Method Article
تحدد هذه المخطوطة طريقة النشاف والغطس لتجميد العينات البيولوجية يدويا للفحص المجهري الإلكتروني المبرد بجسيمات واحدة.
تصوير العينات البيولوجية مع الإلكترونات لتحديد هيكل عالية الدقة عن طريق المجهر الإلكتروني المبردة جسيمات واحدة (cryoEM) يتطلب طبقة رقيقة من الجليد الزجاجي التي تحتوي على الجزيئات الحيوية ذات الأهمية. على الرغم من التقدم التكنولوجي العديد في السنوات الأخيرة التي دفعت cryoEM جسيم واحد إلى طليعة البيولوجيا الهيكلية، والأساليب التي يتم بها تهتز العينات للتصوير عالية الدقة غالبا ما تبقى الخطوة التي تحد من معدل. على الرغم من أن العديد من الجهود الأخيرة وفرت وسائل للتغلب على العقبات التي كثيرا ما تواجه خلال تزجيج العينة ، بما في ذلك تطوير دعامات عينة جديدة وأجهزة التزجيج المبتكرة ، فإن المكبس التقليدي الذي يتم تشغيله يدويا لا يزال عنصرا أساسيا في مجتمع cryoEM بسبب انخفاض تكلفة الشراء وسهولة التشغيل. هنا، نقدم أساليب مفصلة لاستخدام معيار، على غرار المقصلة تعمل يدويا جهاز لطخة والغطس لتزجيج العينات البيولوجية للتصوير عالية الدقة من قبل cryoEM جسيم واحد. بالإضافة إلى ذلك، عادة ما تواجه مشكلات وتوصيات استكشاف الأخطاء وإصلاحها عندما يفشل إعداد قياسي في إنتاج عينة مناسبة يتم وصفها أيضا.
المجهر الإلكتروني المبرد أحادي الجسيمات (cryoEM) هو تقنية هيكلية قوية يمكن استخدامها لحل هياكل العينات البيولوجية الديناميكية إلى الدقة شبه الذرية1،2،3،4. في الواقع ، التطورات الأخيرة في تقنيات كشف الإلكترونات المباشرة4،5،6،7،8،9،10 ، والتحسينات في مصادر الإلكترونات4،11،12،13،14 ، واستقرار العدسة الكهرومغناطيسية15 ، إلى جانب التطوير المستمر للحصول على البيانات 16,17 وحزم برامج التحليل18,19, مكنت الباحثين من تحديد هياكل العينات حسنة السلوك بشكل روتيني الآن إلى 3 دقة Å أو أفضل4,11,13,14,20,21,22,23 . على الرغم من هذه القدرات المحسنة للتصوير ومعالجة البيانات ، لا يزال إعداد شبكة cryoEM أكبر عائق أمام تحديد الهيكل عالي الدقة الناجح وغالبا ما يكون بمثابة اختناق كبير في سير عمل EM24،25،26،27.
