Характеристика и применение пассивных пробоотборников для мониторинга пестицидов в воде

A protocol about the characterization and application of five different passive sampling devices is presented.

Пять различных водных пассивных пробоотборников были откалиброваны в лабораторных условиях для измерения 124 наследия и текущих используемых пестицидов. Данное исследование предоставляет протокол для подготовки пассивного пробника, калибровка, метод экстракции и инструментального анализа. Частота дискретизации (R _S) и пассивные коэффициенты распределения пробоотборник воды (K _PW) были рассчитаны для силиконового каучука, полярного органического химического интегративный сэмплер POCIS-A, POCIS-B, SDB-RPS и C ₁₈ диска. Поглощение выбранных соединений зависит от их физико - химических свойств, т.е., силиконовая резина показала лучшее поглощение для более гидрофобных соединений (логарифм коэффициента распределения октанол-вода (K _OW)> 5,3), в то время как POCIS-A, B-POCIS и SDB- RPS диска были более пригодны для гидрофильных соединений (Log K _OW <0,70).

Пестициды непрерывно вводят в водную среду и может представлять опасность для водных организмов ^1. Мониторинг пестицидов в водной среде , как правило , осуществляется с использованием выборки захвата, однако, этот метод выборки не в полной мере учитывает временные вариации в концентрации из - за колебаний расхода или эпизодических входов (например, осадки, комбинированные канализационные переполняется, канализация лагуны релиз) ^{2 , 3.} Таким образом, методы мониторинга должны быть улучшены для лучшей оценки экологических рисков, связанных с пестицидами. Пассивный отбор проб позволяет непрерывный контроль в течение продолжительного периода времени с минимальной инфраструктурой и низкой концентрацией загрязнителя ^4,5.

Пассивные пробоотборники было показано , что является ценным инструментом для мониторинга подземных вод в ^6, пресной воды, сточных вод ^{7-10 11} и ¹² морских вод. Кроме того, в целях мониторинга ^{13,14, пассивные пробоотборники также используются для нецелевых анализа 15, токсикологии тестирования 16,17, а в качестве альтернативы sediment- и биомониторинга 18. Пассивные пробоотборники накапливаются химические вещества непрерывно из воды и обеспечивают время средневзвешенный (СВЗ) концентрации 14. Поглощение загрязнителя зависит от частоты дискретизации (R _S) и пассивный коэффициент распределения пробоотборник воды (K _PW), которая зависит от пассивного конструкции пробника, пробник материала, физико - химических свойств загрязняющего вещества, а также условий окружающей среды (например, воды турбулентность, температура) 13,14,19,20.}

Подробное видео имеет целью показать, как калибровать и применять пассивные пробоотборники для пестицидов в воде. Конкретные цели включали я) для выполнения подготовки, экстракции и инструментального анализа для 124 отдельных пестицидов с использованием пяти различных типов пассивных SAMPLERS, в том числе из силиконового каучука, полярный органический химический интегративный пробоотборник (POCIS) -А, POCIS-B, SDB-RPS и C ₁₈ диска, б) для оценки R _S и K _PW для пестицидов в исследовании лаборатории поглощения, и III) чтобы продемонстрировать, как выбрать соответствующий пассивный пробник целевого соединения, представляющего интерес и как рассчитать концентрации TWA для соответствующего пассивного пробоотборника.

Эталоны и пассивные устройства пробоотборник

Целевые соединения включены 124 унаследованных и используемые в настоящее время пестицидов , включая гербициды, инсектициды и фунгициды (таблица 1). Внутренний стандарт смесь (IS смеси) включены фенопроп (2,4,5-TP), клотиандин-D _3, ethion и тербутилазин-D _5. Другие используемые химикаты включали метанол (MeOH), ацетонитрил (ACN), ацетон (АСЕ), дихлорметан (ДХМ), циклогексан (СН), этилацетат (ЭА), петролейный ЕТона (ПЭ), 2-пропанола, 25% -ный раствор аммиака, уксусной кислоты (HAC) и муравьиной кислоты (FA). Пять различных устройств пассивной выборки были охарактеризованы, в том числе из силиконового каучука, POCIS-A и POCIS-B, SDB-RPS и C ₁₈ диска ^1,21.

