Schwann Hücre Fenotip Spesifikasyonunu Değerlendirmek Için Hücre Dışı Matriks Mikroortamlarının Hazırlanması

Bu metodoloji, substrat sertliği, protein bileşimi ve hücre morfolojisi gibi hücre dışı matris ipuçlarının Schwann hücresi (SC) fenotipini düzenleyen mekanizmalarını göstermeyi amaçlamaktadır.

Travmatik periferik sinir sistemi (PNS) yaralanmaları şu anda tam fonksiyonel iyileşme yitirmek için uygun tedaviler eksikliği. Schwann hücreleri (SCs), PNS önemli glial hücreleri olarak, yaralanma sonrasında bir rejeneratif hücre fenotip içine dedifferentiating tarafından PNS rejenerasyon teşvik hayati bir rol oynamaktadır. Ancak, SCs defarklılaştırılmış devlet rejenerasyon için gerekli zaman dilimi boyunca korumak için zor ve çevreleyen ekstrasellüler matris (ECM) değişikliklerden etkilenir. Bu nedenle, SC'lerin rejeneratif potansiyeline ilişkin ipuçları sağlamak için SC'ler ile farklı ECM arasındaki karmaşık etkileşimin belirlenmesi esastır. Bunu gidermek için, farklı ECM proteinlerinin sertlik ve protein bileşiminin modüle edilebildiği bir platform sağlayan, ölçülü polidimetilsiloksane (PDMS) substratına adsord edildikleri bir strateji oluşturuldu. SC'ler ölçülebilir yüzeylere tohumlanmış ve SC fenotipinin dinamiklerini temsil eden kritik hücresel fonksiyonlar ölçüldü. SC protein ekspresyonu ile hücresel morfoloji arasındaki etkileşimi göstermek için, bireysel mikrotemas baskılı hücresel desenlere ek olarak SC'lerin farklı tohumlama yoğunlukları kullanıldı ve immünfloresans boyama ve batı lekesi ile karakterize edildi. Sonuçlar, daha küçük yayılma alanı ve hücresel uzama daha yüksek ölçüde olan hücrelerin sc rejeneratif phenotipik belirteçleri daha yüksek düzeyde teşvik gösterdi. Bu metodoloji sadece ECM ve SCs hücresel fonksiyonu arasındaki önemli ilişkiyi çözmek için başlar, ama aynı zamanda periferik sinir onarım biyomalzemelerin gelecekteki optimizasyonu için kurallar sağlar.

Periferik sinir sistemi (PNS) yaralanmaları hastalar için yaşam kalitesini tehlikeye atarak ve sosyoekonomik faktörlerin çok sayıda ile önemli bir etki yaratarak sağlık önemli bir klinik sorun olmaya devam etmektedir^1,2. Schwann hücreleri (SC), PNS'deki başlıca glial hücreler olarak, PNS rejenerasyonuna neden olmak ve kısa boşluk yaralanmalarında fonksiyonel iyileşmelere yardımcı olmak için gerekli moleküler ve fiziksel ipuçlarını sağlar. Bunun nedeni, SC'lerin miyelinating veya Remak fenotip^3'ten"onarım" hücre fenotipine ayrıştırma yeteneğine sahip olmasıdır. Onarım SC çeşitli şekillerde ayırt edici bir hücre fenotip. Yaralanmadan sonra, SC'ler hücre döngüsüne yeniden girerek çoğalma hızlarını artırır lar ve reinnervasyonu kolaylaştırmak için çeşitli transkripsiyonel faktörlerin ekspresyonuna başlarlar. C-Jun ve p75 NTR gibi bu faktörler, miyelin temel protein (MBP) gibi miyelinating SC belirteçleri, downregulated^4,,5ise upregulated vardır. Buna ek olarak, SCs uzun olmak için morfolojideğiştirmek ve yaralanma site⁶genelinde Büngner bantları oluşturmak için birbirleri ile hizalanmış . Bu aksonlar için doğru distal hedef⁷genişletmek için fiziksel bir rehberlik mekanizması sağlar. Ancak, SCs kısa boşluk yaralanmalarında sinir rejenerasyonu teşvik etmek için sahip yeteneğine rağmen, fonksiyonel iyileşme sonucu ciddi yaralanmalarda kötü kalır. Bu kısmen ekstrasellüler matriks kaybı nedeniyle (ECM) rehberlik ipuçları, hem de uzun süreler boyunca rejeneratif fenotip korumak için SCs yetersizlik⁸.

Sinir rejenerasyon ve iyileşme süreci yakından yaralanma sonrasında bazal lamina durumuna bağlıdır. Bazal lamina rehberlik kolaylaştırır ve yaralanma⁹aşağıdaki bozulmadan kalır durumlarda akson ve SCs için ECM bağlı ipuçları sağlar sinir etrafında ECM bir tabakadır . ECM durumu ve hücrelere matris bağlı ipuçları sunmak için yeteneği hayati önem taşımaktadır ve daha önce farklı bağlamlarda çeşitli araştırılmıştır^{10,11,12,13,14}. Örneğin, ECM sertliği gibi çoğalma ve farklılaşma^11,,15,16gibi hücre fonksiyonları rehberlik göstermiştir. ECM bileşimi de farklı bir hücresel yanıt yol açabilir ve hücre içi sinyal yolları 17 ile göç ve farklılaşma gibi hücre davranışlarını düzenleyen^17,18. Ayrıca, hücre morfolojisi, yayılma alanı ve hücresel uzama da dahil olmak üzere, fonksiyonudüzenleyen önemli bir rol oynamaktadır ve ECM bağlı ipuçları tarafından yönetilebilir^19,20. Birçok önceki çalışmalarda kök hücrelerin tanımlanmış soylara farklıştırılması üzerinde duruldu, henüz SCs bir homeostatik fenotipi değiştirmek için benzer bir yeteneğe sahip, sağlıklı bir sinir içinde yetişkin SC, bir onarım SC protein ve büyüme faktörleri salgılama yeteneğine sahip ise Sinir yaralanması aşağıdaki ECM remodeling^5,21. Bu nedenle, özellikle doğuştan Gelen SC rejeneratif kapasite ve ECM bağlı ipuçları arasındaki ilişkinin altında yatan mekanizmaları belirlemek için sonuçta sinir rejenerasyonu için bu kapasiteyi koşum içgörü için çok önemlidir.