تعتمد CryoEM على تصوير العينات البيولوجية في المحاليل المائية المجمدة لتشكيل فيلم رقيق من الجليد "الشبيه بالزجاج" - وهي عملية تعرف باسم التزجيج - تحافظ على الحالة الكيميائية الحيوية الأصلية. يعود تاريخ تزجيج العينات البيولوجية للكريويم إلى أكثر من 40 عاما28,29,30 وتعتمد العديد من التقنيات والمعدات التي تم تطويرها لهذه العملية على طريقة النشاف والغطس المفصلة في الأصل31,32,33,34,35 ، حيث يتم تطبيق حجم صغير من العينة (على سبيل المثال، 1-5 ميكرولتر) على شبكة EM متخصصة قبل إزالة المحلول الزائد باستخدام التفاعل المادي للشبكة مع ورق النشاف. عادة ما يتم تحديد توقيت هذه العملية تجريبيا لكل عينة كمكون حاسم لعينات التجميد هو سمك فيلم الجليد الزجاجي - إذا كان الجليد سميكا جدا ، فإن جودة التصوير تتدهور بشكل كبير بسبب زيادة تشتت شعاع الإلكترون في حين أن الجليد الرقيق جدا يمكن أن يحد من اتجاهات البروتين و / أو يستبعد الجسيمات من وسط ثقوب رقائق الشبكة36 . وقد أدى هذا الاعتماد على سمك الجليد المثالي لالتبريد أحادي الجسيمات إلى مجموعة واسعة من التقنيات والمعدات التي يمكن تجميد العينات، بما في ذلك الروبوتات37،38، microfluidics42، وأجهزة الموجات فوق الصوتية أو الرش27،39،40،41،42،43،44 . في السنوات الأخيرة ، تعتمد بعض أجهزة إعداد العينات الأكثر شعبية على استخدام الروبوتات للتجميد الآلي للعينات باستخدام تقنية النشاف والغطس45. في حين تم تصميم هذه الأجهزة لخلق سمك الجليد بشكل مستنسخ مناسب للتصوير ، إلا أنها غالبا ما تظل مكلفة للغاية بالنسبة للمختبرات الفردية للشراء والتشغيل وتوجد بشكل عام داخل مرافق cryoEM بأسعار الساعة للاستخدام. في السنوات الأخيرة، عادت تقنية النشاف والغطس اليدوية الأصلية إلى الاستخدام المتزايد3,47,48,49,50,51,52. في الواقع ، يمكن لجهاز النشاف والغطس الذي يتم تشغيله يدويا تحقيق شبكات cryoEM عالية الجودة بجزء صغير من تكلفة النظراء الروبوتيين. وعلاوة على ذلك ، فإن النشاف اليدوي يوفر أيضا المزيد من المستخدمين التحكم في النشاف حيث يمكن للباحثين ضبط نوع النشاف (أي النشاف الخلفي للشبكة ، والنشاف الأمامي للشبكة ، وما إلى ذلك) ، ووقت النشاف استنادا إلى كل عينة على حدة وأسئلة البحث.
في هذه المقالة، نقدم تفاصيل حول كيفية تجميد العينات البيولوجية بشكل فعال باستخدام جهاز التزجيج اليدوي التقليدي إلى جانب منصة dewar مصممة خصيصا53. وتقدم أفضل الممارسات، بما في ذلك إعداد cryogen، والتعامل مع الشبكة، وتطبيق العينة، والنشاف، فضلا عن المزالق المشتركة والتوصيات حول كيفية التغلب على هذه العقبات. وتناقش المشورة بشأن كيفية زيادة سمك الجليد استنساخ بين الاستعدادات الشبكة وكيفية تعديل النشاف عينة على أساس نوع العينة البيولوجية. نظرا لانخفاض التكلفة المرتبطة بشراء وتشغيل المكبس اليدوي الموصوف في هذه المخطوطة، يمكن للمختبرات في جميع أنحاء العالم إعداد عينات بيولوجية للكريويم بطريقة فعالة من حيث التكلفة وقابلة للاستنساخ.
