このプロジェクトは、教育のシンガポール省（MOE、認可番号2013-T2-2-126）と国立衛生研究所からの助成金、アメリカ（NIH、助成金番号1R21AT008452-01A1）によって賄われていました。 TYは、生物科学のNUS学科から大学院の奨学金を受けました。私たちは一定のサポートのためにバイオイメージング科学NUSセンター（CBIS）の共焦点ユニットに感謝します。

全ての実験は、シンガポール国立大学（R14-293）の承認制度動物実験委員会（IACUC）プロトコルに従って行いました。 1.魚の飼育や胚のコレクション<ol><li> nlGFP 24、RANKL：HSE：CFP 24、およびOSX：26℃でmCherryを21シングルまたは化合物、遺伝子組み換えメダカ制御光周期（14時間の明、暗10時間）の下で産卵を誘発するWT、CTSKを上げます。 </li><li>光がオンにされた後、毎日の産卵は、最初の30分の間に行われます。卵は、フィラメントを介して一緒に固執し、数時間のために女性の腹部に付着します。卵のクラスタを運ぶ成人女性をキャッチするために細かいメッシュのネットを使用してください。魚は簡単にネットで休むし、その後静かに慎重に女性の腹部から受精卵のクラスタを削除するには、魚の腹部をマッサージしてみましょう。 注：健康メダカ女性約5ヶ月間20卵を毎日 - 10を生成することができます。 </li><li> 60ミリメートルのプラスチックペトリ皿に卵を置きます。 19.3のNaCl、0.23のKCl、0.13mMの硫酸マグネシウム、0.2 mMののCa（NO 3）2、および1.7 mMのHEPES、pHは、0.3X Danieauのソリューション（魚培地10mL - 5で胚を洗浄するためにプラスチックピペットを使用してください7.0）。真菌増殖を防ぐために、0.25％の1 mLの魚培地2.5 Lに（w / v）のメチレンブルーのストック溶液を加えます。 </li><li>ゆっくりアタッチメントフィラメントの結び目を形成するために、卵のクラスタをロールバックします。個々の胚（ 図1A）を得るために慎重に受精卵クラスタから添付ファイルのフィラメントを除去するために鉗子を使用してください。 </li><li>岩松2004年13に従って胚を上演。 </li><li>文化20から28℃のインキュベーターで60ミリメートルのプラスチックペトリ皿当たり30の胚。胚の正常な発展を確保するために、毎日培地を変更します。 注：孵化ステージの周りの時間（8から9のD postfertilization、DPF）生存のために特に重要です。きれいなメディアを保つために、良好な幼虫の生存率を確保するために自由に浮遊絨毛膜を取り外します。 </li></ol> 2.トランスジェニック胚のスクリーニング<ol><li> 40X倍率を用いた蛍光レポーター発現のためのトランスジェニック胚をスクリーニングするための蛍光イメージングおよびGFP、RFP、およびCFPフィルター用の水銀ランプを備えた実体顕微鏡を使用してください。 </li><li>視覚的にOSXを識別：mCherryをレポーター発現によるmCherryを胚の初期段階で形成後部ヘッド（ 図1B、矢印）、および副蝶形骨の両側に、このような擬鎖骨などの頭骨を、腹側頭蓋内の中央の位置で（ 図1B、矢印）。 注：レポーターの発現は5 DPF以降21から始まります。 </li><li> CTSKを特定します。nlGFPヘッドに強いnlGFPの発現による胚（ 図1C、矢印）とテール（ 図1C、矢印）から出発6 DPF。 注：内因性破骨細胞はわずか21 DPF後に形成します。この初期の段階（6 DPF）でnlGFP発現細胞は破骨細胞ではなく、他の、これまでに特徴付けられていない、陽性細胞24を CTSK。 </li><li> RANKLを特定します。HSE：ユビキタスCFPの発現によるCFPトランスジェニック胚を2 DPFで以降のスクリーニング目的のために実施し、39℃で20分間の短い熱ショック処理、後。 注：RANKLとCFP導入遺伝子は同じ双方向の熱ショックエレメント（HSE）の制御下にあります。 CFPの発現が成功したRANKL誘導24を示しています。 </li><li>その結果、骨粗しょう症様の表現型24につながる幹線領域で異所性破骨細胞の多数を誘導するために、後9 DPFで2時間熱ショック処理または- 1.5を実行します。 注：休止状態の破骨細胞前駆細胞の異所性活性化に9 DPF結果に誘起されるトランスジェニックRANKL発現を、内因的にトリガされません21 DPFの前に。安定した39℃の条件を得るために水浴を使用してください。胚が水面に浮くメダカを含むペトリ皿をしてみましょう。ペトリ皿の蓋が皿の沈没を防ぐために乾燥していることを確認してください。 </li><li>このようなRANKLなどの化合物ラインから画面胚：HSE：CFP / CTSK：nlGFPダブルトランスジェニックとOSX：mCherryを/ RANKL：HSE：CFP / CTSK：nlGFPトリプルトランスジェニック、各個々の導入遺伝子の発現パターンに応じました。 注：ヘミ接合およびホモ接合トランスジェニック胚は、レポーター導入遺伝子の異なる蛍光レベルによって区別されました。ホモ接合体の胚は、約ヘミ接合性トランスジェニックのものに比べて倍増した蛍光強度を有していました。 HSE：CFPとCTSK：RANKLの両方に対してホモ接合した複合線nlGFPは数世代にわたって繰り返さincrossingによって得ました。 mCherryを/ RANKL：HSE：CFP / CTSK：トリプルトランスジェニックOSX用のnlGFP魚、<html>ホモ接合RANKL：HSE：CFP / CTSK：mCherryをキャリア：nlGFP魚がホモ接合OSXと交配しました。得られたヘテロ接合トリプルトランスジェニック子孫は上昇し、RANKLについてホモ接合胚を得るためにincrossedた：HSE：CFPを。 RANKL：HSE：CFPの導入遺伝子は、異所性破骨細胞の効率的な誘導を得るために、ホモ接合でなければなりません。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig1.jpg" /> 図1：WT及び7 D Postfertilizationでのトランスジェニックメダカ胚（DPF）。 。 WT胚は、明視野照明で観察されました。 B。 OSX示すトランスジェニック胚：擬鎖骨（矢印）と副蝶形骨（矢印）の周りにmCherryを発現します。 C。 CTSKを示すトランスジェニック胚：nlGFP頭の中での式（矢印）とテール（矢印）。スケールバー：500μmで。025 / 55025fig1large.jpg &quot;ターゲット=&quot; _空白 &quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 メダカ幼虫の3ビスホスホネート治療<ol><li>用量反応試験のためのビスフォスフォネート（BPの）の異なる濃度を含む溶液を準備します。 注：このプロトコルで使用される例示的なBPは、アレンドロネートです。 <ol><li>ストック溶液を調製するためには100μg/ mLの濃度で魚培地中のアレンドロネートを溶解します。 </li><li>完全な溶解を確実にするために、ボルテックスミキサーを使用してください。 4℃の原液を保管してください。 </li><li>一連の濃度に魚媒体と原液を希釈することによって、異なる作業溶液を調製する（ すなわち 、25、37.5、50、62.5、及び75 / mlの）。 注：異なる薬物このメダカ幼虫システムを使用して試験する時に考慮されなければならない別の吸収、分布、代謝、および排泄（ADME）のパラメータを有してもよいです。また、薬物の溶解性および安定性が変化し得る場合水溶液として適用されます。あまり水溶性化合物は、最初にDMSOなどの有機溶媒に溶解する必要がある場合があります。この場合には、ストック溶液を、さらに魚の培地で希釈してDMSOで調製されます。水（魚培地）中で作業ソリューションは、いくつかの週のために冷蔵庫に保存することができることに注意してください。しかし、DMSOを含む溶液は、結晶化を防止するために、室温で保存する必要があります。 </li></ol></li><li>その後のBP（アレンドロネート）治療のために（6幼虫/ウェル）を6ウェルプレートにメダカの幼虫を転送します。 </li><li>慎重にきれいなプラスチックピペットを用いて、魚の培地を除去し、各ウェルにアレンドロネート少量の溶液（約0.5 ml）を追加します。 </li><li>あまり集中アレンドロネートソリューションのために特に重要である追加されたBP溶液が希釈されるかもしれないとして残った魚媒体を、避けてください。 </li><li>きれいなプラスチックピペットを用いて各ウェルから（0.5 mlまで）アレンドロネートの少量の溶液を取り出して、より大きなvoluに置き換えますアレンドロネートソリューションの私（4 mL）で。 </li><li>正常な胚の発達を確保するために、培地を毎日変更します。 </li></ol>石灰化骨マトリックスの4ライブ染色<ol><li>それぞれ、1％および0.1％ストック溶液を調製するために魚の培地50mlにまたはカルセイン0.05gを、アリザリンコンプレクソン0.5gの（アリザリン-3-メチルイミノ二酢酸ALC）を溶解します。完全な溶解を確実にするために、ボルテックスミキサーを使用してください。 注：メチレンブルーを添加することなく魚媒体がこの中で使用されて以降は、幼虫で自己蛍光を低減します。 </li><li>染色液をフィルタするために注射器と単回使用フィルタ（0.2μm）を使用してください。室温で暗所で濾過した溶液を保管してください。 注：濾過し、明確なALC染色溶液の色がオレンジ色に黄色の暗いです。濾過し、澄んだカルセイン溶液の色は明るい黄色です。溶液は、数ヶ月のために使用することができます。 </li><li>魚媒体でフィルタリングALCまたはカルセインストックソリューション1:10に希釈9と17 DPFの間に幼虫が使用されている場合、28℃のインキュベーターに2.5時間（0.01％カルセイン溶液） - 2時間（0.1％ALC溶液）または2 - および1.5のためのメダカの幼虫をインキュベートします。暗闇の中でサンプルを保管してください。 </li><li>きれいなプラスチックピペットを用いて、新鮮な魚媒体に幼虫を転送します。 </li><li>きれいなプラスチックピペットで魚の培地を除去し、新鮮な魚媒体を追加します。 3に対して、この手順を繰り返し - （それぞれ、ALCまたはカルセイン）なし赤や黄色に染色されたソリューションまで、4回には残されています。媒体からの落射蛍光を回避するために、イメージングのためにそれらをマウントする前に60分 - 30のための魚の培地中の幼虫のままにしておきます。 注：0.1％ALC染色溶液は、拡張露光時間のためのメダカの幼虫に有害です。より長い2時間のインキュベーション時間が幼虫の生存に影響を与えます。濃度及び染色時間は、したがって、最適な胚の生存および染色の結果を達成するためには種々の段階のために最適化される必要があります。 </li></ol> 5.ライブ蛍光イメージング</<html> P&gt; <ol><li>魚の培地中で0.01％トリカイン（3-アミノ安息香酸エチルメタンスルホン酸）とメダカの幼虫を麻酔。 注：麻酔幼虫は5の後に固定化さ - トリカイン溶液中で10分、通常はその側面や背中のいずれかを横たわっています。 </li><li>関心領域に応じて幼虫を向けるためにプラスチックmicroloaderを使用してください。このプロトコルで使用される幼虫の向きが横方向です。 </li><li>イメージングのための蛍光照明で実体顕微鏡を使用してください。画像を撮影するときに幼虫（頭、前部胴体、後部トランク、および尾）の異なる部分を中心に、高倍率を使用してください。適切な画像処理ソフト（ 図3Gでのインセット）を使用して、重複領域で個々の画像を一緒にステッチ。 注：これは、正しい焦点面内のすべての関連する身体部分の画像品質を改善するのに役立ちます。 </li><li>撮影後の回復のために魚媒体に幼虫を返します。 </li></ol>TLE &quot;&gt; 6。ライブ共焦点イメージング<ol><li>彼らは、固定化になるまで10分 - 5のための魚の培地中の0.01％トリカインで幼虫を麻酔。 </li><li>電子レンジで加熱することにより、魚の培地中1.5％アガロースに低融点溶解します。約30°Cにこのソリューションを冷却します。 </li><li>液体1.5％低融点ガラス底ペトリ皿に魚媒体にアガロースの1ミリリットル - 0.5を追加します。きれいなプラスチックピペットを用いて、溶液中に麻酔幼虫を転送します。 注：液体の低融点アガロースの温度が幼虫に害を与えないために十分に低いことを特別な予防策を取ります。 </li><li>アガロースが固化する前に、ペトリ皿の底に幼虫をプッシュするプラスチックmicroloaderを使用して、関心領域に応じて幼虫を向けます。このプロトコルで使用される幼虫の向きが横方向です。 注：アガロースが完全に固化した後、サンプルは、共焦点ライブイメージングのための準備が整いました。 </li><li> ACQする共焦点顕微鏡を使用して、uire画像。 </li><li> mCherryをとALC染色分析のため543 nmのレーザーラインを使用してください。 nlGFPのための488 nmのレーザーラインを使用し、カルセイン染色を分析します。 </li><li>撮影後、ペトリ皿に魚媒体を追加し、慎重にアガロースから幼虫を除去するために、微細な注射針（27 Gのx 1.5 &quot;）のペアを使用する。残留的に回復するために魚の媒体とのシャーレにアガロース添付して幼虫を転送。 </li><li>画像解析ソフトウェア27を用いて画像を処理します。 </li></ol>

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著者は、彼らが何の競合や金融利害関係を持たないことを宣言します。

プロトコル内の重要なステップ異なるサンプルを比較した場合、熱ショック処理の条件は、一貫して安定していることが必須です。安定した温度条件は、CTSKについてスクリーニングすることにより確認することができ、その結果、同程度の破骨細胞形成を、トランスジェニック幼虫にRANKL誘導の同様のレベルを保証すると：nlGFP発現。最終的に、これは、ALC染色によって検証されるように、誘導された異所性骨吸収と骨粗しょう症のような病変の類似度をもたらします。このような実験的なデザインは、その後決意し、様々な抗吸収薬または異なる濃度で適用される同じ薬剤の効果を比較することができます。 修正およびトラブルシューティング魚の幼虫は非常に脆弱であり、慎重に撮像のための実装工程中に処理されなければなりません。最適なライブ共焦点イメージングのために、幼虫は慎重にPOSITIあります怪我（ 図2B）を回避するために、むしろ鉗子より、プラスチックmicroloaderでoned。卵黄拡張は刺激に触れあまり敏感であり、それにより、実装時の幼虫の運動を避け、microloaderで幼虫を方向付けするために使用することができます。関心領域は、サンプルが（ 図5）を撮像する時に1焦点面に焦点を合わせることができることを確実にするために平らにマウントする必要があります。骨細胞の挙動は非常に動的であり、ライブ撮影時の高時間・空間分解能を必要とします。最適には、共焦点解析によるタイムラプスイメージングは​​、生活の幼虫で数時間にわたって骨芽細胞、破骨細胞の相互作用に従うことが望まれています。しかし、これは生きていると固定位置に幼虫を保つために特別な条件が求められています。長期の麻酔のために、魚の培地中の0.001％トリカインの溶液を、撮像中にアガロース固化をカバーするために添加されます。これは、乾燥からアガロースを防止し、虚部の間に幼虫の突然のけいれんを防ぎます数時間かけてます。 テクニックの制限事項骨粗しょう症は、主に高齢者の人間に影響を与える疾患です。そのため、骨粗しょう症の薬物スクリーニングのためのin vivoモデルの理想は、成魚を関与させるべきです。これまでのところ、しかし、この報告書に記載ライブイメージングの技術は、胚および幼虫期に限定されています。現在利用可能な共焦点イメージングが原因で侵入深さの制限のため成魚における遺伝的に標識された骨細胞のライブイメージングを許可していません。それは考えられるこの制限はすぐに解消されることになり、一緒に少ない色素性」シースルー「メダカ株の可用性と、深い生体組織へのイメージングを可能にする光シート蛍光顕微鏡（LSFM）の最近の開発、およびのライブイメージング薬剤スクリーニング後の大人のメダカで骨細胞が可能になります。 /既存の代替Mへの尊重と法の意義ethods 特に骨の研究- -及び薬物スクリーニングのためのin vivoモデルとしてライブイメージングと高度な遺伝子ツールのユニークな組み合わせは、生物医学研究のための人気の小さな硬骨魚を行いました。無傷の生物内細胞間相互作用を解析する可能性が、トランスジェニックメダカラインは骨モデリングおよびリモデリング中の動的な細胞プロセスのライブイメージングのために非常に適しています。彼らは多くの遺伝子調節ネットワークを共有しているため、メダカにin vivo試験では 、哺乳類と骨の恒常性を制御するための補完、さらには、哺乳動物の骨芽細胞と破骨細胞の細胞培養アッセイを用いてin vitro試験を超えることができます。 このテクニックをマスターした後、将来のアプリケーションや行き方このプロトコルで説明したように、トランスジェニックバックグラウンドで単一の化合物を試験する以外に、魚はまた、VAの組み合わせを検討するための簡単なアプローチを提供しています化合物の可能な相乗効果や干渉のためrious薬。さらに、異なるレポーター株の組合せを使用することは、例えば、特定の変異体背景との関連で、または骨の存在下における骨変性及び修理の異なる段階で骨細胞の挙動を研究するための十分な機会を提供します-modulating薬。マウスアッセイを補完する独自の機能により、メダカ骨粗鬆症モデルがテストし、同化作用および新規骨調節化合物の抗吸収効果を定量化するためのin vivoでのアプローチに優れたを提供します。

脊椎動物の骨格は、臓器のための構造的支持および保護を提供する移動性を可能にし、カルシウムの供給源として役立ちます。人生を通して、細胞外骨基質を連続的に骨の安定性と剛性を維持するために引き渡されます。このプロセスは、緊密に協調活動と骨形成骨芽細胞と骨吸収破骨細胞の相互作用を必要とします。骨芽細胞は、多能間葉系前駆細胞に由来し、類骨、骨マトリクス10のタンパク質性部分を形成するためにコラーゲンを生成しています。骨芽細胞は、骨ホメオスタシス7を制御するために必要とされる細胞型、両方のバランスのとれた活性を達成するために、破骨細胞と相互作用します。そのため、これらの複雑な規制の相互作用のため、薬物治療と骨の恒常性への応答は、完全にin vitro試験で使用して検査することはできません。したがって、動物モデルが強く求められています。細胞培養の設定と比較して、in vivoモデルで提供することができます骨環境内の多細胞ネットワークに貴重な洞察力。 多数のマウスモデルは、骨粗しょう症16を含むヒト骨障害の様々なために存在します。しかし、マウス胚の大きさとアクセシビリティは、骨格のプロセスのライブイメージングのための重大な制限を表します。小型硬骨魚、一方、in vivoイメージングのための魅力的な代替手段としての役割を果たす。ゼブラフィッシュ（ ゼブラフィッシュ ）とメダカ（ メダカ ）は、過去20年間17、19、22、24を介して骨格研究のための人気の動物モデルとなっています。硬骨魚および哺乳動物における骨は、構造上および生理学的レベルの両方で、非常に類似しており、重要な調節遺伝子およびシグナル伝達経路の多くは3保存されています。哺乳動物のように、硬骨魚を注意深く骨芽細胞および骨形成および吸収26のバランスをとるために、破骨細胞の活性を調節します。 Fi接続の最も重要なのは、光学的透明性shの幼虫は、骨細胞と生きている動物における細胞プロセスの観察を容易に石灰化骨格マトリックス8、9、12、21、23、標識する蛍光レポーターの使用を可能にします。また、遺伝的ツールの一連の魚類における生物医学的に関連した研究を容易にするために生成されています。特にメダカ、CRISPR / Cas9 2、6をトレースする細胞系統、および部位特異的な遺伝子導入14が最近確立され、広く使用15に今あるされていることにより、標的遺伝子の突然変異のための方法のために。 小型硬骨魚類の幼虫が正常にいくつかの薬理学的に関連する薬1、18の発見につながった化学スクリーンのために使用されてきました。 稚魚DMSOの低濃度に耐性であり、皮膚を介して、または消化管1,5のいずれかを介して、彼らの水生環境から化合物を吸収することができます。私たちの研究室以前の担当者様々な骨芽細胞と破骨細胞特異的プロモーターの制御下で、骨細胞に蛍光レポーターを発現するトランスジェニックメダカ系統をorted。 20、21、成熟骨芽細胞（ オステオカルシン 、OSC）27、および破骨細胞（ カテプシンK、CTSK）24;これらは、早期骨芽細胞（ オステリックス 、OSX コラーゲン10A1、col10a1） が挙げられます。我々はまた、熱ショック誘導性プロモーター24の制御下で破骨細胞誘導因子核因子κBリガンドの受容体アクチベーター（RANKL）を発現するトランスジェニック系統を生成しました。 このシステムにおけるRANKLの誘導は、活性破骨細胞の異所性の形成をもたらします。これは、椎体で大幅に削減鉱化と、骨吸収の増加と重度の骨粗しょう症様表現型につながります。我々は最近、TW、このモデルにおける破骨細胞活性は、ビスフォスフォネートのエチドロン酸とアレンドロネートによって遮断することができることを示しました一般に、ヒト骨粗鬆症の治療に使用されるO薬は、このように骨粗鬆症27に適したモデル系としてメダカを検証します。 それらの大ひなサイズ、急速な発展、及び胚の小さなサイズのために、トランスジェニックメダカの幼虫は、骨粗しょう症薬の大規模スクリーニングのため、および骨細胞の挙動のin vivo分析のために独自に適しています。メダカにおける研究は、このように効率的に細胞培養およびヒトの骨疾患のための新たな治療標的と新しい治療法を発見することを目的としているマウスでの実験を補完することができます。 本研究では、我々は共通の骨粗しょう症薬、アレンドロネートでメダカ骨レポーター幼虫を治療するためのプロトコルについて説明します。また、搭載され、骨基質と骨細胞のライブイメージングのために用意されている方法の処理された幼虫を詳細に説明します。これらのプロトコルは、簡単にその骨同化または再吸収抑制薬などの作業のいずれかの他の小さな化学化合物に適合させることができます。&lt;/ P&gt;

<table><tbody><tr><td>Alendronate&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A4978</td><td></td></tr><tr><td>alizarin-3-methyliminodiacetic acid, Alizarin Complexone</td><td>Sigma</td><td>A3882</td><td></td></tr><tr><td>Calcein</td><td>Sigma</td><td>C0875</td><td></td></tr><tr><td>ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate (Tricaine)</td><td>Sigma</td><td>A5040</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ (1.4.3.67)</td><td>National Institute of Health (NIH)</td><td></td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td></tr><tr><td>LSM 510 Meta confocal&amp;nbsp;</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LSM Image Browser (4.2.0.121)</td><td>Zeiss</td><td></td><td>http://www.zeiss.com/microscopy/en_de/downloads/lsm-5-series.html</td></tr><tr><td>Micro-loader</td><td>Eppendorf</td><td>5242956003</td><td>Eppendorf ep T.I.P.S 20 &amp;mu;L</td></tr><tr><td>NIS-Elements BR 3.0 software</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Photoshop CS6 (13.0.0.0)</td><td>Adobe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SMZ1000 stereomicroscope&amp;nbsp;</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

drug treatment and in vivo imaging of osteoblast-osteoclast interactions in a medaka fish osteoporosis model