Таблица 1. Пассивный пробник частота дискретизации (R _'S, L день ^-1), коэффициенты распределения пробоотборник воды (K' _PW, L кг ^-1) и уравнения (уравнение.) , Используемый для расчета концентраций в пробах на местах для индивидуального пестициды ^а. (Перепечатано из журнала хроматографии A, 1405, Lutz Аренс, Атласи Данешвар, Анна Е. Лау, Дженни Kreuger, характеристика пяти пассивных устройств отбора проб для контроля содержания пестицидов в воде, 1-11, авторские права (2015 г.), с разрешения Elsevier .) ²² Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы загрузить этот файл.

1. Пассивный Sampler Проектирование и подготовка

1. Силиконовые резиновые листы
   1. Нарезать силиконовой резины листов (600 мм х 600 мм, толщиной 0,5 мм) на полосы 2,5 мм х 600 мм и 2,5 мм х 314 мм с помощью ножа из нержавеющей стали и соединяют их с помощью Заклепка из нержавеющей стали (3,2 мм х 10 мм ) с заклепок , чтобы получить общий размер пробоотборник полоса 2,5 мм х 914 мм (площадь поверхности = 457 см ^2, сорбционной массы = 15,6 г, объем = 22,9 см ^3).
2. Поместите силиконовые каучуки в экстракционной камере прибора Сокслета. Добавить 50 мл ЕА в экстракционной камере и добавляют 250 мл ЕА и три Кипелки в 500 мл круглодонную колбу бутылки.
   1. Подключите камеру экстракции с колбы бутылки и конденсатором. Очистить силиконовые каучуки путем экстракции в аппарате Сокслета в течение 96 ч при температуре около 80 ° С, и после этого высушить их при осторожном газообразным азотом.
3. Приложить силиконовый каучук StrIре к нержавеющей стали паука держатель образца обертыванием из силиконового каучука полоса вокруг стержней на держателе (Рисунок 1). Прикрепите каждый конец силиконовой резины полосой к стержню на держателе с помощью кабельных стяжек.

Рисунок 1. Схема из силиконового каучука. Пассивный пробник Схема для силиконового каучука , показывающий прикрепление силиконовой резины полосой для нержавеющей стали образца паук держатель A) от верхней и B) вид сбоку. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы увидеть увеличенную версию эта фигура.

2. POCIS-A и B-POCIS
   1. Для POCIS-A, место 220 мг HLB сыпучего сорбента (площадь поверхности = 1,78 × 10 ⁶ см ²⁾ между двумя 9,0 см на 9,0 см Squarе полиэфирсульфон (ПЭС) мембран (рисунок 2).
   2. Для POCIS-B, место 220 мг сорбента смеси (т.е. гидроксилированные полистирол-дивинилбензола смолу (80%) и углеродсодержащего адсорбент рассыпают по стирола дивинилбензола (20%)) (площадь поверхности = 2,82 × 10 ⁶ см ²⁾ между двумя ПЭУ мембраны (рисунок 2).
   3. Сжать сорбент и два ПЭУ между двумя кольцами из нержавеющей стали вручную (внутренний диаметр = 5,4 см) и закрепите его на нержавеющей стали держатель образца (рисунок 2).