1. إعداد بيئة الغطس اليدوي
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 5-30 دقيقة
2. إعداد المواد والملحقات يغرق
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 1-5 دقائق
3. إعداد ديوار cryogen ومغطس دليل
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 5-15 دقيقة
4. إعداد cryogen
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 10-30 دقيقة
5. إعداد شبكات EM
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 1-5 دقائق
6. إعداد عينة cryoEM عن طريق يغرق تجميد
ملاحظة: وقت التشغيل المقدر: 10 دقائق > (~1-3 دقائق لكل شبكة)
سيؤدي التنفيذ الناجح لبروتوكول النشاف والغطس الموصوف هنا إلى طبقة رقيقة وموحدة من الجليد الزجاجي الخالي من أي جليد سداسي وملوثات وتدرجات كبيرة من الجليد غير القابل للاستخدام والتي يمكن ملاحظتها تحت المجهر الإلكتروني (الشكل 3). الاتصال غير المتسق لورق النشاف مع سطح الشبكة ، أو إزالة ورق النشاف قبل الأوان ، أو تحريك ورقة النشاف أثناء اتصال الشبكة يمكن أن يقلل من جودة الجليد الزجاجي ويؤدي إلى سمك جليدي غير متناسق عبر شبكة EM (الشكل 4)
الشكل 1: عينة يغرق غرفة والمعدات المطلوبة. أ) غرفة باردة نظمت لتجميد يدوي من العينات البيولوجية باستخدام جهاز لطخة والغطس التقليدية المبينة في هذه المقالة. يتم عرض المعدات اللازمة ووضع العلامات وفقا لذلك. ب) لضبط ارتفاع العمل من المكبس اليدوي، وضبط وقف عثرة عن طريق الانزلاق صعودا وهبوطا الذراع يغرق دليل وتأمينه عن طريق تشديد المسمار. ج) التكبير في عرض السفينة الإيثان ومنصة تخزين شبكة الغزل للإشارة إلى الارتفاع المناسب والموقع من ملاقط لقط والشبكة داخل سفينة الإيثان النحاس فارغة. يجب أن لا تتصل الملاقط والشبكة بجوانب أو أسفل الإيثان النحاسي لتجنب الضرر. د) الارتفاع المناسب وموقع ملاقط لقط والشبكة في الإيثان السائل. يجب أن تدخل الملاقط والشبكة الإيثان السائل في المركز ، وتجنب الاتصال مع الإيثان الصلب في المحيط. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: الإيثان السائل المعد. التكبير في عرض ل dewar يغرق تظهر حالة الإيثان السائل في وعاء الإيثان النحاس قبل تجميد العينة. حلقة 2-3 ملم من الإيثان الصلب داخل وعاء الإيثان النحاسي مرئية بوضوح. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: صور أبوفيريتين التمثيلية التي تم الحصول عليها باستخدام تقنية النشاف والغطس اليدوية. (أ) أطلس تمثيلي لشبكة cryoEM يظهر سمك الجليد وجودة مربعات الشبكة التي يمكن الحصول عليها باستخدام تقنية النشاف والغطس اليدوية. (ب) ميكروجراف مصحح بالحركة من أبوفيريتين الماوس الهزاز المكتسبة باستخدام المجهر الإلكتروني انتقال 200 كيلو فولت مجهزة كاشف الإلكترون المباشر في جامعة كاليفورنيا، مرفق CryoEM في سان دييغو. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: أطلس تمثيلي لشبكة cryoEM دون المستوى الأمثل تظهر سمك الجليد غير متناسقة عبر الشبكة، والعديد من المربعات المكسورة، والمناطق التي الجليد سميكة جدا لتصوير العينة.
لا يزال تزجيج العينات البيولوجية للتصوير عن طريق المجهر الإلكتروني المبرد أحادي الجسيمات (cryoEM) خطوة بالغة الأهمية لتحديد الهيكل الناجح. تمثل طريقة النشاف والغطس اليدوية الموصوفة في هذا البروتوكول طريقة فعالة من حيث التكلفة وموثوقة وقوية لتجميد العينات البيولوجية بسرعة في أفلام رقيقة من الجليد الزجاجي للتصوير بالتبريد. وباستخدام الأساليب المبينة في المخطوطة، سيتمكن الباحثون من تجميع وتشغيل المكبس اليدوي، وإعداد المبرد المناسب للعينات البيولوجية التجميدية، وشبكات EM الملطخة يدويا التي تحتوي على عينات بيولوجية. في حين أن هذه الطريقة قوية جدا، ينبغي توخي الحذر خلال الخطوات الحاسمة في هذا الإجراء للحصول على سمك الجليد الأمثل وجودة للتصوير عالي الدقة. لقد حددنا العديد من هذه الخطوات الهامة أدناه ونقدم توصيات حول كيفية استكشاف هذه الخطوات وإصلاحها.
