We thank Yixian Zheng (Carnegie Institution of Washington, Baltimore, MD) for the original protocol and assistance in initial setup and members of the Lei laboratory for critical reading of the manuscript. This work was funded by the Intramural Research Program of the National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases.

1.주기 시작 : 시드 배아를 참고 : 사이클은 이전 사이클에서 수집 된 자료의 1.5 g (배아 및 / 또는 일부 첫번째 령 애벌레로 구성된 혼합물)로 시작합니다. 이 자료는 번데기 단계까지 활성 효모의 혼합물로 플라스틱 용기 (특정 재료 / 장비의 표 참조)에 배치됩니다. 용기는 유충이 탈출 할 수 있도록 피하기 위해 뚜껑을 생물학적 배아의 혼합물 및 유충의 도입 후 종료됩니다. 이 공기 순환을 허용하기 위해 뚜껑에 구멍을 만드는 것이 필요하다. 구멍을 통해 유충 탈출을 피하기 위해, 폼 플러그가 사용된다. 마지막으로, 표백제로 더럽거나 염색 옷을 입지 않도록,이 섹션뿐만 아니라 전체 프로토콜뿐만 아니라 장갑과 실험실 코트를 착용하는 것이 좋습니다. <ol><li> 플라스틱 용기를 설정합니다. <ol><li> a의 플라스틱 용기 뚜껑에 면도날 세 개의 사각형 구멍을 확인2.2 cm를 pproximately. 폼 플러그 (50 X 55mm, DXL)에 대한 엄격한 규격을 확인하고 각 구멍에 하나의 폼 플러그를 배치하기 위해 각 구멍의 네 모서리에 테이프 (3/4 인치 라벨 테이프)를 추가합니다. </li><li> 플라스틱 포장과 플라스틱 용기의 내부를 커버. 이 막 위에, 플라스틱 용기의 바닥면을 커버 층을 추가한다. 손가락으로면 눈물. </li></ol></li><li> 플라이 음식을 준비합니다. <ol><li> 500㎖의 비이커에 탈 이온수 333 ML을 추가합니다. 자기 바 비커를 교반하면서, 주식 솔루션 (각각 99.96 %와 85 %)에서, 프로피온산의 167 μL와 인산 1.08 ml를 추가합니다. </li><li> 천천히 큰 덩어리를 방지, 활성 건조 효모의 77.5 g을 추가합니다. 건조 효모를 용해 후, 자당의 38.8 g을 추가합니다. 참고 : 바로이 구성 요소를 추가 한 후, 발효 시작하기 때문에 자당은 지난 성분을 추가 할 수 있어야합니다. </li></ol></li><li> 즉시 수크로오스를 용해 후 부어면 위에 음식, 그리고 균일하게면을 커버해야합니다. 식품을 오염 실험실에서 탈출 파리 않도록 뚜껑을 플라스틱 용기를 닫는다. </li><li> 70 % 에탄올 5 ㎖과 이전 사이클에서 수확 된 배아 (되지 dechorionated) 1.5 g을 재현 탁. 절반이 필터 논문에서 잘라 내기 및 주걱 또는 다양한 팁 전송 피펫을 사용하여 4 개에 균일하게 생물학적 혼합물을 배포 (필요한 경우 절단). 불린면의 상단에있는 필터 종이를 놓고 뚜껑을 닫습니다. 마지막으로, 번데기 단계까지 플라스틱 RT (24ºC)에서 용기와 습도 (35 %)을 품어. 주 : 플라스틱 용기는 습기 챔버에 배치되어서는 안된다, 그렇지 않으면이 박테리아의 성장을 촉진 할 것이다. </li></ol> 배아에서 파리로 : 사이클의 2 연속. 참고 :주기의이 부분 9 일 후 성인 파리가 등장 할 때까지 하루 1 플라스틱 용기에 배치 된 배아에서 간다번데기에서. 이러한 팔일 동안 아무것도 수행되지 있지만 배아 우화까지 초파리주기의 다음 단계로 진행하는 것이 정확하게 감시 되어야만한다. 애벌레가 죽어가는이 시간 동안 블랙 터닝 시작하면 폼 플러그가 너무 빡빡하지 않은 그 적절한 환기가되어 있는지 확인합니다. 이 기간은 이전 사이클에서 플라이 인구 케이지를 청소하는 좋은 시간이다. <ol><li> 성인 여성이 즉석 식품 (3 단계 참조)로 증착 한 후 관찰 배아는 1 차 령 유충 (24)의 주위에 시간이된다. 그 결과 유충은 성장과 2 차 및 3 차 령 유충에 두 번 털갈이 4 일 동안 1 단계에서 제조 된 플라이 음식에서 공급됩니다. </li><li> 플라이 인구 케이지를 청소합니다. <ol><li> 파리의 활동을 둔화 적어도 30 분 동안 4 ºC에서 케이지를 놓습니다. 케이지의 한 쪽을 덮고 그물을 제거하고, 빠른 움직임, 큰 생물 학적 플라스틱으로 개방 측 캡가방. 가방에 케이지의 내용을 따르십시오. </li><li> 생물 학적 가방은 여전히​​ 케이지의 한면을 덮는으로, 수직으로 아래로 생물 학적 가방면 싱크대 위에 케이지를 놓습니다. 조심스럽게 탈출 파리를 방지하고 생물 학적 폐기물 용기에 폐기 할 수있는 비닐 봉투를 제거합니다. </li><li> 조심스럽게 작은 구멍을 만드는 싱크대에 파리를 씻어 물 케이지의 내부를 씻어 충분히 상단 그물을 엽니 다. 천천히 구멍의 크기를 증가시키고 케이지 안에 모든 플라이를 제거한다. </li><li> 케이지 물과 비누로 모두 그물을 청소합니다. 그물이 아직 젖어있는 동안 건조 깨끗한 케이지의 양쪽을 확보하고, 마지막으로 케이지에 고집에서 단계 1.1.2에서 제조 된 플라스틱 필름을 방지하는 실험실 담그는 종이, 안에 넣어. 이제 케이지는 다음 사이클에 대한 준비가되어 있습니다. </li></ol></li><li> 나흘 초기 설정 후 애벌레 번데기를 관찰합니다. 유충은 4 일 이상이 단계에서 유지됩니다. 참고 : During이 단계는 번데기는 플라스틱 용기 내부의 전체면의 표면을 커버합니다. </li><li> 첫 번째 파리가 등장 번데기 단계에서와 전에, 플라스틱 용기를 열고 깨끗한 인구 케이지 안에 실험실 술고래 종이 위에 모든 번데기로면을 포함하는 플라스틱 필름을 배치합니다. 이중 매듭 그물을 닫고 플라스틱 용기와 다음주기의 뚜껑을 청소합니다. 참고 : 뚜껑에 부착 번데기가 폐기 및 고온 가압 멸균 또는 우화하기 전에 동결에 의해 파괴해야합니다. </li></ol> 3. 성인 파리. 주 : 번데기의 사일가 번데기에서 등장 할 첫 번째 파리를 무대 후. 24 내 - 48 시간 모든 파리는 eclosed해야합니다. 