. Bu protokolde açıklanan prosedürleri takiben, bu farklılıklar noninvaziv bir defokus mikroskobu tekniği 11,12,13 kullanılarak RBC form faktörü karakterize edilerek açıklığa kavuşturulmuştur 8. Hücre yüzeylerini karakterize eden karmaşık kesme modülü, ancak geometri16,17 olarak kabul edilirse ve bu her zaman uygun şekilde gerçekleştirilmemişse elde edilebilir.
Bu protokolde sunulan entegre metodoloji, aynı tek hücre için birbiri ardına her iki yöntemin de (OT ölçümü ve DM ölçümü) gerçekleştirilmesine izin verir. Ayrıca, bir popülasyondaki farklı hücreler için OT ölçümleri yapmaya ve daha sonra aynı hücre popülasyonundaki diğer hücreler için DM ölçümleri yapmaya izin verir. Son seçenek muhtemelen her iki sonuca da daha fazla değişkenlik getirecektir, ancak hatalar, sonuçların genel RBC morfolojisini, belirli bir deneysel duruma karşılık gelen belirli bir hücre popülasyonundaki genel RBC viskoelastik özellikleriyle ilişkilendireceği şekilde buna göre yayılabilir.
Bu protokolün yürütülmesinin ana sınırlaması, optik cımbız ve defokus mikroskobunun bir entegrasyonu olduğu için yöntemin kendisini gerçekleştirmedeki içsel zorluktur; Bu nedenle, açıklanan tüm adımları gerçekleştirmek için cihazların mevcudiyeti zor olabilir. Bununla birlikte, bir OT tesisine erişimi varsa, sonunda deneyleri gerçekleştirmek için tesisi uyarlamak çok daha uygundur. Mevcut protokolün uyduğu yer burasıdır, sadece ölçümleri ve analizleri gerçekleştirmek için her adımı detaylandırmakla kalmaz, aynı zamanda insanların sıfırdan bir kurulum oluşturmak yerine bu OT sistemlerini tanımlamalarına ve benimsemelerine yardımcı olur.
Ayrıca, kapaklara RBC bağlanması, yapışkan olmayan hücreler oldukları için sınırlayıcı bir faktör haline gelir ve bu tür adımlar, bazı RBC'ler ayrılabileceğinden, ölçümlerde zorluklara neden olabilir. Bu nedenle, iyi yapışmış bir RBC seçmek önemlidir. Seçimin başarılı olup olmadığını kontrol etmenin bir yolu, numunenin ölçüm için hazırlanması sırasında gerçekleşebilir. OT sıkışmış RBC küresini hücre yüzeyine yerleştirdikten sonra, hücrenin sıkıca sabitlendiğinden ve OT sıkışmış boncuğun ardından konumunun değişmediğinden emin olmak için numuneyi hafifçe hareket ettirin. Bu durumda, örnekte başka bir hücre arayın. RBC'yi aynı anda yakalamak ve reoloji ölçümlerini aynı anda gerçekleştirmek için çift ışınlı OT kullanımı gibi gelecekteki iyileştirmeler de yapılabilir.
Bunun dışında, RBC'lerin tek hücre bazlı kantitatif viskoelastik bilgilerini çıkarma olasılığı, yeni keşfedilmeye başlanan çeşitli uygulamalara olanak tanır 8,9. Bu nedenle, sunulan yöntem, örneğin orak hücre hastalığı ve talasemi gibi diğer fizyo-patolojik durumlar altında veya orak hücre hastalığı ve talasemi gibi genetik kan hastalıklarında RBC mekanik davranışının karakterizasyonuna genişletilebilir. Böyle bir entegre araç, RBC viskoelastik özelliklerindeki değişiklikleri farklı patolojilere sahip bireylerin kan akışındaki değişikliklerle ilişkilendirebilen yeni tanı yöntemlerinin geliştirilmesi için temel sağlayabilir.
Yazarların bu makalede açıklanan ürünlerde hiçbir finansal çıkarları yoktur ve açıklayacak başka bir şeyleri yoktur.
Yazarlar, CENABIO gelişmiş mikroskopi tesisinin tüm üyelerine tüm önemli yardımları için teşekkür etmek isterler. Bu çalışma Brezilya ajansları Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) - Financial Code 001, Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro (FAPERJ) ve Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Fluidos Complexos (INCT-FCx) ile Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) tarafından desteklenmiştir. B.P., FAPERJ'den bir JCNE hibesi ile desteklendi.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
35mm culture dishes | Corning | 430165 | |
Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | A9418 | |
Coverslips | Knittel Glass | VD12460Y1A.01 and VD12432Y1A.01 | |
Glass-bottom dishes | MatTek Life Sciences | P35G-0-10-C | |
Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
ImageJ | NIH | https://imagej.nih.gov/ij/ | |
Immersion oil | Nikon | MXA22165 | |
Inverted microscope | Nikon | Eclipse TE300 | |
KaleidaGraph | Synergy Software | https://www.synergy.com/ | |
KCl | Sigma-Aldrich | P5405 | |
KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P5655 | |
Microscope camera | Hamamatsu | C11440-10C | |
Na2HPO4 | Sigma-Aldrich | S5136 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S5886 | |
Neubauer chamber | Sigma-Aldrich | BR717805-1EA | |
Objective lens | Nikon | PLAN APO 100X 1.4 NA DIC H; PLAN APO 60x 1.4 NA DIC H and Plan APO 10x XXNA PH2 | |
Optical table | Thorlabs | T1020CK | |
OT laser | IPG Photonics | YLR-5-1064-LP | |
Polystyrene microspheres | Polysciences | 17134-15 | |
rubber ring | Forever Seals | NBR O-Ring | |
Silicone grease | Dow Corning | Z273554 | |
Stage positioning | PI | P-545.3R8S | |
Pipette | Gilson | P1000 |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır