この研究は、アンダース ブロームベルクにスウェーデン研究評議会 (VR) および EU のサポートされているプロジェクト海岸から 2017-04559 助成金によって支えられました。特に、養殖施設の設置、年間で、支えられている補助金 r. ジョンソンあたりに次の資金調達機関から: SSF (スウェーデン戦略研究財団) プログラム海洋科学と技術と船舶用塗料・ プログラムを通じてミストラ。ケント ・ ベルントソン、culturingfacility のセットアップの初期段階に尽力しました。さらに養殖施設は海洋の進化生物学 (www.cemeb.science.gu.se) の中心部から来ている確立のための資金であるスウェーデン研究協議会 FORMAS と VR からリンネ助成します。

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著者申告するものがあります。

Tjärnö 海洋研究所 (スウェーデン) にフジツボ文化は 20 年以上されていると、多くの異なる分野で研究に使用されています。30 以上の科学論文が発行されている研究を含む防汚13,22, 流体力学23, 化学生態学24年間養殖システムを利用して、気候変動16、進化生物学5、および分子生物学2。
研究室環境 (野生の母集団を代表できない場合があります個人) により適応している特定の個人の選択を避けるためには、毎年フィールドから新しい親魚を収集するためにそれをお勧めします。さらに、通常の年の間にほぼ成人の死亡率の 50-80% があるので毎年、文化を活性化させることをお勧めではまた。しかし、目的は自殖系統実験進化の研究を設定するか、飼育の家族だけは使用されるが。
Tjärnö 海洋研究所パネルB. improvisusを収集する良い時間を当時の海で cyprid 幼虫の十分な供給があるため 6-8 月です。他を手動で削除して起動時にフジツボ決済毎週パネル解決b. improvisus (例えば、ムール貝、アステラス製薬、コケムシ、ヒドロ、nemerteans/隊、他のフジツボ種) より種をチェック、パネル (例えば歯ブラシで)。Tjärnö、周り 3 浅瀬のフジツボの種 (B. improvisus Semibalanus balanoides、タテジマフジツボ crenatus) があります。7 月-8 月に支配的な滑らかなハード面の行うことはB. improvisus です。S. balanoidesその決済期間は早いばねの間に、主に天然物 (例えば石) を好みます。B. crenatusは、夏の間にパネルの低い数字で発生します。
また、培養の cyprids、特定の特徴を持つ特定の linages が確立されている場合に必須になる、または実験進化学大人のフジツボの新しい世代を開始することが可能です。大人の新世代を開始する最も便利な方法は、研究室では、熱可塑性樹脂パネル cyprids を解決することです。新規入植 cyprids でこれらのパネルは、実験的治療またはフィールドの露出のためにも使えます。緊急の場合、1 つは、近隣のサイト (例えばTjärnö の海洋研究所の場合 Idefjorden) B. improvisusは共通から岩に大人も使用できます。これらの既に確立された大人はこのようにトレイに置かれているパネルの大人と同じように扱われを介してフローを介してシステムを供給します。フローセルは、フジツボ25パネルを確立するも使用できます。これらは、フロースルー プランクトン ネットを cyprids 我慢しないでください、幼虫の唯一の解決の表面板と側面が付いている部屋です。
すべてのライフ ステージを含む長期的な機能しているフジツボ文化を設定するために重要ないくつかの手順があります。B. improvisusの文化に使用するメソッドは、おそらく、大部分は、自由遊泳、planktotrophic 幼虫とその他の海産無脊椎動物にも対応します。養殖のいくつかの種は、すでによく手順 (例えばムール貝、カキの種)26、他の海産無脊椎動物のために彼らの一生にわたる長期的な文化の例がありますサイクル。文化フジツボ (B. アンフィトリテ) 最初の成功した試みの一つが Rittschofらによって行われていた15. 長期的な財政および個人的なリソースは、フジツボの養殖施設の設定を検討する前に場所でする必要があります。年のこの種のメンテナンス-フジツボ周り文化は少なくとも 1 人作業半分時間を必要とします。主に微細藻類27の養殖、生産ラインでいくつかの手順の将来の自動化のいくつかの可能性があります。さらに、成功するために質の高い海水の大量にアクセスを持つことが不可欠です。フジツボ、アルテミア、微細藻類の培養は、特定の安全手順を含まない。ただし、いくつかの防汚物質や有害化学物質のテストは、特別な予防策を必要があります。
パネルは、汚染のため週に数回をチェックされました。文化で使用される海水は、コスター フィヨルド Tjärnö 海洋研究所の外に 40 m の深さから汲み上げは、ラボの水システムに入る前に 2 つの砂フィルターを通して渡されました。水のフィルター処理が行われてない場合文化ではるかに多くの汚染があります。定期的にデトリタスやフィールドから海水の供給を介してシステムに入力 (例えば、匐枝建物ヒドロと捕食 nemerteans) その他の無脊椎動物からの文化でパネルをきれいにすることが欠かせません。たとえば、にもかかわらず、幼虫が生成されない文化が十分に供給しそれ以外をされているという事実は、良好な状態にするよう交尾を阻害するために表示される nemerteans の存在の問題かもしれない。当然、Tjärnö 海洋研究所文化における汚染の生物の多くは、スウェーデンの西海岸の特定、他の種類の生物を汚染が流行して他の地域での挑戦の多くであります。スウェーデンの西海岸、珍しくパネルに他のフジツボの生物に汚染を見つけること。時折、 S. balanoidesの確立が発見されているが、これは非常に限界の問題 (せいぜい、1 S の balanoides汚染 10,000 b. improvisusサンプルのため)。種を汚染することの欠如が最も可能性の高い優占 larvaefrom B. improvisusの頃、夏の間に新しい文化を確立する体制に依存していた。さらに、またあったパネルB. improvisusの明確な濃縮この種は滑らかな表面の13の選択なので。
