Andrew Cripps ve Reading Üniversitesi BioResource birimi teşekkür etmek istiyorum. Bu araştırma BBSRC tarafından finanse edildi (izni numarası: BB/K010123/1). Bu iş ile ilişkili veriler Y.Z. (ying.zheng@reading.ac.uk) serbestçe kullanılabilir.

Tüm deneyler (hayvanlar (bilimsel yordamlar) Yasası, 1986) İngiliz İçişleri Bakanlığı yönetmeliklerine uygun olarak gerçekleştirilen ve okumada Üniversitesi UK araştırma Etik Komitesi tarafından onaylanmış.
1. hayvan hazırlık
Not: Tüm deneyler için kadın Lister kukuletalı fareler kullanıldı. Bu bir hayatta kalma olmayan yöntemdir.
<ol><li>Sıçan ağırlık bir laboratuvar ölçekte kaydedin.</li>
	<li>%5 isoflurane ve 1 L/dak bir oksijen akış hızı ile bir oda içinde sıçan anestezi.</li>
	<li>Fareyi bir stereotaksik tutucu ısırık çubuğunu dinlenme dişlerinin ile gövdenin altında bir kağıt havlu ile üzerine yerleştirin... Kağıt havlu bir ısı yastık ekleme daha kolay hale getirecek (bkz. Adım 2.3) ve fare üzerinden herhangi bir dışkı deneme sırasında yakalamak.</li>
	<li>İsoflurane sıçan adaptör bir konsantrasyon %3 0,5 L/dk. Bağlan koni küçük hayvan isoflurane anestezik sistemine bir oksijen akış hızı ile burun kıskacı üzerine monte edilmiş bir sert plastik burun konisi ile sürekli olarak yönetmek.</li>
</ol>2. cerrahi müdahale
<ol><li>Termostatik Isıtma Yastığını üzerine fareyi dinleniyor kağıt havlu altında Ekle, sıçan kafa iki kulak çubuğu ile güvenli ve rektal termometreyi kullanarak vücut sıcaklığını izlemek.</li>
	<li>Sıçan başının tıraş.</li>
	<li>Oftalmik merhem kornea kurutma önlemek için gözler için geçerlidir.</li>
	<li>Kafatası açığa önce kafa derisi için uygulamak lidokain damla ve cilt içine yavaşça masaj.</li>
	<li>Bir ensizyon yaklaşık 2-3 cm kafatası yüzeyinde ortaya çıkarmak için bir neşter kullanarak kafa derisi üzerinde olun.</li>
	<li>Dikkatle temporalis kas contra-lateral Jacquette Scaler ve tırtıklı ve eğri diseksiyon forseps bir çift kullanarak kafatasından uyarılmış olmak bıyık rampasına ayırın. Kafatası ile pamuk temizleme bezi gerektiğinde temiz.</li>
	<li>Örgülü ipek kullanarak, absorbe olmayan dikiş, ayrı kas kafa derisi ile sıkı bir düğüm kravat ve dikiş stereotaksik çerçeve18' e güvenli kravat.</li>
	<li>6 mm orta hat19' a lateral ve stereotaksik koordinatları varil korteks, 2.5 mm bregma için Kaudal bulmak için kullanın. Bir nokta bir kalem veya bir işaretleyici kullanarak somatosensor korteks konumda çizin.</li>
	<li>
Burr delik dişlerle ilgili bir matkap kullanarak işaretli yeri. Kafatası Delme sırasında ısınmasını önlemek için steril serum fizyolojik (% 0,9 Sodyum Klorür) çalışma alanının her 10-15 s geçerli. Delme işlemi aşağıdaki 3 adımları içerir:
	<ol>
<li>< 2 mm çapında delik matkap #4 (0.055 çapı) kullanarak kafatası içine. Dura inebilecek değil kendine iyi bak.</li>
		<li>#1/4 (0.019 çapı) bir matkap kullanarak transparans deliğe alt ince.</li>
		<li>27 G iğne bir elektrot ekleme izin dura işlemek için kullanın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Stereotaksik bir kareye bir titreşim yalıtım iş istasyonu üzerine monte edilmiş Faraday kafesi üzerinde güvenli sıçan aktarın.</li>
	<li>Sürekli olarak aşağıdaki fizyolojik parametrelerini izlemek için bir oksimetre kontrol ünitesi için sıçan arka pençe için bağlı bir oksimetre sensör kelepçe takmak: kalp hızı, nefes oranı, Arteryel oksijen doygunluğu, nabız şişkinlik ve nefes şişkinlik. Bu parametreler fizyolojik durum ve farenin anestezi derinliği yansıtan bir PC monitörü sürekli olarak sergilendi.</li>
	<li>Sert plastik burun konisi isoflurane Yönetim için eski yerine koymak ve sıçan adaptör ile bir şeffaf yumuşak burun olan koni ile donatılmış bir microflex nefes burun kıskacı (şekil 1A) bir yana kolay bıyık uyarılması bıyık izin vermek için değiştirilme tarihi isoflurane yönetim ödün vermeden yastık.</li>
	<li>İki paslanmaz çelik uyarıcı elektrot için boşaltma burun konisi üzerinde açığa bıyık yastık yerleştirin.</li>
	<li>Uyarıcı elektrotlar izole bir geçerli Stimülatörü bağlayın.</li>
	<li>Orta hat boyun deri Forseps ile Asansör ve bir 1 olun ~ 2 cm kesi makasla referans elektrot yerleştirme için hazır. Kas dokusu kesmemeye dikkat çekmek.</li>
</ol>3. ortak yerelleştirilmiş EEG/LFP Kur
<ol><li>Temiz ve kuru bir pamuk bez kullanarak burr deliği çevreleyen kafatası.</li>
	<li>Dikkatle iletken EEG Yapıştır bir düz bir EEG örümcek elektrot tarafında yer. Hamur ve örümcek elektrot başvurmadan delikten geçmek bir multi-Laminer elektrot izin vermek için örümcek elektrot üzerinde küçük bir delik EEG hamur açık bırakın. Bu EEG elektrot elektrot arasındaki elektriksel temas engeller.</li>
	<li>Kafatası, burr deliği için örümcek elektrot kafatası karşı karşıya EEG yapıştır ile hizalayın.</li>
	<li>Dikkatle örümcek elektrot EEG yapıştır ile kafatası ile firma iletişim yapma kafatası üzerine basın. Bir iğne üzerinde kullanarak burr deliği engellemeyecek herhangi bir hamur kaldırın.</li>
	<li>Örümcek elektrot ve kafatası arasındaki temas dağınık şekilde (şekil 1B) elektrot boyutu için sınırlıdır örümcek elektrot çevre ötesinde aşırı EEG Yapıştır kaldırarak.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig1.jpg"> Şekil 1: eşzamanlı EEG/LFP kayıt için genel kurulum. (A) Kurulum bıyık yastık stimülasyon isoflurane anestezi altında kolaylığı için değiştirilmiş bir burun konisi oluşur, bıyık eklenen iki uyarıcı elektrot yastık, kafatası üzerinde varil korteks contra-lateral için üzerinde konumlandırılmış bir örümcek elektrot sıçan boyun arkasında bir kesik içinde uyarıcı elektrotlar, varil korteks örümcek elektrot ve referans elektrotlar aracılığıyla eklenen bir çok kanallı elektrot yerleştirilir. (B) A görünümü ile mikroskop örümcek elektrot kafatası EEG Yapıştır tarafından güvenli bir şekilde konumlandırılmış. Elektrot takılan örümcek elektrot altında kafatası ayrıntılarına burr deliği. Kafa derisi geri stereotaksik çerçeveye bağlı cerrahi iş parçacığı (dikiş) tarafından düzenlenmektedir. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<ol start="6"><li>EEG hamur üzerine referans elektrot için EEG yayma ve güvenli bir şekilde belgili tanımlık kesme sıçan boyun arkasında içine yerleştirin.</li>
	<li>EEG elektrotlar Pre amplifikatör için düşük empedansı sinyalleri (Şekil 2) bir pasif sinyali dallandırıcı ile bağlayın. Örümcek elektrot empedans 5 kΩ altında olduğundan emin olun. Yoksa, kontrol EEG Yapıştır kafatası ile iyi temas ve elektrot sıkıca EEG yapıştırmak için bastırdı. Daha fazla EEG yapıştırın ekleyin.</li>
	<li>Micromanipulator kol stereotaksik karede bağlayın. Bir doğrusal 16 kanal elektrot (100 µm Aralık, alan her site 177 µm2) güvenli bir şekilde micromanipulator kol kırpılır 16 kanal akut headstage bağlayın.</li>
	<li>Smear EEG EEG ve elektrot için referans elektrotlar yapıştırın, sonra güvenli bir şekilde yer onları içinde belgili tanımlık kesme (şekil 1A).</li>
	<li>Elektrot kortikal yüzeye dik micromanipulator kol açısını ayarlamak. Bu normalde 25-35 ° arasındaki açıdır.</li>
	<li>Elektrot bir mikroskop altında böylece en üstte yer alan elektrot sadece kortikal yüzeyi nüfuz kadar elektrot ucunu burr deliği dibinde küçük açılması hedefleniyor micromanipulator kolları çevirerek indirin. Bu elektrot kıracak gibi dura yüzeyinin elektrot zorlama uzak durmaya özen göstermelidir.</li>
	<li>Çift bir Pre amplifikatör için 16 kanal elektrot bir fiber optik kablo (Şekil 2) üzerinden veri edinme birimine bağlı.</li>
	<li>Pre amplifikatör, veri alma birimi ve birim için bağlı olduğu bilgisayarda açın. Uyarıcı kutusunu açın.</li>
	<li>Elektrot kortikal yüzeye normal olarak yavaş yavaş derinliğe kadar 1.500 µm20micromanipulator z ekseni düğme çevirerek yerleştirin.</li>
	<li>Mikro-derinlik bıyık yastık için uyarıcı bir tren uygulama ve 16 kanallı uyarılmış LFP istimal bilgisayar yazılımı installed üstünde PC veri edinme biriminin bir PC monitörü olarak gözlemleyerek ayarlayın. Dikkatle (Bu tabaka IV kortekste ile çakışacak şekilde) uyarılmış LFP en yüksek genlik Kanal 7 oluşana kadar z ekseni topuzu micromanipulator üzerinde açın. Not: Ipsi-lateral EEG elektrot Kurulum: bazı deneyler için olduğu gibi "Kurukafa" varil korteks ipsi-lateral tarafında ikinci bir örümcek elektrot yerleştirildi. Bu kurulum EEG sinyal burr deliği etkisini araştırmak ikili EEG sırasında dinlenme devlet kayıt izin. Not: EEG elektrot ayarlamak için cerrahi müdahale sırasında adım 2.6 dışında yukarıda açıklanan aynıdır, temporalis kas her tarafında başı kafatasından ayrılmış dikkatle, geri sütüre ve güvenli bir şekilde karşılık gelen yan tarafına bağlı stereotaksik çerçeve. Not: Eşzamanlı EEG/LFP Kur aynı zamanda yukarıda açıklanan ikinci bir örümcek elektrot EEG yapıştır ile dolu, sonra sonra sıkıca ipsi-lateral varil korteks "Kurukafa" için baskı olduğunu ek bir adım ile aynıdır.</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig2.jpg"> Şekil 2. Bir sinyal akış diyagramı. Fareyi bir Faraday kafesin içinde yer alıyor. Uyarıcı elektrotlar tarafından veri edinme birimi onun bilgisayar yazılımı installed üstünde a PC üzerinden kontrol stimulatoru kutusundan komutlarını alan. Elektrot tarafından kaydedilen sinir sinyal öncesi bir amplifikatör Faraday kafesi içinde iletilir. EEG sondası tarafından kaydedilen sinir sinyal öncesi amplifikatör sinyali dallandırıcı ile iletilir. Öncesi amplifikatör Faraday kafesi bir fiber optik kablo üzerinden dışında veri edinme birimine bağlı. Bir PC monitörü da görüntülenebilir iken sinirsel veri sonra PC, yerel bir sürücüde depolanır. Bir mobil küçük hayvan isoflurane sistemi üzerinden isoflurane Faraday kafesi dışında yönetir. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
4. elektriksel stimülasyon ve sinirsel kayıtları
