في الوقت الحاضر ، يلعب قياس الطيف الكتلي دورًا مهمًا في علم الأحياء الهيكلي. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية حول الجزيئات الحيوية الحيوية الهامة في حالتها الأصلية ، وخاصة البروتينات ومجمعات البروتين. قياس الطيف الكتلي الأصلي ينطبق على نطاق واسع على مجموعة متنوعة من الجمعيات الجزيئية الحيوية بما في ذلك أنظمة متعددة المواد وحمض النوى.
الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها سريعة وحساسة للغاية. ويمكن استخدامه لاستجواب عينات البروتين غير المتجانسة، وجعل من الممكن لتحليل البروتينات متعددة في الدولة القلة في وقت واحد. إثبات الإجراء سيكون (أندي لاو) طالب دكتوراه في مجموعتي
لبدء هذا الإجراء، إعداد الشعيرات الدموية في المنزل ل nanoelectrospray كما هو موضح في بروتوكول النص. إعداد عينة خالية من ليجند كتحكم لكل تشغيل كتبادل المخزن المؤقت كل في خلات الأمونيوم. بعد ذلك، حدد الحساسية، اقتناء الأيونات الإيجابية، وسائط TOF للتنقل.
بدوره التالي على فخ ، و API ، وغازات IMS. لفصل الدردشة استخدام النيتروجين وargon نقطة البداية هو مبين هنا وضبط حسب الضرورة. تعيين نطاق اقتناء م / ض مناسبة.
بالنسبة لبروتين غير معروف يجب أن تستخدم خطوات التحسين الأولية نطاقًا واسعًا. أدخل الشعيرات الدموية المغلفة بالذهب في حامل شعري. ثم تحميل بين اثنين وثلاثة ميكرولترات من محلول البروتين المعقدة من الفائدة في الشعرية.
شد بلطف الشعرية ووضعها على مرحلة مصدر رذاذ كهربائي. قم بزلاق المرحلة إلى موضع لبدء الحصول على البيانات. تطبيق ضغط الغاز تدفق نانو منخفضة حتى شكل قطرة في غيض من شعري.
نقل الشعرية فيما يتعلق مخروط ورصد التيار أيون لتحقيق تيار أيون مستقرة. تطبيق الجهد الشعري في نطاق يتراوح بين 0.9 و 1.6 كيلوفولت. ثم تعيين مخروط أخذ العينات، إزاحة المصدر، درجة حرارة المصدر، وتدفق الغاز المخروطي كما هو مبين في بروتوكول النص.
للحصول على طيف كتلة محسومة وانتقال أيونات مُعظم، قم بضبط معلمات التصلب المتعدد وراقب التغير الناتج في الأطياف. تعيين الطاقة الاصطدام فخ إلى نقطة انطلاق أولية بين 10 و 50 فولت. إذا كانت إزاحات الجهد غير كافية، ضبط الطاقات الاصطدام فخ.
تعيين فخ عن طريق الجهد إلى نقطة انطلاق أولية بين 20 و 45 فولت. تحسين desolvation عن طريق تحسين هذا الجهد. بعد ذلك، تحسين سرعة الموجة وارتفاع الموجة كما هو موضح في النص لتحقيق أفضل فصل التنقل.
في الدراسات التي تنطوي على HerA و NurA استخدام سرعة الموجة من 40 مترا في الثانية وارتفاع الموج بين 550 و 650 فولت. لتحليل ربط الحمض النووي، اخلط البروتين والحمض النووي بنسبة حورية تسمح بتكوين معقد للحمض النووي البروتيني. إضافة كميات متزايدة من أي من التالية، 5'O-3-thio-ثلاثي الفوسفات، ملح رباعي اليثيوم، أو ADP.
باستخدام البرمجيات المناسبة قياس الجماهير من الأنواع المولدة وتحديد ملزمة ليغاند، مثل ATP و ADP ملزمة والدول القلة. ثم استخدام كثافة الأيونات التي لوحظت في أطياف MS ESI الخام لتحديد كمية الوفرة النسبية المقابلة للأنواع. بعد تحسين ظروف الأداة لنقل مستقر، والحد من الطاقة الاصطدامية ومخروط أخذ العينات منخفضة قدر الإمكان، مع الاحتفاظ بجودة الأطياف الجيدة.
استخدم السرعة المحسنة للموجة التي تم تحديدها مسبقًا وارتفاع الموجة للحصول على IM MS. قياس الوقت الانجراف الأيون في ثلاث سرعات موجة مختلفة مع الحفاظ على ارتفاع الموجة نفسها. لتحديد البروتين أيون CCS قياس أربعة كاليبرانت البروتين, اثنين مع كتلة فوق البروتين قيد التحقيق واثنين مع كتلة أدناه, باستخدام نفس الشروط الأجهزة. أولاً، إعداد عينات البروتين والتخزين المؤقت تبادلها في خلات الأمونيوم كما هو مبين في بروتوكول النص.
إضافة المذيبات في 10٪ زيادات حتى الوصول إلى المبلغ المطلوب. احتضان على الجليد لمدة ساعة واحدة. بعد ذلك، الحصول على طيف IM MS لكل عينة.
باستخدام برنامج SUMMIT ، تعيين المكونات الفرعية للبروتين وتوليد شبكات التفاعل البروتين. بدلا من ذلك، توليد يدويا قائمة من الجماهير النظرية للأنواع المتوقعة. للبدء في التحقيق في الاستقرار البروتين المعقد، سجل بيانات IM-MS مع زيادة الجهد تسارع فخ من 10 فولت إلى 200 فولت، والتي سوف تتكشف تدريجيا إلى مرحلة البروتين والغاز.
تحليل البيانات باستخدام البرامج المناسبة وتوليد المؤامرات تتكشف ثنائية الأبعاد عن طريق التراص توزيعات CCS تطبيع كثافة في كل الجهد المتسارع لكل دولة تهمة. تكشف نتائج مرض التصلب العصبي المتعدد الأصلي عن حالة القلة وتكوينها وطبولوجيا مجمع HerA و NurA. كما يتم الحفاظ على التفاعلات غير التكافؤ في مرحلة الغاز، MS الأصلي من ATP غاما S و ADP التجارب المعايرة، وتستخدم لتحديد ربط النيوكليوتيدات زوج الحكيمة في HerA و NurA.
تكشف الأطياف الكتلية لدول هيرا أوليجومير أن زيادة تركيزات أُكات جاما S تزيد من الكثافة النسبية للهيرا سداسية. ثم تستمد القيم التجريبية CCS للبروتينات ومجمعاتها من تجارب IM-MS. وينظر إلى هذه القيم على أنها تتفق بشكل جيد مع القياسات النظرية من التصوير البلوري بالأشعة السينية، والتي تؤكد صحة استخدام قيم احتجاز ثاني أكسيد الكربون وتخزينه لبناء نماذج منخفضة الدقة لتجميع البروتين.
تحليل CIU وKEcom يكشف عن أن الحمض النووي ملزمة HerA-NurA هو أكثر استقرارا من مجمع خالية من الحمض النووي. تحليل CIU MS و حالات ربط ATP المعنية يظهر أن أربعة ATP جاما S دولة ملزمة يقلل الاستقرار المعقدة في مرحلة الغاز. ومع ذلك، فإن الستة ATP غاما S دولة ملزمة التي يتم فيها شغل جميع المواقع، وينظر إلى أن تكون الأكثر استقرارا.
توفر القياسات الدقيقة للكتلة الجزيئية لمجمع سليم رؤية قيمة في توصيف الجزيئات الحيوية. يمكننا الحصول على معلومات عن مسارات التجميع المعقدة ، oligomerization البروتين ، وملزمة ليغاند. الجمع بين كل هذه المعلومات يسمح لتوليد نماذج مفصلة من الجمعيات البيولوجية الوظيفية.