死んでいる大人のフジツボを必ずしも削除する必要は。空のシェルは、パネルに残っている、彼らは避難所アルテミアノープリウスおよび様々 な混入種の両方になります。さらに、死亡個体隣接する分解中に有毒な化合物のリリースでおそらく個人の幸福に影響を与えることが注目されています。成人の死亡率の追加結果はいくつかの個人が (にもかかわらず、フジツボは、そのサイズに関連して動物の世界最長の陰茎を持っている) 交配を許可する他の大人から一人で、あまりにも遠くで残される、28。これらの個人は存続するが、幼虫のための生産的です。しかし、これらの孤独な大人個人ベース プレートを傷つけることがなく優しく削除できます、交尾を有効にする他の人の近くに水平方向に配置します。フジツボもそれぞれ大人 1 人とパネルを配置することで合致することができますが、受精が発生することが、十分に近い。このように、遺伝子のラインは作り出された14をすることができます。
高品質のフィードを作成してほぼ毎日文化を養うために重要です。食べ物がなくてもあっても数日は、幼虫のリリースが減少で起因できます。飼料組成の前のテストは、珪藻成長と給餌フジツボの生存に不可欠であることを示しています。いくつかの珪藻種見えるとして適切なフィード、小規模または孤独な細胞 (直径未満 10 μ m) 給餌の摂取の必要がありますが。S. marinoi c. 単信、 t. pseudonanaの種すべては適切なフィードB. improvisus給餌のためだけでなく、栽培が簡単に証明しています。さらに、飼料の品質は指数関数的に成長している藻類のため一般的に高いです。また、珪藻がB. アンフィトリテ15の生産的な文化を確立するために不可欠であることが報告されています。珪藻の重要性の理論は彼らがユニークな脂肪酸プロファイルを持っている、20:5 の高度不飽和脂肪酸29で特に豊富。それが示されてきた特定の脂肪酸がオイスター幼虫30の開発に成功のために重要です。
年間で、フジツボ文化の有害な病気の発生率がされてないです。カキとムール貝のような多くの商業無脊椎動物漁場に病気はなく一般的で、非常に有害な場合があります。ウイルスの有害な影響は、野生の個体群からも報告されています。フランスでネイティブのオイスターは、1925 年に、ポルトガル オイスターマガキ angulataと取替えられたが、この種は 1970年31周りイリドによって一掃されました。最近では、太平洋のカキ、世界中の文化で ostreid ヘルペス ウイルス 132に関連する表示されるマガキで大規模な死亡イベントがあった。フジツボにウイルスや細菌、病原体の報告は今のところ発表されていません。しかし、 b. improvisusの継続的なゲノム プロジェクト、ウイルスの配列が見つかりました (Alm Rosenbladら、未発表データ) が病気の症状に明らかなリンクがないです。抗生物質の混合物は、細菌感染症のリスクを最小化する文化に以前適用されています。ただし、この手順が放棄され現在、これまでのところ、これが汚染問題を生じない。
(前述) に海水を加熱すると、過熱と文化生産ラインで最も深刻なリスクがあるかもしれない。もちろん、センサーと適切な警報システムが使用される (例えば、責任者に電子メールまたはテキスト メッセージを送信) ありますが、過熱を防ぐためには困難です。過去にこの種の事件は文化で大人の実質的殺害しました。もちろん、壊滅するし、時間とお金の長期的な投資を台無しにするこのできます。特に、これは近交系の遺伝子のラインが確立されている場合は致命的となります。そのようなラインの寿命を確保し、彼らは偶発的な損失から保護、フジツボの凍結保存方法を開発することが望ましいこと。それは太平洋のカキから幼虫のダウン凍結および部分的な成功33で復活できることを報告されています。Cryobanking はまた、幅広い種34の遺伝資源を維持するために貴重なツールをされています。B. アンフィトリテからも給餌は凍結35、生き残るために報告され、凍結ダウン個人の 20% が正常に cyprids36に変成することがわかった。しかし、文化の長期的な持続可能性のための凍結を適用することは今のところ採用されていないが、これは確かに選択した線の維持のため必要これは強力な海洋 modelsystem にB. improvisusをしっかりと確立するための重要なステップになります。
ここでは、プロトコルは、 B. improvisus (すなわち前後、相馬、マントルピース) の大人から様々 な組織の郭清に対して贈られました。ただし、他の組織が抽出もできますそれ強調する必要があります。例えば、軟膜ベース種クロフジツボ スギついての外装と内部マントル間慎重に分離され RNA の抽出および遺伝子表現37の RNA シーケンス解析に使用します。ここで説明した最適化されたアウトラインの抽出プロトコルは、開始材料の最小量からシーケンスの高品質 RNA の十分な量を提供します。まず、均質化管に直接個々 の幼虫のコレクションは、1 つの管から別の転送中に任意の損失を最小化します。さらに、テストのさまざまな方法の中で、RNA の点で最も効率の良いをもたらすことを証明したセラミック ビーズと超音波または杵の均質化と比較して整合性が均質化。遺伝子発現やゲノム解析実験を計画するとき心に留めて、フジツボの高い遺伝的変異の挑戦、少なくともB. improvisusのあること。フジツボは、コード領域 (Alm Rosenbladら、未発表データ) でも、3-5% の範囲、遺伝的多様性。これはもちろん、qPCR 解析のためのプライマーの設計に特定の要求を置きます、領域の識別し一貫性のある表現の結果 betweenbatches を得るためにプライマーのためのテンプレートとして使用する必要があります保存より。標的遺伝子の節約された地域アクアポリンと Na のような + K + Atpase, cyprids を含む個人の何百もの集団から得られた RNA シーケンス データのこれらの遺伝子の順序の変動を研究することによって識別できます。ゲノム解析のため DNA がサンプリングされます。ただし、 B. improvisusから高品質の DNA を取得することができます挑戦する21。
結論としては、確立されたフジツボ文化は、さまざまな種類の実験的研究に尽力する証明されています。特に、すべての年周り幼虫生産は、天然の産卵期間に制限されることがなく実験を実施する私たちをことができます ( B. improvisus、これは、夏の間に)。得られた幼虫は、幅広い決済アッセイ、動作の試金、特定の遺伝子の表現研究ゲノム ・ トランスクリプトーム研究などの実験的研究を実行する使用できます。

