Method Article
Detailed instructions are provided on how to train rats to voluntarily dive underwater through a 5 m long Plexiglas maze. Because the brains of rats have been very well characterized, voluntarily diving rats may help elucidate the central pathways of the mammalian diving response.
Underwater submergence produces autonomic changes that are observed in virtually all diving animals. This reflexly-induced response consists of apnea, a parasympathetically-induced bradycardia and a sympathetically-induced alteration of vascular resistance that maintains blood flow to the heart, brain and exercising muscles. While many of the metabolic and cardiorespiratory aspects of the diving response have been studied in marine animals, investigations of the central integrative aspects of this brainstem reflex have been relatively lacking. Because the physiology and neuroanatomy of the rat are well characterized, the rat can be used to help ascertain the central pathways of the mammalian diving response. Detailed instructions are provided on how to train rats to swim and voluntarily dive underwater through a 5 m long Plexiglas maze. Considerations regarding tank design and procedure room requirements are also given. The behavioral training is conducted in such a way as to reduce the stressfulness that could otherwise be associated with forced underwater submergence, thus minimizing activation of central stress pathways. The training procedures are not technically difficult, but they can be time-consuming. Since behavioral training of animals can only provide a model to be used with other experimental techniques, examples of how voluntarily diving rats have been used in conjunction with other physiological and neuroanatomical research techniques, and how the basic training procedures may need to be modified to accommodate these techniques, are also provided. These experiments show that voluntarily diving rats exhibit the same cardiorespiratory changes typically seen in other diving animals. The ease with which rats can be trained to voluntarily dive underwater, and the already available data from rats collected in other neurophysiological studies, makes voluntarily diving rats a good behavioral model to be used in studies investigating the central aspects of the mammalian diving response.
The diving response consists of a suite of autonomic reflexes seen in animals of all vertebrate classes 1. In response to submersion under water, this reflexly-induced response consists of apnea, bradycardia and an alteration of blood flow that maintains flow to the heart, brain and exercising muscles while limiting flow to viscera and non-exercising muscles 2. Many of the metabolic and cardiorespiratory aspects of the mammalian diving response have been well investigated 2,3, including those in humans 4,5. However, what has been relatively lacking, until recently, is investigation of the central integrative aspects of the diving response. What happens within the brainstem, and what is the neuronal step-by-step pathway, that connects afferent inputs to efferent outputs during this autonomic reflex? Answering these questions will require an appropriate animal model 6. An adage in comparative physiology, the Krogh principle 7, is that for every research question there is some animal of choice on which the problem can be most conveniently studied. A most appropriate animal for studying the central aspects of the diving response is the rat 6,8. In large part this is due to the fact that the brains of rats have been very well characterized, both anatomically and functionally, and many rat brain atlases are available 6. Additionally the rat is particularly useful in cardiorespiratory research, because the physiology of the rat is well known across all major organ systems, and the rat is well regarded as an animal model in systems biology 6. Finally, the laboratory rat is the domesticated version of the wild Rattus norvegicus, an animal that routinely swims and dives underwater 6. Based on these considerations, the rat is a good choice for studies investigating the central aspects of the mammalian diving response. In comparison, using marine animals to investigate the central aspects of the mammalian diving response would be much more difficult. This is due in large part to marine animals having comparatively large and non-uniformly sized brains, and the relative difficulty and high cost of housing these animals.
Rats have previously been used to investigate many aspects of the mammalian diving response, primarily in situations involving forced underwater submergence 9-12. However many studies in marine and aquatic animals have shown that there can be a differential response to diving based upon whether the submergence was forced or voluntary 2,13. Diving animals may show an extremely intense bradycardia during forced diving but a much less intense bradycardia during voluntary diving. The “stress” of forced submergence can significantly change the cardiovascular responses of diving in many animals 14. Small rodents such as muskrats also show a more intense diving response during forced submergence than during voluntary diving 15,16. Thus, if rats are to be used to investigate the central aspects of the mammalian diving response, investigators should be aware that a rat forcibly submerged underwater may produce a response different from that of a voluntarily diving rat.
