MAK 인정 건강의 국가 학회에서이 작품에 대 한 지원 / 국립 암 연구소 번호-1R15CA152985-01A1를 부여. 이 프로젝트는 또한 마이애미 대학 학부 연구 보너스 프로그램, 마이애미 대학 박사 학위-학부 기회 장학금 프로그램 및 마이애미 대학 여름 학자 프로그램에 의해 지원 되었습니다.

비디오에서 실행 하 고 아래에 설명 된 절차는 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC) 마이애미 대학에 의해 승인.
 1. 준비 및 자극 테스트 수술 절차, 수술 및 사후 작업 테이블에 대 한 <ol><li>구축 두 가지 영역. 모든 재료와 필요한 기구 두 영역을 무대.
	배기 후드 <ol><li>무대 운영 테이블. 절차의 지속적이 고 한 시 빨리 벗어나게 성능을 하는 방식으로 장비와 테이블 정렬.</li>
		<li>같은 방에 있는 작업의 주요 테이블 근처 수술 후 테이블을 설정합니다. 절차를 통해 메 마른 환경으로 두 테이블을 유지.</li>
	</ol></li> <li>장소 다음 운영 테이블에 공급: 한 유리 항아리 뚜껑, 한 15 mL 튜브, 수술가 위, 70% 에탄올, 두 거품 보드, 두 집게, 두 개의 1 mL 21 게이지 주사기, 두 50 mL 튜브, 1 개의 원심 분리기 튜브의 한 짜기 병의 한 쌍 하나의 극저온 유리병, 4 외과 패드, 10 핀, 살 균 물티슈, 디스펜서 및 sharps 컨테이너.</li>
	<li>후 작업 테이블에는 다음 공급 장소: 액체 질소, 얕은 넓은의 4 L dewar dewar, 부동 microtube 랙, 수술가 위 한 쌍, 두 집게, 4 극저온 튜브, 및의 디스펜서 입 하나 하나 분석 균형 살 균 물티슈.</li>
	<li>하나 50 mL 및 75% 볼륨 한 15 mL 튜브 포 르 말린에 채울.</li>
	<li>한 외과 패드 절 개 보드로 봉사 하는 대략 30 cm x 30 cm 폼 보드 부착 각 모서리에는 핀을 사용 하 여. 나머지 4 개의 핀을 사용 하 여 작업 하는 동안. 수술 패드 장기 수술 테이블에 전송 하는 작은 폼 보드 준비. 
	주의: Isoflurane (99.9%)는 독성 화학, 그리고 폐기물 마 취 가스 8의 청소에서 안전의 최대 수준을 보장 하기 위해 환기 후드에서 사용 해야 합니다. 테일러와 묵 8 기사에 연구자 isoflurane를 사용 하 여 오픈-드롭 방법의 사용과 관련 된 위험에 대 한 추가 정보를 찾을 수 있습니다.</li>
	<li>유리 항아리에 담가 isoflurane (99.9%)의 몇 방울과 한 외과 패드를 배치 하 고 마우스는 isoflurane와의 직접 접촉을 방지 하기 위해 정상 종이 타월 장소. 마찬가지로, 외과 패드를 사용 하 여 나머지 튜브 라인 및 isoflurane의 몇 방울으로 적시고 마우스와는 isoflurane 간의 직접 접촉을 방지 하기 위해 정상 추가 패드를 배치 하.</li>
	<li>Dewar 최대 입력 라인까지 도달 얕은 넓은 입으로 액체 질소를 부 어.</li>
	<li>장소 마 취로 해 부에 대 한 선택 마우스 챔버, 즉 몇 가지 젖은 패드와 유리 항아리 방울 isoflurane (99.9%) ~ 1 분에 대 한 뚜껑으로 덮여 
	참고:이 시간은 마우스 마우스에서 다릅니다. 일단 마우스를 의식이 없는 상공에서 제거 하 고 운영 위원회에 그것을 배치.</li>
	<li>고 과학자에서 지적 하는 그것의 머리와 복 부 측 거짓말 그것 있도록 마우스를 방향을 정합니다. 외과 패드 isoflurane (99.9%)의 몇 방울과 젖 줄지어 튜브 안에 머리 놓고 마우스 자극에 응답 하지 않는 되도록 발 핀치에 의해 자극 테스트를 수행 합니다.
	<ol><li>이 테스트가 실패 하는 경우 마우스 응답 발 핀치 테스트 하 반복 단계 1.8.</li>
	</ol></li></ol> 2. 초기 절 개, 심장 펑크, 및 안락사 <ol><li>외과 폼 보드를 마우스의 사지를 고정 하 고 젖은 70% 에탄올과 마우스의 복 부 측.</li>
	<li>집게와 요도 개통 근처 모피/피부를 꼬 집 고 약간 위쪽으로 당겨. 절 개 통해 복 부 구멍 요도 개방은 중간에서 시작 하 고 턱 끝 수술가 위 확인 합니다.
	<ol><li>초기 절 개의 시작 지점 근처는 집게와 모피/피부의 한쪽을 잡아 하 고 만들고 다른 절 개는가 위 아래로 대각선 쪽으로 다시 발.</li>
		<li>반대편에 같은 방식으로이 반복. 
		참고: 모피/피부 만들 넓은 개방을 고정 수 있습니다 하지만 필요 하지 않습니다.</li>
	</ol></li> <li>마음 찾아서 주사기 바늘의 막힘을 방지 하기 위해 심장 주위 sac는 심 낭을 제거.
	<li><ol>는 집게와 심 낭을 파악 하 고는 위로 잘라. 신중 하 게 뛰는 심장에 주사기 바늘을 삽입 하 여 심장 펑크를 수행 하 고 철회 플런저를 천천히 시작.</li>
		<li>최적의 혈액 컬렉션 사용 하 여 바늘의 플런저 심장의 펌핑 작업을 모방 하 고 너무 빨리 그리기 방지. 
		참고: 일반적으로 약 1 mL의 혈액 수집 될 수 있습니다.</li>
		<li>원심 분리기 튜브 및 sharps 용기에 주사기의 dispose에 혈액 혈액 컬렉션을 마친 후 불식.</li>
		<li>심장 찔린 수행 된 후 마음을 연결 하는 첨부 파일을 제거 하 여 안락사를 실시. 
		참고: 헤 파 린, 항 응고 제는 혈 청이 특정 연구에 컬렉션에 대 한 응고 혈액을 있도록 심장 찔린 전에이 절차에서 주사기에 추가 되지 않았습니다. 그러나, 경우 연구원 플라즈마를 수집 혈액 응고를 방지 하 고 싶 었, 헤 파 린에 추가할 수 있는 심장 찔린 이전 주사기.</li>
	</ol></li> <li>연구는 마우스의 유전형을 포함 하는 경우는 위는 귀 부분을 싹 둑 하 고 유전자 확인에 대 한 원심 분리기 튜브.</li></ol>
 3. 췌 장 추출 <ol><li>찾기 마우스의 왼쪽에 위. 시작은 부드럽게 (피하기 찢 어) 두 개의 집게를 사용 하 여 위장 및 십이지 장 췌 분리. 
	참고: 위 및 내장에서 췌를 분리 하는 경우 매우 중요 하다는 집게 장기에서 췌 장 조직 안내 하 고 하지 분쇄는 집게와 췌 눈물 부드럽게 사용 됩니다.
	<ol><li>소장 공장 및 회장 섹션에서 췌 구분 하 고 마지막으로 장 caecum에서.</li>
	</ol></li> <li>Caecum에 집게를 재배치 하 고 계속 항문 쪽으로 나머지 결 따라 췌의 분리. 
	참고:이 시점에서 그것은 편리 잘라내어 콜론 항문 바로 앞의 지역에서 위 부분을 제거.</li>
	<li>췌 찾아서 비장을 첨부 합니다. 마우스의 오른쪽을 향해 췌를 밉니다. 췌 장 및 인접된 비장 완전히 분리 집게 췌와 흉 강 사이 나머지 연결 구분.</li>
	<li>췌를 제거 하 고 시험을 위해 그것을 밖으로 확산. 식별 용 췌에 연결 된 비장을 둡니다.
	<ol><li>제거 모든 결합 조직, 지방과 mesenteric 조직에서 췌 장. 
		참고:이 조직의 색깔에 하얀 이며 따라서 컬러로 pinker는 췌 장 조직에서 쉽게 구분할 수 있습니다. 이것은 췌 장 전체를 제거 해야 하는 경우에 특히 중요 하다입니다. 예를 들어, 췌 장의 무게와 몸 무게에 또는 동물의 그룹 사이 비교 하는 경우. Ptf1a에서 cre / +; LSL Kra G12D / + 마우스 모델 이전 달에서 특히 하드 섬유 췌 장 조직 있을 수 있습니다. 이 경우에, 장내 종양 조직에 인터레이스 수로 췌의 주의 제거를 실시 해야 합니다. 고급의 경우에서 비정상적인 비장 및 간 조직 또한 존재할 수 있습니다.</li>
	</ol></li> <li>원하는 경우이 시점에서 다른 장기를 제거.</li></ol>
 4. 데이터 수집 및 저장 <ol><li>장기의 적 출, 후 보존을 위한 수술 후 영역에 샘플 이동.</li>
	<li>각 장기의 무게 및 그들의 각각 극저온 유리병에 넣어. 
	참고: 따라 위트h 질량 각 샘플의 부정은 나중에 참조할에 기록 되어야 합니다.</li>
	<li>장기 무게는 일단 스냅 동결에 액체 질소에 그들을 배치.</li>
	<li>스냅 동결 후 장기 저장을 위한-80 ° C에서 장기 저장.</li>
	<li>벤치 위에 하룻밤 말린 저장 샘플을 배치 하 고 다음날 아침 그들의 솔루션 포 르 말린에서 70% 에탄올으로 변경. 
	참고: 이러한 샘플은 장기 저장을 위한 4 ° C에 저장 되어야 합니다.</li>
	<li>장기 저장용 고정-80 ° c.에 혈액과 귀 펀치. 혈액에서 혈 청 수집, 30 분 동안 응고 후 그것을 원심 혈액을 수 있습니다. 피 펫을 사용 하 여 혈 청 부분을 제거 하 고 다음-80에 저장 ° c.</li>
</ol> 5. Clean Up <ol><li>Sanitize 모든 해 부 도구 살 균 물티슈. 모자는 isoflurane 늘어서 튜브 수술 패드를 젖 었. 신선한 외과 패드에 폼 보드에 외과 패드를 바꿉니다. 처분 시설 당 하지 수집 된 마우스의 부분 &#39; s 동물 처리 정책.</li>
</ol>

<ol>
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저자는 공개 없다.