フジツボが付着大人海産甲殻類と自由遊泳性、浮遊性の幼生。フジツボの 1,200 の種のほとんど浅い水の多くはしばしば低塩分にさらされています。ほぼ淡水容認することは 1 つの種、タテジマフジツボ (Amphibalanus) 即席に作る(B. improvisus) 湾のフジツボとチャールズ ・ ダーウィンにウルグアイ1リオ ・ デ ・ ラ ・ プラタの河口の小さなストリームからこの種が記載されています。B. improvisus浸透圧調節機構2,3の研究の特に関連するモデルを極端な耐性の時塩分になります。このフジツボは汽水の条件を好むが約 1.6 psu から塩分と水に住んでいることに高い 40 psu4として。バルト海の汽水で生息するフジツボだけです。B. improvisusアメリカ大陸の東海岸に由来すると考えられてが今日は世界の分散のために5を同梱します。それは主要な汚損生物と岩、桟橋、ボートの船体でよく見られる、したがって海洋、塩気のある水6、7の構造の生物付着のメカニズムを理解するための一般的な関心の。
他のほとんどのフジツボと同様、 b. improvisusは受精; と雌雄同体複製は、細長いペニスと体内受精を使用して隣接個体間の交配によって発生します。生殖期間は主に 5 月から 9 月です。B. improvisusは 7 遠洋幼生 (6 給餌 1 つ cyprid ステージ8の順)。ノープリウス幼生は自由遊泳は、非給餌 cyprid 幼虫に脱皮する前に数週間までの水の列のフィードに受精卵が孵化。Cyprid は複数のキューを使用してを解決する適切なサイトを検索して付着少年フジツボ9に変身を経る。種が実験室で培養することができます、海 (実験室文化で 2-3 年) に 1-2 年の寿命。平均では、 B. improvisus (最大 20 mm 程度) が付いている直径で 10 mm に成長し、約 6 mm の高さの最大値に達すると (ただし、それは混雑した条件の下で背が伸びることができます)。種ができるシェル プレートの放射状パターンの石灰質ベースと tergal プレート1,10の形その滑らかな石灰質もシェル (白または灰色がかった) によって識別されます。
フジツボB. improvisus分子生理機構と同様、生態学的相互作用と進化の結果の焦点との浸透圧の研究のためのモデルとして有利な機能があります。防汚メカニズム関係7,11,12,13研究に関連して特に生物学の調査のためのモデルとしても広く使用されます。ただし、自然季節産卵研究 cyprid 幼虫の予測不可能な供給が得られます。したがって、そのライフ サイクル全体を通じてこのフジツボを一年中文化能力です分子および作用機構研究の様々 なタイプを有効にする主要な資産であります。また、海洋/汽水域の世界でのプレゼンスは、フィールドと実験的研究の組み合わせにできます。制御された繁殖は長期培養14について知られている家系の家族を作成することも、数ヶ月の生成時間は長期的な戦略の実験的進化できます。またドラフト ゲノムとトランスクリプトームのいくつか、ありこれらのリソースは、いくつかの遺伝子 (例えば、浸透圧に重要な遺伝子)2,3のクローニングのために使用されています。
このプロトコルの目的は、確立し、大人やこの生物の幼虫について遺伝子発現研究を行うために一年中フジツボB. improvisusの文化を維持する方法について説明することです。Rittschofら15種タテジマフジツボの cyprids の集落への給餌のリリースからフジツボを培養するための方法について説明します。プロトコルは Tjärnö 海洋研究所 (スウェーデン)、 b. improvisusのすべて年間を通して養殖に適応されているし、生産を含むとフジツボの飼育、生産ラインのすべてのステップの詳細な説明が記載されて幼虫と成虫と幼虫のフィードの管理。完全な手順の概要については、図 1を参照してください。養殖システムの使用はいくつかの一般的な実験のセットアップを例示、Na+の機能ゲノミクス研究で示されている/K+ ATPase とアクアポリン、浸透圧調節2、その機能の解明 3。それは特定の臓器における遺伝子発現を調べることが不可欠でありフジツボ解剖の基礎の一部を支給します。質の高い海水の良い供給、フジツボB. improvisus、および他の可能性のある多くの種の培養できるはず世界中の海洋研究室です。

<table><tbody><tr><td>Plexiglas (poly-methyl methacrylate) panels</td><td>Plastic produkter, Bromma, Sweden</td><td></td><td>transparent glas</td></tr><tr><td>1.5 L PET bottle</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Artemia</td><td>INVE Aquaculture, Belgium</td><td></td><td>We have tested different companies; this is really the best one</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Skeletonema marinoi&lt;/em&gt; (CCAP strain 1077/5)</td><td>CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa); Scotland&amp;nbsp;</td><td>strain 1077/5</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Chaetoceros simplex&lt;/em&gt; var. &lt;em&gt;gracilis&lt;/em&gt; (CCAP strain 1085/3)</td><td>CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa); Scotland&amp;nbsp;</td><td>strain 1085/3</td><td></td></tr><tr><td>Millipore cartridge filter system</td><td>Millipore&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cartridge with a nominal pore size of 0.2 &amp;micro;m</td><td>Millipore&amp;nbsp;</td><td>cartridge CWSS01S03</td><td>High capacity for large volumes</td></tr><tr><td>polycarbonate bottle</td><td>Nalgene</td><td></td><td>autoclavable</td></tr><tr><td>RNA later</td><td>Qiagen</td><td>76106</td><td>&amp;nbsp;Fixation solution to preserve RNA</td></tr><tr><td>TURBO DNA-free Kit</td><td>Invitrogen/Thermofisher Scientific&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>AM1907</td><td>DNAse kit to remove DNA from prepared RNA</td></tr><tr><td>iScript cDNA Synthesis Kit</td><td>Biorad</td><td>1708890</td><td>cDNA synthesis kit</td></tr><tr><td>SYBR Green supermix</td><td>Biorad</td><td>1708880</td><td>Dye for QPCR</td></tr><tr><td>RNeasy minikit</td><td>Qiagen</td><td>74104</td><td>RNA extraction of adults or many cyprids</td></tr><tr><td>Soft tissue homogenising CK 14, 2 ml tubes</td><td>Precellys</td><td>KT03961-1-003.2</td><td>Ceramic beads for homogenisation</td></tr><tr><td>RNeasy micro kit</td><td>Qiagen</td><td>74004</td><td>RNA extraction of few cyprids</td></tr></tbody></table>

the barnacle balanus improvisus as a marine model - culturing and gene expression

