우리는 TcdA1 현미경 사진을 제공 한 D. Roderer에게 감사드립니다. EMAN2 인프라를 지속적으로 지원해 준 Steve Ludtke에게 감사드립니다. 이 작업은 막스 플랑크 협회 (SR)와 유럽 연합 (EU)의 일곱 번째 프레임 워크 프로그램 (FP7 / 2007-2013) (부여 번호 615984) (SR에)에 의거 한 유럽 기금과 국립 연구소 건강 R01 GM60635에서 PAP).

<ol>
	<li>Nogales, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+development+of+cryo-EM+into+a+mainstream+structural+biology+technique.">The development of cryo-EM into a mainstream structural biology technique.</a> Nature Methods. 13 (1), 24-27 (2016).</li><li>Liao, M., Cao, E., Julius, D., Cheng, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+of+the+TRPV1+ion+channel+determined+by+electron+cryo-microscopy.">Structure of the TRPV1 ion channel determined by electron cryo-microscopy.</a> Nature. 504 (7478), 107-112 (2013).</li><li>Bai, X. -. C., Yan, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+atomic+structure+of+human+&#947;-secretase.">An atomic structure of human &#947;-secretase.</a> Nature. 525 (7568), 212-217 (2015).</li><li>Ecken, J. V. D., Heissler, S. M., Pathan-Chhatbar, S., Manstein, D. J., Raunser, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cryo-EM+structure+of+a+human+cytoplasmic+actomyosin+complex+at+near-atomic+resolution.">Cryo-EM structure of a human cytoplasmic actomyosin complex at near-atomic resolution.</a> Nature. 534 (7609), 724-728 (2016).</li><li>von der Ecken, J., M&#252;ller, M., Lehman, W., Manstein, D. J., Penczek, P. A., Raunser, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+of+the+F-actin-tropomyosin+complex.">Structure of the F-actin-tropomyosin complex.</a> Nature. 519 (7541), 114-117 (2015).</li><li>Tang, G., Peng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=EMAN2:+An+extensible+image+processing+suite+for+electron+microscopy.">EMAN2: An extensible image processing suite for electron microscopy.</a> Journal of Structural Biology. 157 (1), 38-46 (2007).</li><li>van Heel, M., Harauz, G., Orlova, E. V., Schmidt, R., Schatz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+generation+of+the+IMAGIC+image+processing+system.">A new generation of the IMAGIC image processing system.</a> Journal of Structural Biology. 116 (1), 17-24 (1996).</li><li>Grigorieff, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=FREALIGN:+high-resolution+refinement+of+single+particle+structures.">FREALIGN: high-resolution refinement of single particle structures.</a> Journal of Structural Biology. 157 (1), 117-125 (2007).</li><li>Scheres, S. H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RELION:+implementation+of+a+Bayesian+approach+to+cryo-EM+structure+determination.">RELION: implementation of a Bayesian approach to cryo-EM structure determination.</a> Journal of Structural Biology. 180 (3), 519-530 (2012).</li><li>Shaikh, T. R., Gao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SPIDER+image+processing+for+single-particle+reconstruction+of+biological+macromolecules+from+electron+micrographs.">SPIDER image processing for single-particle reconstruction of biological macromolecules from electron micrographs.</a> Nature Protocols. 3 (12), 1941-1974 (2008).</li><li>Hohn, M., Tang, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SPARX,+a+new+environment+for+Cryo-EM+image+processing.">SPARX, a new environment for Cryo-EM image processing.</a> Journal of Structural Biology. 157 (1), 47-55 (2007).</li><li>Lander, G. C., Stagg, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Appion:+an+integrated,+database-driven+pipeline+to+facilitate+EM+image+processing.">Appion: an integrated, database-driven pipeline to facilitate EM image processing.</a> Journal of Structural Biology. 166 (1), 95-102 (2009).</li><li>de la Rosa-Trev&#236;n, J. M., Quintana, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Scipion:+A+software+framework+toward+integration,+reproducibility+and+validation+in+3D+electron+microscopy.">Scipion: A software framework toward integration, reproducibility and validation in 3D electron microscopy.</a> Journal of Structural Biology. 195 (1), 93-99 (2016).</li><li>Grant, T., Grigorieff, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+the+optimal+exposure+for+single+particle+cryo-EM+using+a+2.6+&#197;+reconstruction+of+rotavirus+VP6.">Measuring the optimal exposure for single particle cryo-EM using a 2.6 &#197; reconstruction of rotavirus VP6.</a> eLife. 4, 06980 (2015).</li><li>Pettersen, E. F., Goddard, T. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=UCSF+Chimera?A+visualization+system+for+exploratory+research+and+analysis.">UCSF Chimera?A visualization system for exploratory research and analysis.</a> Journal of Computational Chemistry. 25 (13), 1605-1612 (2004).</li><li>Penczek, P. A., Fang, J., Li, X., Cheng, Y., Loerke, J., Spahn, C. M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CTER-rapid+estimation+of+CTF+parameters+with+error+assessment.">CTER-rapid estimation of CTF parameters with error assessment.</a> Ultramicroscopy. 140, 9-19 (2014).</li><li>Frank, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Three-Dimensional Electron Microscopy of Macromolecular Assemblies. , (2006).</li><li>Woolford, D., Ericksson, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SwarmPS:+rapid,+semi-automated+single+particle+selection+software.">SwarmPS: rapid, semi-automated single particle selection software.</a> Journal of Structural Biology. 157 (1), 174-188 (2007).</li><li>Yang, Z., Fang, J., Chittuluru, J., Asturias, F. J., Penczek, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Iterative+Stable+Alignment+and+Clustering+of+2D+Transmission+Electron+Microscope+Images.">Iterative Stable Alignment and Clustering of 2D Transmission Electron Microscope Images.</a> Structure/Folding and Design. 20 (2), 237-247 (2012).</li><li>Gatsogiannis, C., Merino, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+insertion+of+a+Tc+toxin+in+near-atomic+detail.">Membrane insertion of a Tc toxin in near-atomic detail.</a> Nature Publishing Group. , (2016).</li><li>Gatsogiannis, C., Lang, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+syringe-like+injection+mechanism+in+Photorhabdus+luminescens+toxins.">A syringe-like injection mechanism in Photorhabdus luminescens toxins.</a> Nature. 495 (7442), 520-523 (2013).</li><li>Meusch, D., Gatsogiannis, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanism+of+Tc+toxin+action+revealed+in+molecular+detail.">Mechanism of Tc toxin action revealed in molecular detail.</a> Nature. 508 (7494), 61-65 (2014).</li><li>Penczek, P. A., Frank, J., Spahn, C. M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+of+focused+classification,+based+on+the+bootstrap+3D+variance+analysis,+and+its+application+to+EF-G-dependent+translocation.">A method of focused classification, based on the bootstrap 3D variance analysis, and its application to EF-G-dependent translocation.</a> Journal of Structural Biology. 154 (2), 184-194 (2006).</li><li>Emsley, P., Lohkamp, B., Scott, W. G., Cowtan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Features+and+development+of+Coot.">Features and development of Coot.</a> Acta crystallographica. Section D, Biological crystallography. 66, 486-501 (2010).</li><li>Callaway, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+revolution+will+not+be+crystallized:+a+new+method+sweeps+through+structural+biology.">The revolution will not be crystallized: a new method sweeps through structural biology.</a> Nature. 525 (7568), 172-174 (2015).</li></ol>

저자는 경쟁적인 금전적 이해 관계가 없다고 선언합니다.

단일 입자 Cryo-EM은 최근 몇 년 동안 급속한 발전을 보였으며 중요한 생물학적 중요성을 지닌 고분자 복합체의 수많은 원자 분해 구조를 전달했습니다 25 . 현재 필드에 들어가고있는 많은 초보 사용자를 지원하기 위해 단일 입자 이미지 분석 플랫폼 SPHIRE 를 개발했으며 영화 정렬, 입자 선택, CTF 추정, 초기 모델을 포함한 전체 워크 플로우에 대한 워크 플로우 프로토콜을 제시합니다 계산, 2D 및 3D 이질 분석, 고해상도 3D 세분화 및 로컬 해상도 추정 및 필터링. 여기에 설명 된 프로토콜은 관심 단백질의 cryo-EM 현미경 사진과 SPHIRE의 독립 실행 형 GUI가 제공하는 전산 도구를 사용하여 3D 구조 결정에 대한 간단한 안내서로 제공됩니다. 워크 플로의 주요 특징은의 절차는 재현성에 의한 검증 개념에 의존하고 매개 변수 조정을 필요로하지 않기 때문에 단 한 번만 실행해야합니다. 이 자동 검증 메커니즘은 다른 소프트웨어 패키지보다 SPHIRE의 주된 이점입니다. 왜냐하면 결과는 객관적이며 재현성이 있으며, 가장 중요한 것은 수용 가능한 계산 비용으로 얻을 수 있기 때문입니다. 이 파이프 라인은 숙련 된 사용자가 자신의 방법으로 더욱 독립적 인 검증 및 평가를 수행 할 수 있도록 풍부한 진단 정보를 제공합니다. 그럼에도 불구하고, 구조 생물학 및 전자 현미경 검사에서 적어도 원소 이론적 배경을 가진 초보 사용자는 자체 데이터 및 자동화 된 검증 절차를 사용하여 근사 해상 구조를 얻을 수 있어야합니다. 그러나 원 자성 해상도 구조를 얻는 것이 항상 쉬운 것은 아니며 그 결과는 샘플 및 입력 데이터의 품질에 따라 크게 달라질 것입니다에이. 여기에 제시된 절차에서는 고품질의 정렬되지 않은 원시 EM 영화를 사용할 수 있으며 평균은 명확하게 식별 할 수있는 균질하고 무작위로 배향 된 단일 입자를 나타냅니다. 일반적으로 분자의 대칭성, 크기 또는 전반적인 형상에 대한 제한은 없지만, 저 분자량은 특히 단백질이 특징이없는 구형을 가졌을 때 제한 요인이 될 수 있습니다. 대개 높은 포인트 - 그룹 대칭을 갖는 더 크고 잘 정렬 된 입자의 분석은 덜 까다 롭습니다. 따라서, 초보자 사용자는 잘 특성화 된 Cryo-EM 데이터 세트를 사용하여 먼저이 프로토콜을 실행하는 것이 좋습니다. SPHIRE 자습서 데이터 (http : /sphire.mpg.de) 또는 원시 동영상이있는 EMPIAR 제출 데이터 세트 (https://www.ebi.ac.uk/pdbe/emdb/empiar/) 중 하나가 좋은 출발점입니다 . 자체 데이터를 처리 할 때 일부 데이터 세트 또는 일부 이미지가 특정 품질을 충족시키지 못할 가능성이 매우 높습니다.기준. 이러한 맥락에서 워크 플로우의 주요 단계에 대해 프로그램이 수행하는 자동화 된 안정성 및 재현성 검사 외에도 사용자가 프로토콜의 특정 &quot;검사 점&quot;에서 결과를 시각적으로 검사하는 것이 좋습니다. 특히 최종 재구성 만족스럽지 않다. 첫 번째 육안 검사는 영화 정렬 ( 프로토콜 단계 2 ) 및 CTF 추정 ( 프로토콜 단계 3 ) 후에 현미경 수준에서 수행 할 수 있습니다. 결과로 얻은 동작 보정 된 평균은 분명히 식별 가능하고 잘 분리 된 단일 입자를 보여야하며, 그 파워 스펙트럼은 분명하게 식별 가능하고 등방성 인 Thon 링을 보여야합니다. 가시적 인 공간 주파수는 대부분의 경우 구조가 원칙적으로 궁극적으로 결정될 수있는 가장 높은 해상도를 정의합니다. 충분한 품질과 그 파워 스펙트럼의 모션 보정 된 평균의 예는 섹션 #SPHIRE의 Drift 및 CTF 평가 GUI 도구 (http://sphire.mpg.de/wiki/doku.php)를 사용하여 최종 결과에 부정적인 영향을 줄 수있는 이상치 이미지를 제거 할 수 있습니다. 입자 선별과 관련하여 SPHIRE 파이프 라인에서 중요한 단계는 ISAC ( 프로토콜 단계 5.2) 를 사용하는 2D 분류입니다. 여기서 사용자는 프로그램에 의해 자동으로 식별 된 재현 가능한 2D 클래스 평균이 각도 공간을 준 균일하게 커버하기에 충분한 방향 범위를 채택하도록 제어해야합니다. 클래스 평균의 품질이 만족스럽지 않은 경우 (시끄러운 및 / 또는 흐릿한 이미지) 및 / 또는 재현 가능한 클래스 평균 수가 매우 낮은 경우 자동 피킹 품질을 개선하고 데이터 세트 이미징 또는 샘플 준비를 최적화하십시오. 대부분의 경우 좋은 2D 클래스 평균을 산출하지 못하는 데이터 세트로부터 신뢰할 수있는 재구성을 계산할 수 없습니다. 고품질 2D 클래스 평균의 예분노는 &quot;대표 결과&quot;섹션에 나와 있습니다. 자동화 된 방식으로 RVIPER를 사용하여 신뢰할 수있는 초기 3D 모델을 얻으려면 최소 100 개의 클래스 평균이 필요합니다 ( 프로토콜 단계 6.1 ). 이 단계에서 사용자는 가장 높은 품질의 평균을 선택하고 가능한 한 많은 입자의 방향을 포함시켜야합니다. 초기 모델의 품질은 이후의 고해상도 3D 개선의 성공에 중요합니다. 다른 소프트웨어 패키지에서는 &quot;나쁜&quot;입자를 제거하기 위해 3D 분류가 수행되기도합니다 8 , 9 . 그러나 SPHIRE에서 이러한 입자의 대부분은 ISAC을 사용하는 2D 분류 중에 이미 자동으로 제거됩니다. 따라서 재구성 및 3D 변동성 분석이 데이터 집합의 이질성을 나타내는 경우에만 3D 정렬의 계산 집약적 단계를 수행하는 것이 좋습니다. 가장 중요한 점은 사용자는 항상 조심스럽게 결과 3D 볼륨을주의 깊게 검사해야하며 ( 프로토콜 단계 9.3 ) 각 밀도의 기능이 공칭 해상도와 잘 일치하는지 확인해야합니다. &lt;9Å의 분해능에서 α- 나선에 해당하는 막대 모양의 밀도가 보입니다. &lt;4.5Å의 해상도에서 베타 시트의 가닥에 해당하는 밀도는 일반적으로 잘 분리되며 부피가 큰 아미노산이 보입니다. 고해상도 맵 (&lt;3Å)은 명확한 식별이 가능한 사이드 체인을 보여야하므로 정확한 원자 모델을 구축 할 수 있습니다. SPHIRE의 자동화 된 재현성 테스트와 최소한의 육안 검사 덕분에 현재의 프로토콜은 일반적으로 모든 유형의 단일 입자 cryo-EM 프로젝트에 적용 가능하다는 것을 입증 한 결과입니다. 각 처리 단계의 대표 결과는 다음과 같은 TcdA1 독소의 재구성을 위해 나타납니다.Photorhabdus luminescens 21 은 원자 분해능에 가까운 것으로 알려져있다. 비슷한 품질의 밀도 맵을 사용하여 신개념 또는 실제 공간의 정제뿐만 아니라 새로운 백본 추적을 통해 신뢰할 수있는 원자 모델을 구성 할 수 있으므로 복잡한 분자 메커니즘을 이해할 수있는 견고한 구조 프레임 워크를 제공합니다. 접근 코드 : EM 구조 및 처리되지 않은 영화에 대한 좌표는 전자 현미경 데이터 뱅크 및 전자 현미경 파일럿 이미지 아카이브에 각각 EMD-3645 및 EMPIAR-10089로 기탁되었습니다.

