ونحن نشكر اينيز بوتيمانس ومارك دي باب وسارة دي بريل، ديبويدت وتر، أستريد هيرمانز، بييت كايينبيرغ، ميوليمانس غيريت، كريستوف النص وستيجن فيرسترتين للحصول على المساعدة التقنية والإدارية.

<ol>
	<li>Gallese, V., Fadiga, L., Fogassi, L., Rizzolatti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Action+recognition+in+the+premotor+cortex.">Action recognition in the premotor cortex.</a> Brain. 119 (2), 593-609 (1996).</li><li>Fogassi, L., Gallese, V., Buccino, G., Craighero, L., Fadiga, L., Rizzolatti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+mechanism+for+the+visual+guidance+of+hand+grasping+movements+in+the+monkey:+a+reversible+inactivation+study.">Cortical mechanism for the visual guidance of hand grasping movements in the monkey: a reversible inactivation study.</a> Brain. 124 (3), 571-586 (2001).</li><li>Rizzolatti, G., Camarda, R., Fogassi, L., Gentilucci, M., Luppino, G., Matelli, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+organization+of+inferior+area+6+in+the+macaque+monkey.+II.+Area+F5+and+the+control+of+distal+movements.">Functional organization of inferior area 6 in the macaque monkey. II. Area F5 and the control of distal movements.</a> Exp. Brain Res. 71 (3), 491-507 (1988).</li><li>Mishkin, M., Ungerleider, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+striate+inputs+to+the+visuospatial+functions+of+parieto-preoccipital+cortex+in+monkeys.">Contribution of striate inputs to the visuospatial functions of parieto-preoccipital cortex in monkeys.</a> Behav. Brain Res. 6 (1), 57-77 (1982).</li><li>Goodale, M. A., Milner, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Separate+visual+pathways+for+perception+and+action.">Separate visual pathways for perception and action.</a> Trends Neurosci. 15 (1), 20-25 (1992).</li><li>Baumann, M. A., Fluet, M. C., Scherberger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Context-specific+grasp+movement+representation+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Context-specific grasp movement representation in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurosci. 29 (20), 6436-6438 (2009).</li><li>Murata, A., Gallese, V., Luppino, G., Kaseda, M., Sakata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+the+shape,+size,+and+orientation+of+objects+for+grasping+neurons+of+monkey+parietal+area+AIP.">Selectivity for the shape, size, and orientation of objects for grasping neurons of monkey parietal area AIP.</a> J. Neurophysiol. 83 (5), 2580-2601 (2000).</li><li>Romero, M. C., Pani, P., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+shape+features+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Coding of shape features in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurosci. 34 (11), 4006-4021 (2014).</li><li>Sakata, H., Taira, M., Kusonoki, M., Murata, A., Tanaka, Y., Tsutsui, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+coding+of+3D+features+of+objects+for+hand+action+in+the+parietal+cortex+of+the+monkey.">Neural coding of 3D features of objects for hand action in the parietal cortex of the monkey.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 353 (1373), 1363-1373 (1998).</li><li>Taira, M., Mine, S., Georgopoulos, A. P., Murata, A., Sakata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Parietal+cortex+neurons+of+the+monkey+related+to+the+visual+guidance+of+the+hand+movement.">Parietal cortex neurons of the monkey related to the visual guidance of the hand movement.</a> Exp Brain Res. 83 (1), 29-36 (1990).</li><li>Janssen, P., Scherberger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+guidance+in+control+of+grasping.">Visual guidance in control of grasping.</a> Annu. Rev. Neurosci. 8 (38), 69-86 (2015).</li><li>Theys, T., Pani, P., van Loon, J., Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+three-dimensional+contours+and+surfaces+in+the+anterior+intraparietal+area.">Selectivity for three-dimensional contours and surfaces in the anterior intraparietal area.</a> J. Neurophysiol. 107 (3), 995-1008 (2012).</li><li>Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-dimensional+shape+coding+in+grasping+circuits:+a+comparison+between+the+anterior+intraparietal+area+and+ventral+premotor+area+F5a.">Three-dimensional shape coding in grasping circuits: a comparison between the anterior intraparietal area and ventral premotor area F5a.</a> J. Cogn. Neurosci. 25 (3), 352-364 (2013).</li><li>Raos, V., Umilt&#225;, M. A., Murata, A., Fogassi, L., Gallese, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+properties+of+grasping-related+neurons+in+the+ventral+premotor+area+F5+of+the+macaque+monkey.">Functional properties of grasping-related neurons in the ventral premotor area F5 of the macaque monkey.</a> J. Neurophysiol. 95 (2), 709-729 (2006).</li><li>Umilta, M. A., Brochier, T., Spinks, R. L., Lemon, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+recording+of+macaque+premotor+and+primary+motor+cortex+neuronal+populations+reveals+different+functional+contributions+to+visuomotor+grasp.">Simultaneous recording of macaque premotor and primary motor cortex neuronal populations reveals different functional contributions to visuomotor grasp.</a> J. Neurophysiol. 98 (1), 488-501 (2007).</li><li>Denys, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+processing+of+visual+shape+in+the+cerebral+cortex+of+human+and+nonhuman+primates:+a+functional+magnetic+resonance+imaging+study.">The processing of visual shape in the cerebral cortex of human and nonhuman primates: a functional magnetic resonance imaging study.</a> J. Neurosci. 24 (10), 2551-2565 (2004).</li><li>Theys, T., Pani, P., van Loon, J., Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+three-dimensional+shape+and+grasping-related+activity+in+the+macaque+ventral+premotor+cortex.">Selectivity for three-dimensional shape and grasping-related activity in the macaque ventral premotor cortex.</a> J.Neurosci. 32 (35), 12038-12050 (2012).</li><li>Nelissen, K., Luppino, G., Vanduffel, W., Rizzolatti, G., Orban, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observing+others:+multiple+action+representation+in+the+frontal+lobe.">Observing others: multiple action representation in the frontal lobe.</a> Science. 310 (5746), 332-336 (2005).</li><li>Janssen, P., Srivastava, S., Ombelet, S., Orban, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+shape+and+position+in+macaque+lateral+intraparietal+area.">Coding of shape and position in macaque lateral intraparietal area.</a> J. Neurosci. 28 (26), 6679-6690 (2008).</li><li>Romero, M. C., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Receptive+field+properties+of+neurons+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Receptive field properties of neurons in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurophysiol. 115 (3), 1542-1555 (2016).</li><li>Decramer, T., Premereur, E., Theys, T., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multi-electrode+recordings+in+the+macaque+frontal+cortex+reveal+common+processing+of+eye-,+arm-+and+hand+movements.+Program+No.+495.15/GG14.">Multi-electrode recordings in the macaque frontal cortex reveal common processing of eye-, arm- and hand movements. Program No. 495.15/GG14.</a> Neuroscience Meeting Planner. , (2017).</li><li>Pani, P., Theys, T., Romero, M. C., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Grasping+execution+and+grasping+observation+activity+of+single+neurons+in+macaque+anterior+intraparietal+area.">Grasping execution and grasping observation activity of single neurons in macaque anterior intraparietal area.</a> J. Cogn. Neurosci. 26 (10), 2342-2355 (2014).</li><li>Turriziani, P., Smirni, D., Oliveri, M., Semenza, C., Cipolotti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+the+prefrontal+cortex+in+familiarity+and+recollection+processes+during+verbal+and+non-verbal+recognition+memory.">The role of the prefrontal cortex in familiarity and recollection processes during verbal and non-verbal recognition memory.</a> Neuroimage. 52 (1), 469-480 (2008).</li><li>Tsao, D. Y., Schweers, N., Moeller, S., Freiwald, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patches+of+faces-selective+cortex+in+the+macaque+frontal+lobe.">Patches of faces-selective cortex in the macaque frontal lobe.</a> Nat. Neurosci. 11 (8), 877-879 (2008).</li></ol>

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

يتطلب اتباع نهج شامل لدراسة تيار الظهرية اختيار دقيق للمهام السلوكية واختبارات بصرية: يمكن أن تستخدم النماذج المرئية واستيعاب أما مجتمعة أو كل على حدة اعتماداً على الخصائص المحددة للمنطقة.
في هذه المقالة، نحن نقدم أمثلة لنشاط العصبية المسجلة في كل من الوكالة و F5p في الاستجابة لمجموعة فرعية مهام البصرية والحركية، ولكن يمكن ملاحظة استجابات مشابهة جداً في مناطق أخرى أمامي مثل منطقة 45B و F5a.
ونحن نقترح اثنين للتحقيق في تمثيل الكائنات العصبية خلال استيعاب الأجهزة التجريبية. مع دائري تناوب رأسي (الشكل 3 أ) التي تحتوي على كائنات يصل إلى ستة، يمكن أن نقدم كائنات مختلفة للقرد. دائري الدورية يسمح عرض الكائنات المستهدفة المختلفة (تختلف في الشكل، والحجم، وحجم، إلخ)، التي تتطلب استراتيجيات استيعاب مختلف (قبضة السلطة مقابل قبضة الدقة).
طريقة ثانية وأكثر تطورا لعرض الكائنات أثناء تسجيلات خلية واحدة يتم عن طريق ذراع الروبوت التجارية والممسك (الشكل 3B). وفي هذه الحالة، يبدأ الروبوت المحاكمة باستيعاب كائن (الشكل 3B) ونقله إلى موضع معين في الفضاء في ظلام دامس، في حين يبقى يد القرد على موقف يستريح. وباﻹضافة إلى هذا، تسلسل الأحداث مماثلة في الأجهزة اثنين. ومع ذلك، يسمح استخدام الروبوت تلاعب معلمات تجريبية واسعة (المسافة التي يتم تقديم الكائن، الموقف في الطائرة فرونتوباراليل، أو التوجه للكائن). وأخيراً، كما هو مبين في اللوحة اليمنى الشكل 3B، يمكن أيضا برمجة الروبوت فهم كائنات مختلفة (لوحة والمجال في حالتنا).
ويسمح هذا النهج التجريبي تحديد سمات كائن القيادة فيسوموتور من الخلايا العصبية التي تستجيب للمراقبة الكائن من خلال استيعاب. بيد أن هذا النهج أيضا على القيود. مع كل اختبار، سيتم استبعاد بعض الخلايا العصبية من إجراء مزيد من التجارب (مثلاً، أي ردود على هذه الصور للكائنات، أي انتقائية كفاف)، حيث أن استنتاجات التجربة يمكن تتصل فقط مجموعة فرعية من جميع الخلايا العصبية تظهر المهمة المتصلة النشاط من خلال استيعاب. ومع ذلك، في لنا الدراسات السابقة8، الغالبية العظمى (83 في المائة) من الخلايا العصبية عرض الاستجابات البصرية لمراقبة الكائن من خلال استيعاب أيضا تستجيب بشكل انتقائي للصور للكائنات، وكانت الغالبية العظمى من الخلايا العصبية الأخيرة (90%) أيضا انتقائية كفاف الإصدارات من هذه الصور. ولذلك قد يكون لدينا بروتوكول الاختبار المناسبة لجزء كبير جداً من جميع الخلايا العصبية تستجيب بصريا في القشرة الجدارية وأمامي.
بعض الخلايا العصبية فيسوموتور الأكثر احتمالاً في أكثر القطاعات الفرعية المتعلقة بالسيارات في القشرة الأمامية مثل منطقة F5p، قد تستجيب فقط لكائنات في سياق مهمة استيعاب، وتستجيب ابدأ للصور للكائنات (حتى مع تفاوت مجهر) عرضت على عرض. ومع ذلك نحن يمكن التحقيق في خصائص هذا يتدنى من الخلايا العصبية باستخدام الروبوت. مع هذا الإعداد التجريبية، يمكن أن نقدم الكائنات الموجودة في مواقع مختلفة في الطائرة فرونتوباراليل أثناء التثبيت السلبي (مشابه لاختبار RF)، في توجهات 3D مختلفة وعلى مسافات مختلفة من الحيوان، ويمكن أن نجمع بين العين ساككاديك التحركات نحو الكائن مع كائن استيعاب21.
هدفنا هو عدم توفر بروتوكول تجريبي مفرد أو جامد لدراسة الخلايا العصبية بريتو أمامية، بل التشديد على ضرورة اتباع نهج شامل وديناميكي، مع المهام والاختبارات مصممة خصيصا للخلايا العصبية تحت الدراسة. على سبيل المثال، لدينا بروتوكول فيما يتعلق بالانتقائية البصرية، ويمكن تكييفها بسهولة لدراسة أخرى الخصائص المرئية من الخلايا العصبية تستجيب للكائنات. على سبيل المثال، تابعنا نهجاً مماثلاً جداً عند التحقيق 3D الانتقائية في F5a12 والوكالة الخلايا العصبية13 خلال استيعاب. ونحن أيضا مجتمعة استيعاب تنفيذ واختبار مرئية مفصلة مع أشرطة فيديو إجراءات عند التحقيق في الردود مراقبة العمل في الوكالة22. بنفس الطريقة، يمكن إضافة العديد من المهام التجريبية الأخرى، لم تدرج هنا، أيضا لدينا بروتوكول اعتماداً على مسألة علمية معالجتها. وتشمل هذه المهام دراسة كلا خصائص مادية بحتة للحافز (مثلاً، حجم الحوافز) والجوانب المعرفية مثل التحفيز الألفة23 أو البيولوجية أهميتها (الأفضلية للأشكال ذات الصلة بيولوجيا مثل24من وجوه).
إجراء مزيد من الدراسات في هذه المجالات سيتم توفير فهم أفضل للشبكة، وسيمكننا من تحسين نوع البروتوكولات لاستخدامه.

حصة الرئيسيات غير البشرية وقدرة أداء الأعمال الحركية المعقدة بما في ذلك استيعاب الكائن. لتنفيذ هذه المهام بنجاح، يحتاج الدماغ لإكمال تحويل خصائص كائن مضمن إلى الأوامر الحركية. ويعتمد هذا التحول على شبكة متطورة من المناطق القشرية الظهرية الموجودة في قشرة premotor الجدارية والبطني1،،من23 (الشكل 1).
من الآفة من الدراسات في البشر والقرود54،، ونحن نعلم أن تيار البصرية الظهرية-الناشئة في القشرة البصرية الأولية وتوجه نحو القشرة الجدارية الخلفية-تشارك في الرؤية المكانية والتخطيط للسيارات الإجراءات. ومع ذلك، معظم المناطق الظهرية تيار لا مكرسة لنوع فريد من تجهيز. على سبيل المثال، منطقة إينتراباريتال الأمامي (الوكالة)، واحدة من المناطق نهاية المرحلة في تيار البصرية الظهرية، تحتوي على مجموعة متنوعة من الخلايا العصبية أن الحريق من خلال استيعاب6،،من78، بل أيضا أثناء البصرية التفتيش للكائن7،،من89،10.
مماثلة لوكالة الأنباء الأفغانية، تستجيب الخلايا العصبية في منطقة F5، الموجود في قشرة premotor البطني (PMv)، أيضا أثناء التثبيت المرئي وكائن استيعاب، التي من المحتمل أن تكون هامة لتحويل المعلومات البصرية إلى الإجراءات الحركية11. الجزء الأمامي من هذه المنطقة (القطاع الفرعي F5a) يحتوي على الخلايا العصبية تستجيب بشكل انتقائي لثلاثي الأبعاد (3D، يعرف التفاوت) صور13من12،، بينما القطاع الفرعي للموقع في التحدب (F5c) يحتوي على الخلايا العصبية تتميز بمرآة خصائص1،3، إطلاق النار على حد سواء عندما ينفذ حيوان أو تلاحظ عمل. وأخيراً، منطقة F5 الخلفي (F5p) حقل المتصلة باليد، مع نسبة عالية من فيسوموتور الخلايا العصبية تستجيب للمراقبة على حد سواء، واستيعاب كائنات ثلاثية الأبعاد14،15. بجوار F5، منطقة 45B، الموجود في راموس أقل شأنا من ناصف المقوسة، وقد تكون أيضا في شكل تجهيز16،17 و استيعاب18.
اختبار كائن الانتقائية في القشرة الجدارية وأمامي هو التحدي، لأنه من الصعب تحديد الميزات التي تستجيب هذه الخلايا العصبية إلى وما الحقول تقبلا لهذه الخلايا العصبية. على سبيل المثال، إذا كانت خلية يستجيب للوحة ولكن ليس لمخروط، أي ميزة من هذه الكائنات هو يقود هذه الانتقائية: كفاف 2D، هيكل ثلاثي الأبعاد، التوجه في العمق، أو مزيج من العديد من الميزات المختلفة؟ لتحديد ملامح الكائن الحرجة للخلايا العصبية التي تستجيب أثناء التثبيت بالكائن واستيعاب، من الضروري أن توظف العديد من الاختبارات البصرية باستخدام الصور للكائنات وانخفاض إصدارات من نفس الصور.
يستجيب جزء كبير من الخلايا العصبية في الوكالة و F5 ليس فقط للعرض المرئي لكائن، بل أيضا عندما يمسك الحيوان هذا الكائن في الظلام (أي، في غياب المعلومات المرئية). قد لا تستجيب هذه الخلايا العصبية إلى صورة لأحد الكائنات التي لا يمكن تفويتها. ومن ثم، المكونات البصرية والحركية للاستجابة ارتباطاً وثيقا، مما يجعل من الصعب على التحقيق بتمثيل كائن الخلايا العصبية في هذه المناطق. حيث يمكن اختبار الخلايا العصبية فيسوموتور مع الكائنات في العالم الحقيقي، نحن بحاجة إلى نظام مرن لعرض كائنات مختلفة في مواقع مختلفة في المجال البصري، وفي توجهات مختلفة إذا كنا نريد تحديد الميزات التي هي هامة لهذه الخلايا العصبية. هذا الأخير لن يتحقق عن طريق روبوت قادر على عرض كائنات مختلفة في مواقع مختلفة في الفضاء المرئي.
وتعتزم هذه المادة توفر دليل تجريبي للباحثين المهتمين بدراسة الخلايا العصبية بريتو أمامية. في المقاطع التالية، سوف نقدم البروتوكول العامة المستخدمة في المختبر لتحليل استجابات الكائن استيعاب والبصرية في المكاك مستيقظا القرود (Macaca مالطا).

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Grasping robot</td>
			<td>GIBAS Universal Robots</td>
			<td>UR-6-85-5-A</td>
			<td>Robot arm equipped with a gripper</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carousel motor</td>
			<td>Siboni</td>
			<td>RD066/&#8224;20 MV6, 35x23 F02</td>
			<td>Motor to be implemented in a custom-made vertical carousel. It allows the rotation of the carousel.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye tracker</td>
			<td>SR Research</td>
			<td>EyeLink II</td>
			<td>Infrared camera system sampling at 500 Hz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter</td>
			<td>Wavetek Rockland</td>
			<td>852</td>
			<td>Electronic filters perform a variety of signal-processing functions with the purpose of removing a signal&#39;s unwanted frequency components.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Preamplifier</td>
			<td>BAK ELECTRONICS, INC.</td>
			<td>A-1</td>
			<td>The Model A-1 allows to reduce input capacity and noise pickup and allows to test impedance for metal micro-electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrodes</td>
			<td>FHC</td>
			<td>UEWLEESE*N4G</td>
			<td>Metal microelectrodes (* = Impedance, to be chosen by the researcher)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CRT monitor</td>
			<td>Vision Research Graphics</td>
			<td>M21L-67S01</td>
			<td>The CRT monitor is equipped with a fast-decay P46-phosphor operating at 120 Hz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ferroelectric liquid crystal shutters</td>
			<td>Display Tech</td>
			<td>FLC Shutter Panel; LV2500P-OEM</td>
			<td>The shutters operate at 60 Hz in front of the monkeys and are synchronized to the vertical retrace of the monitor</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

investigating object representations in the macaque dorsal visual stream using single-unit recordings

وقد أظهرت الدراسات السابقة أن الخلايا العصبية في مناطق الدماغ المكاك بريتو أمامية يمكن أن تكون انتقائية للغاية لكائنات العالم الحقيقي والأسطح المنحنية يعرف التفاوت، وصوراً لكائنات العالم الحقيقي (مع ودون التفاوت) بطريقة مماثلة كما ووصف في تيار البصرية البطني. وباﻹضافة إلى ذلك، يعتقد المناطق بريتو أمامية لتحويل معلومات الكائن مرئي في النواتج الحركية المناسبة، مثل قبل تشكيل اليد أثناء استيعاب. أفضل وصف الكائن الانتقائية في الشبكة القشرية المشاركة في التحولات فيسوموتور، ونحن نقدم بطارية اختبارات تهدف إلى تحليل انتقائية الكائن المرئي من الخلايا العصبية في المناطق الأمامية بريتو.