フジツボが付着大人海産甲殻類と自由遊泳性、浮遊性の幼生。フジツボタテジマフジツボ (Amphibalanus) improvisus低塩分の極端な耐性のため浸透圧調節機構の研究のためのモデルとして特に関連します。防汚研究に関連して特に生物学のモデルとしても広く使用されます。ただし、自然季節産卵研究 cyprid 幼虫の予測不可能な供給が得られます。B. improvisusのすべての年間養殖は開発され、生産ラインでの手順をすべての詳細な説明のためのプロトコルを説明 (すなわちパネル、コレクションとの飼育アダルト文化の確立フジツボ幼虫と成虫と幼虫の飼料の管理)。説明もトラブルシューティングに関するガイダンスを提供し、重要なパラメーター (例えば汚染の除去、高品質飼料の生産、必要な人材、高品質海水の重要性) を説明します。養殖システムから各バッチは最大限に約 12,000 給餌が得られます、毎週ほぼ 50,000 の幼虫まで作り出すことができるので、1 週間で 4 つのバッチを配信できます。B. improvisusの文化に使用する方法は、おそらく、大部分は無料 swimminglarvae とその他の海産無脊椎動物にも対応。プロトコルは、様々 な組織の郭清の遺伝子発現の研究の質の高い RNA の生産と同様、大人から掲載されています。それはまた記述されているどのように培養大人と飼育 cyprids は外部要因に関連して遺伝子発現を調べるための実験的デザインの広い配列で利用できます。遺伝子発現培養ふじつぼ類の使用、Na+の可能な浸透圧調節の役割の研究で示されて/K+ ATPase とアクアポリン。

B. improvisusの大人のフジツボの養殖の説明手順、ノープリウスの 4 つのバッチまで幼虫を生産する週。ほぼ毎晩、ノープリウス幼生を収集するために可能になるより多くの人々 とインフラストラクチャが必要です (、親魚に多くフジツボと文化がリリース幼虫継続的に)。幼虫用追加の制限要因は、特に珪藻Skeletonemaに関する高品質の飼料の可用性に表示されます。最大限に、養殖のシステムからそれぞれのバッチは、約 12,000 の給餌は、1 週あたりの 50,000 の給餌まで培養することができますのでで構成されます。ただし、いくつかの週間可能性があります 10 倍少ない幼虫まで。単一の大人日14、大人 1-2 名各バッチの幼虫を発表していることを意味するあたりまで 7,000 幼虫を作り出すことができます。週間以内決済試金および分子研究に使用できます (1 週あたり約 30,000 cyprids を最大限に降伏) cyprids に収集された給餌の約 70-90% がいきます。
それはバッチ、間 cyprid 機能の変化があることを強調する必要があります、一般的には、バッチ内でより大きなバッチ間のバリエーションがあります。たとえば、決済の試金でセトリング成功 30、異なるバッチ 70% 間で異なります。ほとんどの場合、これは別のサンプリング期間中に幼虫を解放する大人の特定の組の個々 の遺伝的変異によるです。もちろん、結果についてのより一般的な声明を行われる場合に繰り返し実験 (生物的複製) がバッチの数から cyprids を含める必要があることをお勧めします。バッチごとに変化は、適切なコントロールと遺伝子発現研究に正規化する必要があります適用する実験的なデザインの要求を置きます。しかし、いくつかの統計の正規化手順が実装されている後でさえもかなりバッチ間の変動を減らすこと、バッチのいくつかの効果は、通常、まだ明らか (未発表データ)。
指定されたプロトコルに従い、平均すると、500 を取得することが可能だとして 20 cyprids、フジツボ決済 (表 1) のステージに関係なくから高品質の RNA の ng。RNA の品質は通常、(2 つのピークの予想される位置は図 4に示される) 18 と 28 のピーク間の比率として測定されます。フジツボおよび他の多くの節足動物の場合 28 s rRNA (解析手法の一部) として加熱すると分解し、18 歳ピーク20と共に移行します。だからこそ、そこは原則、フジツボの分析のこのタイプの 1 つの単一 rRNA のピークです。このテスト (図 4) セラミック ビーズによる均質化が RNA は、最高の整合性とは、したがって、任意のメソッドから明らかです。RNA は、7000 万の読み込み (読み取り、数コースのシーケンス中に多重のレベルに依存) サンプルごとの平均の量と高品質シーケンス、シーケンス処理用ライブラリを生成する品質で十分です。RNA の量で多数の遺伝子の cDNA 合成と qPCR 発現解析の十分ですも。
図 5結果を示します qPCR 解析からアクアポリンと Na+/K+ ATPase (NAK1) スプライスの変形、環境手がかり2,3の変化に応えて発現変動を調べた。長いのと短いの相対的な表現の比較はスプライス NAK1 ショーの二重は短い NAK (図 5A) に関連して低塩分の長い NAK1 mRNA の増加の亜種。したがって、データは、選択的スプライシング、長い形式により低塩分条件下で優勢なを示しています。アクアポリン、場合差分式 (図 5B) を 2 つの水を運ぶ paralogs AQP1 と AQP2 に表示は明らかです。特に、マントル組織でそれは明らかですが、AQP1 低塩分で大幅にダウン規制 AQP2 を見られない。代わりに、AQP2 は、低塩分でが、相馬、わずかに増加した式を示します。これらの調査結果は、別の機能の役割の調査のための基盤を提供B. improvisusイオン輸送体とフジツボの浸透圧調節におけるアクアポリン。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57825/57825fig1.jpg"> 図 1: プロシージャおよび成人における遺伝子発現研究の RNA の抽出を養殖全体の概要。新しい文化を開始するためパネルはフレームにアタッチ、1-3 m の深さの海に展開します。数週間後、成人/少年とパネルは研究室でトレイのラックに垂直方向に配置されます。各トレイは、大人で約 40 のパネルを保持しています。合計 ≈ パネルあたり約 100 大人とは、4,000 のアダルト個体がトレイごと培養です。大人のフジツボがアルテミアにうんざりし、保つことができる年の周り。ノープリウス幼生は、トレイを介してふるいをフィルタ リングから、週何回か収集されます。収集の給餌は、26 の ° C の水浴中で、微細藻類にうんざりのバケットに転送されます。給餌は、フィルタ リングによって集めた非給食 cyprids に脱皮するまでに飼育されています。新しいパネルを研究室で確立するの解決 cyprids パネルにどちらかを提供し、今年の新しいパネルに-文化の周りや外部の変更の条件で特定の実験のセットアップに使用します。RNA が少年/大人実験の終わりにまたは特定の時点から抽出されます。<a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57825/57825fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57825/57825fig2.jpg"> 図 2: 養殖のいくつかの重要な手順のイメージ。(A) このイメージ フィールドから新しい個体群を収集するためのパネルとフレームを示しています。(B) この画像は、トレイに配置されているラックにB. improvisusの大人のフジツボとパネルを示します。パネル約 2 cm 間隔で設置されます。(C) この画像は、パネルと左に飼料タンク、フジツボとトレイを示しています。各トレイからは、ノープリウス幼生のコレクションのためのふるいの配置場所のコンセントです。(D) この画像は、アルテミアの生産は大人のフジツボのフィードを示します。(E) この画像は、バケット 26 ° C に設定水浴の配置における飼育を示します。<a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57825/57825fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57825/57825fig3.jpg"> 図 3: 大人のフジツボの初期解剖手順の説明: その殻から体を削除します。(A) 一方の開口部を通して優しく鉗子を挿入して蓋板をつかむ。プレートを削除し、動物を公開して丁寧に引き抜きます。(B) 相馬部分、前後のすぐ下を掴んで動物を引き出します。(C) このパネルは、ドングリ フジツボの全体的な構造を示しています。マントル ・ (卵巣) の可能性がある受精卵体が引っ張られるとき貝キャビティの滞在します。フジツボ解剖学に関する一考察 (より詳細なアカウント ・ アンダーソンを参照してください)9: フジツボの壁板が内側に傾斜し、一緒に、彼らは火山のような円錐形を形成します。開口部、開口部はドアや開口部を閉じるに蓋を形成する 2 つの蓋板で覆われています。ドングリ フジツボ一般; 下地にしっかりと接着されている石灰質基底板があります。フジツボのいくつかの種は、石灰質 (例えば、 S. balanoides) プレートを欠けています。フジツボは、暗色のマントル (甲) から骨格を分泌します。二層マントルの外側の表面は硬直しながらマントルの内部の表面はない石灰化、柔軟なために石灰化します。開口部の内側、前後引っ込んだ位置に存在しています。これらは懸濁液を供給するためフジツボを使用して胸部付属肢です。卵巣は、精巣が、相馬にあるフジツボ、麓近くに位置しています。この図は、Panovaらから採用されています21スプリンガーの許可を得て掲載されています。<a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57825/57825fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57825/57825fig4.jpg"> 図 4: キャピラリーゲル電気泳動による rRNA 整合性の定量します。2 つの異なる均質化法により調製した RNA: 超音波処理 (A) と (B) セラミック ビーズ。フー、y 軸の単位は、蛍光ユニットの略です。<a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57825/57825fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57825/57825fig5.jpg"> 図 5: 遺伝子発現の浸透圧調節に重要な遺伝子の 2 つの異なる研究から結果b. improvisus. (A) このパネルが差分式を示します/K+ ATPase NAK1さまざまな塩類および pCO2への応答でレベル3の Na+のスプライスバリアントの qPCR によって測定されました。低塩分治療長いアイソ フォーム (NAK1 L) の式はショートを基準にして増加する (分散分析, P 0.001 <)。(B) このパネルは、さまざまな塩類が2への露出の間にB. improvisusの大人のアクアポリンの発現を示しています。qPCR はアクチンに対するアクアポリンの発現レベルを決定するために使用されました。成虫 3 塩分が異なる (3、20、および 33 PSU) で 14 日間培養。RNA の準備のため、相馬、スィアライ、および大人のマントルが分離しました。両方の図には、エラーバーは標準偏差を示します。* * と * * * (ANOVA) の有意水準を示す 0.01 と 0.001、それぞれ。これらの数字は、リンドらから変更されています。2,3。 両方の数字は PLoS 1 の許可を得て公開されます。<a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57825/57825fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td>集落フェーズ</td>
			<td>RNA (ng) の合計額</td>
		</tr>
<tr>
<td>フリー スイミング</td>
			<td>512</td>
		</tr>
<tr>
<td>探査: 検索窓を閉じる</td>
			<td>518</td>
		</tr>
<tr>
<td>添付 cyprid</td>
			<td>550</td>
		</tr>
<tr>
<td>新しく少年変成</td>
			<td>832</td>
		</tr>
</tbody></table>表 1: RNA の収量。このテーブルは、決済プロセス中にさまざまな段階で 20 cyprid 個体のプールからの RNA の準備キットで抽出した RNA 量を示しています。