사이클이 부분에서는 재생에 적합한 환경을 만드는 목적으로 그들에게 음식을 제공하는 것이 중요하다. <ol><li> 당밀 트레이를 준비합니다. <ol><li> 1 L 플라스크에 탈 H 2 O의 556.25 ㎖, 당밀 90 ㎖, 한천 22 g에 겸용. 멋진 30 분 대한 교반 막대와 오토 클레이브 95 % EtOH로 10 % Tegosept의 9.25 ml를 추가합니다. </li><li> 21 X 14.5 cm의 고기 트레이에 혼합물을 부어. 17 트레이 - 볼륨 (15)을 커버하기에 충분히 있는지 확인하십시오. 응고 및 건조를 방지하기 위해 플라스틱 필름으로 각 트레이를 충당하기 위해 20 분 - 10 기다립니다. 1 L 플라스크의 몇몇은 동시에 제조 될 수있다. 필요한 때까지 플라스틱에 싸여 4 ºC에서 당밀 트레이를 저장합니다. </li></ol></li><li> 성인 파리와 케이지 내부 습식 효모으로 덮여 당밀 트레이를 추가합니다. <ol><li> 플레이트를 추가하기 전에 30 분 동안 추운 방에 4 ºC에서 케이지를 놓습니다. </li><li> 비커에 넣고 탈 H 2 O 200 ㎖를 추가하고 숟가락으로 교반하면서 천천히 건조 효모를 붓는다. 혼합물은 약 ​​파리는 음식에 갇히지 않도록 땅콩 버터의 일관성이되면 건조 효모를 첨가 중지합니다. 참고 :이 음식 솔루션이 커버하기가 매우 어려울 것이다, 그렇지 않으면 응고 허용하지 않는 것이 중요합니다당밀은 트레이 및 수확 과정 (4.3 절 참조) 동안 계란의 압축을 풉니 다. </li><li> 하나 당밀 트레이에서 플라스틱 필름을 제거하고 숟가락이나 주걱을 사용하여 신선한 준비 젖은 효모의 층으로 그것을 커버. 전체 표면이 포함되어 있는지 확인합니다. </li><li> 케이지가 추운 방에있는 동안, 그물을 열고 조심스럽게 케이지에 젖은 효모와 당밀 트레이를 추가 할 수 있습니다. 그물을 닫고 실온에서 케이지를 놓습니다. 참고 : 삽입시 빈 고기 트레이와 함께 접시를 커버하는 것이 유용 할 수 있지만, 당밀 트레이에 파리의 접근을 차단하지 않도록 할 수있다. </li></ol></li><li> 너무 건조 얻을 수있는 효모를 방지하기 위해 48 시간 - 식품 판 매 (24)을 변경합니다. 성인 파리는 탈수에 매우 민감하다. </li></ol> 사이클 4. 끝 : 배아를 수확 참고 : 최고의 비행 출산율이 3 - 우화 후 5 일. 따라서이 기간 동안 수확이 최고의 배아 수율을 얻을 것이다. 후 원하는 컬렉션은 공단입니다테드는주기가 끝났습니다. 파리 희생과 같이 청소 케이지 단계 2.2에서 지정해야합니다. <ol><li> 일반적으로 2 일 파리 우화 후, 섹션 3.2.5에 설명 된대로 새 당밀은 케이지에 신선한 젖은 음식 트레이를 소개합니다. 손가락의 도움으로, 계란 성막의 수율을 증가시키기 위해, 가능한 한 습윤 효모의 표면이 불규칙하게. 오래 된 음식 트레이가 케이지에있는 경우, 새로운 판을 추가하기 전에, 조심스럽게 제거하고 생물 학적 가방에 폐기. 수율을 증가시키기위한 또 다른 끝은 모든 계란 식품에 배치 될 수 있도록면 층을 제거하는 것이다. RT에서 케이지를 유지한다. </li><li> 작은 하얀 점으로 배아를 관찰한다. 참고 : 달걀 수집 할 준비가 된 것입니다. 플라이 케이지의 일상적인 유지 보수를 들어, 이일 수집은 권장되는 시간입니다. 이 컬렉션은 주로 배아 거의 1 차 령 유충이 포함됩니다. 다양한 이거에 대한 수확 배아의 전형적인 수율에 대한 대표적인 결과보기ction 시간을 가리 킵니다. </li><li> 배아를 수확 <ol><li> 약 30 분 동안 차가운 방에 케이지를 놓습니다. 섹션 1에서 설명한 바와 같이 그 동안 다음 사이클의 플라스틱 용기와 플라이 음식을 준비합니다. </li><li> 8 L 오토 클레이브 트레이에서 총 용​​량의 ¼하고 10 % 트리톤 X-100 1 ㎖를 추가 물을 추가합니다. 케이지가 추운 방에있는 동안주의 깊게 당밀 플레이트를 제거하고 생물 학적 가방 안에 넣습니다. </li><li> 가방에서 트레이를 제거하고 오토 클레이브 트레이에 세제 용액에 (탈출 파리를 방지하기 위해) 빨리 잠수함. 생물 학적 가방을 닫고 생물 학적 용기에 넣어. 파리는 세제를 포함하지 않는 물에서 익사하지 않습니다. </li><li> 당밀 떨어져 배아 및 효모를 씻어 큰 페인트 브러시와 증류수 총을 사용합니다. 생물 학적 상자에 접시와 당밀을 폐기하십시오. </li><li> 세 체 세트 (아래에 굵은 체 위에 30, 40 중간에, 100)을 통해 조심스럽게 솔루션을 붓는다. 세척 덩어리 오n은 증류수 총을 가진 최상위은 덩어리가 남아 있지 않을 때까지. 참고 : 성인 날아와 3 차 령 유충이 체 (30)에 유지됩니다. <ol><li> 증류수로 오토 클레이브 트레이를 씻어하고 체를 통해 헹굼 물을 부어. 효모 덩어리가 남아 있으면 상단 체를 반복 처리를 제거합니다. 1 차와 2 차의 령 유충의 모든의 대부분은 체 (40)에 남아있게됩니다. </li></ol></li><li> 두 번째 체를 제거합니다. 세 번째 (아래) 체의 황색 물질은 배아 작은 1 차 령 유충의 혼합물이다. 체의 한쪽면에 모든 계란을 이동 증류수 총을 사용합니다. 주걱으로 그들을 수집하고 무게. </li><li> 이러한 사이클 동안 배아의 수집 수율은 / 유충은 7 사이에 13 g의 범위이다. 새로운 사이클 (섹션 1) 시작이 물질의 1.5 g을 사용합니다. 추가 처리를 위해 배아의 나머지 부분을 사용하거나 폐기 할 수있다. </li></ol></li></ol> 제 1 항에있어서,처리 주 : 인구의 계속을 위해 사용되지 않은 배아는 대안 적 실험에 즉시 사용하거나 할 수는 -80 ºC에서 동결 할 수 있습니다. 두 옵션의 경우, 배아 먼저 dechorionated해야 할 수도 있습니다. <ol><li> dechorionation를 들어, 50 % 표백제 용액에서 2 분 동안 배아를 씻어 증류수로 철저히 씻어. </li><li> 종이 타월로 단단히 눌러 배아 먼저 건조를 동결 한 후 15 또는 50 ML 원뿔 튜브에, 주걱의 도움으로, 그 무게 및 배치합니다. 마지막 몇 초 동안 액체 N 2 원뿔형 튜브 잠수함. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