من الضروري وضع ذراع الغطس اليدوي بشكل صحيح لضمان أن الشبكة تقع في مركز الإيثان السائل داخل السفينة النحاسية بعد الغطس. ارتفاع غير لائق أو موقف من الذراع يغرق و / أو عدم تأمين ملاقط بشكل صحيح سيؤدي إلى تلف ملاقط لقط، وشبكة EM، وربما المكبس اليدوي. كما نوقش أعلاه، ونحن دائما أداء تجربة واحدة على الأقل تشغيل قبل إعداد العينات البيولوجية للتحقق من أن شبكة EM سوف تحدد موقع إلى مركز السفينة الإيثان النحاس بعد هبوط ناجح (الشكل 1C). وبالإضافة إلى ذلك، نقوم أيضا بإجراء تعديلات طفيفة على موقع dewar يغرق بعد تجميد كل شبكة لضبط موضع الشبكة داخل سفينة الإيثان (الشكل 1D).
التحضير السليم للكريوجين الإيثان أمر بالغ الأهمية للحصول على أفلام رقيقة من العينات البيولوجية في الجليد الزجاجي. وقد لاحظنا أن وجود حلقة من الإيثان الصلب من عيار 2-3 مم حول الحافة الداخلية لوعاء الإيثان النحاسي يضمن أن درجة حرارة الإيثان السائل هي المثلى لتزجيج العينة (الشكل 2). في الواقع ، بعد تجميد كل شبكة ، نراقب جودة الإيثان ونجري تعديلات طفيفة - الاحترار قليلا للسفينة إذا كان الكثير من الإيثان قد عزز أو يبرد الإيثان إذا كان النظام قد استعد - حسب الحاجة. لقد وجدنا أن حافة ملاقط درجة حرارة الغرفة كافية لتسييل الإيثان الصلب أثناء تغطية الديوار بغطاء الرغوة لمدة 1-5 دقائق هو الوقت الكافي للسماح للإيثان بالتبريد. والأهم من ذلك، أننا نجري هذه التعديلات قبل إعداد سطح الشبكة (أي تنظيف البلازما) وتطبيق العينة على الشبكة لأن هذا يمكن أن يدخل متغيرا آخر لإعداد الشبكة غير قابل للاستنساخ.
وأخيرا، نوصي بتطوير روتين موحد لللطخ والغطس - تطبيق العينة، ولطخ العينة، ووقت النشاف - لزيادة إمكانية إعادة الإنتاج من الشبكة إلى الشبكة. الانحناء ورقة النشاف نحو الشبكة م يسمح للاتصال موحدة من الورق مع الشبكة وتنتج سمك الجليد أكثر اتساقا عبر الشبكة بأكملها، مما أدى إلى توزيع الجسيمات حتى داخل ثقوب الشبكة (الشكل 3A والشكل B، على التوالي). هذه الطريقة من النشاف على النقيض من أجهزة النشاف الروبوتية التي تتفاعل مع العينة بزاوية قد تؤدي إلى تدرج من سمك الجليد عبر الشبكة. بالإضافة إلى ذلك، هذا الانحناء من ورقة النشاف يقلل أيضا من فرصة إتلاف الشبكة EM عند الاتصال مع ورقة النشاف عن طريق التخزين المؤقت للقوة التي يتم تطبيقها من قبل المستخدم. بعد وقت النشاف المطلوب ، قم بسرعة بتصويب ورقة النشاف من خلال إجراء حركة عض لتحريك ورقة النشاف بسرعة بعيدا عن سطح الشبكة قبل الغطس لمنع تلف الشبكة عند إطلاق ذراع الغطس اليدوي. لقد وجدنا هذه الطريقة النشاف والحركة العض من ورقة النشاف، عندما توقيت مع الإفراج في وقت واحد من الذراع يغرق دليل عبر دواسة القدم، ويحد من تبخر الفيلم رقيقة قبل التزجيج ويزيد من إعادة إنتاج الشبكة إلى الشبكة.