The goal of this article is to provide detailed instructions on how to train rats to voluntarily dive underwater. These procedures are not technically difficult, but can be time-consuming. The training is conducted in such a way as to reduce the stressfulness that could otherwise be associated with forced underwater submergence. This voluntary diving technique should minimize activation of central stress pathways and thus better allow investigation of the central aspects of the diving response. By itself, training rats to voluntarily dive underwater generates no data that can be used to investigate the central aspects of the mammalian diving response. Therefore examples of how voluntarily diving rats have been used in conjunction with other physiological and neuroanatomical research techniques, and how the basic dive training may need to be modified to accommodate theses other techniques, are also provided.
注:中西部の大学で行われ、本明細書に記載の実験プロトコールは、中西部の大学IACUCによって承認された。
1.ルームの要件
2.ダイビングタンク
3.ラットアレルゲンの検討事項
4.スイムトレーニング
5.ダイブトレーニング
注:ラットが正常に迷路を通して水泳を交渉することを学んだ後、彼らはダイビングの訓練を開始する準備が整いました。
6.実験的変奏曲
注:基本的な実験設定および動物の訓練は上記に記載されている。しかし、行動訓練のみPR関心のあるデータを収集するために、他の実験技術で使用されるモデルをovides。基本的なプロトコルは、ダイビング応答の特定の側面を調査するために修正される。これらの修飾の例には、これらの生理学的および神経解剖学的技術を使用してデータを収集するためのいくつかの考慮事項は、以下の通りである。
記載さ水泳やダイビングの訓練手続きが正常に完了し、水の下で時潜水ラットが経験したストレスを減らすことができます。血中コルチコステロンレベルは、反復的な毎日のトレーニングが自主的なダイビングに関連付けられているstressfulnessを減少させることを示しており、訓練を受けたラットは、ヒト( 図2; 17)で毎日処理されているよりも、ダイビングにはよりストレス見当たらない。逆に、ダイビングプロトコルで訓練を受けていないラットは自発的なダイビングストレスの多い( 図2; 17)を見つける。さらに、両方の訓練を受け、訓練を受けていないラットは最もストレスの多い(; 17 図2)に強制ダイビングを見つける。
と末尾のカニューレ( 図4; 21-23);水泳、自主的なダイビング、強制ダイビングラットから心臓血管の応答は、注入された遠隔測定デバイス(8,17-20 図3)を用いて記録されています。すぐに自主的な時に水没し、単一のビート内、心拍数が減少することにより78%および25%の17で動脈血圧が低下することを意味する。これらの結果は、自主的にダイビングラットは通常、他のダイビングの動物で見られる同じ心肺変化を示すことを示している。および自主潜水中の脳血流23を含む心拍出量22の分布を決定するために、後続の動脈カニューレは、自発的なダイビング(21、図4)に関連付けられた徐脈を排除ムスカリン拮抗薬アトロピンを注入するために使用されてきた。後続カニューレはまた、ラットは、それらが18を沈めている間に動脈低酸素血症、および高炭酸ガスを増加し、既存の化学受容ドライブが自主ダイビング21へ循環応答に影響を及ぼさないことを無視するを示すために使用されてきた。