재료 하나의 1.5 g로 시작하는 사이클 당 7, 13 g 사이에 수집 된 배아의 수율을 얻을 수 있습니다. 이러한 물질의 양을 얻기 위하여는 플라이주기의 모든 단계에 적합한 배양 조건을 유지하는 것이 중요하다. 가장 중요한 파라미터는 각각 24 ºC 35 %이어야한다 온습도이다. 이러한 두 파라미터는 랩의 정상적인 환경에서 일정하게 유지 될 수 없다면, 하나의 가능성은 인큐베이터 또는 환경 챔버로 즉시 케이지를 배치하는 것이다. 다른 프로토콜은 생산 계란 9, 10의 수율을 높이기 위해 70 %의 습도도 일정하게 24 시간 명암주기를 권장합니다. 그러나 약 35 %의 습도를 유지하는 세균 오염을 방지하고,이 프로토콜의 목적은 인구 케이지의 유지가되기 때문에, 파리는 실험실의 정상적인 광 환경에서 유지된다. 또 다른 중요한 점은 디를 유지하는 것입니다성인에 sturbances는 가능한 한 낮게 날아갑니다. 다른 플라이에서 교차 오염을 방지하기 위해 비행 공간에서 별도의 위치에 케이스를 유지하는 것이 바람직 할 수있다. 그들의 순수성을 유지하기 위해 그들은 많은 인구 케이지 (14)에 뚜렷한 이상 짝짓기 행동을 나타낼 수있다 매우 어렵 기 때문에 형질 전환 및 돌연변이 초파리의 큰 인구의 배양은하지 않는 것이 좋습니다. 한 가지 문제점은 대량 초파리 배양하면서 음식에 대해 경쟁하기 때문에 제조 계란의 수율을 감소 진드기 및 / 또는 몰드와 같은 다른 생물체의 존재이다. 이를 방지하기 위해서는 깨끗하고 모든 장비를 유지 케이지, 그물을 씻는 물과 비누, 모든 사이클 후 일회용 재료 (발포 플러그) 폐기와 함께 상자를 비행하는 것이 매우 중요합니다. 스텝 플라이 음식을 준비 할 때 증가하는 금형을 줄이기 위해, 프로피온산 인산 습식 효모에 첨가당밀을 준비 1.2 Tegosept 단계 3.1 트레이. 시간이 짧고 재료는 즉시 세척 할 수없는 경우 그러한 -20 ˚C에서 플라스틱 상자 또는 자체로 장소 물질에 때때로 도움이됩니다. 배아는 즉시 상자에 파종 마지막 수거 일 끝나는 때부터 15 일 - 전체 콜렉션주기 (14)에서 발생합니다. 이 기간 동안,이 프로토콜 섹션에서 자세한 인구 플라이 케이지의 유지 보수 (그림. 2)에 필요한 모든 단계를 기억하기 위해 일정을 구성하는 것이 좋습니다. 성인 초파리 등장까지 계란, 시딩있는 일로부터, 단지 플라스틱 상자를 검사 할 필요가 있고, 번데기가 발생하면 케이지 내부에 이들을 배치. 배아는 새로운 사이클 시딩까지 3 일 - 그 후, 파리 매 2를 공급해야한다. 전체 프로토콜에서 가장 긴 날은 새로운주기를 시작하는 배아의 수집 및 시드 중입니다. 에이오일 성인 우화 후, 마지막으로 이일 이후 감소 - 프로토콜에 댓글 S, 최고의 계란 생산량은 3입니다. 이것은 계란의 수확이 수행 될하는 일을 선택하기 위해 우리에게 약간의 유연성을 제공합니다. 어떤 이유로 수집 배아 수율 원하는 개시 량 (1.5 g)보다 작은 경우, 하나는 항상 새로운 당밀 트레이를 추가하고 더 알 다음날 수집 할 수있다. 일정한 컬렉션 들어, 평행이 케이지를 유지하도록 권장되고, 배아의 높은 양이 요구되는 경우에, 또한 큰 케이지를 사용하는 것이 가능하다. 단시간 컬렉션을 수행하는 경우, 수율을 증가시키는 하나의 방법은 아침에 알을 낳는 버스트를 활용하는 것이다. 다양한 발달 단계의 대량 수집 많은 장점이있다. 예를 들어, 인구 케이지에서 수집 된 배아는 면역 분석 6-8, 대량 collectio 매우 성공적으로 사용되어왔다해리 유충에서 애벌레 조직, n은 3C 실험 4 및 RNA 준비 (15)에 대해 아주 좋은 소스로 보여 주었다, 성인 파리에서 헤드는 칩 실험 (16)을 위해 이용되고있다. 또한, 성인은 종종 조직 배양 플라이 (17)를 추출 할 필요가있다. 케이지의 가장 유망한 애플리케이션 중 하나는 병원체, 생물학적 분자, 화학 물질 및 전리 방사선의 노출에 반응하여 유전자 전 사체, 단백질 대사 산물의 분석 및 선별을 허용 높은 처리량 검정법을위한 재료를 제공하는 것이다. 이러한 대규모 분석에서 많은 개인이 필요하고, 여기에 설명 된 플라이 인구 케이지는 분석 및 18 스크리닝 초파리 생활주기의 다른 단계 동안 물질의 다량을 얻기 위해 매우 도움이 될 수있다.