직접 전자 검출기 기술의 개발 후, 단일 입자 Cryo-EM의 현저한 진보는 현재 구조 생물학을 변형시키고 있습니다 1 . X 선 결정학에 비해이 기술은 결정질을 필요로하지 않고 단백질 물질을 소량 만 필요로하는 동시에 샘플의 순도에 대한 제한이 거의 없으며 근원 분해능에서 구조를 결정할 수 있습니다. 중요하게, 다른 조성 또는 상태를 이제 계산으로 분리 할 수 ​​있고, 다른 형태의 구조 결정을 전례없는 수준에서 수행 할 수있다. 최근에 도전 분자의 밀도지도는 de novo 모델 구축을 가능하게하여 해상도에 따라 생성 될 수 있으므로 동작 모드 2 , 3 , 4 , 5 에 대한 깊은 이해가 가능합니다. 3DEM (3D Electron Microscopy) 커뮤니티 (https://en.wikibooks.org/wiki/Software_Tools_For_Molecular_Microscopy)에서 다양한 이미지 처리 소프트웨어 패키지를 사용할 수 있으며 대부분 개발 중입니다. EMAN2 6 , IMAGIC 7 , FREALIGN 8 , RELION 9 , SPIDER 10 및 SPARX 11을 비롯한 다양한 소프트웨어 패키지를 사용하여 다양한 분자량 및 대칭성을 나타내는 단백질에 대한 근원 분해능이 달성되었습니다. 각 패키지는 다른 수준의 사용자 전문 지식을 필요로하며 사용자 지침, 자동화 및 확장 성의 다른 수준을 제공합니다. 또한, 일부 프로그램은 이미지 분석의 모든 단계를 용이하게하기위한 완벽한 환경을 제공하지만 다른 프로그램은 알려진 작업에서 시작하는 정렬 매개 변수의 세분화와 같은 특정 작업을 최적화하도록 설계되었습니다추론 구조. 보다 최근에는 APPION 12 및 SCIPION 13 을 포함하여 위에 나열된 여러 소프트웨어 패키지의 접근 방식과 프로토콜을 통합하는 단일 처리 파이프 라인을 제공하는 여러 플랫폼이 개발되었습니다. Cryo-EM의 현재 개발에 기여하기 위해 SPARX는 SPHIRE (고해상도 전자 현미경 검사용 SPARX)라고하는 단일 입자 분석을위한 새로운 독립형 및 완벽한 플랫폼으로 재 개발되었습니다. 현장의 새로운 연구자를위한 기술의 접근성을 높이고 현대의 완전 자동화 된 고급 전자 현미경으로 대량 생산 된 데이터에 대처하기 위해 처리 파이프 라인을 사용하기 쉽도록 다시 디자인하고 단순화했습니다 그래픽 사용자 인터페이스 (GUI) 및 워크 플로우의 주요 단계 자동화. 더욱이, 새로운 알고리즘이 추가되어 신속하고 재현성 있고 자동화 된 구조 결정을 cr요 - EM 이미지. 또한 정제 및 이질성 분석 과정에서 발생하는 공통적 인 인공물을 피하기 위해 재현성에 의한 검증이 도입되었습니다. 이 프로그램은 광범위하게 수정되었지만 직접적인 오픈 소스 코드, 현대적인 객체 지향 디자인 및 모든 기본 기능을위한 Python 인터페이스와 같은 핵심 기능이 유지되었습니다. 따라서 블랙 박스 프로그램으로 변경되지 않아 사용자가 Python 코드를 연구하고 쉽게 수정할 수 있고, 추가 응용 프로그램을 만들거나 전체 워크 플로우를 수정할 수 있습니다. 이것은 비표준 Cryo-EM 프로젝트에 특히 유용합니다. 여기서는 SPHIRE의 GUI를 사용하여 cryo-EM 이미지에서 근사 해상 밀도 맵을 얻기위한 프로토콜을 제시합니다. 그것은 원시 Cryo-EM 직접 탐지기 영화에서 밀도 맵을 생성하는 데 필요한 모든 단계를 상세히 설명하며 특정 거대 분자 유형에만 국한되지 않습니다. 이 프로토콜은 주로 newc워크 플로우를 통해 현장에서의 정보를 제공하고 처리의 중요한 단계는 물론 함정과 장애물에 대한 중요한 정보를 제공합니다. 더 많은 고급 기능과 SPHIRE의 이론적 배경은 다른 곳에서 설명 될 것이다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="790">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">SPHIRE</td>
			<td style="width:288px;">Max Planck Institute of Molecular Physiology- Dortmund&#160; and Houston Medical School, Houston, Texas&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">http://sphire.mpg.de</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">UCSF Chimera</td>
			<td style="width:288px;">University of California, San Francisco</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>http://www.cgl.ucsf.edu/chimera/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Unblur</td>
			<td style="width:288px;">Janelia Farm Research Campus, Ashburn</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>http://grigoriefflab.janelia.org/unblur</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Coot</td>
			<td style="width:288px;">MRC Laboratory of Molecular Biology,&#160; Cambridge</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>http://www2.mrc-lmb.cam.ac.uk/personal/pemsley/coot/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">EMAN2</td>
			<td style="width:288px;">Baylor College of Medicine, Houston</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Computing Cluster with 1824 cores</td>
			<td style="width:288px;">Max Planck Institute of Molecular Physiology</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Linux Cluster with 76&#160; nodes, each with 2 Processors Xeon E5-2670v3 12C 2.30 GHz and 128 Gb RAM</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">TITAN KRIOS electron microscope&#160;</td>
			<td style="width:288px;">FEI</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>300 kV, Cs correction, XFEG</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Falcon II direct electron detector</td>
			<td style="width:288px;">FEI</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">EPU (automated data acquisition software)</td>
			<td style="width:288px;">FEI</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>https://www.fei.com/software/epu/</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

high-resolution single particle analysis from electron cryo-microscopy images using sphire

SPHIRE (고해상도 전자 현미경 용 스파크)는 단일 입자 전자 극저온 현미경 (cryo-EM) 데이터의 반자동 처리를위한 새로운 오픈 소스, 사용자 친화적 인 소프트웨어 모음입니다. 여기에 제시된 프로토콜은 단일 입자 구조 결정 파이프 라인의 모든 단계를 안내하여 Cryo-EM 현미경 사진 영화에서 시작하는 원자 가까이의 해상도 구조를 얻는 방법을 자세히 설명합니다. 이 단계는 새로운 SPHIRE 그래픽 사용자 인터페이스에서 제어되며 사용자 개입을 최소화해야합니다. 이 프로토콜을 사용하여 Photorhabdus luminescens의 Tc 독소 복합체 인 3.5Å 구조의 TcdA1이 9500 개의 단일 입자에서만 추출되었습니다. 이 간소화 된 접근 방식은 원시 상태에서 정제 된 거대 분자 복합체의 무소음 및 비 편향 원자 모델을 얻기 위해 광범위한 처리 경험과 선험적 인 구조 정보없이 초보자를 도울 것입니다.

<html> 위에서 설명한 프로토콜은 Photorhabdus luminescens Tc 복합체 (TcdA1) 20 , 21 , 22 의 A 구성 요소의 112 개의 직접 검출기 영화에서 시작하여 실행되었습니다. 이 데이터 세트는 300 kV의 가속 전압에서 작동되는 고휘도 전계 방출 총 (XFEG)이있는 Cs 보정 전자 저온 현미경으로 기록되었습니다. 이미지는 표본 규모에서 1.14 Å의 픽셀 크기에서 60 e - / Å -2 의 총 선량으로 자동 획득되었습니다. 무비 프레임 정렬 후 ( 프로토콜 단계 2 ), 결과로 얻은 모션 보정 평균은 등방성 톤 링을 고해상도까지 확장합니다 ( 그림 2a ). 개개의 입자는 쉽게 보이고 잘 분리되어있었습니다 ( 그림 2b ). 그런 다음 입자를 e2boxer의 득점 도구를 사용하여 선택했습니다.lass = &quot;xref&quot;&gt; 18 ( 프로토콜 단계 4.1 ). 이 경우,보다 선별적인 옵션을 사용하여 적절한 임계 값이 설정되었습니다 ( 그림 2c ). 112 개의 디지털 현미경 사진은 9,652 개의 입자를 산출했다. 추출 된 이미지 ( 프로토콜 단계 4.2 )의 대부분은 잘 정의 된 입자를 포함하고 상자 크기는 권장 된 것처럼 입자 크기보다 1.5 배 정도 컸다 ( 그림 2d ). 다음으로 ISAC을 사용하여 2D 이질성 분석을 수행했습니다 ( 프로토콜 단계 5 ). 98 개의 클래스 평균을 산출했다 ( 그림 3a ). 이러한 2D 클래스 평균을 사용하여 중간 해상도 ( 그림 3b )에서 VIPER ( 프로토콜 단계 6 )를 사용하여 ab initio 모델을 계산했습니다. 이 모델은 3.9Å 해상도에서 이미 해결 된 TcdA1의 결정 구조와 우수한 일치를 보여준다 ( 그림 3c ). 이 ab initio 모델은 초기 온도로 사용되었다.<html> (MERIDIEN)을 사용하여 ~ 40,000 개의 비대칭 단위만으로 3.5Å (0.143 기준) 재구성 ( 프로토콜 단계 7 )을 달성했습니다 ( 그림 4 ). 이 근 원자 분해능 맵은 24 시간 내에 획득되었으며, 다중 코어의 이점을 취하는 워크 플로우 단계에서 최대 96 개의 CPU를 사용했습니다. 3 차원 가변성 분석 (프로토콜 단계 8)의 경우, 단계 8.3.3에서 그룹 당 2,000 개의 입자 이미지 만 사용되었으며 ( 즉 , 프로세스는 5 개의 초기 3D 그룹으로 시작 함) 8.3.4 단계에서 가장 작은 그룹 크기 인 200 개의 이미지가 적은 수의 입자 (~ 10,000). 이 분석은 주로 정제에 사용 된 His 태그를 포함하는 복합체의 N- 말단 부위에서 국부적 인 유연성을 나타냅니다 ( 그림 5a ). 실제로, 12 개의 N- 말단 잔기 및 His 태그는 이전에 공지 된 TcdA1의 결정 구조에서 분해되지 않았다이 가변 영역은 수용체 결합 영역과 BC 결합 영역에서 더 많은 가변성이 검출되었다 ( 그림 5a ). 구조의 만족스러운 해상력과 데이터 세트의 비교적 작은 크기로이 이질성은 허용 될 수있는 것으로 결정되었으므로 초점을 맞춘 3D 분류 23 은 수행되지 않았다. 마지막으로 최종 밀도지도의 로컬 해상도가 계산되었다 ( 프로토콜 단계 9.1, 그림 이 품질의 볼륨은 Coot 24 또는 다른 정제 도구 ( 그림 6 )를 사용하여 새 모델을 구축하는 데 사용할 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig1.jpg" /> &lt;그림 1 : SPHIRE를 사용한 이미지 처리. ( a ) SPHIRE 소프트웨어 패키지의 GUI. 