Bu sorunu çözmek için, mekanik sertlik ve ligand tipinin fizyolojik olarak uygun aralıklarda kolayca ayarlanabildiği bir hücre kültürü alt katmanı üretmek için ayrıntılı bir metodoloji geliştirdik. Polidimethyl siloksan (PDMS) poliakrilamid jel ile karşılaştırıldığında son derece table mekaniği nedeniyle bir substrat olarak seçildi, maksimum Genç modülü yaklaşık 12 kPa yaklaşık 1000 kPa^22,,,24PDMS tezat .²³ Bu eldeki çalışma için yararlıdır, son çalışmalar bir tavşan siyatik sinir Young modülü göstermiştir gibi gelişme sırasında 50 kPa aşabilir, böylece PNS içinde sinirlerin sertlik aralığı daha önce incelenen daha geniş olduğunu düşündürmektedir. Farklı proteinler, mekanik ve ligandların SC davranışı nın kombinatoryal regülasyonlarını analiz etmek için PDMS yüzeyleri üzerine adsorpsiyon yapabilme yeteneğine sahiptir. Bu, PNS rejenerasyon sürecinde bulunan birden fazla mikroçevresel ipuçlarının araştırılmasına ve sadece^25. Ayrıca, bu mühendislik hücre kültürü substratları immünohistokimya, batı lekeve kantitatif polimeraz zincir reaksiyonu (q-PCR) gibi çok sayıda kantitatif analiz yöntemi ile uyumludur.

Bu tasarlanmış hücre kültürü platformu, her ECM'ye bağlı sinyalin bireysel ayarı yüksek düzeyde nedeniyle mekanistik yolları analiz etmek için son derece uygundur. Buna ek olarak, mikrotemas baskı da dahil olmak üzere hücre mikrodesenleme için popüler yöntemler, diğer ECM bağlı ipuçları 24 ile ilgili olarak hücre şeklini analiz etmek için kontrollü hücresel yapışma sağlamak için yüzeyler üzerinde elde edilebilir²⁴. Bu çok önemlidir, çünkü hücre popülasyonlarında uzamayı teşvik eden çizgi desenli yüzeyler, sinir rejenerasyonu sırasında Büngner bantları içindeki uzamış ve rejeneratif SC'leri taklit etmek ve incelemek için bir araç sağlar. Ayrıca, hücresel morfoloji birden fazla hücre fonksiyonlarının güçlü bir düzenleyici ve potansiyel olarak^26,,27kontrollü değilse şaşırtıcı deneysel sonuçlar tanıtabilir. ECM ipuçları²⁸,^29,,30tarafından düzenlenen olarak SC rejeneratif fenotip yöneten mekanizmalar şimdi önemli dikkat sağlanmaktadır. Bu PNS sinir rejenerasyonu yardım için sinir rehberlik kanalları olarak uygulanabilir biyomalzemelerin tasarımı içine fikir sağlamak için gereklidir. Bu ayrıntılı protokoller sonuçta ECM bağlı ipuçları tarafından düzenlenen SC ve diğer hücre tipi fonksiyonunun mekanizmaları deşifre etmek için potansiyel bir araç olarak uygulanabilir.