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The Barnacle Balanus improvisus as a Marine Model - Culturing and Gene Expression

フジツボタテジマフジツボ (Amphibalanus) improvisusは、浸透圧調節や防汚のモデルです。ただし、季節の自然産卵と、cyprid 幼虫の予測不可能な供給が得られます。ここでは、幼虫の生産を含むb. improvisusのオールラウンド年養殖のためのプロトコル、説明します。遺伝子発現研究培養ふじつぼ類の使用を示しています。

海洋モデルとしてフジツボタテジマフジツボ improvisus培養と遺伝子発現

Barnacles are marine crustaceans with a sessile adult and free-swimming, planktonic larvae. The barnacle Balanus (Amphibalanus) improvisus is particularly ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Environment

The Barnacle Balanus improvisus as a Marine Model - Culturing and Gene Expression

14.6K ビュー.  University of Gothenburg. フジツボタテジマフジツボ (Amphibalanus) improvisusは、浸透圧調節や防汚のモデルです。ただし、季節の自然産卵と、cyprid 幼虫の予測不可能な供給が得られます。ここでは、幼虫の生産を含むb. improvisusのオールラウンド年養殖のためのプロトコル、説明します。遺伝子発現研究培養ふじつぼ類の使用を示しています。

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Expression of Fluorescent Proteins in Branchiostoma lanceolatum by mRNA Injection into Unfertilized Oocytes

We report here a robust and efficient protocol for the expression of fluorescent proteins after mRNA injection into unfertilized oocytes of the cephalochordate amphioxus, Branchiostoma lanceolatum. We use constructs for membrane and nuclear targeted mCherry and eGFP that have been modified to accommodate amphioxus codon usage and Kozak consensus sequences. We describe the type of injection needles to be used, the immobilization protocol for the unfertilized oocytes, and the overall injection set-up. This technique generates fluorescently labeled embryos, in which the dynamics of cell behaviors during early development can be analyzed using the latest in vivo imaging strategies. The development of a microinjection technique in this amphioxus species will allow live imaging analyses of cell behaviors in the embryo as well as gene-specific manipulations, including gene overexpression and knockdown. Altogether, this protocol will further consolidate the basal chordate amphioxus as an animal model for addressing questions related to the mechanisms of embryonic development and, more importantly, to their evolution.