骨形成する骨芽細胞は骨基質の代謝回転を調整するために、骨格の恒常性を制御するために、骨吸収破骨細胞と対話します。メダカとゼブラフィッシュの幼生が広く、骨形成、変性、及び修理中に骨細胞の挙動を分析するために使用されます。それらの光学的透明度は、蛍光標識された骨細胞と鉱化骨格のマトリックスに結合した蛍光色素の可視化を可能にします。私たちの研究室では、熱ショック誘導性プロモーターの制御下で破骨細胞誘導因子核因子κBリガンド（RANKL）の受容体活性化剤を発現するトランスジェニックメダカを生成しました。 カテプシンK（CTSK）プロモーターの制御下にnlGFP発現とレポーターラインで可視化することができる活性化された破骨細胞の過剰形成におけるRANKL結果の異所性発現。 RANKL誘導および異所性破骨細胞形成は、重度の骨粗しょう症のような表現型につながります。化合物のトランスジェニックメダカの李CTSK表現NEは：nlGFPは時期尚早骨芽細胞におけるオステリックス （OSX）プロモーターの制御下に破骨細胞、ならびにmCherryをで、両方の細胞型の相互作用を研究するために使用することができます。これは、骨変性及び修理の条件の下で細胞の挙動のin vivoでの観察を容易にします。ここでは、一般にヒトの骨粗鬆症の治療に用いられる薬剤をテストし、ライブイメージングのためのプロトコルを記述するために、このシステムの使用を記載しています。メダカのモデルは、細胞培養やマウスでの研究を補完するものであり、骨格系における薬物作用のin vivo分析のための新規なシステムを提供しています。

豊富な卵の数だけでなく、幼虫の小さいサイズは、メダカ薬物スクリーニングのための優れたモデルを作ります。単一の6ウェルプレートは、統計的に有意なデータを提供するのに十分であった36幼虫までの培養に使用しました。骨格の分析のために魚を使用してのもう一つの大きな利点は、ライブイメージングを行うことの可能性です。稚魚の透明度は、骨細胞、ならびに石灰化を可視化するために、骨基質に結合する染料の使用を標識するための蛍光タンパク質を使用することができます。稚魚取り扱いが容易であり、イメージングのための試料調製は、（ 図2）簡単です。 RANKL：HSE：CFP / CTSK：nlGFPダブルトランスジェニック系統は、RANKL誘導破骨細胞の異所性形成を可視化するために使用されました。さらに、OSX：mCherryを/ RANKL：HSE：CFP / CTSK：nlGFPトリプルトランスジェニック幼虫は、同時に使用した検出早期の骨芽細胞および分化した破骨細胞（ 図3）のイオン。共焦点顕微鏡は、細胞レベル（ 図3D、E、I、Jの矢じり）でプロセスを可視化するために使用している間に、（H - - CとF 図3A）の概要画像は実体顕微鏡で撮影しました。神経アーチに沿ってALC染色骨基質（NA）及びセントラ（C）（ 図3D）は、蛍光標識された骨細胞（ 図3DおよびI）の位置を決定するための基準として使用しました。 同時に同じ無傷の幼虫に破骨細胞と骨芽細胞を可視化することの利点は、試験化合物の骨同化活動対吸収抑制を区別することができるということです。このために、破骨細胞および骨芽細胞の分布は、既存および新たに形成された石灰化骨基質に沿って決定されます。 SUCカルセイン（緑）、続いてALC（赤）（ 図4A、B）（ 図4C、D）と骨基質のcessive染色は、デノボ石灰化した骨基質（緑）（ 図4E、Fの矢じり）を明らかにする。このアッセイは、骨形成の速度の定量化を可能にします。薬物治療後に増加し、デノボ率は、試験化合物の骨同化作用を示しています。これとは対照的に、薬剤27の抗吸収活性に対する既存の骨基質ポイントの持続性。 ALCおよび幼虫におけるカルセイン標識の両方が、インビボでのメダカ幼虫における新骨形成の連続的な観察を可能にする、少なくとも2週間安定です。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig2.jpg" /> 図2：薬物治療の概略図、ライブALC染色し、共焦点ライブイメージングのためにマウント。 。 6ウェルプレート幼虫のための十分なスペースを確保するために、薬物治療のために使用されます。暗所で2時間 - 石灰化した骨マトリクスは、1.5、0.1％ALCにメダカの幼虫をインキュベートすることにより染色されます。染色された幼生魚培地で数回洗浄します。 0.01％トリカインは幼虫を麻酔するために使用されます。 B。低融点アガロースぬるま湯と液体1.5％に麻酔をかけた幼虫の転送後、その位置がプラスチックmicroloaderで調整されています。幼虫はその後（ 例えば、脊椎動物のカラムが最高の側面図で結像される）関心領域に応じて搭載されています。アガロースが固化した後、マウントされたサンプルは、共焦点イメージングのための準備ができています。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55025/55025fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig3.jpg" /> 図3： <stroNG&gt; CTSK：nlGFPと OSX：10 DPFでのトランスジェニックメダカ幼虫におけるmCherryを発現、熱ショックによって誘導されるRANKLの発現がなく、後。 AC。 RANKL誘導を含まない対照の幼虫。 ALC-染色骨格行列（A）;色素細胞の背側に位置する行の非特異的自己蛍光シグナルを注意してください。 CTSK：nlGFPヘッドとテール（B）における発現とOSXの分布：mCherryを陽性早期の骨芽細胞頭蓋、脊柱内、および尾鰭（C）。 D。この発達段階での神経アーチ（NA）とセントラ（c）の周りの異所性破骨細胞の欠如を示すAとBに箱入りの領域の共焦点スタック。 E。 Cの上映OSXで箱入りの領域の共焦点スタック：neuraに沿ってmCherryを発現時期尚早骨芽細胞リットルのアーチとセントラの縁で。破骨細胞は、RANKL誘導せずにトランクには存在しません。 FJ。 9 DPFでの熱ショックによりRANKL誘導後幼虫。 F。 ALC-染色骨格行列。 G。 CTSK：nlGFPは脊柱に形成破骨細胞を発現性。 Gにおける挿入図はGで複合画像を生じるように一緒に縫合されている高倍率で撮影された個々の画像を示します。 H。 OSXの分布：mCherryを発現する細胞はRANKL誘導後1 dは変更されません。 I。共焦点神経アーチの周りに形成RANKL誘導破骨細胞を示すFとGで箱入りエリアのスタック、ならびにセントラ（矢頭）。 J。 OSXの隣にnlGFP発現破骨細胞：CTSKを示すHに箱入りの領域の共焦点スタックに沿ってmCherryを標識早期の骨芽細胞神経アーチやセントラ。 A、B、C、F、G、及びHにおけるスケールバー：100μmです。 D、E、I、及びJでのスケールバー：50μmです。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55025/55025fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig4.jpg" /> 図4：それぞれ12と15 DPF、でALCとカルセインと幼虫の連続染色による骨マトリックスのデノボ鉱化作用の解析。 、B。 12 DPFでALC-染色骨格行列。 C、D。同じ幼虫に15 ​​DPFで骨格行列をカルセインは、染色しました。 E、F。新しくミネラを示す合成画像神経アーチ（緑、矢印）の先端に骨基質をlized。 B、D、およびF。領域の共焦点のスタックはそれぞれ、A、C、およびEで箱入り。 A、C、およびEでのスケールバー：100μmです。 B、D、およびFでのスケールバー：50μmです。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55025/55025fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig5.jpg" /> 図5：失敗し、共焦点イメージングのための取付けの成功を示す代表的な画像。 AC。失敗した焦点面の外側にあるサンプル（左）の一部に低融点アガロース結果に取り付けます。 DF。すべてのレジを示す成功した実装同じ焦点面での関心のアドオン。スケールバー：50μmです。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55025/55025fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図6" src="/files/ftp_upload/55025/55025fig6.jpg" /> 図6：アレンドロネート治療を防ぎ骨吸収。 ALC-染色骨格行列とCTSK：熱ショックによって誘導されるRANKL発現（DF）と、及びアレンドロネートを加えてRANKL誘導（AC）のないトランスジェニックメダカの幼虫でnlGFP発現破骨細胞、同じ日にRANKL誘導（GI）など。 C、F、およびI。領域の共焦点のスタックはそれぞれ、A及びB、D及びE、G及びHに箱入り。C。 RANKL誘導せずにそのまませき柱をALC-染色しました。 F。 RANKL誘導、CTSK発現性破骨細胞は、神経アーチ（矢印）の鉱化マトリックスの完全な吸収およびセントラに欠陥（矢じり）で、その結果、神経アーチとセントラの周りに形成します。 G。 nlGFP発現破骨細胞を、それをブロックし、骨吸収を無傷の神経アーチとセントラの葉：アレンドロネートの添加はCTSKの形成に影響を与えません。 100μmで：A、B、D、E、G、及びHにおけるスケールバー。 C、F、およびIにおけるスケールバー：50μmです。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55025/55025fig6large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Drug Treatment and In Vivo Imaging of Osteoblast-Osteoclast Interactions in a Medaka Fish Osteoporosis Model