유전 적, 생화학 적 접근 방식을 결합하는 능력은 초파리에게 생화학 및 분자 생물학 연구 1-3에 특히 적합한 유기체했다. 이러한 연구들은 성인 초파리에서, 또한 유생 4, 5 및 번데기 배아 6-8에서뿐만 아니라 생체 재료의 많은 양을 필요로한다. 제품을 다량을 얻기 위해, 연구진은 &quot;인구 케이지를&quot;비행로 알려진 대형 컨테이너를 사용하여 배양 파리 있습니다. 이 케이지 탈출 파리없이 케이지 내의 음식의 도입을 허용하기 위해 양쪽에 순으로 덮여 플라스틱 실린더로 구성된다. 이 케이지는 9-11 제이나 (특정 재료 / 장비의 표 참조) 회사에서 구입 할 수있다. 파리 많은 성장이 시스템을 사용하는 주요 장점은 과일의주기 (12)는 모든 파리 재 발전하는 방식으로 제어 될 수 있다는 비행latively 방식으로 동기화. 이 동기는, 새로운 배아 시드 유충 / 파리를 공급하고 정확한 시간에 성인 파리를 희생함으로써 달성된다. 동기화 된 플라이 인구를 사용하여 개발 연구 (13)에 특히 유용합니다. 몇 파리에서 새로운 인구 케이지의 시작 증폭 9-11의 많은 사이클을 요구하는 시간 소모적 인 과정이다. 심지어 플라이 문화 병 또는 minicages 같은 큰 용기를 사용하여, 전체 프로세스는 몇 달 동안 지속될 수 있습니다. 단계를 소비하는이 시간을 피하기 위해, 많은 초파리 실험실은 정기적으로 같은 새장을 유지한다. 이미 설립 인구 케이지에서 배아 컬렉션에서 시작하는 새 케이지를 시작하는 것이 가장 편리합니다. 일반적으로 대부분의 실험실이 원고 플라이 인구 새장을 유지하기 위해 상세한 프로토콜을 제공합니다 같은 오레곤 R 또는 광저우 S. 등의 야생형 인구 케이지를 유지한다.