워크 플로의 특정 단계는 GUI의 왼쪽에서 각각의 그림을 선택하여 활성화 할 수 있습니다 ( &quot;워크 플로우 단계&quot;). 워크 플로의이 단계와 관련된 명령 및 유틸리티는 GUI의 중앙 영역에 나타납니다. 명령 중 하나를 선택하면 각 매개 변수가 GUI의 오른쪽 영역에 표시됩니다. 고급 매개 변수는 일반적으로 미리 설정된 기본값을 수정하지 않아도됩니다. ( b ) SPHIRE GUI를 이용한 단일 입자 이미지 처리의 워크 플로우 단계. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55448/55448fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig2.jpg" /> 그림 2 : 모션 보정 및 부분르 추출. ( a , b ) 일반적인 고품질, 저용량, 드리프트 교정 된 디지털 현미경 사진은 1.7 μm의 디 포커스에서 촬영되었습니다. 파워 스펙트럼 (a)에서 2.7 Å의 해상도까지 확장되는 등방성 톤 링과 2D 이미지에서 잘 식별 가능한 입자 ( b )에 주목하십시오. ( c ) e2boxer를 이용한 입자 선택. 녹색 원은 선택된 입자를 나타냅니다. ( d ) 선량 가중 현미경 사진에서 추출한 대표적인 미립자. 스케일 바 = 20 nm. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55448/55448fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig3.jpg" /> 그림 3 : 2D 클러스터링 및 초기 모델 생성. ( a ) 2D 등급 평균 갤러리, 대다수의 측면보기 o<html> 입자. 스케일 바 = 20 nm. ( b ) 기준 자유 클래스 평균으로부터 RVIPER를 사용하여 얻은 TcdA1의 Ab initio 3D지도. ( c ) TcdA1 결정 구조 (리본) (pdb-id 1VW1)의 초기 Cryo-EM 밀도 (투명 회색) 로의 리지드 바디 피팅. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55448/55448fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig4.jpg" /> 그림 4 : TcdA1의 Cryo-EM 3D 구조. ( a , b ) ~ 9,500 입자 이미지를 사용하여 계산 된 TcdA1의 최종 3.5Å 밀도지도 : ( a ) 측면 및 ( b ) 평면도. ( c ) α 헬릭스와 β 시트에 대한 cryo-EM 밀도의 대표 영역.arge.jpg &quot;target =&quot;_ blank &quot;&gt;이 그림의 확대 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig5.jpg" /> 그림 5 : 가변성 분석 및 로컬 해상도. ( a ) 예리한 TcdA1 저온 EM지도의 표면 (회색)과 가변성지도 (녹색). 더 명확하게하기 위해 변동성 맵은 30 Å까지 로우 패스 필터링되었습니다. ( b ) TcdA1의 표면 렌더링은 국부적 해상도 (Å)에 따라 채색 된 날카로운 Cryo-EM 맵을 나타낸다. 높은 변동성과 낮은 지역 해상도 사이의 토폴로지 협약에 유의하십시오. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55448/55448fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/55448/55448fig6.jpg" /> 그림 6 : 3D 모드el Coot를 이용한 TcdA1의 건물. Cryo-EM 밀도 및 원자 모델의 대표적인 영역이 α 나선 구조로 표시됩니다. 원자 모델은 Coot를 사용하여 새로 만들었습니다. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55448/55448fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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High-resolution Single Particle Analysis from Electron Cryo-microscopy Images Using SPHIRE

이 논문은 소프트웨어 스위트 인 SPHIRE를 사용하여 저온 EM 이미지를 처리하기위한 프로토콜을 제시합니다. 현재의 프로토콜은 원 자면 해상도를 목표로하는 거의 모든 단일 파티클 EM 프로젝트에 적용될 수 있습니다.