Рисунок 2. Схема пассивных дисков сэмплера. Пассивный пробник Схема для POCIS A, B, POCIS SDB-RPS диск и C ₁₈ диска , показывающий) сборку пассивного пробоотборника с помощью кольца из нержавеющей стали, полиэфирсульфон (PES) MEMBRANэс, а фаза приема и В) монтаж на нержавеющей стали держателя образца. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

3. SDB-RPS диск и C ₁₈ диска
   1. Поместите SDB-RPS (площадь поверхности = 35 см ^2, сорбент масса = 0,34 г, объем = 1,7 см ³⁾ и C ₁₈ дисков (площадь поверхности = 35 см ^2, сорбент масса = 0,58 г, объем = 1,7 см ³⁾ между две мембраны ПЭС (рисунок 2). Сжатие дисков и два ПЭУ между двумя кольцами из нержавеющей стали вручную (внутренний диаметр = 5,4 см) и закрепите ее на держателе образца из нержавеющей стали (Рисунок 2).

2. Лабораторные эксперименты о поглощении

Примечание: Эксперименты поглощения Лабораторные проводили количественно охарактеризовать К поглощениеinetics для 124 отдельных пестицидов для пяти различных пассивных пробоотборников устройств в контролируемых условиях.

1. Провести исследование поглощения в прямоугольных стеклянных контейнеров (каждый ~ 95 л): Tank 1) силиконовый каучук (п = 16), бак 2) POCIS-A (N = 16), POCIS-В (п = 16), и бак 3 ) SDB-РПС диск (п = 16), С ₁₈ диска (п = 16). Заполните естественную воду в трех танков.
2. Выполните все эксперименты при постоянной температуре воды (~ 20 ° C) , а также в условиях турбулентности воды (~ 10 см сек ^-1) с помощью двух электронасосов , прикрепленных к стене на каждой стороне. Выполните эксперименты в темноте, чтобы минимизировать эффект фотостарения.
3. Шип каждый стеклянный контейнер с пестицидом стандартной смеси , содержащей 124 пестицидов с использованием стеклянного шприца (C ≈ 400 нг л ^-1 для отдельных пестицидов в баке для воды). Выньте пассивные пробники вручную из резервуаров, с временными интервалами 5, 11, 20, 26 и дAYS, чтобы определить частоту дискретизации пестицидов.
4. Мониторинг концентрации пестицидов в каждом резервуаре путем сбора 100 мл пробы воды на 0, 5, 11, 20 и 26. Анализ проб воды осуществляется , как описано в другом месте ^21.
   1. Для контроля качества, подвергать холостых проб в комнатном воздухе в течение 1 ч при 0-й день, а затем хранить и рассматривать их в качестве реальных образцов. Хранить все экстракты, а также 100 мл проб воды из резервуаров при температуре минус 18 ° С до дальнейшего анализа.