<table><tbody><tr><td>Bacto-Agar</td><td>Beckton Dickinson</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td>Curity practical cotton roll</td><td>Kendall</td><td>2287</td><td></td></tr><tr><td>Dry yeast</td><td>Affymetrix</td><td>23540</td><td></td></tr><tr><td>Filter paper</td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>1001-085</td><td></td></tr><tr><td>Foam tube plugs</td><td>Jaece</td><td>L800-D2</td><td>50 mm Diameter x 55 mm Length</td></tr><tr><td>Fly population cage</td><td>Flystuff</td><td>59-116</td><td>9&amp;Prime; Diameter x 14.4&amp;Prime; Length. Includes the nets for the cage.</td></tr><tr><td>Meat tray</td><td>Genpak</td><td>1002S (#2S)</td><td>8.25 x 5.75 x 0.5 inches</td></tr><tr><td>Molasses</td><td>Grandma&amp;acute;s</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plastic container</td><td>Rubbermaid</td><td>4022-00</td><td></td></tr><tr><td>Plastic film</td><td>Glad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Phosphoric acid</td><td>Fisher Scientific</td><td>S 93326</td><td>Toxic. Handle in Chemistry Hood</td></tr><tr><td>Propionic acid</td><td>Fisher Scientific</td><td>A258-500</td><td>Toxic. Handle in Chemistry Hood</td></tr><tr><td>Stainless steel&amp;nbsp; sieve #100</td><td>VWR</td><td>57324-400</td><td></td></tr><tr><td>Stainless steel&amp;nbsp; sieve #40</td><td>VWR</td><td>57324-272</td><td></td></tr><tr><td>Stainless steel&amp;nbsp; sieve #30</td><td>VWR</td><td>57324-240</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>MP</td><td>152584</td><td></td></tr><tr><td>Tegasept</td><td>LabScientific</td><td>FLY5501</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X100</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151-500</td><td></td></tr></tbody></table>

maintenance of a drosophila melanogaster population cage

Large quantities of DNA, RNA, proteins and other cellular components are often required for biochemistry and molecular biology experiments. The short life cycle of Drosophila enables collection of large quantities of material from embryos, larvae, pupae and adult flies, in a synchronized way, at a low economic cost. A major strategy for propagating large numbers of flies is the use of a fly population cage. This useful and common tool in the Drososphila community is an efficient way to regularly produce milligrams to tens of grams of embryos, depending on uniformity of developmental stage desired. While a population cage can be time consuming to set up, maintaining a cage over months takes much less time and enables rapid collection of biological material in a short period. This paper describes a detailed and flexible protocol for the maintenance of a Drosophila melanogaster population cage, starting with 1.5 g of harvested material from the previous cycle.