1. Tunable hücre kültürü substrat hazırlama ve karakterizasyonu

1. Substrat hazırlama
   1. 10:1 ile 60:1 arasında bir oranda pipet ucu kullanarak PDMS baz elastomer ve kür ajanlarını karıştırın, kabarcıklar karışım içinde homojen bir şekilde dağılına kadar. Kabarcıklar dağılına kadar vakum desiccation kullanarak kabarcıklar kaldırın.
      NOT: PDMS polimerizasyonu sırasında, son polimer istenilen mekanik özellikleri sağlamak için baz elastomer ile kür ajan çapraz bağlantılar. Çapraz bağlantı oranları, PDMS sertliğini değiştirmek için ayarlanabilir.
   2. Bir kare veya dairesel kapak lı (örneğin, 22 mm x 22 mm) üzerine kurutulmuş PDMS karışımıbir damla (~0,2 mL) yerleştirin ve 30 s için 2500 rpm bir spin coater üzerinde coverslip döndürün.
   3. PDMS'nin katılaması için kapak kaymasını 60 °C'de 1-2 saat veya oda sıcaklığında bir gecede kuluçkaya yatırın.
   4. Yüzey hidrofililiğini artırmak için 7 dk (UV dalga boyu: 185 nm ve 254 nm) uv-ozon temizleyici kullanarak coverslip'i tedavi edin. Sterilize edilmiş 6 kuyulu bir tabağa koyun.
   5. Hücre kültürü için kullanmadan önce, en az 30 dakika boyunca% 70 etanol inkübasyon yüzeyler.
      DİkKAT: UV-Ozon temizleyici insanlar için zararlı ozon üretebilir. Kimyasal bir duman kaputunda veya bir çeşit havalandırma ile çalışın.
   6. 37 °C'de steril bir kuluçka makinesinde 60 dakika boyunca protein çözeltisine (10 μg/mL kollajen I, fibronektin veya laminin) kapak lar batırın.
      NOT: UV-Ozon tedavisi nin ardından PDMS yüzeyi hala hidrofobik olabilir. Her coverslip protein çözeltisi ile kaplı olduğundan emin olmak için kuyu plakası döndürün.
   7. Protein çözeltisini aspire edin ve kapak kaymasını fosfat tamponlu salin (PBS) 3x ile yıkayın.
   8. RT4-D6P2T Schwann hücre hattını (SCs) ticari olarak kullanılabilir EDTA çözeltisi (1x) kullanarak %2,5 tripsin içeren çanak geçişinden uzaklaştırın ve hemositometreli hücreleri sayın. İstenilen hücre yoğunluğunda taşınabilir PDMS yüzeyinde tohum C'leri. SC tohumlama yoğunlukları her farklı uygulama için değişebilir.
   9. Deney boyunca hücreleri istenilen hücre kültürü parametrelerinde (%90 nem, %5 CO_2,37 °C, vb.) koruyun. Hücre kültürü aracı olarak %10 fetal sığır serumu (FBS) ve %1 penisilin-streptomisin ile desteklenen Dulbecco'nun Modifiye Kartal Orta (DMEM) kullanın.
2. Mikro desenli substrat hazırlama
   1. Bilgisayar destekli tasarım (CAD) yazılımı kullanarak istenilen geometri ve hücre yapıştırıcı alanlarını (900 μm², 1600 μm² ve 2.500 m²⁾çizin. Ticari bir tedarikçinin bu desenlerini temel alan bir krom fotoğraf maskesi oluşturun.
   2. Temiz bir odada veya tozsuz bir ortamda, silikon gofret ler imal etmek için standart fotolitografi tekniklerini kullanın (protokoller başka bir yerde^{ayrıntılı 31).} Bu özel uygulama için kritik parametreler şunlardır: Photoresist: SU-8 2010; Fotodirenç dağıtmak için spin profili: 100 rpm/s ivme ile 10 s için 500 rpm, sonra 30 0 s için 3500 rpm 300 rpm/s ivme ile; UV ışığının pozlama enerjisi: 130 mJ/cm².
      NOT: Silikon gofretlerin desen yüksekliği bu parametreleri takip ederek yaklaşık 10 μm'dir. Dikdörtgen veya üçgen desenler dışında kenar çevresinde potansiyel çatlaklar adım 1.2.2 sonra bir ışık mikroskop kullanılarak görülebilir. 30 dk için 190 °C'de silikon gofret pişirme çatlaklar ortadan kaldırmak için yardımcı olur.
   3. Desenli silikon gofreti dairesel 150 mm çapında x 15 mm yüksekliğindepetri kabın içine yerleştirin ve 1.1.1 adımda hazırlanan gazsız PDMS'yi (karıştırma oranı 10:1) silikon gofrete dökün.
      NOT: Mikrotemas baskı basamaklarında kullanım kolaylığı için PDMS kalınlığının en az 5 mm olduğundan emin olun.
   4. PDMS'yi bir gecede 60 °C'de bir fırında silikon gofret üzerinde katılatın. PDMS'nin oda sıcaklığına kadar soğumasını bekleyin. Cerrahi bir neşter kullanarak silikon gofretten doğru desenleri içeren 30 mm x 30 mm karelik pulları kesin olarak kesin olarak kesin. Silikon gofrete zarar vermez.
      NOT: Silikon gofret izopropanol ile temizlik sonrasında daha fazla pul üretmek için bu noktada birçok kez yeniden kullanılabilir.
   5. PDMS pulları ve table kapakları (adım 1.1.1 ila 1.1.3 olarak hazırlanır) 30 dakika boyunca %70 etanol içine daldırarak sterilize edin.
   6. Mikrotemas baskıdan sonra PDMS pulları ile mikrodesenin etkinliğini doğrulamak için, PDMS pullarının yüzeyini filtrelenmiş hava akımı ve pipet 50 g/mL BSA (Texas Red konjuge) çözeltisi kullanarak PDMS damgasının tüm desenli tarafını kapsayacak şekilde kurulayın.
   7. Protein adsorpsiyonuna izin vermek için oda sıcaklığında 1 saat bsa çözeltisi ile inkübate PDMS pulları.
   8. Filtrelenmiş bir hava akımı kullanarak tunable kapakların yüzeyini kurutun, 1.1.5 adımda açıklandığı gibi yüzey hidrofililiğini artırın.
   9. Kalan BSA çözeltisini çıkarmak için PDMS pullarını hava kurutun.
      NOT: Kalan herhangi bir çözüm mikrotemas baskı sırasında pulların kapak kaymasına neden olacağından BSA çözeltisinin puldan tamamen çıkarılmasına dikkat edin.
   10. Pulun desenli tarafını, kapak yüzeyindeki BSA adsorpsiyon için çekileme kapak lı ile temas halinde getirin. Pulu kapağına doğru hafifçe 5 dakika bastırın.
       NOT: Pul büküleceği ve pul ile kapak fişi arasında spesifik olmayan temaslara neden olacağı için damgaya aşırı güç uygulamayın. Başarılı mikrotemas baskısı için damgaya uygulanan uygun kuvvet miktarı esastır.
   11. Bir FITC (Floresan izotiyosiyanat) filtre ile floresan mikroskobu kullanarak mikro patern inceleyin.
   12. Floresan desenler yerine hücre yapışkan alanları yazdırmak için, BSA proteini yerine laminin ve adım 1.2.5-1.2.10 tekrarlayın.
   13. Kapakları pulları çıkarın, kapakları sterilize edilmiş 6 kuyulu bir tabağa aktarın. Kapak kaymayüzeyini kapsayacak şekilde her kuyuya %0,2 w/v Pluronic F-127 çözeltisi 2 mL ekleyin ve oda sıcaklığında 1 saat kuluçkaya yatırın.