الشكل 5 قطع ردود العصبية مثال تسجيلها من منطقة F5p اختبار مع الكائنات الأربعة: اثنان مختلفة الأشكال-المجال ولوحة-سيظهر في حجمين مختلفين (6 و 3 سم). ورد هذا العصبية خاصة ليس فقط لمجال كبير (التحفيز المثلى؛ اللوحة اليسرى العلوية)، بل أيضا على لوحة كبيرة (اللوحة اليسرى السفلي). وبالمقارنة، كانت الاستجابة إلى كائنات أصغر الأضعف (العلوي والسفلي الحق الألواح).
ويبين الشكل 6 اختبار العصبية مثال مسجل في الوكالة خلال فج والتثبيت السلبي. هذه العصبية لم تكن استجابة إلا من خلال استيعاب (فج المهمة، لوحة أ) بل أيضا للعرض المرئي في 2D الصور من الكائنات المعروضة على شاشة (تثبيت السلبية بما في ذلك صورة الكائنات المستخدمة في استيعاب المهمة؛ الشكل 6B). ملاحظة أن الحافز المفضل في مهمة تثبيت السلبي ليس بالضرورة الكائن-إلى-أن-اغتنامها، ولكن آخر صورة 2D الذي تربطه بالحيوان لا خبرة سابقة استيعاب (اليوسفي). ويبين الشكل 6 RF هذه الخلية عند اختباره مع الصورة المفضلة والعارضات. ويرد مثال على الردود التي تم الحصول عليها في اختبار الحد في الشكل 6. ورد هذا المثال العصبية إلى أجزاء أصغر في الاختبار (1-1.5 درجة).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig1v2.jpg"> رقم 1. شبكة أمامية باريتو تشارك في معالجة كائن البصرية والحركية التخطيط والتنفيذ- المنطقة الجدارية الخلفية مشاريع الوكالة إلى مناطق البرنامجي، 45B و F5a، وثم إلى F5p، M1، وأخيراً، إلى الحبل الشوكي.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig2v2.jpg"> رقم 2. شجرة القرارات لاختبار كائن الانتقائية: بروتوكول تجريبي يستخدم لاختبار ردود فيسوموتور في سكاننا العصبية. يمكن أن يتبع مهمة فج مج أو مهمة بصرية (تثبيت السلبي). يمكن اعتبار مهمتين التثبيت سلبية مختلفة تبعاً لمنطقة الفائدة: تثبيت السلبي من كائنات العالم الحقيقي وتثبيت السلبي لصور ثنائية الأبعاد للكائنات. وقد تطور نظام فيسوموتور الرئيسيات لدعم التلاعب بالكائنات الحقيقية، لا صور كائنات6،13 وذلك، من المتوقع أن تلك المناطق ذات عنصر مهيمن السيارات سوف تكون أكثر بكثير تستجيب لرؤية الكائنات الحقيقية، جراسبابل. ومع ذلك، يمكن استكشاف الانتقائية الشكل فقط بالتفصيل باستخدام نهج الحد، التي يمكن تنفيذها بسهولة أكبر مع الصور للكائنات. في مهمة تثبيت الكامن في 2D، يعني ردا إيجابيا (تشير إلى الانتقائية البصرية للصور للكائنات) أنه من الممكن تحسين استجابة الخلايا العصبية أبعد من ذلك. وهذا يؤدي بنا إلى تشغيل مهمة تجريبية جديدة استكشاف ميزات مستوى أدنى في التحفيز. وفي المقابل، يشير ردا سلبيا إلى نهاية التجربة.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig3v2.jpg"> الشكل 3. الأجهزة فيسوموتور- (أ)- إعداد دائري. اللوحة اليسرى: تصميم دائري (مرئية للقرد). اللوحة اليسرى: تفاصيل اللوحة دائري عرض الكائن يكون اغتنامها ويد القرد أنها تقترب. مع دائري الدورية رأسية التي تحتوي على الكائنات يصل إلى ستة، يمكن أن نقدم على كائنات مختلفة إلى القرد. (ب)- روبوت الإعداد. اللوحة اليسرى: الجبهة عرض الإعداد الروبوت. اللوحة اليسرى: التفاصيل من أربعة كائنات مختلفة قدمها الروبوت (اللوحة الصغيرة/الكبيرة؛ والمجال الصغيرة/الكبيرة). طريقة ثانية وأكثر تطورا لعرض الكائنات أثناء تسجيلات خلية واحدة يتم عن طريق ذراع روبوت تجارية مجهزة القابض. A و B، تسلسل الأحداث التي هي مماثلة أثناء التثبيت المرئي باستثناء أن في إعداد دائري، يحصل مضيئة الكائن من أعلاه وفي الإعداد روبوت مضاءة الكائن من داخل. في المرحلة فهم المهمة يختلف قليلاً. بينما في إعداد دائري، يشار إلى "الرمز الذهاب" بتعتيم الليزر؛ في إعداد الروبوت، ينطفئ تثبيت الصمام تماما. وثمة فرق آخر يشير إلى وظائف محددة لكل الأجهزة. بينما يمكن استخدام الإعداد دائري أساسا لاختبار كائن الانتقائية في وظيفة فريدة من نوعها في الفضاء المرئي، مع الإعداد الروبوت، يمكننا برنامج المسافة التي يتم تقديم الكائن يكون اغتنامها، الوضع في الطائرة فرونتوباراليل، أو حتى حمل اضطرابات في اتجاه الكائن من خلال استيعاب (مثلاً، تناوب سريع 45 ° الكائن أثناء مرحلة التوصل إلى). كل من نظم تسمح بتقديم الكائنات المستهدفة المختلفة مع استيعاب خصائص مختلفة (الحجم، الحجم، إلخ)، التي تتطلب استراتيجيات استيعاب مختلف (قبضة السلطة مقابل قبضة الدقة). (ج)- مثال لمهمة فج (دائري الإعداد). 1-التثبيت: في مهمتنا فج دائري، يضع القرد يده كونترالاتيرال على جهاز موقف يستريح لبدء التسلسل. بعد ذلك، يتوقع ليزر على كائن-إلى-أن-اغتنامها، الذي ما زال في ظلام دامس. 2-الضوء على: إذا كان الحيوان يحافظ على تثبيت استقرار حول إطار محدد إلكترونيا المحيطة بالكائن لمدة محددة، الكائن هو مضيئة في مصدر ضوء خارجي (المرحلة البصرية المهمة). وأخيراً، بعد تأخير متغير، الليزر تعتيم، تعمل كمساعدة الذهاب مرئية والتي تشير إلى أن القرد لبدء حركة استيعاب. الحيوان هو مكافأة للتوصل إلى واستيعاب ورفع الكائن (الكشف عن طريق كابلات الألياف البصرية).
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig4v2.jpg"> الشكل 4. المحفزات البصرية. (أ)- مثال لمجموعة الحوافز المستخدمة لتقييم الانتقائية الشكل المرئي. (ب)- من الصور الأصلية السطحية في A، نحن ننتج نسخ مبسطة تدريجيا من المحفزات البصرية (الأسطح ثلاثية الأبعاد والسطوح ثنائية الأبعاد، الظلية، والخطوط العريضة والشظايا). بتقسيم المخطط التفصيلي في أجزاء أصغر، نقوم بالبحث للحد الأدنى الفعال الشكل ميزة (ميسف) تستحضر الانتقائية البصرية.
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig5v2.jpg"> الرقم 5. اختبار المهمة فج مع الإعداد الروبوت (روبوت الإعداد في الشكل 3B). قدمنا أربع كائنات مختلفة في نفس الموضع في العمق: كبير المجالين (أعلى اليسار)، ولوحة كبيرة (أسفل اليسار)، ولوحة صغيرة (أسفل اليمين)، والصغيرة (أعلى اليمين). يتم محاذاة استجابة الخلايا العصبية لظهور الضوء في الكائن (بن حجم 20 مللي ثانية).
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57745/57745fig6v2.jpg"> الشكل 6. وكالة الأنباء الأفغانية أن العصبية تسجيلها باستخدام مهام التثبيت السلبي وفج (استيعاب المعني دائري). (أ)- النشاط من خلال استيعاب. بيريستيمولوس-الوقت المدرج التكراري عرض استجابة وكالة الأنباء الأفغانية العصبية (الاستجابة العصبية الانحياز إلى ظهور الضوء على الكائن). (ب). رد العصبية نفسها عند اختباره مع مجموعة واسعة من صور ثنائية الأبعاد للكائنات في العالم الحقيقي، بما في ذلك صورة لكائن يكون اغتنامها البصرية (في توجهات مختلفة اثنين: أفقي مقابل عمودي). (ج)- تعيين الحقل تقبلا. خرائط 2D محرف تمثل متوسط الاستجابة للمحفزات (يمين) المفضل (يسار) والعارضات للعصبية في ألف وب عند اختباره مع 3° صور للكائنات. بناء الخرائط، ونحن كمياً استجابة الخلايا العصبية الصافية (عن طريق طرح النشاط الأساس) حصل على 35 مواقع مختلفة على الشاشة (يشار إليها بنقاط تقاطع خطوط الشبكة متقطع؛ [0, 0]: موقف المركزية؛ السَّمْت ° + 6: كونترالاتيرال)، ومتباعدة عن بعضها 2 °، وتغطي كل علوم--وكونترالاتيرال هيميفيلدس البصرية. اللون يشير إلى قوة الاستجابة العصبية (تتراوح بين 0 والحد الأقصى استجابة الخلية). (د). لون شجرة الأرض تمثل ردود صافي تطبيع (إطلاق معدل ناقص النشاط الأساس) من الخلايا العصبية نفسه كما هو الحال في الشكل 6A-ج لحافز المفضل والعارضات (الخطوط العريضة للصورة المفضلة والعارضات) في اختبار الحد القياسي (اختبار الحد مع الأجزاء الموجودة في موقف المحتل في الشكل المخطط الأصلي؛ 4-يفتت المحفزات، الصف الأول؛ 8-يفتت المحفزات، والصف الثاني؛ المحفزات 16-يفتت، الصف الثالث). اللون في كل دائرة يشير إلى حجم الاستجابة (1 = 28 المسامير/s).