플라이 케이지 인구의 유지는 플라이주기에 기초한다. 따라서, 플라스틱 용기 (그림 1A)를 배아 및 유충의 초기 생물학적 혼합물을 배치 한 후 수정란이 더 이상 2 일 이상에서 애벌레가되고 애벌레가 4 일 동안 성장할 것입니다, 상대적으로 (다른 령 애벌레 단계를 통해 동기화 ) 그림 1B를 참조하십시오. 애벌레는 3 차 령 애벌레 단계를 완료 한 후 그들은 번데기와 덮개 (그림 1C)의 내부 표면에 일부와 플라스틱 용기 안쪽면의 표면을 커버합니다. 파리의 변태 과정을 마칠 때까지이 번데기 기간은 다음 4 일 동안 이동합니다. 이 기간 동안은 강하게 케이지에 파리를 전송하는 것이 좋습니다. 애프터 (10) - 첫 번째 성인 파리는 일 9시 eclose 시작합니다주기 (그림 1D)의 하루 (11) 모두에 의해 개시는 번데기에서 등장 할 것이다. 오일 우화 (15 일 13) 후 마지막으로 (7 일 우화 후) 하루 17 감소 - 배아 컬렉션의 최고 수율은 3 얻을 수있다. 따라서, 하루 13에서 신선한 음식의 마지막 트레이를 추가하고 하루에 15에서 계란 (그림 1E와 F)를 수집하는 것이 좋습니다. 이것은 배아의 최대 개수를 수집 할 수 있습니다. 6 개의 연속 사이클 모음의 수율은 사이클마다 1.5 g의 출발 물질을 수거 배아의 수율을 감소시킬 것이다 결과적으로 음식이 너무 건조 당할 수 수집 전에 제 여분 하루. 표 1 쇼 추가하고,도 2 전체 사이클 수집을위한 권장 일정입니다. 재료는 이일에 수확60; 기간은 주로 배아로 구성되어있다. 그러나 유충 소수도 존재한다. 비동기 성 어느 정도 예상되기 때문에 케이지 유지 보수 목적이 유충은 문제가되지 않습니다. 그럼에도 불구하고 일부 생화학 실험이 배아의 순도는 매우 중요하지만, 동시에 이러한 실험을 수행하기 위해 계란을 다량를 수집 할 필요가있다. 이 때문에 여러 단편 연속 콜렉션 빠르게 실온에서 음식과 함께 새로운 플레이트를 추가 한 후,이 방법으로 얻을 수있는 수율 및 순도의 평가를 제공하기 위해, 1 시간 및 3 시간에서 수행 하였다 (표 2 및도 3) . 1 시간 연속 컬렉션은 매우 낮은 수율 (14.5 mg)을하지만 수집 때마다 증가 배아의 수량하지만 마지막에 시작했다. 파리는 음식을 변경하지만 나중에 acclimating의 과정에서 강조되는에 처음에는 낮은 수율이 원인 일 수 있습니다. 한편, 더 LAR 없다VAE 짧은 모음 높은 순도를 수득 것을 보여주는 다섯 연속 콜렉션 (도 3A)에서 관찰되었다. 면이 케이지로부터 제거되지 않으면, 이전 시점에서 애벌레 가능성이 남아 신선한 플레이트 증가 들어갈 것이다. 면이 제거 된 경우에도 항상 유충 케이지 측에 걸어하고 수집하는 동안 음식을 입력한다. 3 시간 연속 컬렉션의 경우, 수율은 840에서 약 1 시간 컬렉션에서 얻은 수익률보다 10 배 이상 1,250 ㎎,였다. 이들 태아의 순도 100 % (도 3B) 근방이었다. 가끔 유충 관찰되었다. 일부 개발 연구는 수집 된 배아에 대한 매우 엄격한 동기화를 필요로한다. 동기화 순도를 높이기 위해, 조건이 적합하지 않은 경우, 여성이 더 성숙 계란을 유지하고 입금 할 수 있기 때문에 첫 컬렉션 판을 폐기하는 것이 좋습니다조건은 신선한 플레이트의 도입으로 개선 m. 또한 그것은 나이가 성인 파리 (&gt; 육일가​​) 덜 동기화 된 배아를 생산하는 것을 아는 것이 중요합니다. 높은 정밀도로 동기화의 정도를 확인하기 위해 수집 된 배아의 DAPI 염색을 권장합니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig1.jpg" /> 그림 1. 플라이 인구 케이지의 초파리 melanogaster의 수명주기는. 사이클의 (A) 개시는 플라스틱 상자 용기에 배아의 1.5 g을 시드. 참고로, 하판에 여과지의 길이가 8.5 cm이다. (B) 유충 비교적 오일 순환 개시 후 동기화 성장. 일에서 8 (C)는, 파리의 대부분은 번데기 단계에있다. B (B &#39;)와 C의 낮은 패널<html> (C &#39;)는 상단 패널에 표시된 영역의 배율입니다. (D) 성인 파리 10 일주기 시작 후 번데기에서 등장. (E) 성인 즉석 식품 15 일째에, 황색 물질 배아를 수집하는 프로세스를 시작하기 전에 모집단 케이지 안에 파리 수정란이다. 100 굵은 체의 하단에 수집 (F) 태아 (몇 유충), 전체 케이지주기 후. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53756/53756fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig2.jpg" /> 그림 2. 전체 사이클 컬렉션 일정. 그림 2는 완전한 사이클 수집을위한 권장 일정을 보여줍니다.<html> t = &quot;_ 빈&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig3.jpg" /> 그림 1 시간, 3 시간 연속 컬렉션의 3. 순도. 1 시간 (A)과 음식의 새로운 트레이를 추가 한 후 3 시간 (B)에서 수집 된 배아의 대표 이미지입니다. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53756/53756fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <table><tbody><tr><td> 사이클 수 </td><td> 수율 (g) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 10.3 </td></tr><tr><td> (2) </td><td> 9.5 </td></tr><tr><td> 삼 </td><td> 10.3 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 12.7 </td></tr><tr><td> (5) </td><td> (10) </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 7.1 </td></tr></tbody></table>&quot;FO : 유지-together.within 페이지를 =&quot;ntent. 1 &quot;은&gt; 여러 사이클 컬렉션 표 1. 수율 표 1은 1.5 g의 출발 물질 6 연속 사이클 컬렉션의 수율을 보여줍니다 각주기에서 마지막. 음식의 트레이 날 (13)에 첨가하고, 수확은 하루에 15에서 이루어졌다. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> 컬렉션 # </td><td> 모음의 길이 (시간) </td><td> 수율 (mg)을 </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 1 </td><td> 14.5 </td></tr><tr><td> (2) </td><td> 1 </td><td> 21.6 </td></tr><tr><td> 삼 </td><td> 1 </td><td> 56.1 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 1 </td><td> 160.1 </td></tr><tr><td> (5) </td><td> 1 </td><td> 106.1 </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 삼 </td><td> 960 </td></tr><tr><td> (2) </td><td> 삼 </td><td> (840) </tD&gt; </tr><tr><td> 삼 </td><td> 삼 </td><td> 1,250 </td></tr></tbody></table> 표 2. 1 시간, 3 시간 연속 컬렉션의 수율. 표 2는 새로운 당밀 판을 배치 한 후 새로운 음식과 3 연속 컬렉션 3 시간을 추가 한 후 1 시간 5 연속 컬렉션의 수율을 보여줍니다.

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Maintenance of a Drosophila melanogaster Population Cage

This manuscript reports a detailed protocol for culturing, on a regular basis, a population of Drosophila melanogaster using a fly population cage.

(A)의 유지 보수<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 인구 케이지

Large quantities of DNA, RNA, proteins and other cellular components are often required for biochemistry and molecular biology experiments. The short life ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biology

Maintenance of a Drosophila melanogaster Population Cage

13.1K 조회수.  National Institutes of Health. This manuscript reports a detailed protocol for culturing, on a regular basis, a population of Drosophila melanogaster using a fly population cage.