ラミナIおよび腹側延髄後角(MDH)のII内のニューロンのFosドゥリンを表明gの自発的なダイビング、これらのニューロンは、ダイビング応答(; 24、図5)の初期脳幹求心リレーを構成することができる。そのような尾昇圧エリア(CPA)などの重要な脳幹心肺制御領域は、核強力に発現solitaries(NTS)、吻側腹外側延髄(RVLM)、およびperibrachialの領域は、すべてのショーは水泳25と比較して自主的な潜水中のFosラベリングを増加させた。長い期間がダイブ18を強制した後に脳幹の化学感受性の領域におけるニューロンはフォスを発現する。
図1:ダイビングタンクの概略 Aプレキシグラスタンク(100×60×15 cm)を5 1メートル長いチャンネルで構成される単純な迷路を作成するために使用された。タンクを30℃の水道水を充填し、そしてラットを最初にnegotiatに訓練された電子スタートエリア(左上)からフィニッシュエリア(右下)に、水面に泳ぐことによって迷路。ラットはその後迷路を潜るように訓練された、2〜3センチメートル水面下に置かれ、水平プレキシグラス片によって水中に保つ。 [この図は、26から変更されている]
図2:コルチコステロンの測定 。血液は、ラット尾静脈がそれらのケージに残っラットから(平均±SE)(ナイーブ)のコルチコステロン濃度を測定するために使用された、10分/日のために処理したラットは、(取扱)から描き泳ぐとダイビング(トレーニングを受けた)ように訓練したラット、およびラットそれは水泳やダイビングのトレーニング(訓練を受けていない)を受信していない。訓練されたラットは彼らの水泳トレーニング(バーの左セット)を完了した後にコルチコステロンを測定し、後に訓練されたラットは、彼らの自主的なdiv要素を完了した電子トレーニング(バーのセンター集合)、および訓練されたラットは彼らの強制ダイブトレーニング(バーの右のセット)を完了した後。図1は、値がナイーブよりも有意に大きいことを示します。 2値が処理さよりも有意に大きいことを示します。図3は、値が訓練されたよりも有意に大きいことを示している。 *訓練を受けたラットにおいて、強制的に潜水時の値は自主的なダイビング時よりも有意に大きいことを示しています。 [この図は、17から変更されている]
図3:遠隔測定送信機からの動脈血圧トレース水泳中の拍動性の動脈血圧(左の列)を示す生データトレース、自主的なダイビング(中央の列)と、迷路を泳ぐように訓練したラットやダイビングからダイビング(右列)を余儀なくされた。 TRAIがなかったラットから(下の行)と寧手順(上列)。水面に泳ぐことはそのような心血管系の変化を生じなかったのに対し、ダイビング水中(自発的および強制的な水没の両方)は、即時の徐脈および動脈圧の遅い発症増加をもたらした。トレースの下のバーは、水没の期間を示している。トレース内の改行は遠隔測定信号が失われた期間を示している。 [この図は、17から変更されている]
図4:アトロピンダイビング徐脈を排除します 。アトロピン前処理後の拍動性動脈血の前に自発的にダイビングラット(A)の圧力及び(B)のオリジナル音源。トレースは、後続の動脈カニューレを用いて得た。アトロピン前処置の前に、動脈圧が水没時に若干減少したが、T鶏は、ダイビングの残りのためのプレダイブより大きく増加しました。心拍数は、隣接する脈圧間隔から決定した。水没時にはダイビングの期間持続した即時かつ実質的な徐脈があった。アトロピンの前処理による副交感神経遮断後の徐脈を除去した。潜水中の動脈圧の上昇があった。トレースの下のバーは、水没の期間を示している。 [マカロック、未発表]
図5:MDH内のFosラベリング。水中潜るように訓練したラットにおける三叉延髄後角(MDH)および脊髄三叉管(SP5)の顕微鏡写真。繰り返しなしのFosラベリングがないダイビングしなかった対照ラットでは、(A)(B)水泳ラットにおいて非常に点灯があるSP5内のFos MDH(大矢印)でラベルまたはparatrigeminal核(小さ な矢印)TLE。(C)のダイビングラットに比べてMDH(大矢印)とparatrigeminal核(小さ な矢印)の両方で腹ラベリングよりフォスがある水泳とコントロールラット。パネル(A)に挿入し、パネルのACの吻側 - 尾側の位置を示しています。パネルC中のスケールバーは100μmである。 [この図は、24から変更されている]