기존의 방법에 관하여 의미 마우스 해의 다른 비공식적인 동영상 존재 하는 동안이 비디오 문서에서는 첫 번째 전문 품질, 피어 검토, 자세한 단계를 추출에 필요한 해10 부에 의해 마우스 췌의 수확의 모든 시각적 데모 . 신진 대사 활동 및 인슐린에 대 한 주요 기관 되 고 췌와 생산, 해 부와 췌의 수확 생리 특성11의 보존에 대 한 수 있습니다. 췌, 분리 하 여 미래의 분석 샘플에 실시 수 있습니다. 이 절차는 비교와 같은 시간 프레임 내에 동일한 유기 체 내의 다른 조직에서 상호 작용의 연구에 대 한 수 있습니다.
기술의 한계 이 절차의 가장 큰 한계의 마우스의 생활, 경도 컬렉션 방지 및 동일한 마우스에서 여러 조직 샘플의 샘플링입니다. 나이, 성별, 또는 다른 수량자에 관련 된 트렌드를 분석 하기 위하여 횡단면 인구 구현 되어야 합니다, 우리가 췌장암의 대사 마커의 우리의 연구에 대 한 다. 이 프로토콜의 또 다른 한계는 절차를 일시 중지 하는 무 능력 이다. Euthanization 시작 되 면 절차 전체에 실시 해야 합니다.
프로토콜 내에서 중요 한 단계 마우스의 뒷 발을 곤란 하 게 하 여 자극 테스트의 실행이 마우스 자비 롭 처리를 받는 것을 보장 하기 위해 중요 합니다. 마우스가이 자극에 반응 하지 않는 경우 다음 절차 수 있습니다 실시 계획 대로. 그러나, 마우스 자극 테스트 결과로 고민된 응답 표시 마우스 반환 되어야 합니다 마 취 실로 시간과 자극 테스트에 대 한 반응12관찰 하지 때까지 반복 테스트의 추가 기간에 대 한.
마찬가지로, 터미널 심장 찔린 뒤에 연결의 제거는 마음에 마우스의 인간적 인 희생을 보장 하는 안락사의 보조 방법으로 터미널 혈액 샘플 수집 후에 즉시 합니다. 효과적인 혈액 무승부를 보장 하기 위해, 과학자 주사기는 마우스의 하트와 비슷한 분석을 위한 혈액의 최대 컬렉션에 대 한 허용 펌핑 동작을 사용 해야 합니다.
수정 및 문제 해결 70% 에탄올 솔루션 포 르 말린에서 장기 전환 조직학 분석에 필요한 포함 프로세스에 대 한 장기를 준비 합니다. 다른 저장소 솔루션 필요한 과학자 장기와 다른 실험을 수행 하도록 선택할 수 있습니다. 분석, 전에 어떤 잠재적인 녹고 오르간의 무결성을 유지 하기 위해-80 ° C 냉동 고에 저장 하는 장기의 제한 하는 것이 중요 하다.
Ptf1a의 사용cre / +; LSL KraG12D / + 마우스 모델 비 췌 기본 종양 및 질환13의 발생을 최소화. 따라서, 부정 해 부와 분석에 대 한 조직 샘플의 수집 하는 동안 명백한 췌 장 또는 다른 장기에는 주의 하는 것이 중요 하다.
미래의 응용 프로그램 마우스 췌 장 해 부에 의해 수확 여러 유형의 분석 같은 샘플에 실시 될 수 있습니다. 이 중 가장 인기 있는 포함 하지만, 형광 현미경 검사 법, hematoxylin 및 오신 조직학, immunohistochemistry, 질량 분석, 및 핵 자기 공명 분광학6,7, 에 국한 되지 않습니다. 14 , 15. 당뇨병, 췌 장 염, 췌 장 암 같은 질병16위에서 언급 한 기술을 사용 하 여 공부 될 수 있다.

마우스는 인간 췌장암1,2의 중요 한 동물 모델로 떠오르고 있다. Ptf1a에서cre / +; LSL KraG12D / + 마우스 모델, 쥐 육 (K-Ras) oncogene은 췌 장, 췌 장, 췌 장 intraepithelial 형성 (PanINs), 그 진행으로 알려져 있는 전 암 병 변의 결과에서 독점적으로 활성화 하는 순 영 췌 장 ductal adenocarcinomas로 일반적으로 불린다 PDACs3. 이 마우스 모델 시스템은 인간의 췌장암4,5는 PanINs 삶과 자주 내 PDAC 진행의 첫 5 개월 이내 등장 추가 이용에 대 한 최상의 사용 가능한 동물 모델 중 하나는 반면 췌장암 가장 자주 발생 인 간에 있는 나이의 60-70 년 년4,5, 단일.
Ptf1a에서 해 부에 의해 췌 장의 추출cre / +; LSL KraG12D / + , 췌 장의 암 개발의 자세한 경도 조직학 시험에 대 한 다양 한 연령대에서 쥐 수 까지의 초기 PanIN 단계에서 진행 PDAC3,4 , 5. 15 개월에 5에서 배열 하는 나가에 수확 하는 췌도 사용할 수 있습니다 준비 조직 질병 조직 건강 한에서 전환 하는 동안 발생 하는 췌 장4 물질 대사에 글로벌 변화 특징을 추출 하 6,7.
이 문서는 마우스 췌 장 추출 하는 데 필요한 단계의 완전 한 시각적 가이드를 제공 하 고 추가 분석을 위해 췌의 저장에 대 한 지침을 제공 합니다. 이 가이드는 개인 연구를 포함 한 다른 췌 장 질환에 유형 I 당뇨병, 그리고 학생과 새로운 사용 하 여 마우스 췌의 수확과 관련 된 연구 조사에 특히 유용 해야 한다 동등 하 게 가치가 있을 것입니다. 신진 대사 프로 파일링 또는 조직학 분석에 대 한 해 부입니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="790">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glass Jar&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">3140-150</td>
			<td style="width:167px;">The glass jar used in the video has been discontinued.&#160; This is its replacement.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Lid of Glass Jar</td>
			<td style="width:288px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">9985-150</td>
			<td>The glass jar lid used in the video has been discontinued.&#160; This is its replacement.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">15 mL Falcon Tubes</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">339650</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Surgical Scissors</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">9201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Squeeze bottle&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">03-409-10DD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">100% Ethanol</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">22-032-103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Formalin</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">245-684</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Foam Boards</td>
			<td style="width:288px;">Therapak</td>
			<td style="width:119px;">562908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Forceps</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">200205SHN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">1 mL 21G Syringes</td>
			<td style="width:288px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:119px;">309624</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">50 mL Falcon Tubes</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">339652</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">2.0 mL Microcentrifuge Tubes&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">02-681-258</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Surgical Pads</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">S67011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">T-Pins Length:&#160; 2&#34;&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Advance Store Products</td>
			<td>X32T-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Sterilizing Wipes</td>
			<td style="width:288px;">Professional Disposables International Inc.</td>
			<td style="width:119px;">Q85084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sharps Container</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">14-827-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Analytical Balance</td>
			<td style="width:288px;">Marshall Scientific</td>
			<td style="width:119px;">ME-AE200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">4L Dewar</td>
			<td style="width:288px;">Taylor-Wharton</td>
			<td style="width:119px;">4LD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Shallow Wide Mouth Dewar</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">F3087-V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Floating Microtube Rack</td>
			<td style="width:288px;">VWR</td>
			<td style="width:119px;">60986-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cryogenic Vial 1.2 mL, Sterile</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">10-500-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Isothesia (Isoflurane)&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Henry Schein Animal Health</td>
			<td style="width:119px;">050033</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Liquid Nitrogen</td>
			<td style="width:288px;">Wright Brothers</td>
			<td style="width:119px;">NIT-60-XX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mouse Kras Strain</td>
			<td style="width:288px;">The Jackson Laboratory</td>
			<td style="width:119px;">OO8179</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mouse Cre Strain</td>
			<td style="width:288px;">MMRRC</td>
			<td style="width:119px;">OOO435-UNC</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection of the mouse pancreas for histological analysis and metabolic profiling

우리는 조사 하 고 췌 특정 전사 인자, 1a cre-recombinase; lox 그만 lox-순 영 쥐 육, aspartic 산 12 codon에 글리신 (Ptf1acre / +; LSL-KrasG12D / +) 인간 췌장암의 모델로 스트레인 마우스. 우리의 현재 연구의 목표는 췌장암 진행의 소설 대사 생체 식별 하입니다. 우리는 소변, 대변, 혈액, 그리고 췌 장 조직 추출, 뿐만 아니라 암 진행을 췌 장의 조직학 분석의 대사 프로 파일링을 수행 했습니다. 마우스 췌 하지 인간, 같은 잘 정의 된 고체 기관 이지만 오히려 마우스 내부 해부학에 익숙하지 않은 개인 또는 개인 거의 또는 전혀 경험 수행에 의해 쉽게 식별 되지 않으면 만들어진다 분산된 부드러운 조직 마우스 장기 해입니다. 이 문서의 목적은 현명한 상세한 제공 하는 시각적 데모 해 부에 의해 마우스 췌 장의 제거에 초보자 가이드. 이 문서는 특히 학생과 새로운 조사 대사 프로 파일링 또는 조직학 분석에 대 한 해 부에 의해 마우스 췌의 수확 필요로 하는 연구에 귀중 한 해야 합니다.

그림 2 는 게시물 작업 영역 및 그림 1 운영 환경 영역에 대 한 개요를 보여준다. 이 설정은 최소한의 장비를 제공 하는 동안 준비, 개인에 가장 개인적인 필요에 맞게이 변경 하도록 선택할 수 있습니다. 프로토콜은 실험의 특정 요구에 따라 최적화 되어야 합니다. 이 절차는 필요 적절 한 euthanization9, 마우스의 생활을 종료 하는 방식으로 실시 됩니다. 연구원은 준비, 마우스 isoflurane 젖은 패드 (그림 3)와 함께 마 취 챔버에 배치 됩니다.
마우스 의식이 일단 마우스를 제거 하 고 보드에 등 쪽을 놓습니다. 발가락-핀치 절차 마우스 통증 (그림 4)에 응답 하지 않는 것을 보장 하기 위해 수행 되어야 한다. 70% 에탄올 소독 초기 절 개 지역에 적용 됩니다. 터미널 혈액 무승부 췌 제거 적절 한 혈액 검색 되도록 전에 먼저 실시 해야 합니다. 혈액 제거 전에 심 낭 여 21 G 바늘의 막힘을 방지 하기 위해 제거 되어야 한다. 터미널 피를 완료 한 후, 심장 안락사의 보조 방법으로 분리 되 그리고 췌 다음 제거 됩니다.
찾기 위, 췌 장 제거 (그림 5)에 대 한 좋은 출발점을 제공 하 여 시작 합니다. 참고: 극단주의 섬세 하 고 연약한 조직 인 췌의 제거 동안에 행사 해야 하 고 부드러운 힘으로 모든 작업을 수행 합니다 따라서. 위장에서 췌를 부드럽게 시작 하 여 해 부를 시작 하 고 위장 (GI)로 위장에서 십이지 장, 공장 및 회장 ( 작업의 외부 안 대기에서 췌 장 조직 분리를 계속 집게를 사용 하 여, 그림 6). caecum에 도달 하면 췌 장의 쉽게 제거 한 집게는 caecum 잡고 다른 집게 췌 장 (그림 7)에서 분리 하는 데 사용 됩니다 있도록는 집게를 재배치 하 여 이루어집니다. 큰 창 자에서 제거 후 췌 마우스의 오른쪽에 배치 되 고 나머지 첨부 파일은 절단된(그림 8).
췌 장 검사를 위해 밖으로 부채질 해야 하 고 어떤 이상이 되어야 합니다 (그림 9)를 기록 했다. Ptf1a에서cre / +; LSL KraG12D / + 스트레인, 마우스 췌 경화 종양 (그림 10) 포함 될 수 있습니다. 다른 장기도 잠재적 전이 대 한 시험 한다. 췌 장의 제거 되었습니다 일단 무게 해야 하 고 무게 기록. 췌 장의 일부 스냅인-미래의 대사 프로 파일링 분석을 위한 액체 질소에서 냉동 또는 다른 테스트와 췌 장의 일부 미래 조직학 분석을 위해 포 르 말린에 배치 되어야 합니다. 그림 11 나중에 분석에 사용 하기 위해 절 개에서 수집 된 다양 한 기관의 초기 저장소를 보여 줍니다. 기관 절 개에 의해 수집 및 진학에 대 한 저장 된 개별 연구원의 목표에 따라 달라 집니다.
조직학 분석 및 대사 프로 파일링에 대 한 조직 및 혈액 샘플을 사용할 수 있습니다. 췌 장 조직의 조직학 분석의 예는 그림 12에 표시 됩니다. 신진 대사 프로 파일링 스냅 냉동 조직 샘플 및 혈액 샘플에 지휘 될 수 있다. 췌 장 조직 추출의 친수성 및 소수 성 구성 요소의 대표적인 핵 자기 공명 분광학 (NMR) 스펙트럼 그림 13A , 13B, 각각 표시 됩니다. 터미널 혈액 무승부 절차의 시간에서 수집 된 혈액에서 준비 하는 혈 청 샘플 수집 대표 NMR 스펙트럼은 그림 14에 표시 됩니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig1.jpg"> 
그림 1 : 지역 운영의 준비. 올바른 도구와 해 부에 대 한 작동 조건의 일반적인 레이아웃. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig2.jpg"> 
그림 2 : 후 작업 영역의 준비. 올바른 도구와 수술 후 절차에 대 한 작동 조건의 일반적인 레이아웃. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig3.jpg"> 
그림 3 : 마 취 실. 통해 isoflurane 마 취에 대 한 적절 한 환경입니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig4.jpg"> 
그림 4 : 자극 시험. 어떤 통증이 나 불편을 되도록 초기 절 개 전에 마우스에는 자극 시험을 견 뎌가 되 고. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig5.jpg"> 
그림 5 : 췌 장의 제거 시작. 췌 장 위치는 집게로 표시의 초기 추출 나타내는 마우스의 방향. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig6.jpg"> 
그림 6 : 창 자에 따라 췌 장 추출. 위장에서 췌 분리의 과정. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647 alt="Figure 7" class="xfigimg" src=""></img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647>fig7.jpg"/ > 
그림 7 : 췌 장 제거는 Caecum에. 한 번는 집게의 위치는 caecum 도달 된다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig8.jpg"> 
그림 8 : 췌 제거. 췌 마우스의 오른쪽에 놓습니다. 나머지 첨부 파일 췌를 완전히 제거 하려면 잘라 되어야 합니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig9.jpg"> 
그림 9 : 췌 장 검사. 연결 된 비장 마우스에서 제거 후 검사를 받고 함께 췌. 비장 수직 화살표에 의해 표시 되 고 췌 가로 화살표로 표시 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig9large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 10" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig10.jpg"> 
그림 10 : 췌 장 검사. 연결 된 비장 췌 장 종양 마우스에서 제거 후 검사를 받고 표시와 췌 장. 비장 수직 화살표에 의해 표시 되 고 췌 가로 화살표로 표시 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig10large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 12" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig12.jpg" style="opacity: 0.9; font-size: 14px;">
그림 11 : 저장 기관의 제거. 보관 기관 및 샘플의 수집, 장기 저장 및 미래 분석에 대 한 준비. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig11large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 11" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig11.jpg" style="opacity: 0.9;"> 
그림 12 : 췌 장 조직의 조직학 분석. 되며 고 오신 스테인드 췌 장 조직에서 이미지. Ptf1a에서 A) 정상적인 췌 장 조직cre /-; LSL KraG12D /- 제어 마우스. Ptf1a의 췌 장에서 B) PanIN 조직cre / +; LSL KraG12D / + 연구 마우스. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig12large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 13" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig13.jpg"> 
그림 13 : 프로 파일링 분석 대사. 췌 장 조직 추출 다음 조직 균질 하 고 클로 프롬/메탄올 추출 대상의 구성 요소 A) 친수성 및 B) 소수 단계 1 차원 양성자 핵 자기 공명 분광학 (NMR) 스펙트럼. NMR 스펙트럼 850 MHz에서 인수 했다 되며 신진 대사 프로 파일링 분석에 사용 하기 적합 합니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig13large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 14" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55647/55647fig14.jpg"> 
그림 14 : 혈 청의 대표 NMR 스펙트럼. 터미널 혈액 추첨 절차에 의해 수집 된 혈액 대사 프로 파일링 분석을 위해 사용할 수 있습니다. 이 스펙트럼 표시는 전형적인 1 차원 양성자 850 MHz NMR 스펙트럼 터미널 혈액 그리기 샘플에서 얻은 혈 청에 대 한 수집. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55647/55647fig14large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

이 비디오 문서는 조직학 분석 및 대사 프로 파일링에 대 한 해 부는 마우스에서 췌를 성공적으로 제거 하는 데 필요한 절차의 상세한 데모를 제공 합니다.

조직학 분석 및 대사 프로 파일링에 대 한 마우스 췌의 해 부

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at ...

dissection-mouse-pancreas-for-histological-analysis-metabolic

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

36.2K 조회수.  Miami University. 이 비디오 문서는 조직학 분석 및 대사 프로 파일링에 대 한 해 부는 마우스에서 췌를 성공적으로 제거 하는 데 필요한 절차의 상세한 데모를 제공 합니다.

비디오: Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

Dissection of Human Vitreous Body Elements for Proteomic Analysis

The vitreous is an optically clear, collagenous extracellular matrix that fills the inside of the eye and overlies the retina. 1,2 Abnormal interactions between vitreous substructures and the retina underlie several vitreoretinal diseases, including retinal tear and detachment, macular pucker, macular hole, age-related macular degeneration, vitreomacular traction, proliferative vitreoretinopathy, proliferative diabetic retinopathy, and inherited vitreoretinopathies. 1,2 The molecular composition of the vitreous substructures is not known. Since the vitreous body is transparent with limited surgical access, it has been difficult to study its substructures at the molecular level. We developed a method to separate and preserve these tissues for proteomic and biochemical analysis. The dissection technique in this experimental video shows how to isolate vitreous base, anterior hyaloid, vitreous core, and vitreous cortex from postmortem human eyes. One-dimensional SDS-PAGE analyses of each vitreous component showed that our dissection technique resulted in four unique protein profiles corresponding to each substructure of the human vitreous body. Identification of differentially compartmentalized proteins will reveal candidate molecules underlying various vitreoretinal diseases.

This video shows an effective technique for differentiating and dissecting the various semi-transparent structures of the human vitreous body in post mortem eyes.

Proteomic 분석을위한 인적 유리 바디 요소의 해부

The vitreous is an optically clear, collagenous extracellular matrix that fills the inside of the eye and overlies the retina. 1,2 Abnormal interactions ...

연구

의학

Collection Protocol for Human Pancreas

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation of pancreas recovered from cadaveric organ donors. The pancreas is divided into 3 main regions (head, body, tail) followed by serial transverse sections throughout the medial to lateral axis. Alternating sections are used for fixed paraffin and fresh frozen blocks and remnant samples are minced for snap frozen sample preparations, either with or without RNAse inhibitors, for DNA, RNA, or protein isolation. The overall goal of the pancreas dissection procedure is to sample the entire pancreas while maintaining anatomical orientation.
Endocrine cell heterogeneity in terms of islet composition, size, and numbers is reported for human islets compared to rodent islets 1. The majority of human islets from the pancreas head, body and tail regions are composed of insulin-containing &beta;-cells followed by lower proportions of glucagon-containing &alpha;-cells and somatostatin-containing &delta;-cells. Pancreatic polypeptide-containing PP cells and ghrelin-containing epsilon cells are also present but in small numbers. In contrast, the uncinate region contains islets that are primarily composed of pancreatic polypeptide-containing PP cells 2. These regional islet variations arise from developmental differences. The pancreas develops from the ventral and dorsal pancreatic buds in the foregut and after rotation of the stomach and duodenum, the ventral lobe moves and fuses with the dorsal 3. The ventral lobe forms the posterior portion of the head including the uncinate process while the dorsal lobe gives rise to the rest of the organ. Regional pancreatic variation is also reported with the tail region having higher islet density compared to other regions and the dorsal lobe-derived components undergoing selective atrophy in type 1 diabetes4,5.
Additional organs and tissues are often recovered from the organ donors and include pancreatic lymph nodes, spleen and non-pancreatic lymph nodes. These samples are recovered with similar formats as for the pancreas with the addition of isolation of cryopreserved cells. When the proximal duodenum is included with the pancreas, duodenal mucosa may be collected for paraffin and frozen blocks and minced snap frozen preparations.

This video demonstrates a dissection procedure for processing human pancreas into multiple storage formats. Anatomical orientation is maintained throughout the pancreatic regions to allow definition of regional islet composition and density.

인간의 췌장을위한 컬렉션 프로토콜

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation ...

Whole Vitreous Humor Dissection for Vitreodynamic Analysis

The authors propose an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes. While previous studies have shown the results of such dissections, the detailed steps have not been described, precluding researchers outside the field from replicating their methods. Other studies harvest vitreous either through aspiration, which does not maintain the vitreous structure anatomy, or through partial dissection, which only isolates the vitreous core. The proposed method isolates the whole vitreous body, with the vitreous core and cortex intact, while maintaining vitreous anatomy and structural integrity. In this method, a full thickness scleral flap in an enucleated porcine eye is first created and through this, the choroid tissue can be separated from the sclera. The scleral flap is then expanded and the choroid is completely separated from the sclera. Finally the choroid-retina tissue is peeled off the vitreous to leave an isolated intact vitreous body. The proposed vitreous dissection technique can be used to study physical properties of the vitreous humor. In particular, this method has significance for experimental studies involving drug delivery, vitreo-retinal oxygen transport, and intraocular convection.

The goal of this protocol is to show an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes.

Vitreodynamic 분석을위한 항목의 유리체 유머 해부

The authors propose an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes. While previous ...

Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide new expandable sources of beta cells to alleviate the donor scarcity in human islet transplantation as therapy for diabetes. Although recent advances have been made towards this aim, mechanisms that regulate beta cell expansion and differentiation from a stem/progenitor cell remain to be characterized. Here, we describe a protocol for an injury model in the adult mouse pancreas that can function as a tool to study mechanisms of tissue remodeling and beta cell proliferation and differentiation. Partial duct ligation (PDL) is an experimentally induced injury of the rodent pancreas involving surgical ligation of the main pancreatic duct resulting in an obstruction of drainage of exocrine products out of the tail region of the pancreas. The inflicted damage induces acinar atrophy, immune cell infiltration and severe tissue remodeling. We have previously reported the activation of Neurogenin (Ngn) 3 expressing endogenous progenitor-like cells and an increase in beta cell proliferation after PDL. Therefore, PDL provides a basis to study signals involved in beta cell dynamics and the properties of an endocrine progenitor in adult pancreas. Since, it still remains largely unclear, which factors and pathways contribute to beta cell neogenesis and proliferation in PDL, a standardized protocol for PDL will allow for comparison across laboratories.

This protocol describes an injury model involving the surgical ligation of the pancreatic duct in the adult mouse pancreas, resulting in severe injury that establishes an environment that allows beta cell neogenesis and proliferation. This model can be used as a tool to study mechanisms involved in beta cell formation.

내분비 및 외분비 리 프로그래밍과 대량 살상 무기 확산 모델로 췌관의 결찰을 통해 마우스 췌장 외과 부상

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide ...

Do's and Don'ts in the Preparation of Muscle Cryosections for Histological Analysis

Histological evaluation of muscle biopsies has served as an indispensable tool in the understanding of the development and progression of pathology of neuromuscular disorders. However, in order to do so, proper care needs to be taken when excising and preserving tissues to achieve optimal staining. One method of tissue preservation involves fixing tissues in formaldehyde and then embedding them with paraffin wax. This method preserves morphology well and allows for long-term storage at RT but is cumbersome and requires handling of toxic chemicals. Further, formaldehyde fixation results in antigen cross-linking, which necessitates antigen retrieval protocols for effective immunostaining. On the contrary, frozen sectioning does not require fixation and thus retains biological antigen conformation. This method also provides a distinct advantage in quick turn around time, making it especially useful in situations needing quick histological evaluation like intraoperative surgical biopsies. Here we describe the most effective method of preparing muscle biopsies for visualization with different histological and immunological stains.

Here we demonstrate the most efficient methods for freezing, embedding, cryosectioning, and staining of muscle biopsies to avoid freezing artifacts.

조직 학적 분석을위한 근육 저온부의 준비의 것과하지 말아야을 수행

Histological evaluation of muscle biopsies has served as an indispensable tool in the understanding of the development and progression of pathology of ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.

췌 장 이식 수정된 팔목 기술을 사용 하 여 마우스 모델

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

Echocardiographic and Histological Examination of Cardiac Morphology in the Mouse

An increasing number of genetically modified mouse models has become available in recent years. Moreover, the number of pharmacological studies performed in mice is high. Phenotypic characterization of these mouse models also requires the examination of cardiac function and morphology. Echocardiography and magnetic resonance imaging (MRI) are commonly used approaches to characterize cardiac function and morphology in mice. Echocardiographic and MRI equipment specialized for use in small rodents is&#160;expensive and requires a dedicated space. This protocol describes cardiac measurements in mice using a clinical echocardiographic system with a 15 MHz human vascular probe. Measurements are performed on anesthetized adult mice. At least three image sequences are recorded and analyzed for each animal in M-mode in the parasternal short-axis view. Afterwards, cardiac histological examination is performed, and cardiomyocyte diameters are determined on hematoxylin-eosin- or wheat germ agglutinin (WGA)-stained paraffin sections. Vessel density is determined morphometrically after Pecam-1 immunostaining. The protocol has been applied successfully to pharmacological studies and different genetic animal models under baseline conditions, as well as after experimental myocardial infarction by the permanent ligation of the left anterior descending coronary artery (LAD). In our experience, echocardiographic investigation is limited to anesthetized animals and is feasible in adult mice weighing at least 25 g.

Echocardiographic examination is frequently used in mice. Expensive high-resolution ultrasound devices have been developed for this purpose. This protocol describes an affordable echocardiographic procedure combined with histological morphometric analyses to determine cardiac morphology.

마우스의 심장 형태학의 echocardiographic 및 조직학 검사

An increasing number of genetically modified mouse models has become available in recent years. Moreover, the number of pharmacological studies performed ...

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental insults that disturb placenta development or function can cause early pregnancy loss in mice and humans. Nevertheless, simple in vitro assays to screen for potential effects on placenta formation are lacking. Here, we focus on modeling the first and critical step in placenta formation, which consists of the attachment of the allantois to the chorion. We describe a method to rapidly assess the attachment of allantoic explants on immobilized &#945;4&#946;1 integrin, which serves as a chorio-mimetic substrate.This in vitro approach enables a qualitative evaluation of the attachment and spreading behavior of multiple allantois explants at different consecutive time points. The protocol may be used to investigate the effect of targeted mouse mutations, drugs, or various environmental factors that have been linked to pregnancy complications or fetal loss on allantois attachment ex vivo.

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

We describe an in vitro assay to model chorioallantoic attachment, the first step in placenta formation. The protocol demonstrates the dissection and explant culture of murine allantoides on immobilized &#945;4&#946;1 integrin. Allantois attachment is evaluated microscopically at pre-determined time points.

해 부와 Allantoic 첨부 파일의 생체 외에서 분석 Murine Allantois Explant 문화

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental ...

Quantitative Micro-CT Analysis of Aortopathy in a Mouse Model of &#946;-aminopropionitrile-induced Aortic Aneurysm and Dissection

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of aortic disease exist, in vivo imaging of the vasculature has been limited. In recent years, micro-computerized tomography (micro-CT) has emerged as a preferred modality for imaging both large and small vessels both in vivo and ex vivo. In conjunction with a method of vascular casting, we have successfully used micro-CT to characterize the frequency and distribution of aortic pathology in &#946;-aminopropionitrile-treated C57/Bl6 mice. Technical limitations of this method include variations in the quality of the perfusion introduced by poor animal preparation, the application of proper methodologies for vessel size quantification, and the non-survivability of this procedure. This article details a methodology for the intravascular perfusion of a lead-based radiopaque silicone rubber for the quantitative characterization of aortopathy in a mouse model of aneurysm and dissection. In addition to visualizing aortic pathology, this method may be used for examining other vascular beds in vivo or vascular beds removed post-mortem.

This article describes a detailed methodology of using a radiopaque lead-based silicone rubber to perfuse the murine vasculature for aortic diameter quantification in a mouse model of aortic aneurysm and dissection.

Β-aminopropionitrile-유도 대동맥 동맥 및 해 부의 마우스 모델에서 Aortopathy의 양적 마이크로 CT 분석

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of ...

Mechanisms Underlying Gut Hormone Secretion Using the Isolated Perfused Rat Small Intestine

The gut is the largest endocrine organ of the body, producing more than 15 different peptide hormones that regulate appetite and food intake, digestion, nutrient absorption and distribution, and post-prandial glucose excursions. Understanding the molecular mechanisms that regulate gut hormone secretion is fundamental for understanding and translating gut hormone physiology. Traditionally, the mechanisms underlying gut hormone secretion are either studied in vivo (in experimental animals or humans) or using gut hormone-secreting primary mucosal cell cultures or cell lines. Here, we introduce an isolated perfused rat small intestine as an alternative method for studying gut hormone secretion. The virtues of this model are that it relies on the intact gut, meaning that it recapitulates most of the physiologically important parameters responsible for the secretion in in vivo studies, including mucosal polarization, paracrine relationships and routes of perfusion/stimulus exposure. In addition, and unlike in vivo studies, the isolated perfused rat small intestine allows for almost complete experimental control and direct assessment of secretion. In contrast to in vitro studies, it is possible to study both the magnitude and the dynamics of secretion and to address important questions, such as what stimuli cause secretion of different gut hormones, from which side of the gut (luminal or vascular) is secretion stimulated, and to analyze in detail molecular sensors underlying the secretory response. In addition, the preparation is a powerful model for the study of intestinal absorption and details regarding the dynamics of intestinal absorption including the responsible transporters.

Here, we present a powerful and physiological model to study the molecular mechanisms underlying gut hormone secretion and intestinal absorption &#8212; the isolated perfused rat small intestine.

창 자 호르몬 분 비는 격리를 사용 하 여 기본 메커니즘 끼얹는다 쥐 소장

The gut is the largest endocrine organ of the body, producing more than 15 different peptide hormones that regulate appetite and food intake, digestion, ...