Expression of Fluorescent Proteins in Branchiostoma lanceolatum by mRNA Injection into Unfertilized Oocytes

We report here the robust and efficient expression of fluorescent proteins after mRNA injection into unfertilized oocytes of Branchiostoma lanceolatum. The development of the microinjection technique in this basal chordate will pave the way for far-reaching technical innovations in this emerging model system, including in vivo imaging and gene-specific manipulations.

蛍光タンパク質の発現において<em&gt; Branchiostoma lanceolatum</em&gt;未受精卵へのmRNA注入による

We report here a robust and efficient protocol for the expression of fluorescent proteins after mRNA injection into unfertilized oocytes of the ...

発生生物学

Inducing Complete Polyp Regeneration from the Aboral Physa of the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis

Cnidarians, and specifically Hydra, were the first animals shown to regenerate damaged or severed structures, and indeed such studies arguably launched modern biological inquiry through the work of Trembley more than 250 years ago. Presently the study of regeneration has seen a resurgence using both &#34;classic&#34; regenerative organisms, such as the Hydra, planaria and Urodeles, as well as a widening spectrum of species spanning the range of metazoa, from sponges through mammals. Besides its intrinsic interest as a biological phenomenon, understanding how regeneration works in a variety of species will inform us about whether regenerative processes share common features and/or species or context-specific cellular and molecular mechanisms. The starlet sea anemone, Nematostella vectensis, is an emerging model organism for regeneration. Like Hydra, Nematostella is a member of the ancient phylum, cnidaria, but within the class anthozoa, a sister clade to the hydrozoa that is evolutionarily more basal. Thus aspects of regeneration in Nematostella will be interesting to compare and contrast with those of Hydra and other cnidarians. In this article, we present a method to bisect, observe and classify regeneration of the aboral end of the Nematostella adult, which is called the physa. The physa naturally undergoes fission as a means of asexual reproduction, and either natural fission or manual amputation of the physa triggers re-growth and reformation of complex morphologies. Here we have codified these simple morphological changes in a Nematostella Regeneration Staging System (the NRSS). We use the NRSS to test the effects of chloroquine, an inhibitor of lysosomal function that blocks autophagy. The results show that the regeneration of polyp structures, particularly the mesenteries, is abnormal when autophagy is inhibited.

Inducing Complete Polyp Regeneration from the Aboral Physa of the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis

Here we demonstrate how to induce and monitor regeneration in the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis, a model cnidarian anthozoan. We demonstrate how to amputate and categorize regeneration using a morphological staging system, and we use this system to reveal a requirement for autophagy in regenerating polyp structures.

スターレットイソギンチャクの尾方Physaから完全ポリープ再生を誘導<em&gt; Nematostella vectensis</em

Cnidarians, and specifically Hydra, were the first animals shown to regenerate damaged or severed structures, and indeed such studies arguably launched ...

Cultivation of the Marine Pelagic Tunicate Dolioletta gegenbauri (Uljanin 1884) for Experimental Studies

Gelatinous zooplanktons play a crucial role in ocean ecosystems. However, it is generally difficult to investigate their physiology, growth, fecundity, and trophic interactions primarily due to methodological challenges, including the ability to culture them. This is particularly true for the doliolid, Dolioletta gegenbauri. D. gegenbauri commonly occurs in productive subtropical continental shelf systems worldwide, often at bloom concentrations capable of consuming a large fraction of daily primary production. In this study, we describe cultivation approaches for collecting, rearing, and maintaining D. gegenbauri for the purpose of conducting laboratory-based studies. D. gegenbauri and other doliolid species can be captured live using obliquely towed conical 202 &micro;m mesh plankton nets from a drifting ship. Cultures are most reliably established when water temperatures are below 21 &deg;C and are started from immature gonozooids, maturing phorozooids, and large nurses. Cultures can be maintained in rounded culture vessels on a slowly rotating plankton wheel and sustained on a diet of cultured algae in natural seawater for many generations. In addition to the ability to establish laboratory cultures of D. gegenbauri, we demonstrate that the collection condition, algae concentration, temperature, and exposure to naturally conditioned seawater are all critical to the culture establishment, growth, survival, and reproduction of D. gegenbauri.

Cultivation of the Marine Pelagic Tunicate Dolioletta gegenbauri Uljanin 1884 for Experimental Studies

Doliolids, including the species Dolioletta gegenbauri, are small gelatinous marine zooplankton of ecological significance found on productive subcontinental shelf systems worldwide. The difficulty of culturing these delicate organisms limits their investigation. In this study, we describe cultivation approaches for collecting, rearing, and maintaining the doliolid Dolioletta gegenbauri.

実験研究のための海洋ペラジック・チュニケート・ドリオレッタ・ゲゲンバウリ(ウルジャニン1884)の栽培

Gelatinous zooplanktons play a crucial role in ocean ecosystems. However, it is generally difficult to investigate their physiology, growth, fecundity, ...

環境学

Streamlined Sampling and Cultivation of the Pelagic Cosmopolitan Larvacean, Oikopleura dioica

Oikopleura dioica is a planktonic chordate with exceptional filter-feeding ability, rapid generation time, conserved early development, and a compact genome. For these reasons, it is considered a useful model organism for marine ecological studies, evolutionary developmental biology, and genomics. As research often requires a steady supply of animal resources, it is useful to establish a reliable, low-maintenance culture system. Here we describe a step-by-step method for establishing an O. dioica culture. We describe how to select potential sampling sites, collection methods, target animal identification, and the set-up of the culturing system. We provide troubleshooting advice based on our own experiences. We also highlight critical factors that help sustain a robust culture system. Although the culture protocol provided here is optimized for O. dioica, we hope our sampling technique and culture setup will inspire new ideas for maintaining other fragile pelagic invertebrates.