Not: Tüm sinirsel verileri örnekleme frekansı 24.41 kHz 16 bit ile çözümlemesidir. Bir deneme bir tek elektrik stimülasyon duruşmanın başında oluşur. Ayrıca arası uyarıcı (ısı) aralığıdır her deneme sürer 10 s. Her uyarıcı 1.2 kare geçerli bir darbe olduğunu burr deliği, 250 durumunu dinlenme sürekli etkisini incelemek için iki taraflı deneyler için 0.3 Bayan süren mA s de kaydedildi.
<ol><li>Kayıt yazılımı bilgisayarda kullanmak üzere açın.</li>
	<li>Deney için doğru devre 'Proje...' 'OpenProject' açılan menüsünden seçerek yükleyin. Yeni bir pencere ('WorkBench') (şekil 3) görünür.</li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig3.jpg"> Şekil 3. A göstermek için veri toplama birimini GUI yazılım Karşıya yüklenecek uygun devre, stimülasyon parametreleri ayarlamak için ve kaydedilen ve görüntülenmeyecektir için veri sağlar. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<ol start="3"><li>
Sinirsel kayıtları saklamak için (bir 'Tank' yazılım tarafından denir) yeni bir dizin oluşturun.
	<ol>
<li>'Dosya' penceresinin üst tıklayın ve 'Veri görev Yönetimi' seçin. Yeni bir pencere ('Tank Yönetimi') görünür.</li>
		<li>'Tank Yönetimi' penceresinde, bir menüyü görüntülemek için farenin sağ tuşuna basın. ' Yeni Tank' ı seçin. Başka bir yeni pencere ('oluşturmak veri Tank') görünür.</li>
		<li>'Oluşturmak veri Tank' penceresinde, yeni bir veri dizini oluşturmak için planladığınız yolu seçin ve yeni dizinin adını girin. Sonra "OK" tuşuna basın. Bu pencere kaybolur.</li>
		<li>Yeni dizinin 'Tank Yönetimi' penceresi, gri görüntülenir. Bu dizin üzerinde sağ tıklatarak kayıt ve 'Kayıt Tank' açılan menüden seçin. Kırmızı bir yıldız ve yeşil bir ok siyah (şekil 4) şimdi olan yeni dizinin adını solunda görünür.</li>
		<li>Önceki herhangi bir dizin kullanımda açılan menüden 'Tank Yönetimi' penceresinde sağ tıklatıp seçerek 'Tank liste Yenile' kaydını kaldırın.</li>
		<li>'Tank Yönetimi' penceresinden çıkmak için 'Tamam' tıklatın.</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig4.jpg"> Şekil 4: yazılım GUI kayıtlı veri dizini gösteren bir ekran. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<ol start="4"><li>
'Sinir sinyalleri deneme sırasında görüntülemek için kapsam' yeni dizine kaydedin.
	<ol>
<li>'OpenProject' pencere 'Kapsamı' simgesine tıklayın. Yeni bir pencere ('kapsamı') görünür.</li>
		<li>'Kapsamı' penceresinde fareyi sağ tıklatın ve açılan menüden 'Tank liste Yenile' seçin. Yeni dizinin adını gri görünür.</li>
		<li>Yeni dizin'i tıklatın. Kırmızı bir yıldız ve yeşil bir ok artık siyah olan yeni dizinin adını solunda görünür.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Veri toplama için deneysel parametreleri 'Setup' penceresinin üst tıklayarak 'WorkBench' penceresinde ayarlayın. Yeni pencere-ecek gözükmek. 'Döngü süpürme' seçin, deneme ve kaydedilecek denemeler sayısı uzunluğunu ayarlayın.</li>
	<li>Uyarıcı kutusu açık olduğunu kontrol edin.</li>
	<li>'WorkBench' pencere 'Kayıt' düğmesine basın. Yeni pencere-ecek gözükmek. Kaydetmek için deneysel çalıştırmak istiyorum ama dönüş düğmesi olarak ayarlanması EEG kayıt parametreleri gerek bu aşamada vurmak yok veri dosyasının adını girin.</li>
	<li>
Öncesi amplifikatör grafik kullanıcı arabirimi (GUI) kullanarak EEG kayıt parametrelerini ayarlayın. Dokunmatik ekran yukarı uyandırmak Pre amplifikatör, ekran (yerde). 'Görüntü (şekil 5) kilidini açmak için Unlock' seçin.
	<ol>
<li>' 2 sol simgesine basın: EEG' paneli. Yeni bir ekran görüntülenir.</li>
		<li>'Bağlantı' tuşuna basıp 'AC' seçeneğini belirleyin.</li>
		<li>Sıkıştırma 'Ref tarz' ve 'Yerel' seçin.</li>
		<li>Basın 'Samp oran' ve ' 25 KHz seçin '.</li>
		<li>Özgün ekranýna dönmek için ' Tamam' tuşuna basın.</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig5.jpg"> Şekil 5: GUI ön amplifikatör. EEG ayarlamak için parametreleri (örneğin, örnek sık sık oluş ve başvuru tercih) kayıt sağlar. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<ol start="9"><li>EEG probe(s) empedans ' 2 Orta simgesine basarak kontrol: EEG' paneli. Çok yüksek, daha fazla EEG Yapıştır sonda için ekleyin. Özgün ekranýna dönmek için ' Tamam' tuşuna basın.</li>
	<li>EEG kayıtlarının ilk dalgalanma kaydı önlemek için bekle 20 s.</li>
	<li>PC monitör (sonra 20 s bekle) ve 'Return' tuşuna basın klavyede dönmek. EEG ve LFP sinyalleri kaydedilecektir.</li>
</ol>5. veri analizi
<ol><li>
Aşağıdaki adımları izleyerek deneme deneme olarak uyarılmış LFP ve EEG sinyallerini ön işlemden.
	<ol>
<li>Geri sinirsel veri 20 örnekleri (0,82 ms için eşdeğer) tarafından zamanında kaydır. Bu TDT kendisini sinirsel verilerini toplamak üzere kullanılan devre tarafından üretilen gecikme olduğunu. Verileri değişen, sıfır noktası uyarıcı başlangıcı aynı hizaya.</li>
		<li>1 0 veri neural değiştirerek uyarıcı artifakı kaldırmak ms verileri bağlayan düz bir çizgi ile işaret 0 ms veri noktasıyla 1 ms.</li>
		<li>Sıfır-her sinir sinyal uyarıcı başlangıçlı önce 200 ms ortalama değerini çıkararak demek.</li>
		<li>Alçak geçiren Filtre veri 800 Hz verilerdeki herhangi bir geçici vardiyası tanıtımı için her iki yönde de 4th emrimiz Butterworth IIR türü filtresi kullanarak aşağıda.</li>
		<li>Multi-Laminer verileri hayvanlar arasında hizalama. Tersini geçerli kaynak yoğunluğu her hayvanın LFP veriler için geçerli (eğri iCSD, kaynak yarıçapı R = 0.5 mm) analiz21 Gauss filtre ile (λ = 50 µm) IV lavabo bir kortikal meydana gelen en büyük negatif tepe tarafından verilen1, katmanın bulmak için Derinlik ilk 15 ms uyarıcı başlangıç içinde pial yüzeyinin altında. CSD ve karşılık gelen LFP veri sonra hayvanlar arasında lavabo konumlarına göre hizalanır. Yaygın lavabo IV, katmanda bulunan ~ 600 µm pial yüzeyinin altında.</li>
		<li>Hizalama sonra Kanal 2, 7 ve realigned LFP 12 supragranular, taneli, sinirsel tepkiler temsilcileri olarak ve infragranular katmanlar, sırasıyla varil korteks kullanın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Önceden işlenen verileri üzerinde 100 denemeler sayı ortalaması alınarak LFP ve EEG ortalamasını uyarılmış hesaplayın.</li>
	<li>EEG burr deliği etkisini araştırmak için aşağı-örnek EEG 1000 Hz ve compute güç spektral yoğunluğu (PSD) contra-lateral (kafatası bir delikle) ve ipsi-lateral (olduğu gibi kafatası) için örümcek elektrot kayıtları bir 250 s süre içinde sinyalleri Devlet dinleniyor. PSD 0.1-100 hesaplanan Hz cinsinden Matlab kullanarak işlev 'pmtm' multitaper yöntemi22tarihinde dayanmaktadır.</li>
	<li>Frekans aralığı aşağıdaki iyi bilinen frekans bantlarında bölmek: Delta (δ): 0.1-4 Hz, teta (): 4-8 Hz, Alpha (α): 8-13 Hz, Beta (β): 13-31 Hz, gama (γ): 31-100 Hz. hesaplamak her grup içinde ortalama PSD.</li>
	<li>Her frekans bandı içinde PSD, Perr, Kontra - ve denklemi kullanarak ipsi-lateral EEG arasında normalleştirilmiş farkı hesaplamak: <img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/56447/56447eq1.jpg"> Pc ve Pben PSD, Kontra - ve ipsi-lateral EEG, ilgi sırasıyla frekans bandında ortalama nerede.</li>
	<li>Her frekans bandı içinde iki hemisferlerin kaydedilen EEG sinyal PSD arasında bir tek örnek t-(0,05 önem düzeyinde) anlamlı bir fark olduğu varsayımını sınamak için test gerçekleştirin.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mitzdorf, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+source-density+method+and+application+in+cat+cerebral+cortex:+investigation+of+evoked+potentials+and+EEG+phenomena.">Current source-density method and application in cat cerebral cortex: investigation of evoked potentials and EEG phenomena.</a> Physiol Rev. 65 (1), 37-100 (1985).</li><li>Logothetis, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Underpinnings+of+the+BOLD+Functional+Magnetic+Resonance+Imaging+Signal.">The Underpinnings of the BOLD Functional Magnetic Resonance Imaging Signal.</a> J Neurosci. 23 (10), 3963-3971 (2003).</li><li>Buzs&#225;ki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+origin+of+extracellular+fields+and+currents+—+EEG,+ECoG,+LFP+and+spikes.">The origin of extracellular fields and currents — EEG, ECoG, LFP and spikes.</a> Nat Rev Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).</li><li>Einevoll, G. T., Kayser, C., Logothetis, N. K., Panzeri, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modelling+and+analysis+of+local+field+potentials+for+studying+the+function+of+cortical+circuits.">Modelling and analysis of local field potentials for studying the function of cortical circuits.</a> Nat Rev Neurosci. 14 (11), 770-785 (2013).</li><li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Balanced+excitation+and+inhibition:+Model+based+analysis+of+local+field+potentials.">Balanced excitation and inhibition: Model based analysis of local field potentials.</a> Neuroimage. 63 (1), 81-94 (2012).</li><li>Bruyns-Haylett, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neurogenesis+of+P1+and+N1:+A+concurrent+EEG/LFP+study.">The neurogenesis of P1 and N1: A concurrent EEG/LFP study.</a> Neuroimage. 146, 575-588 (2017).</li><li>Nunez, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Electric Fields of the Brain: The Neurophysics of EEG. , (1981).</li><li>Jackson, A. F., Bolger, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neurophysiological+bases+of+EEG+and+EEG+measurement:+A+review+for+the+rest+of+us.">The neurophysiological bases of EEG and EEG measurement: A review for the rest of us.</a> Psychophysiology. 51 (11), 1061-1071 (2014).</li><li>Cohen, M. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Where+Does+EEG+Come+From+and+What+Does+It+Mean?.">Where Does EEG Come From and What Does It Mean?.</a> Trends Neurosci. 40 (4), 208-218 (2017).</li><li>Bojak, I., Oostendorp, T., Reid, A., K&#246;tter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Connecting+Mean+Field+Models+of+Neural+Activity+to+EEG+and+fMRI+Data.">Connecting Mean Field Models of Neural Activity to EEG and fMRI Data.</a> Brain Topogr. 23 (2), 139-149 (2010).</li><li>Coombes, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large-scale+neural+dynamics:+Simple+and+complex.">Large-scale neural dynamics: Simple and complex.</a> Neuroimage. 52 (3), 731-739 (2010).</li><li>Deco, G., Jirsa, V. K., Robinson, P. A., Breakspear, M., Friston, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dynamic+brain:+from+spiking+neurons+to+neural-masses+and+cortical+fields.">The dynamic brain: from spiking neurons to neural-masses and cortical fields.</a> PLoS Comput. Biol. 4 (8), e1000092 (2008).</li><li>Pinotsis, D. A., Friston, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+fields,+spectral+responses+and+lateral+connections.">Neural fields, spectral responses and lateral connections.</a> Neuroimage. 55 (1), 39-48 (2011).</li><li>Riera, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pitfalls+in+the+dipolar+model+for+the+neocortical+EEG+sources.">Pitfalls in the dipolar model for the neocortical EEG sources.</a> J Neurophysiol. 108 (4), 956-975 (2012).</li><li>Valdes, P. A., Jimenez, J. C., Riera, J., Biscay, R., Ozaki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonlinear+EEG+analysis+based+on+a+neural+mass+model.">Nonlinear EEG analysis based on a neural mass model.</a> Biol Cybern. 81 (5), 415-424 (1999).</li><li>Musall, S., von Pf&#246;stl, V., Rauch, A., Logothetis, N. K., Whittingstall, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+Neural+Synchrony+on+Surface+EEG.">Effects of Neural Synchrony on Surface EEG.</a> Cereb Cortex. 24 (4), 1045-1053 (2014).</li><li>Snyder, A. C., Morais, M. J., Willis, C. M., Smith, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+network+influences+on+local+functional+connectivity.">Global network influences on local functional connectivity.</a> Nat Neurosci. 18 (5), 736-743 (2015).</li><li>Mayhew, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectroscopic+analysis+of+neural+activity+in+brain:+Increased+oxygen+consumption+following+activation+of+barrel+cortex.">Spectroscopic analysis of neural activity in brain: Increased oxygen consumption following activation of barrel cortex.</a> Neuroimage. 12 (6), 664-675 (2000).</li><li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2005).</li><li>Martindale, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+hemodynamic+impulse+response+to+a+single+neural+event.">The hemodynamic impulse response to a single neural event.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 23 (5), 546-555 (2003).</li><li>Pettersen, K. H., Devor, A., Ulbert, I., Dale, A. M., Einevoll, G. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current-source+density+estimation+based+on+inversion+of+electrostatic+forward+solution:+Effects+of+finite+extent+of+neuronal+activity+and+conductivity+discontinuities.">Current-source density estimation based on inversion of electrostatic forward solution: Effects of finite extent of neuronal activity and conductivity discontinuities.</a> J Neurosci Methods. 154 (1-2), 116-133 (2006).</li><li>Thomson, D. J., et al., Fitzgerald, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multitaper+analysis+of+nonstationary+and+nonlinear+time+series+data.">Multitaper analysis of nonstationary and nonlinear time series data.</a> Nonlinear and Nonstationary Signal Processing. , 317-394 (2000).</li><li>Bae, J., Deshmukh, A., Song, Y., Riera, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+Source+Imaging+in+Preclinical+Rat+Models+of+Focal+Epilepsy+using+High-Resolution+EEG+Recordings.">Brain Source Imaging in Preclinical Rat Models of Focal Epilepsy using High-Resolution EEG Recordings.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (100), e52700 (2015).</li><li>Baumann, S. B., Wozny, D. R., Kelly, S. K., Meno, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+electrical+conductivity+of+human+cerebrospinal+fluid+at+body+temperature.">The electrical conductivity of human cerebrospinal fluid at body temperature.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 44 (3), 220-223 (1997).</li><li>Wendel, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Influence+of+Age+and+Skull+Conductivity+on+Surface+and+Subdermal+Bipolar+EEG+Leads.">The Influence of Age and Skull Conductivity on Surface and Subdermal Bipolar EEG Leads.</a> Computational Intelligence and Neuroscience. 2010, (2010).</li><li>Flemming, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+the+distortion+of+EEG+signals+caused+by+a+hole+in+the+skull+mimicking+the+fontanel+in+the+skull+of+human+neonates.">Evaluation of the distortion of EEG signals caused by a hole in the skull mimicking the fontanel in the skull of human neonates.</a> Clin Neurophysiol. 116 (5), 1141-1152 (2005).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bir isoflurane imzalat sıçan bıyık yastık stimülasyon cevaben co yerelleştirilmiş EEG ve LFP sinyallerin eşzamanlı kayıt için deneysel bir işlem anlatmıştık. Bir elektrot Yeni korteksimiz kafatasına delinmiş bir burr deliği ile uyumlu EEG örümcek elektrot bir açılış içine eklenir. Elektrot kafatası bir iletken tarafından güvenli hale ve yapışkan EEG23yapıştırın. Uyarıcı elektrotlar bıyık yastık kolaylıkla eklenen böylece burun konisi isoflurane yönetimi için kullanılan güncellenmiştir.
EEG hamur hamur ek uygulama için gerek kalmadan deneysel gün boyunca mükemmel elektriksel iletkenlik sağlarken örümcek elektrot kafatası için güvenli bir şekilde montaj etkili oldu. Yapıştırıcı tutkal iletken olmayan ve kafatası ve elektrot arasında çalıştırıyorsa, elektrot empedans artırabilir olarak kafatasında, örümcek elektrot çevre düzeltmek için istenmeyen kullanımı yerine. EEG Yapıştır şeklin burr deliği etrafında zordur ve zavallı EEG sinyaller de sonuçlanan deneyi sırasında kuru olabilir EEG jeli avantajları vardır.
Fareyi bir Faraday kafesinde yerleştirildi gibi elektriksel gürültü ortam nedeniyle büyük ölçüde zayıflatılmış. Ancak, bazen sinir sinyal hala oldukça gürültülü. Çoğu durumda, bu referans elektrot değil güvenli bir şekilde konumlandırılmış ve bu nedenle yeniden düzeltilmiş olması gereken veya daha fazla EEG tarafından neden oldu kullanılan Yapıştır. Başka bir ortak sorun uyarılmış LFP genlik içinde küçük idi. Bu uyarıcı elektrotlar tarafından aktive kortikal bölgesinin merkezinde konumlandırılmamış elektrot nedeniyle olabilir. Yerel nöronlar için daha fazla zarar verebilir, elektrot, yeniden eklemek yerine biz genellikle uyarıcı elektrotlar bulunduğu bıyık yastık LFP makul bir genlik kadar ayarlanabilir (> 3 mV) gözlenen.
Teknik sınırlamaları biri yoksul uzamsal çözünürlük 6 mm çapında örümcek elektrot. Bu büyük sıçan kafatası boyutu ile karşılaştırıldığında. Ne yazık ki, burada kullanılan örümcek elektrot en küçük satın almak kullanılabilir. Örümcek elektrot çapı 2-4 mm için azaltmak için arzu olacak, böylece artan EEG kayıtları, EEG sinyal ve supragranular arasında karşılaştırma yapma kayma özgüllük LFP sinyal daha az belirsiz.
İletişim kuralı birkaç önemli adımlar özel dikkat gerekir. Çapak delikten elektrot yerleştirilmesi ilkidir. Beyin zarı aksi takdirde sağlam olduğu için ekleme noktasını duyarlığını önemlidir. Elektrot ucunda ufak bir direniş genellikle elektrot doğru yerleştirilmiyor anlamına gelir. Yükseltilmiş olması gerekir, düzeltilmiş ve yeniden eklenmiş konumu. İkinci fare üzerinde burun konisi konumudur. İsoflurane koni kaçış olacak gibi çok gevşek olmalıdır. Farenin burun delikleri engel ve nefes darlığı neden bu da çok sıkı olmalıdır değil. Özel ilgi aynı zamanda EEG kaydı genliği çok daha küçük olduğundan emin olmak için gerekli (genellikle 5-10 kat daha küçük) LFP en iyi kanal kayıt daha. Benzer bir durumda, EEG sonda elektrot ile doğrudan veya dolaylı temas geldi bir göstergesidir. Dolaylı kişisi genellikle Kafatasında delik bazen dolduran beyin omurilik sıvısı (CSF) delinmiş. CSF iletkenlik genellikle 100 kere bu kafatası24,25var. Böylece, burr deliği içi CSF düzeyinde yeterince yüksek ise, yapabilirsiniz örümcek elektrot ile temas. Bunu önlemek için çukur sık sık süper emici pamuk sünger gibi emme spears ile temizlenmelidir.
Burr deliği etkisi (çapı < 2 mm) EEG Kafatasında delik çevreleyen kayıt böylece ikili EEG kayıtları karşılaştırıldığında olabilir sağlam kafatasındaki ipsi-lateral varil korteks üstüne başka bir örümcek elektrot koyarak Okulu'nu. Sonuçlar Şekil 9 ve şekil 10, 0,05 düzeyinde of önemi önemsiz olacaktır etkisi öneririz. Ne kadar iyi kafatası, elektrot yapıştırmak için nasıl kesin basılıştan ve EEG yapıştırma kafatası üzerinde kayma ölçüde temas EEG Yapıştır oldu EEG genliği etkileyen diğer faktörler içerir.
Burada açıklanan protokol kafatası EEG, kafa derisi EEG insan EEG çalışmalarda kullanılan farklı olduğu kaydedilen Not için faydalıdır. Kafa derisi bir direnç veya daha fazla kayıt EEG sinyal-gürültü oranı azaltır bir alçak geçiren Filtre gibi davranır.
Son olarak, Karşılaştırma ERP zamansal dinamiği ve kortikal katmanlar arasında çatışmaya LFP önermek somatosensor uyarılmış potansiyel daha iyi daha taneli korteks tabakası supragranular ve infragranular Katmanlar LFP yansıtır. ERP ilk segment (P1) sonraki azaltmak iken (eksitatör sinaptik geçerli taneli katmanda oluşup, girişi dönüş geçerli doğan ile ilgili gösteren bizim önceki çalışma6, anlaşarak bu N1) İçindeerp talamik afferent kortikal için katmanları II/III ve/veya feedforward sinyalleri gecikmiş varış daha derin kortikal katmanlardan ilgili olabilir. Sonuç olarak, EEG/LFP eşzamanlı kayıtları EEG sinirsel doğuşu anlayışı geliştirmek ve EEG matematiksel modelleme sinir sinyalleri açısından kortikal katmanlardaki kolaylaştırmak.

Genel olarak LFPs microelectrodes yolu ile öncelikle kaydedilen yerel piramit sinirsel nüfus1,2,3 eşitlenmiş eksitatör ve inhibitör sinaptik aktiviteleri ağırlıklı toplamı yansıtmak kabul , 4. son araştırma LFP sinyal profil uyarma ve inhibisyon5,6bileşenlerine ayrılmış gösterdi. LFP normalde invaziv bir yordam ölçülen, ancak, bu insan beyninin en çalışmaları için uygun değildir.
Öte yandan, EEG beyin elektriksel aktivitesinin ölçmek için non-invaziv bir tekniktir. Yaygın epilepsi gibi nörolojik hastalıkların belirli türleri için bir tanı aracı olarak ve insan bilişsel çalışmalarda bir araştırma aracı olarak kullanılır. Onun popülerlik rağmen yetersizlik onun zamansal profilleri temel sinir sinyalleri7,8,9açısından tam olarak yorumlamak için EEG bir büyük kısıtlamasıdır.
Giderek, matematiksel modeller EEG, beyin işlev10,11,12,13,14,15anlayışı geliştirmek için geliştirilmiştir. Varolan EEG modellerin çoğu dayalı EEG veri spektrum spontan aktivite sırasında çıkış frekans etki alanı özelliklerini tahmin modeli uygun olarak geliştirilen ve çok az EEG modelleri gerçekçi duyusal uyarılmış potansiyeller oluşturabilirsiniz. Bu bağlamda, EEG ve LFP eşzamanlı kayıtları önemli fikir ve kısıtlamaları EEG daha doğru matematiksel modelleri geliştirmek için sağlar.
Daha fazla EEG sinirsel kökenini keşfetmek eşzamanlı kayıtları için bu gereksinimi karşılamak için aynı anda EEG ve multi-Laminer LFP sinyalleri imzalat sıçan yeni korteksimiz içinde kaydetmek için bir metodoloji geliştirdi. Kurulum önceki eş zamanlı EEG/LFP çalışmalar primatlar16,17' yapılan benzer. Biz daha fazla delik ikili EEG kayıtları (Yani, bir burr deliği, diğer Yarımküre sağlam bir Yarımküre) yokluğunda, duyusal karşılaştırarak çevreleyen EEG kayıtları kafatasında ayrıntılarına burr deliği etkisini araştırdık uyarım. Sonuçlarımız eşzamanlı EEG/LFP kayıtları basit ve etkili, küçük EEG sinyal bozulma kafatası burr deliği ile yapılabilir olduğunu göstermek.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Female Lister Hood rats</td>
			<td>Charles Rivers</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spider electrode</td>
			<td>Unimed Electrode Supplies Ltd</td>
			<td>SCS24-426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EEG paste: Ten20</td>
			<td>Unimed Electrode Supplies Ltd</td>
			<td>10-20-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic holder with dual micromanipulator arms: Dual Manipulator Stereotaxic Frame with 18&#176; Ear Bars</td>
			<td>WPI (World Precision Instruments)</td>
			<td>502603</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>National Vet Services Limited</td>
			<td>50878</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hard plastic nose cone: Anasthesia Gas Mask for Rat</td>
			<td>WPI</td>
			<td>502054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small animal isoflurane anaesthetic system</td>
			<td>WPI</td>
			<td>EZ-B800A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermostatic heating pad: Rat Blanket System 230V</td>
			<td>Harvard Apparatus UK</td>
			<td>50-7221-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ophthalmic ointment: Optixcare eye lube</td>
			<td>Viovet</td>
			<td>203865</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine Hydrochloride (Injection 2%)</td>
			<td>Larkmead Vets</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jacquette Scaler #1SSE, 18cm, Hollow</td>
			<td>WPI</td>
			<td>503421</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serrated and curved dissecting forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>15915</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Braided silk, non-absorbable suture: Mersilk Suture W502H</td>
			<td>National Vet Services Limited</td>
			<td>153746</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental drill: BONE MICRO DRILL SYST 230 VAC</td>
			<td>Harvard Apparatus UK</td>
			<td>72-4860</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline: Sodium chloride 0.9%</td>
			<td>Animalcare Ltd</td>
			<td>14K26BT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit #4 : Ball Mill, Carbide, #4</td>
			<td>Harvard Apparatus UK</td>
			<td>72-4958</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit #4 : Ball Mill, Carbide, #1/4</td>
			<td>Harvard Apparatus UK</td>
			<td>72-4962</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Faraday cage</td>
			<td>Newport Corporation</td>
			<td>VIS-FDC-3600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vibration isolation workstation: Vision IsoStation</td>
			<td>Newport Corporation</td>
			<td>M-VIS3660-RG4-325A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oximeter Control Unit and sensor: MouseOxPlus, Starr Life Sciences Corp.</td>
			<td>WPI</td>
			<td>O15001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transparent soft nose cone: Microflex Non-Rebreathing Unit with a Rat Nosecone</td>
			<td>WPI</td>
			<td>EZ-103A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel stimulating electrodes</td>
			<td>PlasticsOne</td>
			<td>E363/1/SPC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isolated current stimulator</td>
			<td>Made in House</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>16-channel micro-electrode, 100 &#956;m spacing, area of each site 177 &#956;m2</td>
			<td>NeuroNexus</td>
			<td>A1x16-10mm-100-177-A16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>16-channel acute headstage</td>
			<td>Tucker David Technologies Inc., TDT</td>
			<td>RA16AC-Z</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pre-Amplifier: Z-Series 64-Channel Neuro-Digitizing Preamp</td>
			<td>TDT</td>
			<td>PZ5-64</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Passive signal splitter: 32-Channel Splitter Box for PZ5</td>
			<td>TDT</td>
			<td>S-BOX_PZ5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Data acquisition unit: RZ2 BioAmp Processor. Z-Series 4-DSP ultra high performance processor</td>
			<td>TDT</td>
			<td>RZ2-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software for Neurophysiology: OpenEX</td>
			<td>TDT</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matlab</td>
			<td>MathWorks</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absorption spears</td>
			<td>Fine Sicence Tools</td>
			<td>18105-01</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

concurrent recording of co-localized electroencephalography and local field potential in rodent

Elektroansefalografi (EEG) Beynin sinirsel faaliyetleri kaydetmek için bir non-invaziv teknik olarak yaygın olarak kullanılmasına rağmen EEG neurogenesis anlayışımızı hala çok sınırlıdır. Bir multi-Laminer elektrot ile kaydedilen yerel alan potansiyelleri (LFPs) arasında yeni korteksimiz kortikal farklı katmanlarda eşzamanlı sinirsel aktivite daha ayrıntılı hesabını sağlayabilirsiniz, ancak invaziv bir tekniktir. EEG ve LFP ölçüm sonuçları önceden klinik manken birleştirerek büyük ölçüde sinirsel mekanizmalar EEG sinyallerini üretimi dahil anlayışı geliştirmek ve EEG bir daha gerçekçi ve biyolojik olarak doğru matematiksel model türetme kolaylaştırmak. Eşzamanlı ve ortak yerelleştirilmiş EEG ve multi-Laminer LFP sinyalleri imzalat kemirgen kazanılması için basit bir prosedür burada sunulmaktadır. Biz de EEG sinyallerinin bir elektrot yerleştirilmesi için kafatası delinen burr deliği tarafından önemli ölçüde etkilendi olup olmadığını araştırdık. Sonuçlarımız burr deliği EEG kayıtları ihmal edilebilir bir etkisi sahip olduğunu düşündürmektedir.

4 fareler verilerden uygun olan yerlerde bu süre serisi elde etmek için ortalama. Uyarılmış EEG yanıt genliği, olarak da bilinen olay potansiyeli ile ilgili (ERP), genellikle çok daha küçük LFP bundan. Şekil 6 ortalama ERP ve supragranular, taneli, LFP ve infragranular Katmanlar varil korteksin sırasıyla göstermektedir. İlgili standart hata her arsa hata grubudur. ERP yaklaşık uyarılmış LFP 10 kat daha küçük olduğunu görebilirsiniz.
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig6.jpg"> Şekil 6: demek (n = 4) sinir sinyalleri ERP, supragranular, taneli, ve infragranular LFP. Gölge standart hata gösterir. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig6large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Karşılaştırma ERP ve LFP zamansal dinamiği Şekil 7' de gösterilir. ERP ve supragranular şekil 7A LFP doğrudan süperpozisyon genlik farklılıkları sinir sinyalleri bu iki tür arasında sırasını gösterir. Zamansal dinamiği karşılaştırmak için ERP ve LFP onların negatif pik genlik ile ilgili normalleştirilmiş. Şekil 7B ve 7 C normalleştirilmiş ERP ile normalleştirilmiş supragranular LFP ve normalleştirilmiş taneli LFP, sırasıyla üst üste gösterir.
P1 ve N1 ERP için doruklarına LFP karşılık gelen doruklarına supragranular katmanında daha gecikmeli şekil 7B görülebilir. Ancak, bu iki sinir sinyalleri zamansal profilleri P1 ile benzer, N1 önceki. Öte yandan, ERP zamansal profil belirgin tabakasının taneli (IV varil korteks) farklıdır LFP (şekil 7C). Önemlisi, ayna görüntüleri ile taneli LFP ERP öncelikle iki doruklarına zıt kutuplu oluşuyordu ise (büyük bir lavabo kortikal katman IV yansıtan) bir tek negatif tepe tarafından hakim değiller.
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig7.jpg"> Şekil 7: Karşılaştırma ERP ve LFP zamansal dinamiği. (A)ERP (düz çizgi) supragranular LFP (kesik çizgi) ile üst üste. Gölge standart hata gösterir. (B) normalleştirilmiş normalleştirilmiş supragranular LFP (kesik çizgi) ile üst üste ERP (düz çizgi). (C) normalleştirilmiş normalleştirilmiş taneli LFP (kesik çizgi) ile üst üste ERP (düz çizgi). <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig7large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
ERP sinyal kafatasında içine delinmiş bir burr deliği ile yerleştirilen bir örümcek elektrot ile ölçüldü. EEG kayıtları delik etkisini araştırmak için başka bir örümcek elektrot ipsi-lateral varil korteks bozulmadan Kurukafa üzerine yerleştirildi. Bakım EEG Yapıştır kullanılan miktarını ayarlayarak iki örümcek elektrotlar impedances büyüklükte karşılaştırılabilir sağlamak için alınmıştır. Dört fareler verilerden (hangi değil aynı fareler üzerinde kullanıldığı) burada sunulmuştur.
Şekil 8 şekil 8Aiçinde görüntülenen 100 s veri ve dikdörtgen çerçeve verileri ile her iki elektrotları bir sıçan, eşzamanlı dinlenme devlet EEG kayıtları gösterir (20 s) resim 8Bgenişletilir. İki EEG sinyallerini büyük ölçüde, genlik benzer aralığı içinde birlikte değişir. Şekil 9 dört fareler, PSD ile doğrusal bir ölçek üzerinde frekans eksen kullanarak üst satır ve alt frekans aralığında genişletilmiş bir görünümünü sağlamak için frekans ekseninde Logaritmik ölçek kullanarak alt satır gösterir. Şekil 9' dan, yok görünüyor konular arasında tutarlı önyargı PSD olmak. Bu şekil 10' da gösterilen beş frekans bantlarında ortalama PSD normalleştirilmiş farklılıkları üzerinde bir örneklem t-testleri gerçekleştirerek doğrulandı. Bu frekans bantlarında normalleştirilmiş PSD farklılıkları sıfırdan önemli ölçüde farklı değildi (p = 0,32, 0,46, 0.85, 0,69 ve 0.97, sırasıyla).
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig8.jpg"> Şekil 8: ikili EEG kayıtları. (A)kafatası EEG devlet kafatası (siyah) ve ters Yarımküre (gri) ile olduğu gibi kafatası üzerinde aynı anda bir EEG kayıt bir burr deliği olan dinlenme sırasında kayıt. (B) genişletilmiş görüntüleyin, dalga biçimleri(a)dikdörtgen çerçeve içinde. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig8large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig9.jpg"> Şekil 9: güç spektral yoğunluğu (PSD) contra-(mavi) ve ipsi-lateral (kırmızı) EEG. Her sütun için bir iri fare-PSD gösterir. Alt paneller PSD görüntülenmeyecektir için daha düşük frekans aralığında izin vermek için logaritmik frekans ölçeği kullanırken en iyi panelleri doğrusal frekans ölçek, kullanın. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig9large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 10" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56447/56447fig10.jpg"> Şekil 10: Grup analizi. Normalleştirilmiş Kontra - ve beş frekans bantları ile ipsi-lateral PSD arasındaki fark: Delta, teta, Alfa, Beta ve gama. Her çubuk standart hata çubuğu olarak gösterilen hata ile frekans bandı içinde ortalama normalleştirilmiş farklılıklar gösterir. <a href="//cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56447/56447fig10large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent at JoVE.com

Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent

Bu iletişim kuralı ortak yerelleştirilmiş elektroansefalografi (EEG) ve multi-Laminer yerel alan bir imzalat köstebeğiyle potansiyel eşzamanlı kayıt için basit bir yöntem açıklanır. Bir elektrot yerleştirilmesi için kafatası delinen burr deliği EEG sinyal önemsiz bozulma üretmek için gösterilir.

Co yerelleştirilmiş elektroansefalografi ve yerel alan potansiyel kemirgen eşzamanlı kayıt

Although electroencephalography (EEG) is widely used as a non-invasive technique for recording neural activities of the brain, our understanding of the ...

concurrent-recording-co-localized-electroencephalography-local-field

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

12.2K Görüntüleme.  University of Reading. Bu iletişim kuralı ortak yerelleştirilmiş elektroansefalografi (EEG) ve multi-Laminer yerel alan bir imzalat köstebeğiyle potansiyel eşzamanlı kayıt için basit bir yöntem açıklanır. Bir elektrot yerleştirilmesi için kafatası delinen burr deliği EEG sinyal önemsiz bozulma üretmek için gösterilir.

Video: Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent

Systemic and Local Drug Delivery for Treating Diseases of the Central Nervous System in Rodent Models

Thorough preclinical testing of central nervous system (CNS) therapeutics includes a consideration of routes of administration and agent biodistribution in assessing therapeutic efficacy. Between the two major classifications of administration, local vs. systemic, systemic delivery approaches are often preferred due to ease of administration. However, systemic delivery may result in suboptimal drug concentration being achieved in the CNS, and lead to erroneous conclusions regarding agent efficacy. Local drug delivery methods are more invasive, but may be necessary to achieve therapeutic CNS drug levels. Here, we demonstrate proper technique for three routes of systemic drug delivery: intravenous injection, intraperitoneal injection, and oral gavage. In addition, we show a method for local delivery to the brain: convection-enhanced delivery (CED). The use of fluorescently-labeled compounds is included for in vivo imaging and verification of proper drug administration. The methods are presented using murine models, but can easily be adapted for use in rats.

Thorough preclinical testing of drugs that act in the central nervous system often involves assessing and comparing drug biodistribution in association with specific routes of administration. Here, three commonly used methods of systemic delivery (intravenous, intraperitoneal, and oral) as well as a method for local delivery (convection-enhanced delivery) are demonstrated in mice.

Kemirgen Modeller Merkezi Sinir Sistemi Hastalıkları Tedavisinde Sistemik ve Yerel İlaç Taşıyıcı

Thorough preclinical testing of central nervous system (CNS) therapeutics includes a consideration of routes of administration and agent biodistribution ...