       NOT: Pluronik F-127, PDMS yüzeyinin hidrofobikliğini artırarak pdms yüzeyine yapışarak hücrelerin yapışmasını engelleyebilir.
   14. Aspir pluronic F-127 çözeltisi ve tohumlama hücreleri önce PBS ve 1x hücre kültürü orta ile 5x yıkayın. SC'ler için tipik bir tohumlama yoğunluğu 1.000 hücre/cm^2'dir.
   15. Hücre tohumlamayı takip eden 45 dk, hücre kültürü ortamını çıkarın ve birden fazla SC'nin aynı modele yapışmasını önlemek için kapakları PBS 2x ile yıkayın. Hücreleri nicelemeden önce istenilen hücre kültürü ortamında 48 saat boyunca koruyun.
   16. Hizalanmış hücreleri incelemek için satır desenli hücre kültürü yüzeyleri oluşturmak için, mikrotemas yazdırma için puloluşturmak için adım 1.2.1 ile 1.2.4'u izleyin.
       NOT: Damga üzerindeki çizgili desenlerin oluk/çıkıntı boyutları, özetlenen hücreler için 50 μm x 50 m'dir. Pulun toplam boyutları 10 mm x 10 mm'dir.
   17. Pulları yalnızca istenen çizgi desenlerini içeren boyutlara kesin.
       NOT: CAD'de pul oluştururken, pulun çizgi desenleri etrafındaki desensiz alanı, mikrotemas baskısını takiben hücre yapışkan alanına karşılık gelir. Bu nedenle, yüzeyde tohumlanmış her SC desenleri takip sağlamak için damga keserken desensiz alanları ortadan kaldırmak için gereklidir.
   18. İki Petri kabını tunable PDMS yüzey kaplaması hazırlamak için adım 1.1.1'den 1.1.3'e kadar izleyin.
       NOT: Bu pdms Petri çanak yüzey kendisi kapsayan olacak ve bir coverslip üzerinde değil.
   19. PDMS kaplamalı Petri kaplanmış tabaklardan birinde çizgi desenli hücre yapıştırıcı alanlarını yazdırmak için mikro temaslı baskı yapmak için adım 1.2.5 ile 1.2.10'u izleyin.
       NOT: 60 mm x 15 mm Petri kabının yüzey alanı, 6 PDMS puldan çizgi desenli alanlar içerebilir.
   20. Pulları çıkarın ve Petri kabını 4 mL %0,2 w/v Pluronic F-127 çözeltisi ile doldurun ve 1 saat kuluçkaya yatırın.
   21. Mikrotemas baskıdan sonra PDMS pullarının her iki tarafını %70 etanol 3x ile durulayın ve havayla kurulayın. PDMS pullarını döndürün ve ikinci Petri kabındaki damganın desensiz tarafını kullanarak desensiz hücre yapışkanalanını yazdırmak için 1.2.5 ila 1.2.10 adımını izleyin. Adımı 1.2.13'ün tekrarlayın.
   22. Yemeklerden F-127 çözeltisi aspirat, PBS ile 3x yıkayın ve ardından taze hücre kültürü ortamı kullanılarak 1x yıkama. Yemeklerde Tohum SC'leri.
       NOT: Bir çizgi desenli çanak için tohumlama yoğunluğu 5.000 hücre/cm² ve desensiz bir çanak için 10.000 hücre/cm^2'dir.
   23. 48 saat için istenilen koşullarda SC'leri koruyun ve SC lysates³²hazırlamak için protokolleri izleyin.
       NOT: Desensiz yemekler için hücre tohumlama yoğunluğu, çizgi desenli yemekler için olduğundan 2 kat daha yüksektir, çünkü çizgi desenli çanak desensiz yemeğin hücre yapışkan alanının sadece yarısına sahiptir.
       1. Lysates hazırlamak için, yeterli radyoimmünopalan atayma (RIPA) tamponu 10 mL konik santrifüj tüpüne aktarın. Seyreltik proteaz ve fosfataz inhibitörü (100x) RIPA tampon 1:100 oranında, pipetleme ile iyice karıştırın.
       2. Hücreleri 2 dakika boyunca buz gibi PBS (1x) ile yıkayın, 1.2.23.1 adımdan hazırlanan çözeltinin 80 μL'sini petri kaplarına her hücre yapıştırıcı alanına (PDMS pulları ve adsordi proteinle temas eden alan) ekleyin. 15 dakika boyunca bir buz bloğu üzerinde çözelti ile hücreleri kuluçka.
          NOT: Çözüm sadece pluronic F-127 adsorpsiyonunun başka bir yerde hidrofobikliği nedeniyle hücre yapıştırıcı alanında kalacaktır. Bu özellik, çizgi desenli SC'ler için başarılı ve yeterli protein ekstraksiyonu sağlar.
       3. 5 dk. Etiketli 1,5 mL mikrosantrifüj tüp içine lysate toplamak için bir hücre kazıyıcı ile SCs kazıyın.
       4. Mikrocentrifuge lysate 12, 000 x g için 15 dk 4 °C'de. 1.000 μL pipet ile supernatant toplayın ve temiz bir mikrosantrifüj tüp aktarın. Hücre lisatlarını -20 °C'de saklayın.
3. Substrat karakterizasyonu
   NOT: Kapak üzerindeki polimer mekaniğini karakterize etmek için, genellikle toplu sıkıştırma testi^11,33 veya atomik kuvvet mikroskobu testi³⁴dahil olmak üzere birden fazla yöntem kullanılmaktadır. Bu protokol toplu sıkıştırma testini anahatlayacaktır.
   1. İstenilen karıştırma oranının (adım 1.1) PDMS öncüsünü 30 mm'lik petri kabına dökün ve Petri kabıiçindeki PDMS tabakasının kalınlığının en az 20 mm olduğundan emin olun.
   2. Petri kabını 60 °C'lik fırından 1 saat sonra katılaşmış PDMS ile çıkarın ve oda sıcaklığında soğumaya bırakın. 10 mm x 10 mm kareler halinde kesilmiş polimer. Kaliperler kullanarak PDMS kalınlığını ölçün.
   3. SıKıŞTıRMA kuvveti ölçüm makinesinin sahnesine PDMS yerleştirin. Sensör bağlantı noktasına sıkıştırma kuvveti sensörünü (model: 112C) takın ve sensörü test makinesinin eksenine sabitle.
   4. Sensörün yüksekliğini, göstergenin ön panelinde "jog" denetimini kullanarak PDMS damgasının yaklaşık 0,5 cm yukarısına ayarlayın.
   5. İlişkili yazılımı "Test Kurulumu" penceresini kullanarak açın, "Servo profiliniseçin " ve "Segment" penceresini açın. "Segment" penceresinde, test için "Kontrol Oranı" ve "Bitiş Tutarı" istenir.
      NOT: Kontrol hızı sensörün PDMS'ye doğru ilerleme hızını belirler. Bitiş miktarı sensörün kat gittiği toplam mesafeyi belirler.
   6. Bu noktadaki tüm ölçümleri sıfırlamak için yazılımın kontrol panelinde bulunan "Z" düğmesini kullanın.
   7. Sensörü, 1-2 newton (N) yüklenene kadar PDMS'ye hafifçe temas ettirin. Sensörün yüklenmesi ve kat ettiği mesafe yazılımda görüntülenir.
   8. "Z" düğmesini kullandıktan sonra , "Play" kullanarak ölçüm çalıştırın ve dosya kayıt kuvvetini ve mesafeyi kaydedin.
   9. PDMS'nin her deneysel durumu için 1,3.3 ile 1.3.8 adımlarını tekrarlayın.
   10. Dosyayı açın ve her oran için Genç modülü (E) PDMS hesaplamak için aşağıdaki formülü kullanın. (F = sıkıştırma kuvveti, A = PDMS damgasının alanı, •L = sensörün seyahat mesafesi ve L₀ = PDMS damgasının orijinal kalınlığı).
       