Streamlined Sampling and Cultivation of the Pelagic Cosmopolitan Larvacean, Oikopleura dioica

Oikopleura dioica is a tunicate model organism in various fields of biology. We describe sampling methods, species identification, culturing setup, and culturing protocols for the animals and algal feed. We highlight key factors that helped strengthen the culture system and discuss the possible problems and resolutions.

「大子広場」の合理化されたサンプリングと栽培

Oikopleura dioica is a planktonic chordate with exceptional filter-feeding ability, rapid generation time, conserved early development, and a compact ...

Modeling Mucosal Candidiasis in Larval Zebrafish by Swimbladder Injection

Early defense against mucosal pathogens consists of both an epithelial barrier and innate immune cells. The immunocompetency of both, and their intercommunication, are paramount for the protection against infections. The interactions of epithelial and innate immune cells with a pathogen are best investigated in vivo, where complex behavior unfolds over time and space. However, existing models do not allow for easy spatio-temporal imaging of the battle with pathogens at the mucosal level.
The model developed here creates a mucosal infection by direct injection of the fungal pathogen, Candida albicans, into the swimbladder of juvenile zebrafish. The resulting infection enables high-resolution imaging of epithelial and innate immune cell behavior throughout the development of mucosal disease. The versatility of this method allows for interrogation of the host to probe the detailed sequence of immune events leading to phagocyte recruitment and to examine the roles of particular cell types and molecular pathways in protection. In addition, the behavior of the pathogen as a function of immune attack can be imaged simultaneously by using fluorescent protein-expressing C. albicans. Increased spatial resolution of the host-pathogen interaction is also possible using the described rapid swimbladder dissection technique.
The mucosal infection model described here is straightforward and highly reproducible, making it a valuable tool for the study of mucosal candidiasis. This system may also be broadly translatable to other mucosal pathogens such as mycobacterial, bacterial or viral microbes that normally infect through epithelial surfaces.

In vivo spatio-temporal interactions of pathogen and immune defenses at the mucosal level are not easily imaged in existing vertebrate hosts. The method presented here describes a versatile platform to study mucosal candidiasis in live vertebrates using the swimbladder of the juvenile zebrafish as an infection site.

浮袋注入による幼虫ゼブラフィッシュにおける粘膜カンジダ症のモデル化

Early defense against mucosal pathogens consists of both an epithelial barrier and innate immune cells. The immunocompetency of both, and their ...

免疫・感染学

Ablation of a Single Cell From Eight-cell Embryos of the Amphipod Crustacean Parhyale hawaiensis

The amphipod Parhyale hawaiensis is a small crustacean found in intertidal marine habitats worldwide. Over the past decade, Parhyale has emerged as a promising model organism for laboratory studies of development, providing a useful outgroup comparison to the well studied arthropod model organism Drosophila melanogaster. In contrast to the syncytial cleavages of Drosophila, the early cleavages of Parhyale are holoblastic. Fate mapping using tracer dyes injected into early blastomeres have shown that all three germ layers and the germ line are established by the eight-cell stage. At this stage, three blastomeres are fated to give rise to the ectoderm, three are fated to give rise to the mesoderm, and the remaining two blastomeres are the precursors of the endoderm and germ line respectively. However, blastomere ablation experiments have shown that Parhyale embryos also possess significant regulatory capabilities, such that the fates of blastomeres ablated at the eight-cell stage can be taken over by the descendants of some of the remaining blastomeres. Blastomere ablation has previously been described by one of two methods: injection and subsequent activation of phototoxic dyes or manual ablation. However, photoablation kills blastomeres but does not remove the dead cell body from the embryo. Complete physical removal of specific blastomeres may therefore be a preferred method of ablation for some applications. Here we present a protocol for manual removal of single blastomeres from the eight-cell stage of Parhyale embryos, illustrating the instruments and manual procedures necessary for complete removal of the cell body while keeping the remaining blastomeres alive and intact. This protocol can be applied to any Parhyale cell at the eight-cell stage, or to blastomeres of other early cleavage stages. In addition, in principle this protocol could be applicable to early cleavage stage embryos of other holoblastically cleaving marine invertebrates.

Ablation of a Single Cell From Eight-cell Embryos of the Amphipod Crustacean Parhyale hawaiensis

The amphipod Parhyale hawaiensis is a promising model organism for studies of crustacean embryology and comparative arthropod development and evolution. This protocol describes a method for manual removal of single blastomeres from early cleavage stage embryos of Parhyale.

端脚甲殻類の8細胞胚から単セルのアブレーション<em&gt; Parhyale hawaiensis</em

The amphipod Parhyale hawaiensis is a small crustacean found in intertidal marine habitats worldwide. Over the past decade, Parhyale has emerged as a ...

生物学

Preparation of Primary Myogenic Precursor Cell/Myoblast Cultures from Basal Vertebrate Lineages

Due to the inherent difficulty and time involved with studying the myogenic program in vivo, primary culture systems derived from the resident adult stem cells of skeletal muscle, the myogenic precursor cells (MPCs), have proven indispensible to our understanding of mammalian skeletal muscle development and growth. Particularly among the basal taxa of Vertebrata, however, data are limited describing the molecular mechanisms controlling the self-renewal, proliferation, and differentiation of MPCs. Of particular interest are potential mechanisms that underlie the ability of basal vertebrates to undergo considerable postlarval skeletal myofiber hyperplasia (i.e.&#160;teleost fish) and full regeneration following appendage loss (i.e.&#160;urodele amphibians). Additionally, the use of cultured myoblasts could aid in the understanding of regeneration and the recapitulation of the myogenic program and the differences between them. To this end, we describe in detail a robust and efficient protocol (and variations therein) for isolating and maintaining MPCs and their progeny, myoblasts and immature myotubes, in cell culture as a platform for understanding the evolution of the myogenic program, beginning with the more basal vertebrates. Capitalizing on the model organism status of the zebrafish (Danio rerio), we report on the application of this protocol to small fishes of the cyprinid clade Danioninae. In tandem, this protocol can be utilized to realize a broader comparative approach by isolating MPCs from the Mexican axolotl (Ambystomamexicanum) and even laboratory rodents. This protocol is now widely used in studying myogenesis in several fish species, including rainbow trout, salmon, and sea bream1-4.