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Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is a model for understanding microbial interactions with animal hosts, facilitated by approaches to rear large sample sizes of Drosophila under microorganism-free (axenic) conditions, or with defined microbial communities (gnotobiotic). This work outlines a method for collection of Drosophila embryos, hypochlorite dechorionation and sterilization, and transfer to sterile diet. Sterilized embryos are transferred to sterile diet in 50 ml centrifuge tubes, and developing larvae and adults remain free of any exogenous microbes until the vials are opened. Alternatively, flies with a defined microbiota can be reared by inoculating sterile diet and embryos with microbial species of interest. We describe the introduction of 4 bacterial species to establish a representative gnotobiotic microbiota in Drosophila. Finally, we describe approaches for confirming bacterial community composition, including testing if axenic Drosophila remain bacteria-free into adulthood.

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

A method for rearing Drosophila melanogaster under axenic and gnotobiotic conditions is presented. Fly embryos are dechorionated in sodium hypochlorite, transferred aseptically to sterile diet, and reared in closed containers. Inoculating diet and embryos with bacteria leads to gnotobiotic associations, and bacterial presence is confirmed by plating whole-body Drosophila homogenates.

과일 비행을 양육<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 무균 및 무균 조건에서

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is ...

연구

발생학

An Automated Method to Determine the Performance of Drosophila in Response to Temperature Changes in Space and Time

Temperature is a ubiquitous environmental factor that affects how species distribute and behave. Different species of Drosophila fruit flies have specific responses to changing temperatures according to their physiological tolerance and adaptability. Drosophila flies also possess a temperature sensing system that has become fundamental to understanding the neural basis of temperature processing in ectotherms. We present here a temperature-controlled arena that permits fast and precise temperature changes with temporal and spatial control to explore the response of individual flies to changing temperatures. Individual flies are placed in the arena and exposed to pre-programmed temperature challenges, such as uniform gradual increases in temperature to determine reaction norms or spatially distributed temperatures at the same time to determine preferences. Individuals are automatically tracked, allowing the quantification of speed or location preference. This method can be used to rapidly quantify the response over a large range of temperatures to determine temperature performance curves in Drosophila or other insects of similar size. In addition, it can be used for genetic studies to quantify temperature preferences and reactions of mutants or wild-type flies. This method can help uncover the basis of thermal speciation and adaptation, as well as the neural mechanisms behind temperature processing.

An Automated Method to Determine the Performance of Drosophila in Response to Temperature Changes in Space and Time

Here we present a protocol to automatically determine the locomotor performance of Drosophila at changing temperatures using a programmable temperature-controlled arena that produces fast and accurate temperature changes in time and space.

시간과 공간에서 온도 변화에 대 한 응답에서 초파리 의 성능을 결정 하는 자동화 된 방법

Temperature is a ubiquitous environmental factor that affects how species distribute and behave. Different species of Drosophila fruit flies have specific ...

행동분석학

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such behavior is spontaneous locomotor activity. Here we describe our protocol that utilizes Drosophila population monitors and a tracking system that allows continuous monitoring of the spontaneous locomotor activity of flies for several days at a time. This method is simple, reliable, and objective and can be used to examine the effects of aging, sex, changes in caloric content of food, addition of drugs, or genetic manipulations that mimic human diseases.

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster are useful in studying genetic or environmental manipulations that affect behaviors such as spontaneous locomotor activity.&#160; Here we describe a protocol that utilizes monitors with infrared beams and data analysis software to quantify spontaneous locomotor activity.&#160;

의 자발적인 운동 활성의 결정<em&gt; 초파리</em

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such ...

신경과학

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a straightforward manner. As we previously demonstrated 1, in a two-dimensional chamber, we first force the flies to form a tight group, subsequently allowing them to take their preferred distance from each other. After the flies have settled, we measure the distance to the closest neighbor (or social space), processing a static picture with free online software (ImageJ). The analysis of the distance to the closest neighbor allows researchers to determine the effects of genetic and environmental factors on social interaction, while controlling for potential confounding factors. Diverse factors such as climbing ability, time of day, sex, and number of flies, can modify social spacing of flies. We thus propose a series of experimental controls to mitigate these confounding effects. This assay can be used for at least two purposes. First, researchers can determine how their favorite environmental shift (such as isolation, temperature, stress or toxins) will impact social spacing 1,2. Second, researchers can dissect the genetic and neural underpinnings of this basic form of social behavior 1,3. Specifically, we used it as a diagnostic tool to study the role of orthologous genes thought to be involved in social behavior in other organisms, such as candidate genes for autism in humans 4.

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The effect of genes and environment on social space of Drosophila melanogaster can be quantified through a powerful but straightforward analytical paradigm. We show here different factors that can affect this social space, and thus need to be taken into consideration when designing experiments in this paradigm.

사회적 공간에 영향을 미치는 조건<em&gt; 초파리</em

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a ...

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral variation. The larval path-length assay was developed to measure individual differences in foraging behavior that were later linked to the foraging gene. Larval path-length is an easily scored trait that facilitates the collection of large sample sizes, at minimal cost, for genetic screens. Here we provide a detailed description of the current protocol for the larval path-length assay first used by Sokolowski. The protocol details how to reproducibly handle test animals, perform the behavioral assay and analyze the data. An example of how the assay can be used to measure behavioral plasticity in response to environmental change, by manipulating feeding environment prior to performing the assay, is also provided. Finally, appropriate test design as well as environmental factors that can modify larval path-length such as food quality, developmental age and day effects are discussed.

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

We provide a detailed protocol for a Drosophila melanogaster foraging path-length assay. We discuss the preparation and handling of test animals, how to perform the assay and analyze the data.