2. Hücresel özelliklerin tunable substratlar üzerinde ölçülmesi

1. Proliferasyon tsay
   1. 6 kuyulu bir plakada 5.000 hücre/cm² yoğunlukta 1.1.9 adımdan hazırlanan yüzeylerdeki tohum SC'leri. SC'lerin standart hücre kültürü koşullarında (37 °C ve %5 CO₂₎48 saat kuluçkaya yatmasını bekleyin.
   2. Seyreltik 10 mM Bromodeoxyuridine (BrdU) stok çözeltisi 12 mL içine 37 °C hücre kültürü orta, 10 μM BrdU etiketleme çözeltisi yapmak için pipet ile iyice karıştırın.
   3. Hücre kültürünü orta çıkarın ve SCs 2x PBS ile yıkayın.
   4. Her kuyuya 2 mL BrdU etiketleme çözeltisi ekleyin ve 2 saat boyunca SC'leri kuluçkaya yatırın.
      NOT: BrdU etiketleme çözeltisinin kuluçka süresi belirli hücre çoğalma hızına bağlıdır. RT4-D6P2T SC hattı yüksek çoğalma oranına sahiptir, bu nedenle kuluçka süresi 2 saat kullanılmıştır.
   5. BrdU etiketleme çözeltisi çıkarın ve SCs 3x'i PBS ile yıkayın. Her kuyuya PBS'de %3,7 formaldehit 1 mL ekleyin ve hücre fiksasyonu için 15 dakika oda sıcaklığında kuluçkaya yatırın.
      DİkKAT: Formaldehit bir insan karsinojendir; bu nedenle, uygun koruma ile bir kimyasal duman başlık içinde tüm çalışmaları yürütmek.
      NOT: PBS ile yıkanırken kuyuda hücre kültürü ortamı yoktur ve bu nedenle PDMS yüzeyi hidrofobik olabilir. Hücre hasarını önlemek için substrat yüzeyini tamamen kurutmamak için önlem alın.
   6. Aspire formaldehit çözeltisi ve PBS (her 3 dk) ile 3x yıkayın. PBS'yi çıkarın ve hücre zarını permeabilize etmek için pbs'ye %0,2 Triton X-100 ilave edin. Oda sıcaklığında 20 dakika triton X-100 çözeltisi ile tüp lütfed.
   7. Triton X-100 çözeltisini çıkarın ve SC'leri 3x PBS ile yıkayın (her biri 3 dk).
   8. Her kuyuya 1 mL 1 N HCl ekleyin ve 10 dk buz üzerinde kuluçkaya yatırın. 1 N HCl çıkarın ve her kuyuya 1 mL 2 N HCl ekleyin ve 10 dk. HCl tedavisi için oda sıcaklığında kuluçkaya yatırın DNA hidrolizi içindir.
   9. 182 mL 0,2 mM Na₂HPO₄ ve 18 mL 0,1 mM sitrik asit karıştırarak antijen alımı için fosfat/sitrik asit tamponu üretin. 2 N HCl çıkarın ve her kuyuya 1 mL fosfat/sitrik asit tamponu ekleyin ve 10 dakika oda sıcaklığında kuluçkaya yatırın.
   10. SC'leri PBS'de %0,2 Triton X-100 ile yıkayın. Her kuyuya PBS'de %3'lük büyükbaş serum albumini (BSA) ekleyin ve 30 dakika oda sıcaklığında antikora nonspesifik bağlanmasıiçin kuluçkaya yatırın.
   11. Seyreltik BrdU primer antikor, BrdU boyama çözeltisi için 1:300 oranında %3 BSA çözeltisinde Alexa Fluor 488 ile konjuge edilmiştir. Plaka alüminyum folyo ile kaplı iken oda sıcaklığında bir gecede boyama çözeltisi ile tüplü CS.
   12. Proliferasyonu ölçmek için, sırasıyla BrdU ve çekirdekleri algılamak için bir floresan mikroskobunun FITC ve DAPI kanalını kullanan görüntü SC'leri. Görüntüleri "nd.2" dosyaları olarak kaydedin.
   13. Aynı mekansal konumlarda çekilen her görüntü için "nd.2" dosyalarını açın.
   14. Görüntü analizi yazılımını açın. " AnalizKontrolü" bölümündeki "Otomatik Ölçüm Sonuçları" ve " OtomatikÖlçüm" penceresini açmak için arka plana sağ tıklayın.
   15. "Count & Taksonomi" menüsünde "Count" seçeneğini belirleyin. FITC resminde, yeşil floresangösteren her çekirdeğe (BrdU pozitif) ve resmin üzerine sağ tıklayın.
       NOT: BrdU pozitif hücrelerin sayısı "Otomasyonlar ve Ölçümler" penceresinde gösterilmiştir.
   16. DAPI görüntüleri için, toplam çekirdek sayısını saymak için adım 2.1.14'ü yineleyin. Bu görüntü için BrdU pozitif hücrelerinin yüzdesini hesaplayın.
   17. 2.1.13 adımını istatistiksel amaçlarla diğer görüntüler için 2.1.13'e kadar tekrarlayın ve her substrat koşulu için BrdU pozitif hücrelerin ortalama yüzdesini hesaplayın.
2. Immünofloresan görüntü analizi ile c-Jun ekspresyonunun sayısallaştırılması
   1. 1.1.9 ve 1.2.23 basamaklarından 6 kuyulu plakalar içinde hazırlanan hücreler daha önce açıklanan prosedürlerle sabit ve permeabilize edilir (adım 2.1.5-2.1.7).
      NOT: Farklı ECM koşullarına sahip hücreler arasında floresan yoğunluğunun doğru karşılaştırmalarını gerçekleştirmek için, aynı parametrelere sahip tüm örneklerle kamera ayarlarını tüm numunelere aynı şekilde uygulayın.
   2. Görüntüleri ".nd2" dosyaları olarak kaydedin.
   3. Görüntü analizi yazılımını açın. "Otomatik Ölçüm Sonuçları" ve "Otomatik Ölçüm" penceresiniAnalysis Controlaçmak için arka plana sağ tıklayın.
   4. "Otomatik Ölçüm Sonuçları" nda "Nesne Verileri" seçeneğini belirleyin. "Keep upup measurement" düğmesini etkinleştirin.
   5. Yazılımın üst panelinde "Ölçü" ve ardından "Object özellikleri" seçeneğini belirleyin. " Ölçü için Seçilen" bölümüne " OrtalamaYoğunluk" ekleyin.
   6. C-Jun ve çekirdeklerin görüntülerini içeren iki "nd2" resim dosyalarını açın ve birleştirin.
   7. Üst panelde "ROI" seçeneğini seçin ve "Dikdörtgen Yatırım Getirisi Çiz" seçeneğini belirleyin. Tek bir hücrenin nükleer alanını içeren dikdörtgen bir alan çizin.
      NOT: c-Jun ifadesi çekirdekler içinde yoğunlaşmıştır³⁵.
   8. Yazılımın üst panelinde "İkili" ve "Eşik Tanımla" seçeneğini seçin, c-Jun floresan alanını tam olarak tanımlayan yeni bir pencere görünür.
   9. Yeni pencerede, programı tam görüntü modelinden YG modeline geçmek için "Tam Resim/Kullanım Yatırım Getirisi" seçeneğini tıklayın. Dikdörtgen Yatırım Getirisi içinde vurgulanan alanın boyutunun/şeklinin ayarlanması için pencerenin sol tarafında bulunan arama tablosunu ayarlamak için "Yoğunluk" kullanın.
      NOT: Vurgulanan alanın boyutunun/şeklinin çekirdekle aynı olduğundan emin olun.
   10. "Otomatik Ölçüm Sonuçları" penceresinde ortalama FITC yoğunluğunu elde etmek için "Tamam" düğmesine tıklayın ve ardından "Verileri Depola"'ı tıklatın.
   11. Penceresinde "Otomatik Ölçüm", "Nesne Sil" kırmızı vurgulu alanı kaldırmak için. Sol taraftaki panelde, dikdörtgen YG'yi seçmek ve silmek için "İşaretLeme Aracı" kullanın.
   12. Her ek hücre için ortalama FITC yoğunluğunu ölçmek için adım 2.2.6 ile 2.2.11'i tekrarlayın.
   13. "Otomatik Ölçüm Sonuçları" penceresinde "Depolanan"seçeneğini belirleyin ve depolanan tüm veriler sunulacaktır. Dışa aktarılan elektronik tabloyu kaydetmek ve ek hesaplamalar gerçekleştirmek için "Dışaaktar " işlevini kullanın ve "Excel'e Veri" seçeneğini belirleyin.
3. Nükleer uzamanın ölçülmesi
   1. 2.1.5-2.1.7 adımlarını takiben 1.2.22 adımdan hazırlanan SC'leri düzeltin ve geçirin. DAPI ile montaj ortamı kullanarak nükleer boyama gerçekleştirin.
   2. DAPI kanalını ve 40x objektif lensi kullanarak, örneğin görüntülerini edinin ve ".nd2" dosyaları olarak kaydedin.
   3. Görüntü analiz yazılımında "Otomatik Ölçüm Sonuçları" ve " OtomatikÖlçüm" penceresini açmak için adım 2.2.3 ve 2.2.4'nü takip edin.
   4. "Otomatik Ölçüm Sonuçları"nda , "Option" işlevini ve ardından "Nesne Özelliğini Seç" işlevini kullanın. "Özellik" sütununda "Uzama" ve "Ölçümler için Seçilmiş" sütununa ekleyin. Bu işlevi etkinleştirmek için "Keep Updating Measurement" kullanın.
   5. Nükleer görüntüleri içeren "nd.2" resim dosyasını açın. "Otomatik Ölçüm" penceresinde , "Otomatik Algılama" işlevini seçin ve bir çekirdek seçin. Resme sağ tıkla ve ölçülen nükleer en boy oranı "Otomatik Ölçüm Sonuçları" bölümünde gösterilecektir.
   6. Görüntüdeki diğer çekirdekler için nükleer en boy oranlarını ölçmek için adım 2.3.5'i tekrarlayın. "Otomatik Ölçüm Sonuçları" penceresinde " VerileriDepola" seçeneğini belirleyin.
   7. Ek görüntüler için 2,3,5 ile 2,3,6 arası tekrarlayın. Verileri daha önce çözümleme için 2.2.13'te yapılan bir elektronik tablo dosyasına dışa aktarın.
4. Protein ekspresyonunu ölçmek için batı lekesi
   1. Batı leke analizi için standart protokolleri izleyin başka bir yerde ayrıntılı³². Çalışmada kullanılan antikorların seyreltmeleri aşağıda gösterilmiştir: Tavşan anti c-Jun 1:2,000; Fare anti β-actin 1:1,000; Tavşan anti p75NTR 1:1,000; Tavşan anti miyelin temel protein 1:1,000; Anti-fare/tavşan IgG, HRP'ye bağlı antikor 1:10,000.