SPHIRE를 사용한 전자 저온 현미경 이미지의 고해상도 단일 입자 분석

SPHIRE (SPARX for High-Resolution Electron Microscopy) is a novel open-source, user-friendly software suite for the semi-automated processing of single ...

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

50.2K 조회수.  Max Planck Institute of Molecular Physiology.  이 논문은 소프트웨어 스위트 인 SPHIRE를 사용하여 저온 EM 이미지를 처리하기위한 프로토콜을 제시합니다. 현재의 프로토콜은 원 자면 해상도를 목표로하는 거의 모든 단일 파티클 EM 프로젝트에 적용될 수 있습니다. 

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Semi-automated Biopanning of Bacterial Display Libraries for Peptide Affinity Reagent Discovery and Analysis of Resulting Isolates

Biopanning bacterial display libraries is a proven technique for peptide affinity reagent discovery for recognition of both biotic and abiotic targets. Peptide affinity reagents can be used for similar applications to antibodies, including sensing and therapeutics, but are more robust and able to perform in more extreme environments. Specific enrichment of peptide capture agents to a protein target of interest is enhanced using semi-automated sorting methods which improve binding and wash steps and therefore decrease the occurrence of false positive binders. A semi-automated sorting method is described herein for use with a commercial automated magnetic-activated cell sorting device with an unconstrained bacterial display sorting library expressing random 15-mer peptides. With slight modifications, these methods are extendable to other automated devices, other sorting libraries, and other organisms. A primary goal of this work is to provide a comprehensive methodology and expound the thought process applied in analyzing and minimizing the resulting pool of candidates. These techniques include analysis of on-cell binding using fluorescence-activated cell sorting (FACS), to assess affinity and specificity during sorting and in comparing individual candidates, and the analysis of peptide sequences to identify trends and consensus sequences for understanding and potentially improving the affinity to and specificity for the target of interest.

Biopanning bacterial display libraries is a proven technique for discovery of peptide affinity reagents, a robust alternative to antibodies. The semi-automated sorting method herein has streamlined biopanning to decrease the occurrence of false positives. Here we illustrate the thought process and techniques applied in evaluating candidates and minimizing downstream analysis.

펩 티 드 선호도 시 약 검색 및 분석 결과 분리의 세균성 디스플레이 라이브러리의 반자동된 Biopanning

Biopanning bacterial display libraries is a proven technique for peptide affinity reagent discovery for recognition of both biotic and abiotic targets. ...

연구

생화학

Analysis of &#946;-Amyloid-induced Abnormalities on Fibrin Clot Structure by Spectroscopy and Scanning Electron Microscopy

This article presents methods for generating in vitro fibrin clots and analyzing the effect of beta-amyloid (A&#946;) protein on clot formation and structure by spectrometry and scanning electron microscopy (SEM). A&#946;, which forms neurotoxic amyloid aggregates in Alzheimer&#39;s disease (AD), has been shown to interact with fibrinogen. This A&#946;-fibrinogen interaction makes the fibrin clot structurally abnormal and resistant to fibrinolysis. A&#946;-induced abnormalities in fibrin clotting may also contribute to cerebrovascular aspects of the AD pathology such as microinfarcts, inflammation, as well as, cerebral amyloid angiopathy (CAA). Given the potentially critical role of neurovascular deficits in AD pathology, developing compounds which can inhibit or lessen the A&#946;-fibrinogen interaction has promising therapeutic value. In vitro methods by which fibrin clot formation can be easily and systematically assessed are potentially useful tools for developing therapeutic compounds. Presented here is an optimized protocol for in vitro generation of the fibrin clot, as well as analysis of the effect of A&#946; and A&#946;-fibrinogen interaction inhibitors. The clot turbidity assay is rapid, highly reproducible and can be used to test multiple conditions simultaneously, allowing for the screening of large numbers of A&#946;-fibrinogen inhibitors. Hit compounds from this screening can be further evaluated for their ability to ameliorate A&#946;-induced structural abnormalities of the fibrin clot architecture using SEM. The effectiveness of these optimized protocols is demonstrated here using TDI-2760, a recently identified A&#946;-fibrinogen interaction inhibitor.

Presented here are two methods that can be used individually or in combination to analyze the effect of beta-amyloid on fibrin clot structure. Included is a protocol for creating an in vitro fibrin clot, followed by clot turbidity and scanning electron microscopy methods.

분광학 그리고 스캐닝 전자 현미경 검사 법에 의해 섬유 소 혈전 구조에 β 아 밀 로이드 유도 비정상의 분석

This article presents methods for generating in vitro fibrin clots and analyzing the effect of beta-amyloid (A&#946;) protein on clot formation and ...

Expression and Purification of the Human Lipid-sensitive Cation Channel TRPC3 for Structural Determination by Single-particle Cryo-electron Microscopy

Transient receptor potential channels (TRPCs) of the canonical TRP subfamily are nonselective cation channels that play an essential role in calcium homeostasis, particularly store-operated calcium entry, which is critical to maintaining proper function of synaptic vesicle release and intracellular signaling pathways. Accordingly, TRPC channels have been implicated in a variety of human diseases including cardiovascular disorders such as cardiac hypertrophy, neurodegenerative disorders such as Parkinson&#39;s disease, and neurologic disorders such as spinocerebellar ataxia. Therefore, TRPC channels represent a potential pharmacologic target in human diseases. However, the molecular mechanisms of gating in these channels are still unclear. The difficulty in obtaining large quantities of stable, homogeneous, and purified protein has been a limiting factor in structure determination studies, particularly for mammalian membrane proteins such as the TRPC ion channels. Here, we present a protocol for the large-scale expression of mammalian ion channel membrane proteins using a modified baculovirus gene transfer system and the purification of these proteins by affinity and size-exclusion chromatography. We further present a protocol to collect single-particle cryo-electron microscopy images from purified protein and to use these images to determine the protein structure. Structure determination is a powerful method for understanding the mechanisms of gating and function in ion channels.

This protocol describes techniques used to determine ion channel structures by cryo-electron microscopy, including a baculovirus system used to efficiently express genes in mammalian cells with minimum effort and toxicity, protein extraction, purification, and quality checking, sample grid preparation and screening, as well as data collection and processing.