In vitro culture systems have proven indispensible to our understanding of vertebrate myogenesis. However, much remains to be learned about nonmammalian skeletal muscle development and growth, particularly in basal taxa. An efficient and robust protocol for isolating the adult stem cells of this tissue, the myogenic precursor cells (MPCs), and maintaining their self-renewal, proliferation, and differentiation in a primary culture setting allows for the identification of conserved and divergent regulatory mechanisms throughout the vertebrate lineages.

基礎脊椎動物の系統からの一次筋原前駆細胞/筋芽細胞培養液の調製

Due to the inherent difficulty and time involved with studying the myogenic program in vivo, primary culture systems derived from the resident adult stem ...

A Whole Mount In Situ Hybridization Method for the Gastropod Mollusc Lymnaea stagnalis

Whole mount in situ hybridization (WMISH) is a technique that allows for the spatial resolution of nucleic acid molecules (often mRNAs) within a &#39;whole mount&#39; tissue preparation, or developmental stage (such as an embryo or larva) of interest. WMISH is extremely powerful because it can significantly contribute to the functional characterization of complex metazoan genomes, a challenge that is becoming more of a bottleneck with the deluge of next generation sequence data. Despite the conceptual simplicity of the technique much time is often needed to optimize the various parameters inherent to WMISH experiments for novel model systems; subtle differences in the cellular and biochemical properties between tissue types and developmental stages mean that a single WMISH method may not be appropriate for all situations. We have developed a set of WMISH methods for the re-emerging gastropod model Lymnaea stagnalis that generate consistent and clear WMISH signals for a range of genes, and across all developmental stages. These methods include the assignment of larvae of unknown chronological age to an ontogenetic window, the efficient removal of embryos and larvae from their egg capsules, the application of an appropriate Proteinase-K treatment for each ontogenetic window, and hybridization, post-hybridization and immunodetection steps. These methods provide a foundation from which the resulting signal for a given RNA transcript can be further refined with probe specific adjustments (primarily probe concentration and hybridization temperature).

A Whole Mount In Situ Hybridization Method for the Gastropod Mollusc Lymnaea stagnalis

The goal of this protocol is to provide users with a set of methods for the high-throughput decapsulation of Lymnaea stagnalis embryos and larvae in preparation for whole mount in situ hybridization, and for subsequent pre- and post-hybridization treatments.

全体のマウント<em&gt;その場で</em腹足類軟体動物のための&gt;ハイブリダイゼーション法<em&gt;モノアラガイstagnalis</em

Whole mount in situ hybridization (WMISH) is a technique that allows for the spatial resolution of nucleic acid molecules (often mRNAs) within a ...

Apoptosis Induction and Detection in a Primary Culture of Sea Cucumber Intestinal Cells

Primary cultured cells are used in a variety of scientific disciplines as exceptionally important tools for the functional evaluation of biological substances or characterization of specific biological activities. However, due to the lack of universally applicable cell culture media and protocols, well described cell culture methods for marine organisms are still limited. Meanwhile, the commonly occurring microbial contamination and polytropic properties of marine invertebrate cells further impede the establishment of an effective cell culture strategy for marine invertebrates. Here, we describe an easy-to-handle method for culturing intestinal cells from sea cucumber Apostichopus japonicus; additionally, we provide an example of in vitro apoptosis induction and detection in primary cultured intestinal cells. Moreover, this experiment provides details about the appropriate culture medium and cell collection method. The described protocol is compatible with a variety of widely available tissue samples from marine organisms including Echinodermata, Mollusca, and Crustacea, and it can provide sufficient cells for multiple in vitro experimental applications. This technique would enable researchers to efficiently manipulate primary cell cultures from marine invertebrates and to facilitate the functional evaluation of targeted biological materials on cells.

This protocol provides an easy-to-handle method to culture the intestinal cells from sea cucumber Apostichopus japonicus and is compatible with a variety of widely available tissue samples from marine organisms including Echinodermata, Mollusca, and Crustacea.

ナマコ腸細胞の一次培養におけるアポトーシス誘導と検出

Primary cultured cells are used in a variety of scientific disciplines as exceptionally important tools for the functional evaluation of biological ...

Photogrammetric Three-dimensional Modeling and Printing of Cetacean Skeleton using an Omura's Whale Stranded in Hong Kong Waters as an Example

The preparation of cetacean, in particular baleen whale, skeletons presents a great challenge due to their high lipid content and uncommon size. Documentation of the skeletal morphology is important to produce accurate and reliable models for both research and educational purposes. In this paper, we used a 10.8-meter long Omura&#8217;s whale stranded in Hong Kong waters in 2014 as an example for the illustration. This rare and enormous specimen was defleshed, macerated, and sun-dried to yield the skeleton for research and public display. Morphology of each bone was then documented by photogrammetry. The complex contour of the skeleton made automated photoshoot inadequate and 3 manual methods were used on bones of different sizes and shapes. The captured photos were processed to generate three-dimensional (3D) models of 166 individual bones. The skeleton was printed half-size with polylactic acid for display purposes, which was easier to maintain&#160;than the actual cetacean bones with high residual fat content. The printed bones reflected most anatomical features of the specimen, including the bowing out rostral region and the caudal condylar facet that articulated with Ce1, yet the foramina on the parieto-squamosal suture, which are diagnostic character of Balaenoptera omurai, and an indented groove on the frontal bone at the posterior end of the lateral edge were not clearly presented. Extra photoshoots or 3D surface scanning should be performed on areas with meticulous details to improve precision of the models. The electronic files of the 3D skeleton were published online to reach a global audience and facilitate scientific collaboration among researchers worldwide.

The bone morphology of a semi-degreased baleen whale was documented by photogrammetry with a DSLR camera to generate three-dimensional (3D) models by computer, which were 3D printed as half-sized replicas of the original for display and educational purposes.

海洋モデルとしてフジツボタテジマフジツボ improvisus培養と遺伝子発現

要約

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蛍光タンパク質の発現において

スターレットイソギンチャクの尾方Physaから完全ポリープ再生を誘導