図6:ダイビングラットから活性化カテコールアミンニューロン。顕微鏡写真は非潜水対照ラット(A、C、およびE)と自発的にダイビングラット(B、D、およびF)のmedullasを示す。脳組織を免疫組織学的に両方のFosのANのために処理したdはチロシンヒドロキシラーゼ(TH)、ブラウンTHの細胞体および黒Fosの核を生成する。実線の矢印はFosのTH +二重標識されたニューロンを識別しながら、開いた矢印は、単一の標識されたTH陽性ニューロン識別する。 A1のニューロンAおよびB C1ニューロンにおいて同定されるがCで識別され、D. A5ニューロンは、EおよびFよりFosおよびA1、C1に見られる二重標識THにおいて同定されており、ダイビングラット以外のA5領域非ダイビング対照ラットで。 Eキャリブレーションバーは、パネルAF用であり、250μmである。 Fの挿入図でキャリブレーションバーは、すべてのインセットのためであり、50μmである。 [この図は、26から変更されている]
食品6のために採餌しながら、彼らの野生の形でラットは、缶と半水生環境を活用行い、そして意志しばしばダイビング水中。したがって、ラットは非常に簡単に自発的に水中ダイビングを訓練することができることにも驚くべきことではない。記載されたトレーニングの手順は、ほとんどの成体ラット脳アトラス(〜300グラム)で使用されるボディサイズに、新たに離乳したラットをもたらすであろう、6週まで続くことがある。したがって、これらの訓練された動物からの脳はより容易に匹敵するこれらのアトラス内で識別解剖学的構造になります。
スタートエリアに配置された後、ほとんどのラットは、20秒以内に水中水泳を開始します。しかし、時折、ラットは、その自主的なダイビングを開始する前に、5分以上かかります。それは水中トンネル内にラットを強制的に、この段階では魅力的かもしれないが、これは一般的に負の経験を持つ水を関連付けるからラットを防止するために避けるべきである。げっ歯類は頑固月のiniti可能味方トレーニングセッション中に潜ることを拒否するが、彼らは水を終了する唯一の方法は迷路ダイブを完了することによってであると認識すると、それらは通常、すぐにスタートエリアに配置された後、彼らのダイブを開始する。
繰り返しと系統的トレーニング手順の重要な側面は、それらがラットによって経験される応力を低減するような方法で行われることである。ラットは、特に試験の間に仕上げエリアにいる間、自分の環境を探索させること、さらにストレスを減らすように思われる。ラットは、多くの場合、泳ぐために水を再入力、および/または、まだフィニッシュエリアプラットフォームの上に座っている間に頭の水中に沈めます。これはラットが、本質的に水嫌悪ではないことを示唆している。さらに、ラットは水泳やダイビング、または少ない糞17でフィニッシュエリアで待機して、日々のトレーニング結果の間に糞便ペレットを製造することは珍しいことではありませんしながら。一般的には少ないが、ラットが訓練中であると強調し、より少ないPEllets彼らが生成されます。作成した任意の糞は、比較的きれいな水を保つために、できるだけ早く水またはフィニッシュエリアから削除されます。
ラットは時折流血の鼻を得ることができ、鼻の通路への水のガス注入の結果である可能性があり、スイミングやダイビング、しばらく。血液の出現は、鼻粘膜内の浸透ストレスに起因し得る。裁判の間にフィニッシュエリア内ながらラットは自分自身をグルーミングします。鼻から結果の血液などのトレーニングセッションの過程で、特に目の周り、ラットにわずかに赤みを帯びた色合いを与え、ラットの頭と鼻の上に再配布得ることができます。また、時折ラットはストレスの多いダイビング見つけおよび/ または((5.4.3の後の注を参照。これを防ぐ方法について)振り向くとダイビング水中ながら迷子によってすなわち、)負のダイビング経験を持っている場合があります。これらのラットではポルフィリンは、ストレスRESPONSシグナリング、彼らの目の隅に表示される場合があります電子メール。
ダイビングタンクの大きさがある程度部屋の要件を決定する。記載されタンクはラットが5メートル長いプレキシグラスを通じて水面下で2〜3センチ泳ぐように設計されている10〜15秒17,19,24,26,27の水中遊泳期間を与えるために迷路。実験は、長い期間ダイブからの応答を測定するように設計されるべきである、または水中深くダイビングから、タンクは再設計する必要があるかもしれません。部屋要件は、その後も再設計されたダイビングタンクの寸法に合わせて変更することができます。手術室で利用可能な床ドレンがない場合、タンクからの水は、その後、従来の方法で他の場所に空にすることができる60ガロンゴミ缶のような大きな容器に収集することができる。
Fosの技術はさらにダイビング応答の脳幹回路の一部である神経細胞を同定し、特徴付けるために、他のニューロンの検出方法を利用することができる。例えば、自発的中に活性化された横方向A7領域26,27内に、およびグロボーサニューロン;チロシンヒドロキシラーゼ染色と併せてFosの検出は、A1、C1、A2、A5及びサブ青斑核領域(26、図6)におけるカテコールアミン作動性ニューロンを同定したダイビング。また、逆行性トレーサーコレラ毒素と一緒にFosの検出は、自主的なダイビング20の間に活性化されている疑核の外部形成以内に心臓迷走神経運動ニューロンの細胞体を同定した。
ダイビングの呼吸循環応答の中枢神経統合を調査するとの理由6,8,28の数のために重要である。ダイビング応答が長時間呼吸することなく水没水中を維持する、ヒトを含む動物を可能にします。ダイビング応答は脳幹恒常性制御の機能的再編成を示し、最も強力なPAの一つを示している動物で観察自律神経反射のtterns。ダイビング応答は三叉神経、心臓反射、咽頭反射、および/または、乳幼児突然死症候群の一部として、ヒトにおける臨床的に重要であり得る。最後に、ラットの脳幹内に存在する神経回路を理解することは、求心性の信号は、基本的な脳幹自律神経反射を変更する方法皮質判断するのに役立ちます。これらの考慮事項のすべては、本質的に価値のある興味深い哺乳類ダイビング応答の中心的な側面の研究を行う。記載されている手順を使用すると、自発的に水中強制潜っ動物の使用意志よりも哺乳類の潜水応答の中心的な態様のより良い調査が可能になりますダイビングをラットを訓練する。記載1のように、トレーニング手順は)CNSストレス回路の活性化を低減し、外部の報酬が使用されないため、2)CNSの報酬回路を活性化しないためである。
著者はStoelting社のコンサルタントであり、商業的目的のためにそれらにマカロックダイブタンク迷路の全体的なデザインと仕様を提供しました。
研究は研究スポンサープログラムの中西部大学事務所からの資金によってサポートされています。また、中西部の大学動物施設とエリック·ウォーレンに感謝します。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
McCulloch Diving Tank Maze | Stoelting Company | 60139 | |
1 inch internal diameter tubing | Fisher | 14-169-63 | Used to fill or drain tank |
Plexiglas rodent restraint device (Economy flat bottomed restrainer) | Braintree | FB-M/L | For forced dives |
Telemetric transmitters | DSI | Model PA-C40 (270-0040-008) | Used to transmit pulsatile arterial blood pressure |
Hand-held antenna wand | DSI | Model RLA 3000 (272-5007) | Used to ensure radio antenna is near to transmitter while rat is negotiating underwater maze |
Intramedic PE50, 0.023" ID | Fisher | 14-170-12B | Used as trailing arterial cannula |
N95 mask - Moldex #2300N Series | Fisher | 19-003-246D | Used to limit inhalation of rat allergens |
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