식 및 단일 입자 Cryo 전자 현미경 검사 법에 의하여 구조 결심에 대 한 인간의 지질 민감한 양이온 채널 TRPC3의 정화

Transient receptor potential channels (TRPCs) of the canonical TRP subfamily are nonselective cation channels that play an essential role in calcium ...

High-Resolution Complexome Profiling by Cryoslicing BN-MS Analysis

Proteins generally exert biological functions through interactions with other proteins, either in dynamic protein assemblies or as a part of stably formed complexes. The latter can be elegantly resolved according to molecular size using native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE). Coupling of such separations to sensitive mass spectrometry (BN-MS) has been well-established and theoretically allows for exhaustive assessment of the extractable complexome in biological samples. However, this approach is rather laborious and provides limited complex size resolution and sensitivity. Also, its application has remained restricted to abundant mitochondrial and plastid proteins. Thus, for a majority of proteins, information regarding integration into stable protein complexes is still lacking. Presented here is an optimized approach for complexome profiling comprising preparative-scale BN-PAGE separation, sub-millimeter sampling of broad gel lanes by cryomicrotome slicing, and mass spectrometric analysis with label-free protein quantification. The procedures and tools for critical steps are described in detail. As an application, the report describes complexome analysis of a solubilized endosome-enriched membrane fraction from mouse kidneys, with 2,545 proteins profiled in total. The results demonstrate identification of uniform, low-abundance membrane proteins such as intracellular ion channels as well as high resolution, complex protein assembly patterns, including glycosylation isoforms. The results are in agreement with independent biochemical analyses. In summary, this methodology allows for comprehensive and unbiased identification of protein (super)complexes and their subunit composition, providing a basis for investigating stoichiometry, assembly, and interaction dynamics of protein complexes in any biological system.

A versatile cryoslicing BN-MS protocol using a microtome is presented for high-resolution complexome profiling.

BN-MS 분석에 의한 고분해능 컴플렉스 프로파일링

Proteins generally exert biological functions through interactions with other proteins, either in dynamic protein assemblies or as a part of stably formed ...

Cryo-EM and Single-Particle Analysis with Scipion

Cryo-electron microscopy has become one of the most important tools in biological research to reveal the structural information of macromolecules at near-atomic resolution. In single-particle analysis, the vitrified sample is imaged by an electron beam and the detectors at the end of the microscope column produce movies of that sample. These movies contain thousands of images of identical particles in random orientations. The data need to go through an image processing workflow with multiple steps to obtain the final 3D reconstructed volume. The goal of the image processing workflow is to identify the acquisition parameters to be able to reconstruct the specimen under study. Scipion provides all the tools to create this workflow using several image processing packages in an integrative framework, also allowing the traceability of the results. In this article the whole image processing workflow in Scipion is presented and discussed with data coming from a real test case, giving all the details necessary to go from the movies obtained by the microscope to a high resolution final 3D reconstruction. Also, the power of using consensus tools that allow combining methods, and confirming results along every step of the workflow, improving the accuracy of the obtained results, is discussed.

Single-particle analysis in cryo-electron microscopy is one of the main techniques used to determine the structure of biological ensembles at high resolution. Scipion provides the tools to create the whole pipeline to process the information acquired by the microscope and achieve a 3D reconstruction of the biological specimen.

Scipion을 가진 극저온 EM 및 단일 입자 분석

Cryo-electron microscopy has become one of the most important tools in biological research to reveal the structural information of macromolecules at ...

Preparing Lamellae from Vitreous Biological Samples Using a Dual-Beam Scanning Electron Microscope for Cryo-Electron Tomography

Presented here is a protocol for preparing cryo-lamellae from plunge-frozen grids of Plasmodium falciparum-infected&#160;human erythrocytes, which could easily be adapted for other biological samples. The basic principles for preparing samples, milling, and viewing lamellae are common to all instruments and the protocol can be followed as a general guide to on-grid cryo-lamella preparation for cryo-electron microscopy (cryoEM) and cryo-electron tomography (cryoET). Electron microscopy grids supporting the cells are plunge-frozen into liquid nitrogen-cooled liquid ethane using a manual or automated plunge freezer, then screened on a light microscope equipped with a cryo-stage. Frozen grids are transferred into a cryo-scanning electron microscope equipped with a focused ion beam (cryoFIB-SEM). Grids are routinely sputter coated prior to milling, which aids dispersal of charge build-up during milling. Alternatively, an e-beam rotary coater can be used to apply a layer of carbon-platinum to the grids, the exact thickness of which can be more precisely controlled. Once inside the cryoFIB-SEM an additional coating of an organoplatinum compound is applied to the surface of the grid via a gas injection system (GIS). This layer protects the front edge of the lamella as it is milled, the integrity of which is critical for achieving uniformly thin lamellae. Regions of interest are identified via SEM and milling is carried out in a step-wise fashion, reducing the current of the ion beam as the lamella reaches electron transparency, in order to avoid excessive heat generation. A grid with multiple lamellae is then transferred to a transmission electron microscope (TEM) under cryogenic conditions for tilt-series acquisition. A robust and contamination-free workflow for lamella preparation is an essential step for downstream techniques, including cellular cryoEM, cryoET, and sub-tomogram averaging. Development of these techniques, especially for lift-out and milling of high-pressure frozen samples, is of high-priority in the field.

Using focused ion beam milling to produce vitreous on-grid lamellae from plunge frozen biological samples for cryo-electron tomography.

극저온 전자 단층 촬영을 위한 이중 빔 주사 전자 현미경을 사용하여 유리체 생물학적 샘플에서 라멜라 준비

Presented here is a protocol for preparing cryo-lamellae from plunge-frozen grids of Plasmodium falciparum-infected&#160;human erythrocytes, which could ...

Single Particle Cryo-Electron Microscopy: From Sample to Structure

Cryo-electron microscopy (cryoEM) is a powerful technique for structure determination of macromolecular complexes, via single particle analysis (SPA). The overall process involves i) vitrifying the specimen in a thin film supported on a cryoEM grid; ii) screening the specimen to assess particle distribution and ice quality; iii) if the grid is suitable, collecting a single particle dataset for analysis; and iv) image processing to yield an EM density map. In this protocol, an overview for each of these steps is provided, with a focus on the variables which a user can modify during the workflow and the troubleshooting of common issues. With remote microscope operation becoming standard in many facilities, variations on imaging protocols to assist users in efficient operation and imaging when physical access to the microscope is limited will be described.

