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Einzel Fluorophore mit Nanometer-Präzision mit FIONA lokalisiert werden. Hier eine Zusammenfassung der FIONA-Technik wird berichtet, und wie die Durchführung FIONA Experimente beschrieben.
Fluoreszenz-Imaging mit ein-Nanometer-Genauigkeit (FIONA) ist eine einfache, aber nützliche Technik zur Lokalisierung von einzelnen Fluorophore mit Nanometer-Präzision in der xy-Ebene. Hier eine Zusammenfassung der FIONA Technik wird berichtet, und Beispiele der Forschung, die durchgeführt wurde unter Verwendung Fiona kurz beschrieben. Erstens, wie man für FIONA Experimente, dh ein Totalreflexions-Fluoreszenzmikroskopie (TIRFM), mit Details über die Ausrichtung der Optik setzen die erforderliche Ausrüstung, beschrieben. Dann, wie man auf die Lokalisierung immobilisiert Cy3-DNA einzelner Moleküle mit geeigneten Protokollen, gefolgt von der Nutzung von FIONA um die 36 nm Schrittweite von einer einzigen abgeschnitten Myosin Va Motor mit einem Quantenpunkt markiert messen Durchführung einer einfachen FIONA Experiment veranschaulicht. Schließlich jüngsten Bemühungen um die Anwendung FIONA zu dicken Proben erstrecken wird berichtet. Es wird gezeigt, dass mit einem Wasserimmersionsobjektiv und Quantenpunkte getränkt tief in Sol-Gele und Kaninchenauge Hornhäute (>200 um) Lokalisierungsgenauigkeit von 2-3 nm erreicht werden.
Rund 1882 Ernst Abbe festgestellt, dass die Auflösung eines Lichtmikroskops sichtbar ist ~ λ / 2NA oder ~ 200 nm (wo λ die Wellenlänge und NA die numerische Apertur) 1,2. Daher würde jedes Objekt kleiner als diese Dimension als beugungsbegrenzten Fleck in einem optischen Mikroskop erscheinen. Jedoch ist es möglich, die Mitte des Flecks, das heißt, die Position des Objekts zu bestimmen, mit einer viel höheren Präzision 3. Fluoreszenz-Imaging mit ein-Nanometer-Genauigkeit (FIONA) ist eine einfache, aber nützliche Technik zur Lokalisierung von einzelnen Fluorophore mit Nanometer-Präzision in der xy-Ebene 4. Die Genauigkeit der Lokalisierung, σ μ (dh die Standardabweichung des Mittelwerts), hängt von der Gesamtzahl der gesammelten Photonen, , Wobei N die Photonenzahl, s die Standardabweichung der Leuchtfleck, adie Pixelgröße der Bilddetektor, und b die Standardabweichung der Hintergrund 3,4. Für einen Fluorophor emittiert ~ 10.000 Photonen können FIONA erreichen ~ 1 nm Präzision 4.
Fiona verwendet, um die Position eines stationären Emitter oder ein Bewegen eines (vorausgesetzt Bilder schnell genug gemacht werden) exakt zu bestimmen. FIONA können, um den Rahmen des Films angewendet werden sequentiell und damit verfolgen die Bewegung der Einzelmolekül-4-8. Lichtschutz Reagenzien notwendig sein, um sicherzustellen, dass die Probe nicht photochemisch. Weiterhin können die fluoreszierenden Objekts selbst beliebig groß sein, kleiner oder größer als die Beugungs Begrenzung- zB kann es aus einer Organelle (~ 1 um) mit vielen fluoreszierenden Proteine auf ihrer Membran dispergiert bestehen. Mit FIONA kann immer noch eine sehr genaue (Nanometer) Durchschnitt der durchschnittlichen Mitte-der-Masse ergeben. Die große Verbesserung in Lokalisierungsgenauigkeit von Fiona ermöglicht die Lösung nanometer-Skala Bewegungen über die Zeit. Dies hat die Mikroskopie in die molekularen Längenskala 4 bis 8 geschoben.
Seit ihrer Erfindung haben Varianten von FIONA entwickelt. Zum Beispiel Hellfeld-Bildgebung mit einem-Nanometer-Genauigkeit (bFIONA) 9, eine leichte Variante der FIONA, Bilder und lokalisiert dichte Objekte wie Melanosomen in vivo (dunkle Objekte, die das Pigment Melanin) mit Durchlicht. Darüber hinaus FIONA wurde eingesetzt, um mehrere Farbstoffe zu lösen. Zum Beispiel, Einzelmolekül-hochauflösende Bildgebung mit Photobleaching (Garnelen) 10,11 oder Einzelmolekülhochauflösende Kolokalisation (SHREC) 12 entwickelt worden, um zwei Farbstoffe innerhalb von etwa 10 nm zu lösen. (Beachten Sie, dass dies Auflösung, dh wie genau kann man identische Farbstoffe auseinander zu halten.) Vor kurzem hat FIONA Analyse auf die Lokalisierung bestimmter superauflösende Mikroskopie beigetragen wie stochastische optische RECOnstruction Mikroskopie (STORM) 13-15-und Foto-aktivierten Lokalisationsmikroskopie (PALM) 16, in dem temporäre dunklen Fluorophore sind aufgeregt, und dann wird die Fluoreszenz lokalisiert. Durch wiederholtes spannende einem relativ niedrigen Dichte von Farbstoffen (weniger als eine pro beugungsbegrenzten Fleck) und dann das Sammeln der Fluoreszenz, die Analyse jeder von ihnen von Fiona, kann man aufbauen eine hochauflösende Karte. Die Auflösung wird dann einfach durch die Anzahl der Photonen jeder Farbstoff setzt heraus, als auch Dinge wie bei der Akquisition halten die Probe stationär (einschließlich zB der Mikroskoptisch) begrenzt.
In diesem Papier, eine Zusammenfassung der FIONA Technik und beschreiben Sie kurz Beispiele von Forschung, die unter Verwendung von FIONA wird berichtet haben. Erstens, wie man für FIONA Experimente, dh ein Totalreflexions-Fluoreszenzmikroskopie (TIRFM), mit Details über die Ausrichtung der Optik setzen die erforderliche Ausrüstung, beschrieben. Dann, wie manDurchführung einer einfachen FIONA Experiment auf die Lokalisierung immobilisiert Cy3-DNA einzelner Moleküle mit geeigneten Protokollen, veranschaulicht. Danach wird die Verwendung von Fiona 36 nm Schrittweite eines einzelnen abgeschnittenen Myosin Va Motor mit einem Quantenpunkt markiert, um zu messen, ist dargestellt. Myosin Va ist ein wesentlicher Motor prozessive Protein, das zelluläre Fracht trägt, während Translokation entlang Aktin-Filamente. Hier eine Myosin Va konstruieren stumpf wird verwendet, um Bereiche irrelevant für die Schrittgröße zu entfernen, und mit einem Flag-Tag an den C-Terminus angefügt, um eine einfache Markierung mit Quantenpunkten mit Anti-FLAG-Antikörper funktionalisierten ermöglichen. Dieses Experiment wird unter niedrigen ATP getan, um die Myosin verlangsamen und ermöglichen die Verwendung von Belichtungszeiten lang genug, um eine gute Photonenzahl in jedem Rahmen zu bekommen. Jede ausreichend hell fluoreszierende Markierung könnte in dem folgenden Protokoll ersetzt werden. Schließlich jüngsten Anstrengungen der Verlängerung der Anwendung der FIONA zu dicken Proben berichtet. Als Proof-of-Prinzip wurden Quantenpunkte eingeweichtin Sol-Gele und Kaninchenauge Hornhaut und dann abgebildet und lokalisiert mit FIONA. Für die Bildgebung, ein 60X Wasser Immersionsobjektiv mit NA = 1,2 wurde verwendet, da dieses Ziel hat eine längere Distanz als bisher verwendete 100X Ölimmersionsobjektiv. Um den Verlust in der Vergrößerung in dem Ziel auszugleichen, wurde ein extra-Vergrößerungslinse (Objektiv mit 3,3fach oder 4.0X) in der Emissionspfad eingefügt. Darüber hinaus Auflicht-Fluoreszenz (nicht TIR)-Mikroskopie muss verwendet werden, um tiefe Regionen in den dicken Proben zuzugreifen. Es wird gezeigt, dass die Quantenpunkte getränkt tief in Sol-Gels und im Kaninchenauge Hornhäute (Z> 200 um) können mit 2-3 nm Präzision lokalisiert werden.
Ethik-Erklärung: Die Hornhaut Gewebe von Kaninchen wurde in Übereinstimmung mit der Universität von Illinois Institutional Animal Care und Verwenden Richtlinien gesammelt.
1. TIRFM-Setup
HINWEIS: Tragen Laser-Schutzbrille die ganze Zeit.
Abbildung 1. Optische Konfiguration für Totalreflexions-Fluoreszenzmikroskopie (TIRFM).
2. FIONA auf Cy3-DNA
Abbildung 2. Skizze einer typischen Probenkammer (a) Draufsicht. (B) Seitenansicht von rechts; (C) Seitenansicht von vorne.
3. Angewandte FIONA zu Motor (zB Myosin auf Aktin) Dynamik auf der Nanometerskala zu quantifizieren
4. Dick Probenvorbereitung für FIONA
Ein typisches Ziel-Typ TIRFM Aufbau ist in Abbildung 3 dargestellt. Zuerst wurde auf der Oberfläche immobilisierten Cy3-DNA Probe abgebildet. Ein typisches Bild ist in 4a gezeigt. Das Bild wurde mit 0,5 Sekunden Belichtungszeit aufgenommen, mit EM Verstärkung = 50 und CCD-Empfindlichkeit = 12.13 für die Kamera. Die Punktbild-Funktion (PSF) eines Cy3-DNA-Molekül ist in 4b dargestellt (von der durch den Pfeil in Figur 4a angedeutet Stelle), wo die Farbbalken zeigt die Skala von Pixelintensitäten. Die tatsächliche Photonen können durch Multiplizieren der Pixelintensitäten mit einem Umwandlungsfaktor, α = CCD Empfindlichkeit / EM Verstärkung berechnet. Dieser Spot enthält etwa 14.000 Photonen (nach Korrektur für den Hintergrund).
(X-μ x) 2 / (2s x 2) - - (y - & # Die PSF wird dann mit einem zweidimensionalen Gauß-Funktion, f (x, y) = z 0 + A · exp (Einbau181; y) 2 / (2s y 2)), wie in 4c mit in 4D gezeigt Pass Residuen) gezeigt (. Die Genauigkeit der Lokalisierung wird dann berechnet durch , Wobei i = x oder y, s i die Standardabweichung der Anpassung, N die Gesamtphotonenzahl, A die Pixelgröße ist und b die Standardabweichung der Hintergrund. In diesem spezifischen Beispiel N = 14.528, a = 106,67 nm, s x = 115,5 nm, s = y 109,4 nm, b = 18,9, was die Lokalisierung Genauigkeiten von σ = 1,3 nm x und σ y = 1,2 nm auf. Die Lokalisierungsgenauigkeit eines Fluorophors ist ungefähr proportional zu 1 / √N, dh je mehr Photonen ist die genauere Lokalisierung. In tatsächlichen Anwendungen Fiona ist jedoch die Dauer der experimentellen Beobachtung eine andere Überlegung. Daher einesollte in der Regel erkennen, den Kompromiss zwischen Lokalisierungsgenauigkeit und Beobachtungsdauer und vorausschauend zu planen. In solchen Situationen ist es meist hilfreich, um zu bestimmen, wie viele Photonen insgesamt ein Fluorophor ist in der Lage, vor Photobleichung emittiert. Eine typische Spur der Photonenzahl gegen Rahmen ist in Abbildung 4e gezeigt. Eine exponentielle Anpassung gibt, daß die durchschnittliche Photonenzahl ~ 1,4 × 10 6 (Figur 4f).
Das Datenanalyseverfahren von Myosin Schrittgrößenmessung ist in Figur 5 gezeigt. Zuerst eine Videodatei mit gutem Signal-zu-Rauschen eines Einzel Myosin beim Laufen entlang einer Aktin-Filament aufgenommen wird. 5a zeigt drei Rahmen von einem Video bei 100 ms Belichtung mit 100X Ölimmersionsobjektiv gemacht. Das bewegte PSF wird dann durch die beschnittene Videodatei mit einem benutzerdefinierten Code in IDL geschrieben, um Entfernungs-Zeit Informationen zu extrahieren, die durch eine T-Probe gestellt wird verfolgtfür Schritte. 5B zeigt, wobei der Abstand über der Zeit (rot) und Schritt-Finder Ausgang (weiß). Lokalisierung von Fehlern in jedem Rahmen verdeckt die Treppenform der Spur, so ist es wichtig, eine Photonenzählung in jedem Rahmen, der an einem Lokalisierungsfehler kleiner als die Hälfte der theoretischen Schrittweite ein, um zu sehen wünscht, entspricht erzielen. 5C zeigt Schritte von mehreren Spuren in einem Histogramm über die wahre Größe, die Myosin Schritt ist Gauß-verteilt kombiniert. Ein Gauß-Fit an die Histogramm-Bins ergibt einen letzten Schritt Größenmessung von 35,8 ± 0,4 nm auf.