3. Пример извлечения

1. Резинка
   1. До экстракции, сухой силиконовой резины полоса под потоком высокой чистоты газообразного азота.
   2. Для газовой хроматографии-масс - спектрометрии анализа (ГХ-МС), осуществляют твердой и жидкой экстракции с использованием Сокслета экстракции ^22.
      1. Поместите силиконовую резину в экстрактор Сокслета. Добавить 250 мл PE / ACE (50:50, об / об) и 3 Boiлин камни в круглую колбу бутылки.
      2. Шип силиконового каучука с 100 мкл раствора IS смеси (с = 5 нг мл ^-1) с использованием стеклянного шприца. Добавить 50 мл PE / ACE (50:50, об / об) в экстрактор Сокслета. Включите отопительный прибор и запустить добычу Сокслета в течение 19 ч, а затем выключить обогреватель.
      3. Концентрат экстрактов с помощью роторного испарителя с последующим пологий азота продувкой до 1 мл. Обмен растворитель для CH / ACE (90/10, об / об), добавляя в три раза 1 мл CH / ACE (90/10, об / об) в течение азота продувкой до 1 мл.
   3. Для жидкостной хроматографии-тандемной масс - спектрометрии анализа (LC-MS / MS), осуществляют экстракцию с использованием Сокслета экстракции ^22.
      1. Поместите силиконовую резину в экстрактор Сокслета. Добавить 250 мл MeOH и 3 Кипелки в круглую колбу бутылки и МеОН 50 мл в экстрактор Сокслета. Спайк силиконового каучука с 100 мкл ап смеси (с = 5 нг мл ^-1) с помощью стеклянной SYRИнге.
      2. Включите отопительный прибор и запустить добычу Сокслета в течение 19 ч, а затем выключить обогреватель. Концентрат экстрактов с помощью роторного испарителя с последующим пологий азота продувкой до 1 мл. Обмен растворителя к ACN путем добавления 1 мл ACN в течение азота продувкой до 1 мл.
2. POCIS-A и B-POCIS
   1. Осторожно откройте POCIS пробоотборник и перенесите сорбент сверхчистой водой, используя воронку в предварительно очищенное пустой полипропиленовой твердофазной экстракции (SPE) картридже (6 мл), содержащей два полиэтилена (ПЭ) фритт. Высушить сорбент с помощью вакуума, чтобы удалить воду. Регистрируют вес пустого и упакованного SPE патроне, чтобы контролировать вес сорбентом. Пожалуйста, обратите внимание, что различные картриджи используются для ГХ-МС и анализа ЖХ-МС / МС.
   2. До начала элюции, шип сорбент с помощью 100 мкл смеси ап (с = 5 нг мл ^-1) с использованием стеклянного шприца. сорбенты Элюировать POCIS-A и POCIS-B с использованием 5мл EA для ГХ-МС ^22.
      1. Концентрат экстрактов до 1 мл путем осторожного азота продувкой. Обмен растворитель для CH / ACE (90/10, об / об), добавляя в три раза 1 мл CH / ACE (90/10, об / об) в течение азота продувкой до 1 мл.
   3. Элюировать POCIS-A и B-POCIS картриджи с использованием 1,5 мл MeOH с последующим 8 мл ДХМ / MeOH (80/20, об / об) для анализа ЖХ-МС / МС ^22. Концентрат экстрактов до 1 мл путем осторожного азота продувкой. Обмен растворителя к ACN путем добавления 1 мл ACN в течение азота продувкой до 1 мл.
3. SDB-RPS и C ₁₈ диска
   1. Передача отдельных дисков SDB-RPS и C ₁₈ диска в стеклянный стакан и высушить их под газообразным азотом. Шип дисков с помощью 100 мкл смеси ап (с = 5 нг мл ^-1) с использованием стеклянного шприца и разрушать ультразвуком их два раза в стеклянном стакане при комнатной температуре, сначала с помощью 5 мл ЕА в течение 10 мин , а затем с 3 мл ЕА в течение 10 мин.
   2. Передача Ьой экстракты в одну стеклянную трубку, концентрируют их до 2 мл путем осторожного продувать азотом вниз, и разделить их на две 1 мл фракции (для ГХ-МС и анализа ЖХ-МС / МС, соответственно).
   3. Концентрат экстрактов до 0,5 мл путем осторожного азота продувкой и обмена растворителем для CH / ACE (90/10, об / об) для анализа ГХ-МС ^22. Концентрат экстрактов до 0,5 мл путем осторожного азота продувкой и обмена растворителем для ACN для анализа ЖХ-МС / МС ^22.

4. Образцы воды

1. Шип 20 мл пробы воды с помощью 100 мкл смеси ап (с = 5 нг мл ^-1) с помощью стеклянного шприца, добавляют 3 мл ДХМ, вихревое течение 3 мин, и после декантации в фазовый сепаратор для анализа ГХ-МС ^22.
   1. После того, как две фазы разделяют, процеживают фазу хлористого метилена в стеклянную трубку. Повторите экстракции с использованием 3 мл хлористого метилена, и промыть трубку с 2 мл ДХМ. Наконец, концентрат экстрактов до 0,5 мл путем осторожного азота продувкой и валюGE растворитель для CH / АСЕ (90/10, об / об).
2. Анализ проб воды с использованием больших инъекции объем, аналогичный методу , описанному в другом месте с помощью LC-MS / MS ^21.