Watch this Scientific Journal Video about Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings at JoVE.com

Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings

ويرد بروتوكول مفصل لتحليل انتقائية كائن أمامي بريتو الخلايا العصبية المعنية في التحولات فيسوموتور.

التحقيق تمثيلات الكائن في مجرى Visual الظهرية المكاك استخدام التسجيلات وحدة واحدة

Previous studies have shown that neurons in parieto-frontal areas of the macaque brain can be highly selective for real-world objects, disparity-defined ...

investigating-object-representations-macaque-dorsal-visual-stream

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.2K Views.  Katholieke Universiteit Leuven. ويرد بروتوكول مفصل لتحليل انتقائية كائن أمامي بريتو الخلايا العصبية المعنية في التحولات فيسوموتور.

Video: Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings

Single-unit In vivo Recordings from the Optic Chiasm of Rat

Information about the visual world is transmitted to the brain in sequences of action potentials in retinal ganglion cell axons that make up the optic nerve. In vivo recordings of ganglion cell spike trains in several animal models have revealed much of what is known about how the early visual system processes and encodes visual information. However, such recordings have been rare in one of the most common animal models, the rat, possibly owing to difficulty in detecting spikes fired by small diameter axons. The many retinal disease models involving rats motivate a need for characterizing the functional properties of ganglion cells without disturbing the eye, as with intraocular or in vitro recordings. Here, we demonstrate a method for recording ganglion cell spike trains from the optic chiasm of the anesthetized rat. We first show how to fabricate tungsten-in-glass electrodes that can pick up electrical activity from single ganglion cell axons in rat. The electrodes outperform all commercial ones that we have tried. We then illustrate our custom-designed stereotaxic system for in vivo visual neurophysiology experiments and our procedures for animal preparation and reliable and stable electrode placement in the optic chiasm.

Single-unit In vivo Recordings from the Optic Chiasm of Rat

Retinal ganglion cells transmit visual information from the eye to the brain with sequences of action potentials. Here, we demonstrate how to record the action potentials of single ganglion cells in vivo from anesthetized rats.

وحدة واحدة في الجسم الحي تسجيلات من chiasm البصرية من الجرذ

Information about the visual world is transmitted to the brain in sequences of action potentials in retinal ganglion cell axons that make up the optic ...

Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses

There are two distinct classes of image-forming photoreceptors in the vertebrate retina: rods and cones. Rods are able to detect single photons of light whereas cones operate continuously under rapidly changing bright light conditions. Absorption of light by rod- and cone-specific visual pigments in the outer segments of photoreceptors triggers a phototransduction cascade that eventually leads to closure of cyclic nucleotide-gated channels on the plasma membrane and cell hyperpolarization. This light-induced change in membrane current and potential can be registered as a photoresponse, by either classical suction electrode recording technique1,2 or by transretinal electroretinogram recordings (ERG) from isolated retinas with pharmacologically blocked postsynaptic response components3-5. The latter method allows drug-accessible long-lasting recordings from mouse photoreceptors and is particularly useful for obtaining stable photoresponses from the scarce and fragile mouse cones. In the case of cones, such experiments can be performed both in dark-adapted conditions and following intense illumination that bleaches essentially all visual pigment, to monitor the process of cone photosensitivity recovery during dark adaptation6,7. In this video, we will show how to perform rod- and M/L-cone-driven transretinal recordings from dark-adapted mouse retina. Rod recordings will be carried out using retina of wild type (C57Bl/6) mice. For simplicity, cone recordings will be obtained from genetically modified rod transducin &alpha;-subunit knockout (T&alpha;-/-) mice which lack rod signaling8.

We describe a relatively simple method of transretinal electroretinogram (ERG) recordings for obtaining rod and cone photoresponses from intact mouse retina. This approach takes advantage of the block of synaptic transmission from photoreceptors to isolate their light responses and record them using field electrodes placed across the isolated flat-mounted retina.

Transretinal تسجيلات ERG من شبكية العين الفأر: ورود Photoresponses المخروط

There are two distinct classes of image-forming photoreceptors in the vertebrate retina: rods and cones. Rods are able to detect single photons of light ...

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from individual neurons are critical for understanding how neural circuits function under natural conditions. Traditionally, these recordings have been performed 'blind', meaning the identity of the recorded cell is unknown at the start of the recording. Cellular identity can be subsequently determined via intracellular1, juxtacellular2 or loose-patch3 iontophoresis of dye, but these recordings cannot be pre-targeted to specific neurons in regions with functionally heterogeneous cell types. Fluorescent proteins can be expressed in a cell-type specific manner permitting visually-guided single-cell electrophysiology4-6. However, there are many model systems for which these genetic tools are not available. Even in genetically accessible model systems, the desired promoter may be unknown or genetically homogenous neurons may have varying projection patterns. Similarly, viral vectors have been used to label specific subgroups of projection neurons7, but use of this method is limited by toxicity and lack of trans-synaptic specificity. Thus, additional techniques that offer specific pre-visualization to record from identified single neurons in vivo are needed. Pre-visualization of the target neuron is particularly useful for challenging recording conditions, for which classical single-cell recordings are often prohibitively difficult8-11. The novel technique described in this paper uses retrograde transport of a fluorescent dye applied using tungsten needles to rapidly and selectively label a specific subset of cells within a particular brain region based on their unique axonal projections, thereby providing a visual cue to obtain targeted electrophysiological recordings from identified neurons in an intact circuit within a vertebrate CNS.
The most significant novel advancement of our method is the use of fluorescent labeling to target specific cell types in a non-genetically accessible model system. Weakly electric fish are an excellent model system for studying neural circuits in awake, behaving animals12. We utilized this technique to study sensory processing by "small cells" in the anterior exterolateral nucleus (ELa) of weakly electric mormyrid fish. "Small cells" are hypothesized to be time comparator neurons important for detecting submillisecond differences in the arrival times of presynaptic spikes13. However, anatomical features such as dense myelin, engulfing synapses, and small cell bodies have made it extremely difficult to record from these cells using traditional methods11, 14. Here we demonstrate that our novel method selectively labels these cells in 28% of preparations, allowing for reliable, robust recordings and characterization of responses to electrosensory stimulation.