Da Sol-Gel-und Hornhaut-Proben transparent sind, Anregungslaser können tief in den Proben ohne zu sehr verstreut zu durchdringen. Darüber hinaus ist die Autofluoreszenz von der Probe minimiert wird. Wenn mit niedriger Konzentration von Quantenpunkten markiert ist, ist es möglich, die Fluoreszenz von Qdots tief in der Probe mit hohem Signal-Rausch-Verhältnis erhalten. DieVerwendung von wasser Ziel gibt uns den Arbeitsabstand von 270 oder 280 um, was bedeutet, dass es möglich ist, sich so weit wie 280 um entfernt von der Deck konzentrieren. Dies erlaubt uns, FIONA Analyse auf Quantenpunkte in dicken Proben durchzuführen. Für Quantenpunkte in einem Sol-Gel-Probe, Lokalisierungsgenauigkeit von 1-2 nm in der Nähe des Deckglases und 2-3 nm bei 280 um tief in die Probe (6a-6b) erreicht wird. Für Quantenpunkte in einer biologischen Probe (Teil einer Hornhaut von einer Kaninchenauge, 6e), Lokalisierungsgenauigkeit von 1-2 nm in der Nähe des Deckglases und 2-3 nm bei ~ 223 um tief in die Probe (6c-6d) erreicht wird. Es wird angemerkt, dass die Lokalisierungsgenauigkeit durch Verwendung der zusätzlichen Vergrößerungslinse, ohne die eine Lokalisierungsgenauigkeit von 6-7 nm erhalten wurde verbessert. Dies ist konsistent mit früheren Studien, die numerische dass die Lokalisierungsgenauigkeit kann durch Änderung des effektiven Pixelgröße von ~ 200 verbessert werden,nm bis 50 nm ~, auch wenn die Gesamtzahl der gesammelten Photonen könnte niedriger durch zusätzliche Reflexionen / Brechungen 18 sein.
Abbildung 3. Optische Konfiguration. Die optische Konfiguration der Totalreflexions-Fluoreszenz (TIRF) Mikroskopie. A) ist ein Bild, wenn der Laser ist in TIRF Zustand und b) ist die Strahlform des Lasers an der Decke, wenn der Laser ist in epi-Beleuchtung.
Abbildung 4. Lokalisierung immobilisiert Cy3-DNA. A) CCD-Bild (256 x 256 Pixel) von Cy3-DNA. B) CCD-Bild eines einzelnen Cy3-DNA-Molekül, von dem gezeigt YELNieder Pfeil in a) c.) Montage der Point-Spread-Funktion der einzelnen Cy3-DNA-Molekül mit einer zweidimensionalen Gauß-Funktion. d) Einbau Residuen aus c). e) Photon zählen gegen Rahmennummer. f) Verteilung der Anzahl der Photonen, die von Cy3-Molekül vor Photobleaching emittiert. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 5. Myosin Fuß durch FIONA beobachtet. a) Rahmen von Beispiel-Datendatei entsprechend t = 0 s, 30 s und 60 Sekunden. Die Myosin-qdot Konstrukt wird auf einer geraden Bahn eine gute Photonenzahl (> 5000) in jedem Frame Anwendung FIONA, die in und hat b.) Zu jedem Rahmen YieLDS ein Abstand über der Zeit, die in rot eingezeichnet ist. Ein Schritt-Suchalgorithmus auf der Basis der T-Test wird verwendet, um dann zu extrahieren einzelnen Schritte, und die Ausgabe wird in weiß überlagert. Schrittgrößen sind in weiß in Einheiten von Nanometern. C) Nur wenige Schritte von mehreren Spuren in einem Histogramm kombiniert gekennzeichnet. Die Messgrößen sind Schritt Gauß-verteilt über 35,8 ± 0,4 nm. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 6. FIONA Analyse auf Quantenpunkten tief in dicken Proben. A) Fluoreszenzbild von QD 605 in Sol-Gel bei Z = 280 um mit 90X Vergrößerung. B) die Punktbildfunktion des QD in ein markiert). σ x = 2 ist.6 nm, = σ y 2,3 nm. Jede Einheit in der X-und Y-Achse stellt 266,7 nm. C) Fluoreszenzaufnahme QD 655 in Kaninchenhornhautgewebe bei Z = 223 um mit in c 360X Vergrößerung. D) Die PSF des QD markiert). σ x = 2.2 nm, = σ y 3,6 nm. Jede Einheit in der X und Y-Achse repräsentiert 44,4 nm. E) Bilder von der auf einem Deckglas montiert Hornhautgewebe. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
FIONA ist eine Technik, um die Position eines optischen Emitter (organisches Fluorophor oder Quantenpunkt) mit Nanometer-Präzision und zeitlichen Auflösung von bis zu 1 ms 4 bis 8 zu lokalisieren. Wenn genügend Photonen gesammelt werden, ermöglicht diese Technik, um die Position einer fluoreszierenden Emitter viel genauer als die Beugungsgrenze (~ 200 nm) zu bestimmen und somit dieses Verfahren eröffnet eine Möglichkeit, um zu beobachten, was mit herkömmlichen / traditionelle optische Mikroskopie 4 gesehen - 8. Seit seiner Erfindung, Fiona wurde erfolgreich auf die Beobachtung zu Fuß von vielen molekularen Motoren, wie Myosin und Kinesinen angewendet. In jüngerer Zeit ist es, zusammen mit anderen Arbeiten 3,19, trug zur Lokalisierung bestimmter Schwellen Super-Resolution-Techniken wie STORM und PALM 13-16.
Der entscheidende Schritt Fiona erreichen besteht in der Anzahl der gesammelten Photonen, die durch verschiedene f betroffen istSchauspieler. Zum Beispiel sollte die TIRFM Einrichtung für FIONA Experimente verwendet und so ausgerichtet, dass eine gute PSF (dh nicht-gestreckte, nicht-stigmatisiert, etc.) erreicht wird und eine angemessene Signal-zu-Rausch-Verhältnis erhalten werden. Darüber hinaus sollte ein Objektiv mit einer hohen NA-Wert, um so viele Photonen zu sammeln verwendet werden.
Um mehr Photonen zu sammeln und damit zu Lokalisierungsgenauigkeit zu erhöhen, wurden verschiedene Sauerstoff-Scavenger Methoden und Reagenzien untersucht, um zu unterdrücken Photobleichen und Blinken 20-22. Zwei unterschiedliche Sauerstoffradikalfänger Verfahren wurden in unserem Labor verwendet. Ist "gloxy" Lösung (Glucoseoxidase und Katalase) 20. Die andere ist PCA / PCD über 22 beschrieben. Die früheren Arbeiten unmittelbar nach dem Mischen, aber der pH der Lösung im Laufe der Zeit ändert. Letztere hält die Lösung chemisch unverändert, aber eine Inkubationszeit von 8 bis 10 min erforderlich.
Eins hier gezeigt wird, ist es auch möglich, FIONA für dicke Proben unter Verwendung eines 60X Wasserimmersionsobjektiv mit NA = 1,2 zu verlängern. Dieses Ziel hat eine längere Arbeitsabstand (0,27 mm) als bisher verwendet 100X Ölimmersionsobjektiv (0,17 mm). Auf dicken Proben funktioniert, muss Auflicht-Fluoreszenz-Mikroskopie verwendet werden. Obwohl die Vorteile der niedrigen Hintergrund der TIRFM geopfert wird, ist Nanometer-Präzision Lokalisierung noch erreichbar, während mit hellen Quantenpunkte. Diese Erweiterung ist nützlich in dicken Gewebedarstellung und medizinische Anwendungen.
Die Anwendung Fiona in einigen Aspekten beschränkt. Erstens, da das Lokalisierungsgenauigkeit hängt von der Gesamtzahl der gesammelten Photonen, die zeitliche Auflösung Fiona Regel beeinträchtigt. Zweitens allein FIONA kann nur spärlich markierten Proben angewendet werden. In anderen Worten, wird scheitern, wenn FIONA mehrere Fluorophore sind nah genug, wie ihre PSFs überlappen. Darüber hinaus ist die Streuung des Emissionslichts begrenzt die APwendung von FIONA in Dick Gewebe-Bildgebung.
Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.
Diese Arbeit wurde vom NIH Grants 068.625, NSF Zuschüsse 1.063.188 und Center der Physik von lebenden Zellen 0822613. Besonderer Dank geht an Dr. Marina Marjanovic in Beckman Institute for Advanced Science and Technology für das Geschenk von Kaninchenaugen unterstützt.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Double-sided tape | 3M | ~75 µm thick | |
EMCCD camera | Andor Technology | DU-897E-CS0-#BV | |
Ultrasonic cleaner | Branson | 2510 | |
Fluorescence filter set | Chroma | 49016 | |
Actin polymerization buffer | Cytoskeleton | BSA02 | |
Biotin G-actin | Cytoskeleton | AB07 | |
G-actin | Cytoskeleton | AKL95 | |
General actin buffer | Cytoskeleton | BSA01 | |
Laser shutter (with driver) | Electro-Optical Products Corp. | SH-10-MP | |
IDL | Exelis Visual Information Solutions | ||
Neutravidin | Fisher Scientific | PI-31000 | |
Coverslip | Fisherbrand | 22X30-1.5 | 0.16-0.19 mm thick |
Microscope slide | Gold Seal Microslides | 30103X1 | 0.93-1.05 mm thick |
Plasma cleaner | Harrick Plasma | PDC-001 | |
Glass bottom dish | In Vitro Scientific | D35-20-1.5-N | |
Cy3-DNA oligos | Integrated DNA Technologies | 5'-Cy3/GCCTCGCTGCCGTCGCCA-3'Bio | |
Fluorescent beads | Invitrogen | T-7280 | |
Qdot 605-streptavidin | Invitrogen | Q10101MP | |
Qdot605 | Invitrogen | Q21301MP | |
Qdot705 | Invitrogen | Q22021MP | |
Qdot705 Antibody Conjugation Kit | Invitrogen | Q22061MP | |
MATLAB | MathWorks | ||
Optical table | Newport Corp | RS4000 Series | |
60X Objective | Nikon | Plan Apo VC 60x WI | |
100X Objective | Olympus | PlanApo 100X/1.45 Oil ∞/0.17 | |
60X Objective | Olympus | UPlanApo 60X/1.20W | |
Inverted microscope | Olympus | IX71/IX70/IX81 | |
Origin | OriginLab | ||
Anti-FLAG antibody | Sigma Aldrich | F7425-.2MG | |
ATP | Sigma Aldrich | A7699 | |
BME | Sigma Aldrich | 63689-25ML-F | |
BSA | Sigma Aldrich | A7906 | |
BSA-biotin | Sigma Aldrich | A8549-10MG | |
CK | Sigma Aldrich | C3755 | Creatine Phosphokinase from rabbit muscle |
CP | Sigma Aldrich | P1937 | Phosphocreatine di(tris) salt |
DTT | Sigma Aldrich | 43815 | DL-Dithiothreitol |
EGTA | Sigma Aldrich | E3889 | Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid |
HCl | Sigma Aldrich | 93363-500G | |
HEPES | Sigma Aldrich | H0887 | |
KCl | Sigma Aldrich | P9333 | |
MgCl2 | Sigma Aldrich | M1028 | |
NaCl | Sigma Aldrich | S7653 | |
PCA | Sigma Aldrich | 03930590 | Protocatechuic acid |
PCD | Sigma Aldrich | P8279 | Protocatechuate-3,4-dioxygenase |
TMOS | Sigma Aldrich | 341436-25G | Tetramethyl orthosilicate |
Tris-HCl | Sigma Aldrich | 93363 | |
Trolox | Sigma Aldrich | 238813 | 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchromane-2-carboxylic acid |
1” diameter broadband dielectric mirrors with mounts | Thorlabs | BB1-E02, KM100 | Quantity: 2 |
½” diameter posts | Thorlabs | TR4 | Quantity ≥ 6 |
10X beam expander | Thorlabs | BE10M-A | |
2” diameter f = 300 mm lens with mount | Thorlabs | LA1256-A, LMR2 | TIR lens |
Fluorescent alignment target | Thorlabs | VRC2SM1 | |
Laser safety goggles | Thorlabs | LG3 | |
ND filter(s) | Thorlabs | FW1AND | |
Optical beam profiler | Thorlabs | BP209-VIS | |
Post-mounted iris diaphragm | Thorlabs | ID25 | Quantity: 2 |
Shearing interferometer | Thorlabs | SI100 | |
XYZ translation stage, ½” travel | Thorlabs | T12XYZ | |
Laser | World Star Technologies | TECGL-30 | 532 nm, 30 mW |
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