طريقة لطخة والغطس اليدوية الموصوفة هنا هي طريقة قوية وموثوقة تساعد على تقليل بعض العبء المالي الذي يمكن أن يضعه cryoEM على المختبرات الناشئة. في حين أن هذه الطريقة قابلة للاستنساخ ، فإن إنشاء جليد حيوي عالي الجودة مناسب للكريويم يعتمد على خبرة ومهارة الباحث الفردي. على الرغم من أن المكبس الروبوتية وغيرها من التكنولوجيات الناشئة أتمتة عدة جوانب من عملية التجميد، فهي محدودة عموما من قبل مدى السيطرة التي تقدمها للباحثين وغالبا ما تتكبد ثمنا باهظا لشراء وتشغيل. مع الطريقة المبينة في هذا البروتوكول ، سيتمكن الباحثون من الاستفادة من منصة إعداد شبكة EM بأسعار معقولة وتنوعا توفر المرونة لتحسين ظروف الهبوط (أي أنواع ورق النشاف ، وزاوية النشاف ، وفترات النشاف ، واتجاهات النشاف ، وما إلى ذلك) استنادا إلى أنواع العينة والخصائص.
ليس لدينا ما نكشفه
نشكر أعضاء مختبر هيرزيك على التفكير النقدي وتقديم الملاحظات حول هذه المخطوطة ومحتوى الفيديو. M.A.H.Jr. مدعوم من قبل NIH R35 GM138206 وكباحث سيرل. H.P.M.N مدعوم بمنحة التدريب على الفيزياء الحيوية الجزيئية (NIH T32 GM008326). كما نود أن نشكر بيل أندرسون وتشارلز بومان والدكتور غابرييل لاندر في معهد سكريبس للأبحاث للمساعدة في تصميم وتجميع واختبار المكبس اليدوي المعروض في الفيديو.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
4 slot grid storage box | Ted Pella | 160-40 | |
14 gauge flat metal dispensing tip | Amazon | B07M7YWWLT | |
22x22 mm square glass coverslip | Sigma | C9802-1PAK | |
60 mm glass Petri dish to store grids | Fisher | 08-747A | |
100 mm glass Petri dish to store Whatman paper | Fisher | 08-747D | |
150 mm glass Petri dish to store Whatman paper | Fisher | 08-747F | |
250 mL beaker | Fisher | 02-555-25B | |
Blue styrofoam dewar | Spear Lab | FD-500 | |
Brass ethane vessel | Lasco | 17-4075 | |
Clamping tweezers | Ted Pella | 38825 | |
Delicate task wipes | Fisher | 06-666 | |
Dual-stage regulator with control valve | Airgas | Y12N245D580-AG | |
Dewer grid base | UCSD | ||
Ethane platform | UCSD | ||
Ethane propane tank | Praxair | ET PR50ZU-G | ethane (50%) : propane (50%) in a high-pressure tank |
Ethane tank | Praxair | UN1035 | ethane (100%) |
Flexible arm task light | Amscope | LED-11CR | |
Grids (UltrAufoil R 1.2/1.3 300 mesh) | Electron Microscopy Sciences | Q325AR1.3 | |
Humidifier | Target | 719438 | |
Hygrometer | ThermoPro | B01H1R0K68 | |
Lab coat | UCSD | ||
Liquid Nitrogen dewar | Worthington | LD4 | |
Liquid Nitrogen gloves | Fisher | 19-059-925 | |
Manual plunger stand (black stand + foot pedal) | UCSD | ||
Mark 5 (plunging platform) | UCSD | ||
Nitrile gloves | VWR | 82026-424 | |
P20 pipette | Eppendorf | 13-690-029 | |
PCR tubes | Eppendorf | E0030124286 | |
Pipette tips | ibis scientific | 63300005 | |
Ring lamp | Amazon | B07HMR4H8G | |
Safety glasses | UCSD | ||
Scissors | Amazon | Fiskars 01-004761J | |
Screw driver | Ironside | 354711 | |
Tape | Fisher | 15-901-10R | |
Tweezer to transfer grid box | Amazon | LTS-3 | |
Tygon tubing | Fisher | 14-171-130 | |
Whatman blotting paper | Fisher | 1001-090 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved