La cornée micropoche test: Un modèle de l'angiogenèse dans l'oeil de la souris

Le protocole décrit l'essai de micropoche de la cornée tel que développé chez la souris.

L'essai de micropoche de la cornée de la souris est un test robuste et quantitative in vivo pour l'évaluation de l'angiogenèse. En utilisant des pastilles standardisés à libération lente contenant des facteurs de croissance spécifiques qui déclenchent la croissance des vaisseaux sanguins tout au long de la cornée naturelle avasculaire, l'angiogenèse peut être mesurée et quantifiée. Dans cet essai, la réponse angiogénique est généré au cours de plusieurs jours, selon le type et la dose de facteurs de croissance utilisé. L'induction de la néovascularisation est généralement déclenchée soit par le facteur de croissance basique des fibroblastes (bFGF) ou un facteur de croissance endothélial vasculaire (VEGF). La combinaison de ces facteurs de croissance avec le sucralfate et hydron (poly-HEMA (poly (méthacrylate de 2-hydroxyéthyle))) et couler le mélange en pastilles, ils peuvent être implantés chirurgicalement dans l'oeil de la souris. Ces pastilles uniformes libèrent lentement les facteurs de croissance au cours de cinq ou six jours (bFGF ou VEGF respectivement) permettant réponse angiogénique suffisant requis pour la zone de la cuve qUANTIFICATION en utilisant une lampe à fente. Ce dosage peut être utilisé pour différentes applications, y compris l'évaluation de médicaments modulateurs angiogéniques ou des traitements, ainsi que la comparaison entre les différents fonds génétiques qui affectent l'angiogénèse. Un enquêteur qualifié après avoir pratiqué ce test peut implanter une pastille en moins de 5 minutes par œil.

Le processus de l'angiogenèse, la formation de nouveaux vaisseaux sanguins se forment des préexistants, est très complexe et est régulée par plusieurs facteurs endogènes qui contrôlent les différentes étapes de la germination et de la morphogenèse de la cuve. L'angiogenèse est déclenchée en raison d'un changement dans l'équilibre entre les facteurs pro et anti-angiogéniques, un équilibre qui maintient normalement le système vasculaire dans un état de repos. L'angiogenèse se produit chez l'adulte dans certaines conditions physiologiques, tels que au cours du cycle ovarien femelle ou dans les processus de réparation tels que la cicatrisation des plaies et la régénération des tissus. Cependant, il est également une caractéristique de nombreuses pathologies, notamment les tumeurs malignes, les conditions auto-immunes et des maladies inflammatoires. L'implication de l'angiogenèse dans les conditions physiologiques et pathologiques, il est un important sujet de recherche et une cible intéressante pour une thérapie.

En raison de la complexité de l'angiogenèse et de l'implication de plusieurs CElls et les facteurs dans le processus, y compris les cellules endothéliales, les péricytes, cellules circulantes et les cellules stromales, des modèles in vitro restent limitées et ne peuvent pas récapituler le microenvironnement in vivo unique. Le principal des essais in vitro de l'angiogenèse sont en grande partie axées sur l'observation des effets directs sur les cellules endothéliales et de mesurer certaines étapes du processus angiogénique dans des conditions contrôlées. Ces analyses comprennent la quantification des cellules endothéliales prolifération ^une migration ^2, la formation du réseau ^3, formation du tube ⁴ et la germination de sphéroïdes ^5. Modèles ex vivo, contrairement à celles in vitro, sont plus complexes et intégrer de multiples types de cellules des tissus, un exemple étant le test de l'anneau aortique ^6. Néanmoins, comme d'autres systèmes, on ne peut pas capturer la contribution de cellules circulantes du stroma et des cellules endothéliales naturel que celui qui existe in vivo. Tentativespour étudier l'angiogenèse sous flux d'imiter la mise en vivo sont réalisés en utilisant des systèmes microfluidiques ^7, mais même ces tests, bien que beaucoup sont améliorées, sont encore incapables de rendre compte de tous les compartiments existants in vivo.

En raison des limitations de l'in vitro et ex vivo de l'angiogenèse des modèles, des modèles in vivo restent les plus fiables de choix pour l'étude de l'angiogenèse. Des exemples de ces modèles comprennent l'implantation des chambres transparentes, des «fenêtres», qui permettent la visualisation des vaisseaux sanguins en croissance sous microscope ^8, implants sous-cutanés injectables tels que matrigel et récipient formation dans les tissus normaux tels que l'oreille de la souris et la membrane chorio-allantoïde de poulet (CAM ). Cependant, l'un des modèles les plus acceptables et quantitatives in vivo l'angiogenèse est l'essai de micropoche de néovascularisation de la cornée est décrit ici, qui exploite le naturellement avasculairecornée comme un «écran» de visualiser et d'évaluer une nouvelle croissance angiogénique ^9.

Nous décrivons ici le test de micropoche cornéen développé chez la souris. Initialement, le modèle a été utilisé pour mesurer des stimuli angiogéniques non spécifiques dans les cornées de lapin. Cela a été fait par introduction des morceaux de tumeur dans l'humeur aqueuse de la chambre antérieure de l'œil de lapin et de mesurer la néovascularisation induite par une tumeur ^11.

Cependant, l'essai a été plus tard évolué pour étudier les effets de croissance spécifique des facteurs ¹⁰ de mieux préciser et normaliser l'effet angiogénique. Afin de libérer le facteur de croissance de l'œil, des granulés à libération lente contenant des quantités connues de facteurs de croissance angiogéniques ont été utilisés à la place des tissus. La disponibilité de protéines angiogéniques recombinants purifiés tels que bFGF ou VEGF a permis leur utilisation comme objectifs spécifiques de modulaters de l'angiogenèse ^12. Dans un premier temps, le dosage étaitlargement utilisé chez les lapins, qui sont plus faciles à travailler en raison de leur taille, mais plus tard, le modèle a été traduit dans des souris; un modèle animal plus petit et moins coûteux. Le passage de lapin à la souris fournit un avantage important d'être en mesure d'utiliser des animaux génétiquement modifiés, créant ainsi un nouveau domaine de recherche sur les composantes génétiques qui influent angiogenèse ^13. En plus de l'utilisation plus acceptable de dosage de cornée dans l'étude de l'angiogenèse, d'autres processus biologiques peuvent également être étudiées en utilisant des tests modifiés. Par exemple, des études de la lymphangiogenèse ont été rendues possibles grâce à l'implantation de pastilles à faible dose bFGF qui a permis la visualisation des vaisseaux lymphatiques par marqueurs moléculaires spécifiques ^14. En outre, cet essai a fourni un moyen pour évaluer les effets du rayonnement sur ​​l'angiogenèse ^15.

En résumé, l'analyse de l'angiogenèse de la cornée micropoche est une quantitative, représentantroducible, évaluation souple de l'angiogenèse in vivo. Un avantage majeur de cette analyse est que le jaugeage des bateaux de fond n'est pas nécessaire parce que les vaisseaux se développent sur un tissu naturellement avasculaire. Nous décrivons ici le protocole de cet essai dans les détails et discuter de différents scénarios qui peuvent se produire. Le test se compose de 3 segments distincts. Ici, nous allons décrire la préparation de pastilles de facteur compris la croissance, l'implantation chirurgicale ultérieure, et finalement la méthode utilisée pour quantifier la croissance néovasculaire résultant.

Tous les protocoles impliquant des animaux sont présentés et approuvés par le Comité de protection des animaux dans les institutions et l'utilisation de l'Hôpital pour enfants de Boston et sont menées en conformité avec les recommandations de l'Association pour l'évaluation et l'accréditation des laboratoires de protection des animaux (AAALAC). Veillez à utiliser des instruments stériles et techniqure aseptique lors de l'exécution de la procédure.

1 Préparation de Pellets

1. Peser 10 mg de sucralfate et 60 mg de hydron avec la spatule déplié stérile. Placez-les dans des microtubes séparés.
2. Placez un carré de 1 cm de maille dans une boîte de 10 cm stérile. Inverser si maillage repose sur le couvercle peu profond. Mettez de côté.
3. Ajouter 500 pi d'éthanol à la hydron et vortex pendant au moins 10 min.
4. Ajouter la quantité appropriée du facteur de croissance (standard: 20 pg de bFGF, 50 pg de VEGF) au sucralfate et vortex brièvement. facteur de croissance de magasin dans unCongélateur -80 ° C à une concentration de 1 mg / ml. Volumes ajoutés liquides doivent avoir un minimum de 20 pi pour assurer le sucralfate est complètement imbibé, mais ne doivent pas dépasser 50 pi. Plus grand volume rend l'évaporation du liquide dans l'étape suivante difficile.
5. Placer le mélange de sucralfate dans l'évaporateur centrifuge attachée bas jusqu'à ce que le mélange soit complètement sec, normalement 30-50 min en fonction du volume de liquide utilisé.
   1. Vérifier le mélange de l'humidité résiduelle avec l'extrémité conique d'une spatule stérile. Le mélange doit se sentir "croquant".
6. Utiliser l'extrémité effilée de la spatule pour disperser le mélange de sucralfate dans le tube.
7. Ajouter 10 ul de la hydron au sucralfate.
   1. En raison de la nature visqueuse de hydron, couper l'extrémité d'une pointe de pipette 200 pi, puis tirer et libérer les 10 pi avant pipetage à nouveau et ajouter à sucralfate.
8. Utiliser rapidement naissain pliéula de mélanger la hydron et sucralfate et de retirer de tube.
   1. Recueillir le mélange le long du côté inférieur de la pointe de la spatule et ensuite pliée faire tourner le tube en tirant sur la spatule le long de la paroi du tube. Le mélange va sécher rapidement si cette étape doit être fait efficacement.
9. Étendre le mélange sur le maillage préparé en utilisant une pince pour le maintenir en place. Le mélange doit être une couche régulière et introduire dans les trous de la maille.
10. Plonger la spatule coudée dans le tube contenant hydron et utiliser l'enrober de la maille.
11. Placez la maille enduit se penchant sur le côté contre le bord du plat et laisser sécher à température ambiante pendant 30-45 min.
12. Placer la grille dans -20 ° C congélateur ou procéder immédiatement à l'étape suivante. Gardez maillage à l'intérieur plat.
13. Placez la boîte de 35 mm à l'intérieur de la boîte de Pétri plus grande, couvercle. Utilisez la pince pour tirer délicatement les fibres du maillage à part sur la boîte de 35 mm. Granulés errants cun être collectées à partir de la plus grande plat à la fin.
    1. Vérifiez pastilles d'uniformité dans la portée. Le procédé permet d'obtenir environ 250 pastilles ainsi la dose standard par pastille pour bFGF et VEGF est de 80 ng et 200 ng, respectivement.
14. Rangez les granules en boîte de 35 mm à -20 ° C congélateur jusqu'à 3 mois.