대한 꼴 경로 길이 프로토콜<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 애벌레

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced physical performance and increased risk of disease. Individual aging is manifest at the population level as an increase in age-dependent mortality, which is often measured in the laboratory by observing lifespan in large cohorts of age-matched individuals. Experiments that seek to quantify the extent to which genetic or environmental manipulations impact lifespan in simple model organisms have been remarkably successful for understanding the aspects of aging that are conserved across taxa and for inspiring new strategies for extending lifespan and preventing age-associated disease in mammals.
The vinegar fly, Drosophila melanogaster, is an attractive model organism for studying the mechanisms of aging due to its relatively short lifespan, convenient husbandry, and facile genetics. However, demographic measures of aging, including age-specific survival and mortality, are extraordinarily susceptible to even minor variations in experimental design and environment, and the maintenance of strict laboratory practices for the duration of aging experiments is required. These considerations, together with the need to practice careful control of genetic background, are essential for generating robust measurements. Indeed, there are many notable controversies surrounding inference from longevity experiments in yeast, worms, flies and mice that have been traced to environmental or genetic artifacts1-4. In this protocol, we describe a set of procedures that have been optimized over many years of measuring longevity in Drosophila using laboratory vials. We also describe the use of the dLife software, which was developed by our laboratory and is available for download (<a href="http://sitemaker.umich.edu/pletcherlab/software">http://sitemaker.umich.edu/pletcherlab/software</a>). dLife accelerates throughput and promotes good practices by incorporating optimal experimental design, simplifying fly handling and data collection, and standardizing data analysis. We will also discuss the many potential pitfalls in the design, collection, and interpretation of lifespan data, and we provide steps to avoid these dangers.

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is a powerful model organism for exploring the molecular basis of longevity regulation. This protocol will discuss the steps involved in generating a reproducible, population-based measurement of longevity as well as potential pitfalls and how to avoid them.

의 수명 측정<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

생물학

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the best developed model systems of infection and innate immunity. While most work has focused on systemic infections, there has been a recent increase of interest in the mechanisms of gut immunocompetence to pathogens, which require methods to orally infect flies. Here we present a protocol to orally expose individual flies to an opportunistic bacterial pathogen (Pseudomonas aeruginosa) and a natural bacterial pathogen of D. melanogaster (Pseudomonas entomophila). The goal of this protocol is to provide a robust method to expose male and female flies to these pathogens. We provide representative results showing survival phenotypes, microbe loads, and bacterial shedding, which is relevant for the study of heterogeneity in pathogen transmission. Finally, we confirm that Dcy mutants (lacking the protective peritrophic matrix in the gut epithelium) and Relish mutants (lacking a functional immune deficiency (IMD) pathway), show increased susceptibility to bacterial oral infection. This protocol, therefore, describes a robust method to infect flies using the oral route of infection, which can be extended to the study of a variety genetic and environmental sources of variation in gut infection outcomes and bacterial transmission.

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

This protocol describes methods to orally expose and infect the fruit fly Drosophila melanogaster with bacterial pathogens, and to measure the number of infectious bacteria shed following gut infection. We further describe the effect of immune mutants on fly survival following oral bacterial infection.

세균성 감염 및 Shedding 초파리 melanogaster 에

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the best developed model systems of infection and innate immunity. While most work has focused on systemic ...

Circadian Entrainment of Drosophila Melanogaster

Nearly universal among organisms, circadian rhythms coordinate biological activity to earth&#39;s orbit around the sun. To identify factors creating this rhythm and to understand the resulting outputs, entrainment of model organisms to defined circadian time-points is required. Here we detail a procedure to entrain many Drosophila to a defined circadian rhythm. Furthermore, we detail post-entrainment steps to prepare samples for immunofluorescence, nucleic acid, or protein extraction-based analysis.

Here, we detail how to synchronize Drosophila to a circadian day. This is the first, and most important step necessary for studying biological rhythms and chronobiology.

드로소필라 멜라노가스터의 일레카디아 인교육

Nearly universal among organisms, circadian rhythms coordinate biological activity to earth&#39;s orbit around the sun. To identify factors creating this ...

Drosophila Maintenance

Drosophila melanogaster, commonly known as fruit flies, are a frequently used model organism for life science research. Although starting a collection of these critters may seem as easy as leaving a banana on your kitchen counter for too long, a productive fly colony in the lab requires careful husbandry and maintenance.
This video demonstrates the necessary steps for maintaining a healthy fly stock. The overview begins with the preparation and storage of the yeast and sugar-containing media on which flies feed. Next, the vessels most commonly used for housing Drosophila are shown, as well as how and when to move flies between these containers. Finally, the presentation also includes examples of the ways in which housing and feeding conditions are manipulated for biological experiments.

Maintenance and Husbandry of Drosophila melanogaster

초파리유지

Drosophila melanogaster, commonly known as fruit flies, are a frequently used model organism for life science research. Although starting a collection of ...

교육

JoVE Science Education

기초 생물학

생물학 I : 효모, 초파리, 예쁜 꼬마 선충

Drosophila Courtship Conditioning: A Method to Test Learning and Memory In Flies

Source: Koemans, T. S., et al. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/video/55808/" target="_blank">Drosophila Courtship Conditioning As a Measure of Learning and Memory</a>. J. Vis. Exp. (2017).
This video describes a classical conditioning assay that tests learning and memory in Drosophila, called courtship conditioning. The assay is based on the reduction of male courtship after experiencing a rejection by a non-receptive premated female. The example protocol shows a setup for the procedure that can be used to assess short- and long-term memory.

(A)의 유지 보수

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