Small laboratory fish have become popular models for bone research on the mechanisms underlying human bone disorders and for the screening of bone-modulating drugs. In this report, we describe a protocol to assess the effect of alendronate on bone cells in medaka larvae with osteoporotic lesions.

薬物治療と<em&gt;インビボ</em&gt;メダカ骨粗鬆症モデルにおける骨芽細胞破骨細胞の相互作用のイメージング

Bone-forming osteoblasts interact with bone-resorbing osteoclasts to coordinate the turnover of bone matrix and to control skeletal homeostasis. Medaka ...

drug-treatment-vivo-imaging-osteoblast-osteoclast-interactions-medaka

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Drug Treatment and In Vivo Imaging of Osteoblast-Osteoclast Interactions in a Medaka Fish Osteoporosis Model

9.2K ビュー.  National University of Singapore. Small laboratory fish have become popular models for bone research on the mechanisms underlying human bone disorders and for the screening of bone-modulating drugs. In this report, we describe a protocol to assess the effect of alendronate on bone cells in medaka larvae with osteoporotic lesions.

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Intra-iliac Artery Injection for Efficient and Selective Modeling of Microscopic Bone Metastasis

Intra-iliac artery (IIA) injection is an efficient approach to introduce metastatic lesions of various cancer cells in animals. Compared to the widely used intra-cardiac and intra-tibial injections, IIA injection brings several advantages. First, it can deliver a large quantity of cancer cells specifically to hind limb bones, thereby providing spatiotemporally synchronized early-stage colonization events and allowing robust quantification and swift detection of disseminated tumor cells. Second, it injects cancer cells into the circulation without damaging the local tissues, thereby avoiding inflammatory and wound-healing processes that confound the bone colonization process. Third, IIA injection causes very little metastatic growth in non-bone organs, thereby preventing animals from succumbing to other vital metastases, and allowing continuous monitoring of indolent bone lesions. These advantages are especially useful for the inspection of progression from single cancer cells to multi-cell micrometastases, which has largely been elusive in the past. When combined with cutting-edge approaches of biological imaging and bone histology, IIA injection can be applied to various research purposes related to bone metastases.

This manuscript provides the detailed procedure of intra-iliac artery (IIA) injection, a technique to deliver cancer cells specifically to hind limb tissues including bones to establish experimental bone metastases. Although initially established with breast tumor models, this protocol can be easily extended to other cancer types.

顕微鏡骨転移の効率的かつ選択的モデリングのためのイントラ腸骨動脈注入

Intra-iliac artery (IIA) injection is an efficient approach to introduce metastatic lesions of various cancer cells in animals. Compared to the widely ...

がん研究

Adult Zebrafish Injury Models to Study the Effects of Prednisolone in Regenerating Bone Tissue

Zebrafish are able to regenerate various organs, including appendages (fins) after amputation. This involves the regeneration of bone, which regrows within roughly two weeks after injury. Furthermore, zebrafish are able to heal bone rapidly after trepanation of the skull, and repair fractures that can be easily introduced into zebrafish bony fin rays. These injury assays represent feasible experimental paradigms to test the effect of administered drugs on rapidly forming bone. Here, we describe the use of these 3 injury models and their combined use with systemic glucocorticoid treatment, which exerts bone inhibitory and immunosuppressive effects. We provide a workflow on how to prepare for immunosuppressive treatment in adult zebrafish, illustrate how to perform fin amputation, trepanation of calvarial bones, and fin fractures, and describe how the use of glucocorticoids affects both bone forming osteoblasts and cells of the monocyte/macrophage lineage as part of innate immunity in bone tissue.