SC fenotipüzerinde substrat sertliği ile protein bileşimi arasındaki etkileşimi analiz etmek ve ölçmek için, bir pdms hücre kültürü alt tabakası geliştirilmiştir(Şekil 1A). Polimerin farklı tabanda sıkıştırma testi: genç modülünün (E) substratını ölçmek için kür ajan oranları kullanılmıştır(Şekil 1B). Ortaya çıkan modül değerleri fizyolojik olarak ilgili substrat koşullarını temsil eder. Substratların hazırlanmasından sonra, SC'ler kültürlü ve hücresel özellikler, mikro ortamda analiz edildi. Farklı protein bileşiminin substratlarında SC'lerin proliferasyon oranları ilk olarak analiz edildi. Lamina kaplı substratlar kollajen I ve fibronektin adsorpsiyon10 μg/mL(Şekil 2A,B)ile karşılaştırıldığında daha yüksek bir proliferasyon oranı ile sonuçlandı. Laminin kaplamalı ve farklı modüler li yüzeylerdeki SC'ler, nispeten daha yumuşak yüzeylerin (E=3.85kPa) tüm koşullarda hücre çoğalma oranlarını azalttığını göstermiştir(Şekil 2C,D). Ancak, sert substratlar (E=1119kPa) ile nispeten yumuşak substratlar (E=8.67kPa) arasındaki farklar önemsizdi(Şekil 2D).

SC'ler ayrıca immünohistokimya ve batı blot yoluyla protein ekspresyonu açısından analiz edildi. Transkripsiyonel faktör c-Jun düzeyleri immünfloresan mikroskopi(Şekil 3A)ile analiz edildi ve ortalama piksel floresan yoğunluğu ile temsil edildi (Şekil 3B-D). c-Jun ekspresyonu, substratlar daha yumuşak hale geldikçe (E=1119 kPa - E=8.67 kPa) yükseltildi, ancak yumuşak substratlarda (E=3.85 kPa), c-Jun ekspresyonu önemli ölçüde azaldı. Sert yüzeylerde (E=1119 kPa), kollajen I kaplı yüzeyler en yüksek c-Jun ifadesi ile sonuçlanır, ancak substratlar daha yumuşak hale geldikçe (E=8.67 kPa ve 3.85 kPa), laminin en yüksek c-Jun düzeylerini göstermiştir (Şekil 3E). Batı lekede ayrıca c-Jun ve miyelin temel protein (MBP) ile c-Jun düzeyleri upregulated ve MBP daha yumuşak yüzeylerde downregulated analiz etmek için kullanılmıştır(Şekil 3F). Ayrıca, lamina kaplı yüzeylerde tohumlu SC'ler kollajen I ve fibronektin ile karşılaştırıldığında en yüksek c-Jun ekspresyonu ile sonuçlandı.