2. implantation chirurgicale de Pellets

1. Mettre en place une zone chirurgicale sous microscope opératoire.
2. Anesthésier la souris avec Avertin (400-500 mg / kg, par voie intrapéritonéale) et placez la souris au microscope afin œil est visible. Effectuer pincement de l'orteil pour assurer un niveau suffisant de l'anesthésie.
3. Anesthésier l'oeil de la souris en plaçant une goutte de solution de proparacaïne sommet globe oculaire. Attendez 20-30 secondes et tamponner avec un tampon de gaze.
4. Proptose l'œil de la souris avec le # 1 émoussé bijoutiers forceps étant certain de laisser la peau entre les pinces et les yeux. Il est important d'évaluer la pression appliquée correctement.60; Tenir l'œil trop fermement va l'amener à devenir rouge et irritée, mais trop de laxisme attente permettra œil de se déplacer pendant la chirurgie.
5. Utilisez le 30 ° microknife de faire une incision dans la cornée environ 1 mm du limbe. L'incision doit être de 1 à 2 mm de longueur. L'incision doit être suffisamment profond pour pénétrer au-delà de la couche épithéliale dans midstroma mais pas si profonde à la rupture de l'oeil.
6. Utilisez le couteau von Graef à faire une poche perpendiculaire à l'incision.
   1. Faites glisser le couteau sous la couche cornée au site d'incision et de travailler en douceur couteau et de se déplacer le long de l'incision pour agrandir l'espace, formant ainsi la poche. Il permet de déplacer la souris ainsi être en mesure de travailler avec la courbure de l'œil. Attention à ne pas pousser vers le bas avec la pointe pour éviter une rupture de l'œil.
7. Mouiller les pinces de la n ° 5 bijoutier avec proparacaïne et prendre une pastille sortir du plat. Placez une pastille sur l'œil.
8. Humidifiez le couteau von Graef avec proparacaïne et transférer une partie de liquide sur culot de le faire caoutchouteuse et souple. Retirer l'excès d'humidité avec un tampon de gaze ou un coton-tige.
9. Insérez le culot dans la poche à l'aide du couteau von Graef à pousser à l'intérieur au-dessous de la couche cornée. Une fois que tout le culot est à l'intérieur, exécutez le côté plat du couteau von Graef sur site pour vérifier que la pastille est sécurisé.
10. Manteau de l'œil avec de l'huile triple antibiotique.
11. Retournez la souris et répétez la chirurgie de l'œil opposé.

3 Quantification de néovascularisation cornéenne.

Laissez les animaux de développer les navires sur une période de temps définie. Le jour de navire classement dépend de facteurs de croissance utilisé. Année bFGF au jour 5 et le VEGF faible à J6 Le jour de l'implantation est le jour 0.

1. Anesthésier la souris avec Avertin (400-500 mg / kg, par voie intrapéritonéale).
2. Utilisation du microscope à lampe à fente pour grading. On a un réticule oculaire, des lignes à l'intérieur de l'oculaire utilisé comme auxiliaire de mesure pour quantifier la longueur du bateau et de la distance autour de la circonférence de l'oeil que les récipients ont germé.
   1. Maintenez la souris en face de portée, en positionnant la souris afin œil est vu dans oculaire avec culot directement en avant. Stabiliser la tête entre le pouce et l'index pour une peau est serré sur le visage et les yeux légèrement proptosed.
3. Placer l'axe des y du réticule le long du navire juste au-dessous du limbe pastille. Mesurer la longueur des navires de branchement vers le haut vers pastilles. Noter cette mesure en dixièmes de millimètres et désigner la longueur de la cuve (VL) (Figure 1A).
4. Mettez la souris ou le réticule de sorte que la distance autour de l'œil que ces navires ont germé devient clair. Il est plus facile de penser à l'œil comme une horloge avec des intervalles de 1 à 12 Désigner ce numéro heure d'horloge (CH) (Figure 1B). Il peut s'agir d'un nombre ou de fractions de 0,25 (par exemple, 2, 2,25, 2,5 ou 2,75) ensemble. Remarque: CH est subjective. Par exemple, certains peuvent mesurer la distance autour de l'œil à tous les navires germées à partir du limbe tandis que d'autres peuvent arrêter la mesure à l'endroit où la longueur du navire est la moitié maximale. Le facteur important est d'être cohérent avec la façon dont on choisit de qualité.

Figure 1: Quantification de la néovascularisation de la cornée. (A) 80 ng bFGF culot implanté dans C57BL / 6J montrant la lampe à fente réticule orienté pour mesurer la longueur du navire. VL = 0,9 mm. (B) Même démontrant des yeux lampe à fente réticule rotation pour mesurer heure d'horloge. CH = 3,25. Calculé zone de la cuve = 1,84 mm ^2. Ces images ont été digitalement augmentée pour permettre l'ajout de schématique réticule. Cliquez ici pour agrandir l'image.

5. Calculez la surface de la cuve (VA) en utilisant la formule ci-dessous, qui est basé sur la zone d'un ovale (Note, il est utile de garder cela à l'esprit lors de la notation.) Express VA en millimètres carrés. La formule est la suivante:
   Navire de longueur x Horloge heure x 0,2 π = zone de navire

Des résultats typiques pour le bFGF et VEGF pastilles dans les basses angiogéniques C57BL / 6J normaux sont présentés dans la figure 2A et B, respectivement. Figure 2E montre la distribution normale de la surface de la cuve (VA) dans la / souche 6J C57BL avec des doses variables de ceux-ci la croissance facteurs. 80 pastilles de bFGF ng entraînent normalement dans un VA d'environ 2,0 mm ^2, si les valeurs dans une plage de 1,8-2,4 mm ² sont acceptables. 200 ng de VEGF granules provoquent typiquement une réponse de l'ordre de 0,7 mm ^2, avec une plage de valeurs acceptables de 0,6 à 0,9 mm ^2. Pour les expériences dans lesquelles un effet anti-angiogénique est suspectée, les zones des vaisseaux plus grands sont souhaitables pour être en mesure de visualiser une diminution. Figure 3 montre l'effet de la thalidomide anti-angiogénique sur la néovascularisation induite par le bFGF. Le traitement a abouti à 38% d'inhibition de la croissance des vaisseaux. Dans les expériences où une augmentation peutêtre prévu, il est préférable d'utiliser des doses plus faibles que le culot norme provoque une réponse maximale à proximité. Granulés, contenant 10-40 ng bFGF serait plus approprié (figure 2C).

Les souches connues pour avoir une forte réponse angiogénique à un facteur de croissance particulier peut avoir un VA plus de deux fois celle d'une souche typique bas-angiogénique. Figure 2D montre la réponse d'une souris 129S1 / SvImJ à une pastille de FGF 20 ng. A titre de comparaison, la même pastille de dosage est exposée dans un C57BL / 6J sur la figure 2C. Une table étendue détaillant le potentiel angiogénique de différentes souches à la fois par le bFGF et la néovascularisation induite par le VEGF a déjà été publié par notre laboratoire ^13.

Certaines souches ou des pigmentations peuvent présenter une croissance ou une fuite des vaisseaux de l'iris en réponse à une pastille. Cela peut se produire dans l'un ou les deux yeux d'une souris individuelle et peut ou peut ne pas être cohérente sur l'entire groupe dans lequel le dosage est effectué. Ce phénomène peut entraîner une rupture des vaisseaux sanguins de l'iris provoquant pour remplir la chambre antérieure (hyphéma). Hyphémas peut faire le classement néovascularisation de la cornée difficile, voire impossible. Figure 4 illustre une légère (4A) et sévère (4B) forme de cet événement.

Figure 2: Exemples d'induit facteur de croissance de néovascularisation de la cornée. (A) de 80 ng de bFGF pastille implantée dans un faible angiogénique souris C57BL / 6J, résultant dans une zone de la cuve égale à 2,0 mm ^2. Il est très courant pour cette dose pour provoquer des navires pour atteindre le culot et de grandir en elle. (B) de 20 ng de bFGF pastille implantée dans unC57BL / 6J souris, résultant dans une zone de la cuve égale à 1,04 mm ^2. (C) de 200 ng de VEGF pastille implantée dans une souris C57BL / 6J, résultant dans une zone de la cuve égale à 0,71 mm ^2. (D) 20 ng bFGF culot dans la souche angiogénique haute 129S1 / SvImJ. Par rapport à (C), également une pastille de FGF 20 ng, cette souche présente un potentiel angiogénique supérieure à deux fois celle de souris C57BL / 6J. (E) zone néovasculaire de la cornée (moyenne ± SD, n = 10) chez des souris C57BL / 6J induites par des doses croissantes de VEGF ou bFGF soit. Cliquez ici pour agrandir l'image.

Figure 3 Inhibition de nav induite par le bFGFla croissance el par agent anti-angiogénique. véhicule (A) Contrôle traité C57BL / 6J. L'implantation de 80 ng de bFGF culot résultant dans une zone de cuve de groupe égale à 2,0 mm ^2. (B) traitée souris thalidomide (200 mg / kg, par voie orale pendant 5 jours). Groupe zone de la cuve est égale à 1,25 mm ² et reflète la diminution de 38% de la croissance des vaisseaux. Cliquez ici pour agrandir l'image.

Figure 4 Croissance des hyphémas induite facteur-dans l'iris murins. (A) hyphéma doux dans une C57BL / 6J-TyrC-2J / J. Cette souche présente le même néovascularisation de la cornée que leurs homologues pigmentées mais il est plus prone Iris saignement. (B) Grand hyphéma échelle dans une souris 129P3 / J. L'œil entier a une teinte rougeâtre ainsi que de piscines plus marquées de sang près de fond de l'iris. Cliquez ici pour agrandir l'image.

Il ya plusieurs étapes critiques dans la réalisation d'une analyse de la cornée réussie. La première consiste à créer des pastilles uniformes susceptibles d'être implanté et en stimulant les vaisseaux. Les parties les plus importantes de la préparation de granulés sont 1) en utilisant le facteur de croissance sans support; 2) assurer un bon mélange de facteur de croissance avec le sucralfate et hydron et 3) le déplacement du mélange final rapidement mais avec précaution du tube Eppendorf à la maille où les granules sont jetés. Il est recommandé que les pastilles "factices" être apportées sans facteur de croissance de pratiquer la technique. Pellets doivent apparaissent en blanc et crayeux et être à peu près de forme carrée. Les granulés qui comprennent des zones claires devraient être exclus de ces zones contiennent probablement que hydron. Il convient également de noter que les pastilles sont formées avec de l'éthanol et que le bFGF et le VEGF sont stabilisés par l'inclusion de sucralfate, qui imite la liaison de l'héparine. Sucralfate sert également à fournir une libération lente platform pour les facteurs de croissance. Si d'autres stimulateurs ou inhibiteurs sont ajoutés aux granulés, ces facteurs doivent être testés pour déterminer la stabilité d'abord dans de l'éthanol. Il est recommandé que les pastilles "factices" être apportées sans facteur de croissance de pratiquer d'abord la technique. "Factice" ou granulés fictives ne contiennent que le sucralfate et hydron substitué avec du PBS pour le volume d'un facteur de croissance ou d'un composé à tester. Ces pastilles ne stimulent pas la croissance des vaisseaux ou inflammation limbique. Pellets Sham servent de contrôle approprié pour les expériences où un agent est soupçonné d'être pro-angiogénique et est testé sans l'ajout du facteur de croissance de la pastille. Les composés et les facteurs de croissance peuvent être combinés dans des granulés pour les cas où on l'enquête une interaction, dans ce cas, les pastilles du facteur de croissance seul serait le contrôle approprié.

L'implantation chirurgicale est la partie la plus difficile de l'essai.0; Il est d'abord très difficile d'évaluer la profondeur appropriée pour l'incision. Trop profond une incision provoque le globe à la rupture et l'œil devient inutilisable. Il s'agit d'un effet dramatique et donc on apprend vite à ne pas «pop» de l'œil. Il faut beaucoup plus de faire régulièrement une incision assez profonde pour permettre la formation de poche. Lorsque l'incision est trop peu profonde, la couche supérieure de la cornée est facilement endommagé ou arraché avec le couteau von Graef qu'il est inséré à faire la poche. La dernière étape de la quantification de la croissance de nouveaux vaisseaux nécessite cohérence dans la manière de classement. longueur du navire est une mesure simple tandis que la valeur d'une heure d'horloge représentant la croissance autour de la circonférence de l'oeil est plus subjective. La méthode utilisée doit être la même chose de la souris pour la souris et entre les expériences.

Un autre élément essentiel de l'essai est le choix de l'anesthésie, qui peut avoirun impact sur la facilité et le succès de la procédure chirurgicale. Avertine injectable est la moins compliquée, car elle permet une manipulation aisée de la souris contrairement à l'anesthésie vaporisé envoyé par cône de nez. Il est conseillé d'éviter la combinaison de kétamine et de xylazine ainsi en raison de son association avec des lésions de la cornée chez les rongeurs ^16,17.

Il est important de noter tout changement dans le poids des souris au cours de l'expérience. La perte de poids peut être le signe de mauvaises conditions de logement ou d'une maladie et ceux-ci peuvent affecter négativement la capacité des souris à croître vaisseaux dans l'oeil. Les pondérations doivent être prises les jours de culot implantation et navire classement pour déterminer le pourcentage de perte de poids, le cas échéant. Perte de 5% ou moins est acceptable et peut entraîner du stress de la manipulation des souris, en particulier au cours des expériences de traitement avec la fréquence des prises. Plus de 5% de perte de poids est inquiétant et la volonté non spécifiquesupprimer la croissance des vaisseaux. Ainsi les résultats de telles expériences ne doivent être considérés comme nuls.

Pour tenir compte des variations inhérentes de la technique expérimentale de l'efficacité de la procédure et des variables étudiées, un nombre minimum de la souris doit être utilisée pour obtenir des résultats valables. Dans notre expérience, nous conseillons pas moins de 5 souris par groupe produisant un n de 10 yeux.

Malgré les nombreux avantages de l'essai de micropoche la cornée, il ya aussi quelques limitations. Le principal inconvénient est la nécessité d'une période de formation relativement longue afin de maîtriser la technique. Une personne sans aucune expérience technique avant de travailler dans l'oeil de la souris, il faudrait environ quatre mois de pratique avant les expériences de 20-25 souris pouvaient être considérées comme fiables. En outre, il ya des variations entre les différentes personnes qui effectuent le test, limitant ainsi la possibilité de comparer entre les expériences qui sont effectuéesà des époques différentes par des personnes différentes. Une autre limitation de ce modèle est que les expériences sont relativement courte (5-6 jours) et sont limitées par la libération de bFGF ou le VEGF à partir de la pastille. Par conséquent, ce test est très approprié pour des thérapies qui ont une réponse rapide in vivo, bien que ceci puisse être compensé en partie par un pré-traitement de la souris pour la longueur souhaitée de temps avant l'intervention. Standard des tests de dépistage de drogues commencent habituellement administration le jour de culot implantation (jour 0) continue jusqu'à ce jour de classement (Jour 5 ou 6).

L'importance de cette technique est qu'elle est l'un des essais les plus fiables de l'angiogenèse quantitatives. Une alternative à la souris est l'essai de prise de matrigel, cet essai est cependant plus qualitative et est moins spécifique pour un certain facteur de croissance dû à une infiltration étendue de cellules qui se produit dans le bouchon. La flexibilité de l'essai de la cornée permet d'adapter la quantitéde l'angiogenèse généré et de choisir un stimulateur spécifique. Il est possible de remplacer les facteurs de croissance standard avec d'autres facteurs angiogéniques connus ou soupçonnés. En outre, il est possible de combiner les facteurs de croissance et des inhibiteurs classiques possibles dans la même pastille pour évaluer l'activité anti-angiogénique sans administration systémique. Enfin, ce test permet de stimuler l'angiogenèse sur différents fonds génétiques, qui peuvent être utiles dans la cartographie des effets génétiques et à établir l'impact d'un gène particulier sur l'angiogenèse.

Les auteurs n'ont rien à divulguer.

Nous remercions Kristin Johnson pour le travail graphique.