Here, we describe 3 adult zebrafish injury models and their combined use with immunosuppressive drug treatment. We provide guidance on imaging of regenerating tissues and on detecting bone mineralization therein.

骨組織の再生にプレドニゾロンの効果を研究する大人のゼブラフィッシュ傷害モデル

Zebrafish are able to regenerate various organs, including appendages (fins) after amputation. This involves the regeneration of bone, which regrows ...

発生生物学

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in vivo demonstration of such cells has only recently been attained. Here, in vivo imaging techniques to investigate the role of endogenous osteogenic stem/progenitor cells (OSPCs) and their progeny in bone repair are provided. Using osteo-lineage cell tracing models and intravital imaging of induced microfractures in calvarial bone, OSPCs can be directly observed during the first few days after injury, in which critical events in the early repair process occur. Injury sites can be sequentially imaged revealing that OSPCs relocate to the injury, increase in number and differentiate into bone forming osteoblasts. These methods offer a means of investigating the role of stem cell-intrinsic and extrinsic molecular regulators for bone regeneration and repair.

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Quantitative measurement of bone progenitor function in fracture healing requires high resolution serial imaging technology. Here, protocols are provided for using intravital microscopy and osteo-lineage tracking to sequentially image and quantify the migration, proliferation and differentiation of endogenous osteogenic stem/progenitor cells in the process of repairing bone fracture.

シーケンシャル<em&gt;インビボ</em&gt;骨折修復中に、骨形成幹細胞/前駆細胞のイメージング

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in ...

医学

Computed Tomography and Optical Imaging of Osteogenesis-angiogenesis Coupling to Assess Integration of Cranial Bone Autografts and Allografts

A major parameter determining the success of a bone-grafting procedure is vascularization of the area surrounding the graft. We hypothesized that implantation of a bone autograft would induce greater bone regeneration by abundant blood vessel formation. To investigate the effect of the graft on neovascularization at the defect site, we developed a micro&#8211;computed tomography (&#181;CT) approach to characterize newly forming blood vessels, which involves systemic perfusion of the animal with a polymerizing contrast agent. This method enables detailed vascular analysis of an organ in its entirety. Additionally, blood perfusion was assessed using fluorescence imaging (FLI) of a blood-borne fluorescent agent. Bone formation was quantified by FLI using a hydroxyapatite-targeted probe and &#181;CT analysis. Stem cell recruitment was monitored by bioluminescence imaging (BLI) of transgenic mice that express luciferase under the control of the osteocalcin promoter. Here we describe and demonstrate preparation of the allograft, calvarial defect surgery, &#181;CT scanning protocols for the neovascularization study and bone formation analysis (including the in vivo perfusion of contrast agent), and the protocol for data analysis.
The 3D high-resolution analysis of vasculature demonstrated significantly greater angiogenesis in animals with implanted autografts, especially with respect to arteriole formation. Accordingly, blood perfusion was significantly higher in the autograft group by the 7th day after surgery. We observed superior bone mineralization and measured greater bone formation in animals that received autografts. Autograft implantation induced resident stem cell recruitment to the graft-host bone suture, where the cells differentiated into bone-forming cells between the 7th and 10th postoperative day. This finding means that enhanced bone formation may be attributed to the augmented vascular feeding that characterizes autograft implantation. The methods depicted may serve as an optimal tool to study bone regeneration in terms of tightly bounded bone formation and neovascularization.

Implantation of autologous and allogeneic bone grafts constitute accepted approaches to treat major craniofacial bone loss. Yet the effect of graft composition on the interplay among neovascularization, cell differentiation and bone formation is unclear. We present a multimodal imaging protocol aimed to elucidate the angiogenesis-osteogenesis interdependence at the graft proximity.

コンピュータ断層撮影法と頭蓋骨自家移植と同種移植片の統合を評価するために、骨形成、血管新生のカップリングの光イメージング

A major parameter determining the success of a bone-grafting procedure is vascularization of the area surrounding the graft. We hypothesized that ...

生物工学

A Novel in vivo Gene Transfer Technique and in vitro Cell Based Assays for the Study of Bone Loss in Musculoskeletal Disorders

Differentiation and activation of osteoclasts play a key role in the development of musculoskeletal diseases as these cells are primarily involved in bone resorption. Osteoclasts can be generated in vitro from monocyte/macrophage precursor cells in the presence of certain cytokines, which promote survival and differentiation. Here, both in vivo and in vitro techniques are demonstrated, which allow scientists to study different cytokine contributions towards osteoclast differentiation, signaling, and activation. The minicircle DNA delivery gene transfer system provides an alternative method to establish an osteoporosis-related model is particularly useful to study the efficacy of various pharmacological inhibitors in vivo. Similarly, in vitro culturing protocols for producing osteoclasts from human precursor cells in the presence of specific cytokines enables scientists to study osteoclastogenesis in human cells for translational applications. Combined, these techniques have the potential to accelerate drug discovery efforts for osteoclast-specific targeted therapeutics, which may benefit millions of osteoporosis and arthritis patients worldwide.

A Novel in vivo Gene Transfer Technique and in vitro Cell Based Assays for the Study of Bone Loss in Musculoskeletal Disorders

Differentiation of precursor cells into osteoclasts is regulated by cytokines and growth factors. Here, a novel gene transfer technique for differentiation of osteoclasts in vivo and cell culture protocols for differentiating precursor cells into osteoclasts in vitro as a method to study the effects of cytokines on osteoclastogenesis are described.

小説<em&gt; in vivoで</em&gt;遺伝子導入技術と<em&gt; in vitroで</em筋骨格障害における骨損失の検討のための&gt;細胞ベースのアッセイ

Differentiation and activation of osteoclasts play a key role in the development of musculoskeletal diseases as these cells are primarily involved in bone ...