Farklı tohumlama yoğunluklarına sahip hücreler daha sonra kültürlenmiş ve c-Jun ekspresyonunda hücre yayılımı ve alan rolünü araştırmak için rhodamine-phalloidin ile boyanmıştır(Şekil 4A,B). Hücrelerin nükleer uzamasını kontrol etmek için hücre kültürü alt tabakalarında hücre yapışkan çizgileri oluşturmak için ortak bir mikrodesenleme tekniği (mikrotemas baskı³⁶⁾kullanılmıştır. Bir çizgi desenli substrat üzerinde tohumlanmış hücrelerin nükleer boy oranı, desensiz yüzeylerüzerinde tohumlanmış hücrelerden önemli ölçüde daha yüksek olarak gösterilmiştir(Şekil 4C,D). SC rejeneratif fenotiplerde önemli olan c-Jun ve başka bir belirteç ekspresyonunun p75 nörotrofin reseptörü (p75 NTR), daha küçük yayılma alanına sahip yoğun hücrelerde düzenlendiği saptandı(Şekil 4E). Çizgi desenli hücreler de desensiz hücrelere kıyasla hem c-Jun hem de p75 NTR'nin daha yüksek bir ekspresyonu ile sonuçlanmıştır(Şekil 4F). Bu nedenle, hücre-hücre etkileşimlerini ortadan kaldırırken hücre yayılma alanını ve uzamasını tam olarak kontrol etmek için mikrotemas baskılı hücre yapıştırıcı geometrileri oluşturulmuştur(Şekil 5A). Toplam hücre yapışkanlı alanların boyutları 900 μm², 1.600 μm²ve 2.500 μm² olup en boy oranı 1 veya 4 (hücre uzunluğu: hücre genişliği) idi. Floresan büyükbaş serum albumin (fBSA, Texas kırmızısı) boyama mikrotemas baskı sonra hücre kültürü substrat mikrodesenler durumunu ortaya çıkarmak için kullanılmıştır(Şekil 5B). Her hücre alanı için SC'lerin nükleer en boy oranı ölçüldü ve nükleer en boy oranı artırılarak hücresel uzamanın arttığı gösterilmiştir(Şekil 5C). Buna ek olarak, SC en boy oranı arttıkça, c-Jun upregulated oldu (Şekil 5D). İlginçtir ki, ancak, hücre yayma alanı arttıkça c-Jun ekspresyonu indirgenmiş olarak bulunmuştur (Şekil 5E). Hem çekirdekler hem de aktin için immünoforesans boyama doğrulanmış hücre yayılma alanı ve uzama bu mikro desenleme yöntemi ile yüksek oranda kontrol edildi(Şekil 5F).

Şekil 1: Hücre kültürü, kasma sertliği ve protein bileşimi ile substratlar. (A) PDMS hücre kültürü alt tabakalarının gelişimini gösteren şema. (B) Baz ilk PDMS karıştırma oranı: kür ajan Young modülü belirler. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 2: SC proliferasyon oranları substrat sertliği ve protein bileşimi ile düzenlenir. (A) Aynı modülün alt tabakalarında kültürlendiğinde BrdU boyamasını gösteren temsili görüntüler. (B) Her protein kaplaması için BrdU pozitif hücrelerin inkişa sını gösteren histogram. (C) Aynı protein kaplamanın alt tabakalarında tohumlanmış SC'lerde BrdU'nun kuruluş olduğunu gösteren temsili görüntüler. (D) Her Young'ın modül değeri için BrdU pozitif hücrelerinin yüzdesini gösteren histogram. Ölçek çubukları = 50 μm. Veriler ortalama ± SEM. *p < .05, **p < .005, ***p < .0005 olarak sunulur. Rakamın bazı bölümleri ref.^24'tendeğiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 3: Substrat sertliği ve protein regüle SC protein ekspresyonu. (A) Temsili görüntüler farklı sertlik ve protein bileşimi substratları üzerinde tohumlu SCs için c-Jun immünofloresan boyama göstermektedir. C-Jun'un ortalama piksel floresan yoğunluğu , (B) kollajen I (C) fibronektin ve (D) farklı sertlikteki laminin kaplı yüzeyler de ölçüldü. (E) c-SC'lerin Jun floresan düzeyi Young'ın substrat modülü ile gruplandırılır. (F) Substratlar üzerinde tohumlanmış SC'lerin c-Jun ve miyelin temel proteinini (MBP) gösteren batı lekeleri. Gliserinaldehit 3-fosfat dehidrogenaz (GAPDH) yükleme kontrolü olarak kullanıldı. Ölçek çubuğu = 50 μm. Veriler ortalama ± SEM. *p < .05, **p < .005, ***p < .0005 olarak sunulur. Rakamın bazı bölümleri ref.^24'tendeğiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 4: Hücresel yayılma alanı SC'lerin protein ekspresyonunu etkiler. (A) Farklı tohumlama yoğunluklarının hücre yayılma alanı rhodamine-phalloidin (kırmızı) ve çekirdek boyama (mavi) ile görselleştirildi. (B) Histogram her durumda SCs ortalama yayılma alanı gösteren. (C) Desensiz veya çizgi desenli yüzeylerüzerinde tohumlanan SC'lerin çekirdekleri morfolojiyi göstermek için DAPI (mavi) ile boyanmıştır. (D) Desenli ve desensiz yüzeylerde nükleer enboy oranının niceliğini gösteren histogram. (E) Farklı yayılma alanına sahip hücrelerin c-Jun ve p75NTR ekspresyonunu gösteren batı lekesi. (F) SC'lerin desensiz ve çizgi desenli yüzeylerde protein ekspresyonunu gösteren batı lekesi. Ölçek çubuğu = 50 μm. Veriler ortalama ± SEM. *p < .05, **p < .005, ***p < .0005 olarak sunulur. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 5: SC morfolojisi ve uzama etkisi c-SC'lerin Haz ekspresyonu. (A) Farklı en boy oranına göre şekiller için hücre mikrodesenlerini gösteren şema. (B) mikrotemas baskısını takiben mikro desenlerin şeklini gösteren fBSA boyama (kırmızı). Ölçek çubuğu = 10 μm. (C) Mikro desenli SC'lerin nükleer enboy oranını gösteren histogram. (D, E) Geometrik koşulların her biri için c-Jun'un ortalama piksel floresan yoğunluğunu gösteren histogram. (F) Rhodamine-phalloidin (kırmızı), çekirdekleri (mavi) ve c-Jun (yeşil) farklı mikro desenler üzerinde boyandı. Ölçek çubuğu = 10 μm. Veriler ortalama ± SEM. *p < .05, **p < .005, ***p < .0005 olarak sunulur. Rakamın bazı bölümleri ref.^24'tendeğiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