5. Инструментальный анализ

1. Анализ методом ГХ-МС
   1. Выполните инструментальный анализ CH / ACE экстрактов с использованием систем ГХ-МС в электронной ионизации (EI) и режиме отрицательной химической ионизации (NCI), соответственно ^22.
   2. Для метода ГХ-МС с использованием EI, вводят аликвоты 1 мкл с инъекционным методом без деления на колонке HP-5MS UI (30 м, 0,25 мм внутреннего диаметра, пленки 0,25 мкм).
   3. Для метода с использованием CI ГХ-МС, вводят аликвоты по 3 мкл на колонке HP-5MS UI (30 м, 0,25 мм внутренний диаметр, пленки 0,25 мкм).
2. Анализ с помощью ВЭЖХ-МС / МС
   1. Выполните инструментальный анализ ACN экстрактов с помощью ВЭЖХ-МС / МС сопряжен с источником ионизации электрораспылением в отрицательной ((-) ESI) и положительных ионов тода ((+) ESI) ^22.
   2. Для получения (+) ESI, разбавленных 100 мкл ACN, экстракты с 900 мкл сверхчистой воды доводили до рН 5 с помощью FA.
   3. Для получения (-) ESI, разбавленных в 100 мкл ACN экстрактов с 900 мкл 1% раствора FA в сверхчистой воде.
   4. Для получения (+) ESI, использовать двоичный градиент , состоящий из 2-пропанола / метанол / 10 мМ формиат аммония (6/2/92, об / об / об) и MeOH при скорости потока 0,3 мл мин - ^1.
   5. Для получения (-) ESI, использовать двоичный градиент , состоящий из ACN / сверхчистой воды 0,1% НАс и ACN + 0,1% HAc при скорости потока 0,3 мл мин - ^1.
   6. Вводят все образцы с использованием большого инъекции объемом 500 мкл с использованием двух онлайновых колонок SPE (как 20 х 2 мм Идентификатор и мкм размер частиц 20-25), а также аналитическую колонку (С _18, 100 х 3 мм, 3,5 мкм) ^21.

6. Теория по пассивной отбору проб

Примечание: Поглощение профиль химического вещества к пассивному сэмплер mediuм (PSM) делится на три секции: Линейная, криволинейные и равновесие (рисунок 3).

Рисунок 3. Пассивное кривую поглощения пробник. А) и С) поглощение кривая накопленной суммы ацетамиприда и диметоата, соответственно, в пассивных пробников (N _T) в нг абсолютной, и В) и D) концентрация бак для воды из ацетамиприда и диметоата, соответственно, в нг L ^{- 1.} Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

1. Рассчитать эквивалентный объем воды (V _экв L) для пассивного пробоотборника путем деления накопленного количества целевых соединений в пассивном пробоотборник после т дней воздействия (N ^'T , нг) по концентрации в водной фазе с использованием захвата и времени интегрированный активный отбор проб (с _ш, нг л ^-1).
   (1)
2. Выведите частоту дискретизации (R _S, L день ^-1) от линейной фазы поглощения профиля поглощения, принимая наклон V _экв в зависимости от времени развертывания.
3. Вычислить K _PW (L кг ^-1) для отдельных пестицидов с использованием уравнения. 2.
   (2)
   где т _р сорбент масса на пробоотборник (нг).
4. В линейной фазе поглощения, вычислить концентрацию TWA анализируемого вещества в воде , полученной с помощью пассивного пробоотборника (с _TWA, нг л ^-1) по формуле. 3.
   (3)
   где R _S является саСкорость mpling (L день ^-1), и т время развертывания (дни).
5. В криволинейной фазе, вычислить с помощью формулы _TWA. 4.
   (4)
6. В равновесной фазы, вычисляют с помощью уравнения _TWA. 5.
   (5)

7. Анализ статистических данных

1. Проверьте , не нормальное распределение данных с помощью теста Шапиро-Wilk ^23. Используйте непараметрический ранговой корреляции Спирмена для K _PW и R _S против физико - химических свойств исследуемых пестицидов (Rho Спирмена в пределах от -1 до 1) ^24.