Semiautomated Longitudinal Microcomputed Tomography-based Quantitative Structural Analysis of a Nude Rat Osteoporosis-related Vertebral Fracture Model

Osteoporosis-related vertebral compression fractures (OVCFs) are a common and clinically unmet need with increasing prevalence as the world population ages. Animal OVCF models are essential to the preclinical development of translational tissue engineering strategies. While a number of models currently exist, this protocol describes an optimized method for inducing multiple highly reproducible vertebral defects in a single nude rat. A novel longitudinal semiautomated microcomputed tomography (&#181;CT)-based quantitative structural analysis of the vertebral defects is also detailed. Briefly, rats were imaged at multiple time points post-op. The day 1 scan was reoriented to a standard position, and a standard volume of interest was defined. Subsequent &#181;CT scans of each rat were automatically registered to the day 1 scan so the same volume of interest was then analyzed to assess for new bone formation. This versatile approach can be adapted to a variety of other models where longitudinal imaging-based analysis could benefit from precise 3D semiautomated alignment. Taken together, this protocol describes a readily quantifiable and easily reproducible system for osteoporosis and bone research. The suggested protocol takes 4 months to induce osteoporosis in nude ovariectomized rats and between 2.7 and 4 h to generate, image, and analyze two vertebral defects, depending on tissue size and equipment.

The goal of this protocol is to generate a nude rat osteoporosis-related vertebral compression fracture model that can be longitudinally evaluated in vivo using a semiautomated microcomputed tomography-based quantitative structural analysis.

半自動縦マイクロ トモグラフィーを用いた定量的モデルの構造解析、裸ラット骨粗鬆症による椎体骨折

Osteoporosis-related vertebral compression fractures (OVCFs) are a common and clinically unmet need with increasing prevalence as the world population ...

Using Alizarin Red Staining to Detect Chemically Induced Bone Loss in Zebrafish Larvae

Chemically induced bone loss due to lead (Pb) exposure could trigger an array of adverse impacts on both human and animal skeletal systems. However, the specific effects and mechanisms in zebrafish remain unclear. Alizarin red has a high affinity for calcium ions and can help visualize the bone and illustrate skeletal mineral mass. In this study, we aimed to detect lead acetate (PbAc)-induced bone loss in zebrafish larvae by using alizarin red staining. Zebrafish embryos were treated with a series of PbAc concentrations (0, 5, 10, 20 mg/L) between 2 and 120 h post fertilization. Whole-mount skeletal staining was conducted on larvae at 9 days post fertilization, and the total stained area was quantified using ImageJ software. The results indicated that the mineralized tissues were stained in red, and the stained area decreased significantly in the PbAc-exposure group, with a dose-dependent change in bone mineralization. This paper presents a staining protocol for investigating skeletal changes in PbAc-induced bone defects. The method can also be used in zebrafish larvae for the detection of bone loss induced by other chemicals.

Here, we have used alizarin red staining to show that lead acetate exposure causes a bone mass change in zebrafish larvae. This staining method can be adapted to the investigation of bone loss in zebrafish larvae loss induced by other hazardous toxicants.

アリザリンレッド染色を使用してゼブラフィッシュ幼虫の化学的に誘発された骨量減少を検出

Chemically induced bone loss due to lead (Pb) exposure could trigger an array of adverse impacts on both human and animal skeletal systems. However, the ...

<meta charset="utf8"></head><body>ゼブラフィッシュ幼生の骨再生を研究するためのレーザーアブレーション法

Two-Photon Laser-Mediated Ablation of Osteoblasts in Developing Zebrafish Larvae

Zebrafish (Danio rerio) have an outstanding capacity to regenerate different organs and appendages. Bone regeneration in zebrafish has been studied using different methods such as fin amputation, scale plucking, skull trepanation, and microscopic approaches. Using a confocal laser scanning setup equipped with a two-photon laser, a laser ablation method was developed as a lesion paradigm to ablate bone-forming cells (osteoblasts) in the developing opercle of zebrafish larvae. The method described here allows the ablation of cells in a precise manner, as the area, shape, and depth can be finely adjusted. In addition, this method allows imaging of the area before and just after the ablation, so that short-term effects of the injury can be analyzed. In this experimental setup, the immune response after ablation of osteoblasts in the injured area was studied. An increase in the recruitment of macrophages was observed after ablation, indicating the relevance of their presence during bone regeneration.

<meta charset="utf8"></head><body>著者スポットライト:免疫介在性骨再生 — 修復プロセスにおけるマクロファージと制御された免疫調節の重要な役割

This protocol describes a two-photon laser ablation approach carried out in zebrafish larvae, which serves as a model to study bone regeneration and the effects of the immune response to ablation.

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

Zebrafish (Danio rerio) have an outstanding capacity to regenerate different organs and appendages. Bone regeneration in zebrafish has been studied using ...

薬物治療と

要約

さらに動画を探す

顕微鏡骨転移の効率的かつ選択的モデリングのためのイントラ腸骨動脈注入

骨組織の再生にプレドニゾロンの効果を研究する大人のゼブラフィッシュ傷害モデル

シーケンシャル

コンピュータ断層撮影法と頭蓋骨自家移植と同種移植片の統合を評価するために、骨形成、血管新生のカップリングの光イメージング

小説

半自動縦マイクロトモグラフィーを用いた定量的モデルの構造解析、裸ラット骨粗鬆症による椎体骨折

アリザリンレッド染色を使用してゼブラフィッシュ幼虫の化学的に誘発された骨量減少を検出

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

薬物治療と

要約

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顕微鏡骨転移の効率的かつ選択的モデリングのためのイントラ腸骨動脈注入

骨組織の再生にプレドニゾロンの効果を研究する大人のゼブラフィッシュ傷害モデル

シーケンシャル

コンピュータ断層撮影法と頭蓋骨自家移植と同種移植片の統合を評価するために、骨形成、血管新生のカップリングの光イメージング

小説

半自動縦マイクロ トモグラフィーを用いた定量的モデルの構造解析、裸ラット骨粗鬆症による椎体骨折

アリザリンレッド染色を使用してゼブラフィッシュ幼虫の化学的に誘発された骨量減少を検出

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

ゼブラフィッシュ幼生の発育中の骨芽細胞の2光子レーザー媒介アブレーション

半自動縦マイクロトモグラフィーを用いた定量的モデルの構造解析、裸ラット骨粗鬆症による椎体骨折