Structure determination of macromolecular complexes using cryoEM has become routine for certain classes of proteins and complexes. Here, this pipeline is summarized (sample preparation, screening, data acquisition and processing) and readers are directed towards further detailed resources and variables that may be altered in the case of more challenging specimens.

단일 입자 저온 전자 현미경 검사법: 샘플에서 구조로

Cryo-electron microscopy (cryoEM) is a powerful technique for structure determination of macromolecular complexes, via single particle analysis (SPA). The ...

Manual Blot-and-Plunge Freezing of Biological Specimens for Single-Particle Cryogenic Electron Microscopy

Imaging biological specimens with electrons for high-resolution structure determination by single-particle cryogenic electron microscopy (cryoEM) requires a thin layer of vitreous ice containing the biomolecules of interest. Despite numerous technological advances in recent years that have propelled single-particle cryoEM to the forefront of structural biology, the methods by which specimens are vitrified for high-resolution imaging often remain the rate-limiting step. Although numerous recent efforts have provided means to overcome hurdles frequently encountered during specimen vitrification, including the development of novel sample supports and innovative vitrification instrumentation, the traditional manually operated plunger remains a staple in the cryoEM community due to the low cost to purchase and ease of operation. Here, we provide detailed methods for using a standard, guillotine-style manually operated blot-and-plunge device for the vitrification of biological specimens for high-resolution imaging by single-particle cryoEM. Additionally, commonly encountered issues and troubleshooting recommendations for when a standard preparation fails to yield a suitable specimen are also described.

This manuscript outlines the blot-and-plunge method to manually freeze biological specimens for single-particle cryogenic electron microscopy.

단일 입자 극저온 전자 현미경 검사법을 위한 생물학적 표본의 수동 블롯 및 플런지 동결

Imaging biological specimens with electrons for high-resolution structure determination by single-particle cryogenic electron microscopy (cryoEM) requires ...

A Robust Single-Particle Cryo-Electron Microscopy (cryo-EM) Processing Workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion

Recent advances in both instrumentation and image processing software have made single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) the preferred method for structural biologists to determine high-resolution structures of a wide variety of macromolecules. Multiple software suites are available to new and expert users for image processing and structure calculation, which streamline the same basic workflow: movies acquired by the microscope detectors undergo correction for beam-induced motion and contrast transfer function (CTF) estimation. Next, particle images are selected and extracted from averaged movie frames for iterative 2D and 3D classification, followed by 3D reconstruction, refinement, and validation. Because various software packages employ different algorithms and require varying levels of expertise to operate, the 3D maps they generate often differ in quality and resolution. Thus, users regularly transfer data between a variety of programs for optimal results. This paper provides a guide for users to navigate a workflow across the popular software packages: cryoSPARC v3, RELION-3, and Scipion 3 to obtain a near-atomic resolution structure of the adeno-associated virus (AAV). We first detail an image processing pipeline with cryoSPARC v3, as its efficient algorithms and easy-to-use GUI allow users to quickly arrive at a 3D map. In the next step, we use PyEM and in-house scripts to convert and transfer particle coordinates from the best quality 3D reconstruction obtained in cryoSPARC v3 to RELION-3 and Scipion 3 and recalculate 3D maps. Finally, we outline steps for further refinement and validation of the resultant structures by integrating algorithms from RELION-3 and Scipion 3. In this article, we describe how to effectively utilize three processing platforms to create a single and robust workflow applicable to a variety of data sets for high-resolution structure determination.

A Robust Single-Particle Cryo-Electron Microscopy cryo-EM Processing Workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion

This article describes how to effectively utilize three cryo-EM processing platforms, i.e., cryoSPARC v3, RELION-3, and Scipion 3, to create a single and robust workflow applicable to a variety of single-particle data sets for high-resolution structure determination.

cryoSPARC, RELION 및 Scipion을 사용한 견고한 단일 입자 Cryo-Electron Microscopy (cryo-EM) 처리 워크플로우

Recent advances in both instrumentation and image processing software have made single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) the preferred method ...

Routine Collection of High-Resolution cryo-EM Datasets Using 200 KV Transmission Electron Microscope

Cryo-electron microscopy (cryo-EM) has been established as a routine method for protein structure determination during the past decade, taking an ever-increasing share of published structural data. Recent advances in TEM technology and automation have boosted both the speed of data collection and quality of acquired images while simultaneously decreasing the required level of expertise for obtaining cryo-EM maps at sub-3 &#197; resolutions. While most of such high-resolution structures have been obtained using state-of-the-art 300 kV cryo-TEM systems, high-resolution structures can be also obtained with 200 kV cryo-TEM systems, especially when equipped with an energy filter. Additionally, automation of microscope alignments and data collection with real-time image quality assessment reduces system complexity and assures optimal microscope settings, resulting in increased yield of high-quality images and overall throughput of data collection. This protocol demonstrates the implementation of recent technological advances and automation features on a 200 kV cryo-transmission electron microscope and shows how to collect data for the reconstruction of 3D maps that are sufficient for de novo atomic model building. We focus on best practices, critical variables, and common issues that must be considered to enable the routine collection of such high-resolution cryo-EM datasets. Particularly the following essential topics are reviewed in detail: i) automation of microscope alignments, ii) selection of suitable areas for data acquisition, iii) optimal optical parameters for high-quality, high-throughput data collection, iv) energy filter tuning for zero-loss imaging, and v) data management and quality assessment. Application of the best practices and improvement of achievable resolution using an energy filter will be demonstrated on the example of apo-ferritin that was reconstructed to 1.6 &#197;, and Thermoplasma acidophilum 20S proteasome reconstructed to 2.1-&#197; resolution using a 200 kV TEM equipped with an energy filter and a direct electron detector.

High-resolution cryo-EM maps of macromolecules can be also achieved by using 200 kV TEM microscopes. This protocol shows the best practices for setting accurate optics alignments, data acquisition schemes, and selection of imaging areas that are all essential for the successful collection of high-resolution datasets using a 200 kV TEM.