Пять различных пассивных методов пробоотборник сравнивали для поглощения 124 наследия и в настоящее время используемых пестицидов , включая силиконового каучука (рисунок 1), и POCIS A, B, POCIS SDB-RPS и C ₁₈ диска (Рисунок 2). Производительность способа экстракции и инструментального анализа был оптимизирован. Результаты лабораторных экспериментов поглощения можно использовать для расчета R _'S и войти K' значения _PW (таблица 1) на основе профиля поглощения для отдельных пестицидов (рисунок 3). Результаты показали , что силиконовый каучук является более подходящим для гидрофобных соединений (логарифм коэффициента распределения октанол-вода (K _'OW)> 5,3), в то время как более полярные соединения (Log K' _OW <0,70) были лучше подхвачена POCIS A, POCIS B и SDB-RPS диск (Рисунок 4). R _'S (L день ^-1), К _'PW (L кг ^-1) и уравнения (уравнение.) Можно использовать для расчета концентраций в пробах полевых по отдельным пестицидам (таблица 1) ^22.

Рисунок 4. К _OW против пассивного типа пробника. Box-Whisker-участки для отдельных пестицидов , принятых до силиконовой резины (n = 86), полярный органический химический интегративный пробоотборник (POCIS) -А (п = 106), POCIS-В (п = 110), SDB-RPS диск (п = 65), и C ₁₈ диска (п = 54) в зависимости от их коэффициента распределения октанол-вода (K _OW). Примечание: Пестициды были включены только тогда, когда средняя концентрация пестицида в пассивном пробоотборник был больше, чем на 0,1% по сравнению со средним реsticide концентрации в воде. (Модифицированный из журнала хроматографии A, 1405, Lutz Аренс, Атласи Данешвар, Анна Е. Лау, Дженни Kreuger, характеристика пяти пассивных устройств отбора проб для контроля содержания пестицидов в воде, 1-11, авторские права (2015 г.), с разрешения Elsevier .) ²² Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Для контроля качества, в качестве стандартной процедуры, лабораторных заготовок, пределы обнаружения (LOD), восстановлений и воспроизводимости были исследованы ^23. Несколько пестицидов были обнаружены в пустых образцах при низких уровнях концентрации. LODs были установлены в качестве значения самой низкой точки на калибровочной кривой, которая отвечает критериям сигнала к шуму 3. Средние LODs были 8,0 пг абсолютного впрыскивают на колонку для силиконового каучука, 1,7 пг абсолютного для POCIS-A, 1,6 пг абсолютного для POCIS-B, 3,0 пг абсолютного для SDB-RPS диска, и 1,6 пг абсолютного значения C ₁₈ диска. Все концентрации были исправлены зубчатым IS смеси. Средние восстановление метод , основанный на обогащенных пассивных образцов нативных пестицидов (n = 3) было 68%, 110%, 92%, 89% и 70% силиконового каучука, POCIS-А, POCIS-Б, SDB-РПС диск и С ₁₈ диска, соответственно. Средняя повторяемость по отдельным пестицидам (n = 10) были 19%, 20%, 16%, 33% и 36% для силиконовым руббер, POCIS-A, POCIS-B, SDB-RPS диск и C ₁₈ диска, соответственно.

Большинство пестицидов имели короткую линейную кривую поглощения ( от 5 до 10 дней) и уравновешивали после 26 дней, то есть 89 из 124 для силиконового каучука, 97 из 124 для POCIS-А, 99 124 для POCIS-B, 32 из 124 для SDB-RPS диск и 36 из 124 для C ₁₈ диска. Таким образом, для большинства пестицидов журнал К _'PW можно рассчитать (таблица 1). Если пестицид не уравновешиваться, 'предполагалась выше расчетного входа K _{PW' PW} для фазы уравновешивания бревно К. Медиана R _'S (L день ^-1) были 0,86 для силиконового каучука, 0,22 для POCIS-B, 0,18 для POCIS-А, 0,05 для SDB-RPS диска и 0,02 для C ₁₈ диска. Высокими R _'S для силиконовой резины можно объяснить более высокой сорбционной массы (т _р) силиконового каучука (м _р = 15,6 г) по сравнению с другими пассивными пробниками (м _р = 0.22-0.58 г). Медиана войти K _PW (L кг ^-1) были 4.78 для POCIS-B, 4,56 для POCIS-A, 3.17 для SDB-RPS диск, 3,14 для силиконовой резины и 2.71 для C ₁₈ диска. Различия могут быть объяснены различных областях поверхности _(р) , которые были выше для POCIS-A и POCIS-В (а _р = 1,78 × 10 ⁶ см ² и 2,82 × 10 ⁶ см ^2, соответственно) по сравнению с силиконовой резиной (а _р = 457 см ^2), SDB-RPS диск и C ₁₈ диска _(р = 35 см ² для обоих). Важно отметить , что R _'S может варьироваться между различными методами калибровки и тип пассивного пробоотборника, при этом возникает необходимость определить стандартизированные протоколы для процедур калибровки ^25.

Данное исследование проводилось с использованием статического depletion который имеет преимущество иметь простую установку с многими повторами, но концентрация истощения с течением времени необходимо рассматривать. Будущие исследования поглощения должны быть выполнены с использованием проточных танков экспозиции с постоянными концентрациями воздействия или на месте в реальных полевых условиях развертывания ^19. Природная вода использовалась в лаборатории калибровочных экспериментов, однако, DOC может оказать влияние на определение частоты дискретизации. ¹⁹ Кроме того, использование производительности и эталонных соединений (КОП), которые подскочила до пассивных пробников перед развертыванием, может использоваться для расчета in-situ скорости поглощения и позволяют получить более точные оценки концентрации TWA. ²⁶

Журнал K _PW из силиконового каучука и C ₁₈ диск показал значимую положительную корреляцию с лог - K _OW (Rho Спирмена = 0,53 и 0,48 соответственно, р <0,0001).Для значений журнала R _S, значительная положительная корреляция была только обнаружена между лог - R _S и войти K _OW из силиконовой резины (Rho Спирмена = 0,56, p <0,0001). В общем случае , K _OW было показано, что хорошим показателем для прогнозирования пригодности пассивного пробоотборника для конкретных целевых соединений ^14,27. Множество различных пестицидов были исследованы в этом исследовании с бревном K _OW в диапазоне от -2.6 до 7.0. В общем, пять испытанные пассивных пробоотборников были способны накапливать пестициды с широким спектром различных K _OW для силиконового каучука (K _OW = 0,70 - 7,0), POCIS A (-1,9 - 5,3), POCIS B (-1,9 - 5,2) , SDB-РПС диск (-1,2 - 4,7) и С ₁₈ диска (1,3 - 5,3) (рис 4). Наши результаты показали , что силиконовый каучук является более подходящим для гидрофобных соединений (Log K _OW> 5.3), в то время какболее полярные соединения (вход K _OW <0,70) были лучше подхвачена POCIS A, B и POCIS SDB-RPS диска (рисунок 4).

The authors have nothing to disclose.

The Swedish EPA (Naturvårdsverket) (agreement 2208-13-001) and Centre for Chemical Pesticides (CKB) are gratefully acknowledged for funding this project. We thank Märit Peterson, Henrik Jernstedt, Emma Gurnell and Elin Paulsson at the OMK-lab, SLU, for skillful assistance with analytical support and supply of pesticide standards.