SCs onların phenotipik dönüşüm ve sinir yaralanması aşağıdaki rejeneratif potansiyel nedeniyle sinir rejenerasyonu teşvik edebilir. Ancak, ECM ipuçlarının bu rejeneratif kapasiteyi nasıl düzenlediği çoğunlukla belirsizliğini korumaktadır ve bu da sadece sinir rejenerasyonu yla ilgili biyomalzemelerin geliştirilmesini değil, aynı zamanda sinir yenilenmesinde yer alan mekanizmaların anlaşılmasını da engellemektedir. Bu etkileşimi incelemeye başlamak için, sertlik, protein kaplama ve yapışkan topografya gibi ECM ipuçlarının kontrol edilebildiği hücre kültürü alt tabakaları oluşturulmuştur. Mikrolekyapıştırlı topografya nın mikrodesen yeteneği, mikrotemas baskının yaygın yöntemini kullanarak protokol içinde önemli bir özelliktir. Ancak, bu alt tabaka, PDMS pullarına uygulanan sıkıştırma kuvvetinin hücre kültürü alt tabakalarında hücre yapıştırıcıalanlarının istenilen şekli elde etmek için uygun düzeyde olması gerektiği için camdan farklıdır. Hücre yapışkan alanlarını görselleştirmek ve PDMS pullarında sıkıştırma kuvvetlerini ayarlamak için model protein olarak floresan sığır serum albumini (fBSA) kullanmak sonuçta bu sorunu hafifletebilir. Cam dan bir diğer önemli fark substrat yapışmaz kalan işlemek için kullanılan aşırı Pluronic F-127 kaldırılmasıdır. Bu tedaviden sonra, hücre kültürü substratları yüksek hidrofobik, bu mikro desenli protein yapısal bütünlüğü için önemli olan yıkıyor boyunca ıslak hücre kültürü substratları korumak için zor hale³⁷. Bu nedenle, substratların tamamen susuz kalmasını önlemek için çözeltileri neredeyse aynı anda aspire etmek ve enjekte etmek için birden fazla pipet kullanılması tavsiye edilir.

Mikro desenleme hücre şeklini tam olarak kontrol edebilse ve OEGMA gibi hücre bloke eden polimerler kullanarak karmaşık sentetik prosedürler gerektirmese de, mikro desenli hücrelerin protein ekspresyonunu ölçmek için kullanılan yöntemler bazen³⁸ile sınırlıdır. Örneğin, mikro desenlemeden elde edilen numuneler genellikle kapak başına birkaç yüz hücre ile sınırlıdır ve bu da batı lekeleri veya qPCR için kullanılacak hücre likatlarını hazırlamak için yetersizdir. Bu göz önüne alındığında, immünoresans boyama tek başına mikro desenli hücreler için protein ekspresyonunu ölçmek için kullanılan, ölçülebilir proteinlerin çeşitliliği sınırlayan. Bunu gidermek için, daha büyük hücre popülasyonları için hücre uzamasını teşvik etmek için çizgi desenleri kullandık ve batı lekeleri tarafından analiz edilen hücre lysates'i başarıyla hazırladık. Uygulanan elektrik alanları veya hizalanmış elektrospun lifleri gibi diğer yöntemler de hücre popülasyonlarının uzamasını kontrol etmek için uygulanabilir^39,40. Ancak, kollajen bazlı polimer ve ipek gibi yaygın olarak kullanılan biyomalzemelerin iletkenliği çok düşük^28,41,42olduğundan Elektrik alanları NGCs için tüm uygulamalara sığmayabilir. Buna karşılık, hizalanmış electrospun nanofibers başarıyla SC hizalama, uzama ve göç yanı sıra neurite outgrowth 43 ,^,44teşvik NGCs içine implante edilmiştir.⁴³ Ayrıca çizgili desenler ve hizalanmış nanofibers NGCs⁴⁵dahil en yaygın rehberlik mekanizmaları iki olduğundan, hizalanmış nanofibers ile yüzeylerde olanlara karşı çizgi desenli yüzeylerde SC davranışı karşılaştırmak için zorlayıcı kanıtlayabilir.

Mikro desenleme protokolü nde PDMS kaplı kapaklar hücre kültürü yüzeyleri olarak kullanılır ve maksimum yüzeyli Young'ın 1119 kPa modülü bulunur. Bu sertlik birçok dokuyu taklit eder, ancak genellikle yüzey Young'ın modülünün 1 Gpa^46'yıaşmasını gerektiren mezenkimal kök hücrelerin osteogeneziyi modellemek mümkün olmayabilir. Bu gibi durumlar için, cam alternatif bir aday, ancak Pluronic F-127 adsorpsiyon cam sahip olmayan nispeten yüksek yüzey hidrofobiklik gerektirir. Hidrofobikliği artırmak için, cam diklorobenzen dimetil diklorosilane ile tedavi edilebilir. Bunu takiben, UV-Ozon tedavisi mikrotemas baskı için hidrofilisite artırmak için kullanılabilir^47.

Sonuç olarak, ECM uyaranların protein ekspresyonu ile ayrı ayrı ayarlanabildiği bir hücre kültürü platformu geliştirilmiştir. SC rejeneratif kapasitenin belirli mekanik ve kimyasal ECM ipuçları tarafından teşvik edildiğine karar verdik, bu da daha sonra ECM özelliklerinin optimize edilmesi gerekebileceği StK'lar ve hücre nakli süreçleri gibi biyomalzeme uygulamalarının gelecekteki tasarımında ilham kaynağı olabilir²⁴. Yine de, bu ECM ipuçlarını ayarlama zorlu bir girişim olabilir, özellikle in vivo. İleriye doğru hareket eden bu platform, ECM tarafından denetlenen SC'lerin henotipik geçişinde yer alan önemli mekanizmaları ayrışdırmak için kullanılabilir. Bunu başararak, hücre içi ipuçları manipülasyon in vitro^48,,49özel platformlar için gerek kalmadan SC rejeneratif kapasite teşvik etmek mümkün olabilir. Bu sinir onarım ı için teknolojilerin geliştirilmesinde çığır açan çalışma potansiyeline sahiptir.

Yazarlar tarafından olası bir çıkar çatışması bildirilmedi.

Yazarlar minnetle Cincinnati Üniversitesi'nden fon desteği kabul. Yazarlar da Ron Flenniken Cincinnati Üniversitesi Gelişmiş Malzeme Karakterizasyon laboratuvarı destek için teşekkür ederiz.