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

Retrograde transport of fluorescent dye labels a sub-population of neurons based on anatomical projection. Labeled axons can be visually targeted in vivo, permitting extracellular recording from identified axons. This technique facilitates recording when neurons cannot be labeled through genetic manipulation or are difficult to isolate using 'blind' in vivo approaches.

الفلورسنت وصفها الوراء يسمح لخارج الخلية المستهدفة واحدة وحدة التسجيل من الخلايا العصبية التي تم تحديدها<em&gt; في الجسم الحي</em

The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from ...

Simultaneous Whole-cell Recordings from Photoreceptors and Second-order Neurons in an Amphibian Retinal Slice Preparation

One of the central tasks in retinal neuroscience is to understand the circuitry of retinal neurons and how those connections are responsible for shaping the signals transmitted to the brain. Photons are detected in the retina by rod and cone photoreceptors, which convert that energy into an electrical signal, transmitting it to other retinal neurons, where it is processed and communicated to central targets in the brain via the optic nerve. Important early insights into retinal circuitry and visual processing came from the histological studies of Cajal1,2 and, later, from electrophysiological recordings of the spiking activity of retinal ganglion cells - the output cells of the retina3,4.
A detailed understanding of visual processing in the retina requires an understanding of the signaling at each step in the pathway from photoreceptor to retinal ganglion cell. However, many retinal cell types are buried deep in the tissue and therefore relatively inaccessible for electrophysiological recording. This limitation can be overcome by working with vertical slices, in which cells residing within each of the retinal layers are clearly visible and accessible for electrophysiological recording.
Here, we describe a method for making vertical sections of retinas from larval tiger salamanders (Ambystoma tigrinum). While this preparation was originally developed for recordings with sharp microelectrodes5,6, we describe a method for dual whole-cell voltage clamp recordings from photoreceptors and second-order horizontal and bipolar cells in which we manipulate the photoreceptor's membrane potential while simultaneously recording post-synaptic responses in horizontal or bipolar cells. The photoreceptors of the tiger salamander are considerably larger than those of mammalian species, making this an ideal preparation in which to undertake this technically challenging experimental approach. These experiments are described with an eye toward probing the signaling properties of the synaptic ribbon - a specialized synaptic structure found in a only a handful of neurons, including rod and cone photoreceptors, that is well suited for maintaining a high rate of tonic neurotransmitter release7,8 - and how it contributes to the unique signaling properties of this first retinal synapse.

We describe the preparation of thin retinal slices from aquatic tiger salamanders (Ambystoma tigrinum) and explain how we use these slices to study synaptic processing in the retina by obtaining dual whole-cell voltage clamp recordings from photoreceptors and second-order horizontal and bipolar cells.

في وقت واحد تسجيلات خلية كاملة من المستقبلات الضوئية والخلايا العصبية الدرجة الثانية في البرمائيات إعداد شريحة الشبكية

One of the central tasks in retinal neuroscience  is to understand the circuitry of retinal neurons and how those connections are  responsible for shaping ...

A Procedure for Implanting Organized Arrays of Microwires for Single-unit Recordings in Awake, Behaving Animals

In vivo electrophysiological recordings in the awake, behaving animal provide a powerful method for understanding neural signaling at the single-cell level. The technique allows experimenters to examine temporally and regionally specific firing patterns in order to correlate recorded action potentials with ongoing behavior. Moreover, single-unit recordings can be combined with a plethora of other techniques in order to produce comprehensive explanations of neural function. In this article, we describe the anesthesia and preparation for microwire implantation. Subsequently, we enumerate the necessary equipment and surgical steps to accurately insert a microwire array into a target structure. Lastly, we briefly describe the equipment used to record from each individual electrode in the array. The fixed microwire arrays described are well-suited for chronic implantation and allow for longitudinal recordings of neural data in almost any behavioral preparation. We discuss tracing electrode tracks to triangulate microwire positions as well as ways to combine microwire implantation with immunohistochemical techniques in order to increase the anatomical specificity of recorded results.

Implanting organized arrays of microwires for use in single-unit electrophysiological recordings presents a number of technical challenges.&#160;Methods for performing this technique and the equipment necessary are described.&#160;Also, the beneficial use of organized microwire arrays to record from distinct neural subregions with high spatial selectivity is discussed.

إجراء لغرس صالحة المنظمة من Microwires للتسجيلات واحدة وحدة في استيقظ، تتصرف الحيوانات

In vivo electrophysiological recordings in the awake, behaving animal provide a powerful method for understanding neural signaling at the single-cell ...

A Guide to In vivo Single-unit Recording from Optogenetically Identified Cortical Inhibitory Interneurons

A major challenge in neurophysiology has been to characterize the response properties and function of the numerous inhibitory cell types in the cerebral cortex. We here share our strategy for obtaining stable, well-isolated single-unit recordings from identified inhibitory interneurons in the anesthetized mouse cortex using a method developed by Lima and colleagues1. Recordings are performed in mice expressing Channelrhodopsin-2 (ChR2) in specific neuronal subpopulations. Members of the population are identified by their response to a brief flash of blue light. This technique &#8211; termed &#8220;PINP&#8221;, or Photostimulation-assisted Identification of Neuronal Populations &#8211; can be implemented with standard extracellular recording equipment. It can serve as an inexpensive and accessible alternative to calcium imaging or visually-guided patching, for the purpose of targeting extracellular recordings to genetically-identified cells. Here we provide a set of guidelines for optimizing the method in everyday practice. We refined our strategy specifically for targeting parvalbumin-positive (PV+) cells, but have found that it works for other interneuron types as well, such as somatostatin-expressing (SOM+) and calretinin-expressing (CR+) interneurons.

A Guide to In vivo Single-unit Recording from Optogenetically Identified Cortical Inhibitory Interneurons

Here we describe our strategy for obtaining stable, well-isolated single-unit recordings from identified inhibitory interneurons in the anesthetized mouse cortex. Neurons expressing ChR2 are identified by their response to blue light. The method uses standard extracellular recording equipment, and serves as an inexpensive alternative to calcium imaging or visually-guided patching.

دليل ل<em&gt; في الجسم الحي</em&gt; تسجيل وحدة واحدة من التي تم تحديدها Optogenetically القشرية التثبيطي Interneurons

A major challenge in neurophysiology has been to characterize the response properties and function of the numerous inhibitory cell types in the cerebral ...

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise from extra-retinal sources. Ex vivo ERG provides an efficient method to dissect the function of retinal cells directly from an intact isolated retina of animals or donor eyes. In addition, ex vivo ERG can be used to test the efficacy and safety of potential therapeutic agents on retina tissue from animals or humans. We show here how commercially available in vivo ERG systems can be used to conduct ex vivo ERG recordings from isolated mouse retinas. We combine the light stimulation, electronic and heating units of a standard in vivo system with custom-designed specimen holder, gravity-controlled perfusion system and electromagnetic noise shielding to record low-noise ex vivo ERG signals simultaneously from two retinas with the acquisition software included in commercial in vivo systems. Further, we demonstrate how to use this method in combination with pharmacological treatments that remove specific ERG components in order to dissect the function of certain retinal cell types.

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

Ex vivo ERG can be used to record electrical activity of retinal cells directly from isolated intact retinas of animals or humans. We demonstrate here how common in vivo ERG systems can be adapted for ex vivo ERG recordings in order to dissect the electrical activity of retinal cells.

متزامنة<em&gt; فيفو السابقين</em&gt; اختبار وظيفي اثنين من شبكية العين من قبل<em&gt; في الجسم الحي</em&gt; نظام مخطط كهربية

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise ...

A Visual Guide to Sorting Electrophysiological Recordings Using 'SpikeSorter'

Few stand-alone software applications are available for sorting spikes from recordings made with multi-electrode arrays. Ideally, an application should be user friendly with a graphical user interface, able to read data files in a variety of formats, and provide users with a flexible set of tools giving them the ability to detect and sort extracellular voltage waveforms from different units with some degree of reliability. Previously published spike sorting methods are now available in a software program, SpikeSorter, intended to provide electrophysiologists with a complete set of tools for sorting, starting from raw recorded data file and ending with the export of sorted spikes times. Procedures are automated to the extent this is currently possible. The article explains and illustrates the use of the program. A representative data file is opened, extracellular traces are filtered, events are detected and then clustered. A number of problems that commonly occur during sorting are illustrated, including the artefactual over-splitting of units due to the tendency of some units to fire spikes in pairs where the second spike is significantly smaller than the first, and over-splitting caused by slow variation in spike height over time encountered in some units. The accuracy of SpikeSorter's performance has been tested with surrogate ground truth data and found to be comparable to that of other algorithms in current development.

The article shows how to use the program SpikeSorter to detect and sort spikes in extracellular recordings made with multi-electrode arrays.

دليل مرئي لفرز تسجيلات الكهربية عن طريق &quot;SpikeSorter&quot;

Few stand-alone software applications are available for sorting spikes from recordings made with multi-electrode arrays. Ideally, an application should be ...

Visual Evoked Potential Recordings in Mice Using a Dry Non-invasive Multi-channel Scalp EEG Sensor

For scalp EEG research environments with laboratory mice, we designed a dry-type 16 channel EEG sensor which is non-invasive, deformable, and re-usable because of the plunger-spring-barrel structural facet and mechanical strengths resulting from metal materials. The whole process for acquiring the VEP responses in vivo from a mouse consists of four steps: (1) sensor assembly, (2) animal preparation, (3) VEP measurement, and (4) signal processing. This paper presents representative measurements of VEP responses from multiple mice with a submicro-voltage signal resolution and sub-hundred millisecond temporal resolution. Although the proposed method is safer and more convenient compared to other previously reported animal EEG acquiring methods, there are remaining issues including how to enhance the signal-to-noise ratio and how to apply this technique with freely moving animals. The proposed method utilizes easily available resources and shows a repetitive VEP response with a satisfactory signal quality. Therefore, this method could be utilized for longitudinal experimental studies and reliable translational research exploiting non-invasive paradigms.

We designed a dry-type 16 channel EEG sensor which is non-invasive, deformable, and re-usable. This paper describes the whole process from manufacturing the proposed EEG electrode to signal processing of visual evoked potential (VEP) signals measured on a mouse scalp using a dry non-invasive multi-channel EEG sensor.

تسجيلات المحتملة مقولة البصرية في الفئران باستخدام الجاف غير الغازية متعدد القنوات فروة الرأس الاستشعار EEG

For scalp EEG research environments with laboratory mice, we designed a dry-type 16 channel EEG sensor which is non-invasive, deformable, and re-usable ...

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Electroporation is an essential non-viral gene transfection approach to introduce DNA plasmids or small RNA molecules into cells. A sensory neuron in the dorsal root ganglion (DRGs) extends a single axon with two branches. One branch goes to the peripheral nerve (peripheral branch), and the other branch enters the spinal cord through the dorsal root (central branch). After the neural injury, the peripheral branch regenerates robustly whereas the central branch does not regenerate. Due to the high regenerative capacity, sensory axon regeneration has been widely used as a model system to study mammalian axon regeneration in both the peripheral nervous system (PNS) and the central nervous system (CNS). Here, we describe a previously established approach protocol to manipulate gene expression in mature sensory neurons in vivo via electroporation. Based on transfection with plasmids or small RNA oligos (siRNAs or microRNAs), the approach allows for both loss- and gain-of-function experiments to study the roles of genes-of-interests or microRNAs in regulation of axon regeneration in vivo. In addition, the manipulation of gene expression in vivo can be controlled both spatially and temporally within a relatively short time course. This model system provides a unique tool to investigate the molecular mechanisms by which mammalian axon regeneration is regulated in vivo.

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Electroporation is an effective approach to deliver genes of interests into cells. By applying this approach in vivo on the neurons of adult mouse dorsal root ganglion (DRG), we describe a model to study axon regeneration in vivo.

التحقيق إكسون الثدييات التجديد: في فيفو انهانسر من العقدة الجذر الظهرية الماوس الكبار

Electroporation is an essential non-viral gene transfection approach to introduce DNA plasmids or small RNA molecules into cells. A sensory neuron in the ...