Nörobilim

Examining Local Network Processing using Multi-contact Laminar Electrode Recording

Cortical layers are ubiquitous structures throughout neocortex1-4 that consist of highly recurrent local networks. In recent years, significant progress has been made in our understanding of differences in response properties of neurons in different cortical layers5-8, yet there is still a great deal left to learn about whether and how neuronal populations encode information in a laminar-specific manner.
Existing multi-electrode array techniques, although informative for measuring responses across many millimeters of cortical space along the cortical surface, are unsuitable to approach the issue of laminar cortical circuits. Here, we present our method for setting up and recording individual neurons and local field potentials (LFPs) across cortical layers of primary visual cortex (V1) utilizing multi-contact laminar electrodes (Figure 1; Plextrode U-Probe, Plexon Inc).
The methods included are recording device construction, identification of cortical layers, and identification of receptive fields of individual neurons. To identify cortical layers, we measure the evoked response potentials (ERPs) of the LFP time-series using full-field flashed stimuli. We then perform current-source density (CSD) analysis to identify the polarity inversion accompanied by the sink-source configuration at the base of layer 4 (the sink is inside layer 4, subsequently referred to as granular layer9-12). Current-source density is useful because it provides an index of the location, direction, and density of transmembrane current flow, allowing us to accurately position electrodes to record from all layers in a single penetration6, 11, 12.

A fundamental issue in our understanding of cortical circuitry is how networks in different cortical layers encode sensory information. Here we describe electrophysiological techniques utilizing multi-contact laminar electrodes to record single-units and local field potentials and present analyses to identify cortical layers.

Multi-contact kullanarak Yerel Ağ İşleme incelenmesi Laminer Elektrot Kayıt

Cortical layers are ubiquitous structures throughout neocortex1-4 that consist of highly recurrent local networks. In recent years, significant progress ...

Simultaneous Electroencephalography, Real-time Measurement of Lactate Concentration and Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity in the Rodent Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body at rest1. The function of non rapid eye movement sleep (NREMS), the largest portion of sleep by time, is uncertain. However, one salient feature of NREMS is a significant reduction in the rate of cerebral glucose utilization relative to wakefulness2-4. This and other findings have led to the widely held belief that sleep serves a function related to cerebral metabolism. Yet, the mechanisms underlying the reduction in cerebral glucose metabolism during NREMS remain to be elucidated.
	One phenomenon associated with NREMS that might impact cerebral metabolic rate is the occurrence of slow waves, oscillations at frequencies less than 4 Hz, in the electroencephalogram5,6. These slow waves detected at the level of the skull or cerebral cortical surface reflect the oscillations of underlying neurons between a depolarized/up state and a hyperpolarized/down state7. During the down state, cells do not undergo action potentials for intervals of up to several hundred milliseconds. Restoration of ionic concentration gradients subsequent to action potentials represents a significant metabolic load on the cell8; absence of action potentials during down states associated with NREMS may contribute to reduced metabolism relative to wake.
	Two technical challenges had to be addressed in order for this hypothetical relationship to be tested. First, it was necessary to measure cerebral glycolytic metabolism with a temporal resolution reflective of the dynamics of the cerebral EEG (that is, over seconds rather than minutes). To do so, we measured the concentration of lactate, the product of aerobic glycolysis, and therefore a readout of the rate of glucose metabolism in the brains of mice. Lactate was measured using a lactate oxidase based real time sensor embedded in the frontal cortex. The sensing mechanism consists of a platinum-iridium electrode surrounded by a layer of lactate oxidase molecules. Metabolism of lactate by lactate oxidase produces hydrogen peroxide, which produces a current in the platinum-iridium electrode. So a ramping up of cerebral glycolysis provides an increase in the concentration of substrate for lactate oxidase, which then is reflected in increased current at the sensing electrode. It was additionally necessary to measure these variables while manipulating the excitability of the cerebral cortex, in order to isolate this variable from other facets of NREMS.
	We devised an experimental system for simultaneous measurement of neuronal activity via the elecetroencephalogram, measurement of glycolytic flux via a lactate biosensor, and manipulation of cerebral cortical neuronal activity via optogenetic activation of pyramidal neurons. We have utilized this system to document the relationship between sleep-related electroencephalographic waveforms and the moment-to-moment dynamics of lactate concentration in the cerebral cortex. The protocol may be useful for any individual interested in studying, in freely behaving rodents, the relationship between neuronal activity measured at the electroencephalographic level and cellular energetics within the brain.

A procedure is described for manipulating the activity of cerebral cortical pyramidal neurons optogenetically while the electroencephalogram, electromyogram, and cerebral lactate concentration are monitored. Experimental recordings are performed on cable-tethered mice while they undergo spontaneous sleep/wake cycles. Optogenetic equipment is assembled in our laboratory; recording equipment is commercially available.

Eşzamanlı Elektroensefalografi, Kemirgen Serebral Korteks Laktat Konsantrasyonu ve Nöronal Faaliyet Optogenetic Manipülasyon Gerçek zamanlı ölçüm

Although the brain represents less than 5% of the body  by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body  at rest1. The ...

Intracellular Recording, Sensory Field Mapping, and Culturing Identified Neurons in the Leech, Hirudo medicinalis

The freshwater leech, Hirudo medicinalis, is a versatile model organism that has been used to address scientific questions in the fields of neurophysiology, neuroethology, and developmental biology. The goal of this report is to consolidate experimental techniques from the leech system into a single article that will be of use to physiologists with expertise in other nervous system preparations, or to biology students with little or no electrophysiology experience. We demonstrate how to dissect the leech for recording intracellularly from identified neural circuits in the ganglion. Next we show how individual cells of known function can be removed from the ganglion to be cultured in a Petri dish, and how to record from those neurons in culture. Then we demonstrate how to prepare a patch of innervated skin to be used for mapping sensory or motor fields. These leech preparations are still widely used to address basic electrical properties of neural networks, behavior, synaptogenesis, and development. They are also an appropriate training module for neuroscience or physiology teaching laboratories.

Intracellular Recording, Sensory Field Mapping, and Culturing Identified Neurons in the Leech, Hirudo medicinalis

This article describes three nervous system preparations using leeches: intracellular recording from neurons in ventral ganglia, culturing neurons from ventral ganglia, and recording from a patch of innervated skin to map sensory fields.

Hücre içi Kaydı, Duyu Alan Haritalama ve Sülük de Kültüre Belirlenen Nöronlar Hirudo medicinalis</i

The freshwater leech, Hirudo medicinalis, is a versatile model organism that has been used to address scientific questions in the fields of ...

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of primary afferent fibers mediated by GABAergic axo-axonal synapses (primary afferent depolarization). The strength of primary afferent depolarization can be measured by recording of volume-conducted potentials at the dorsal root (dorsal root potentials, DRP). Pathological changes of presynaptic inhibition are crucial in the abnormal central processing of certain pain conditions and in some disorders of motor hyperexcitability. Here, we describe a method of recording DRP in vivo in mice. The preparation of spinal cord dorsal roots in the anesthetized animal and the recording procedure using suction electrodes are explained. This method allows measuring GABAergic DRP and thereby estimating spinal presynaptic inhibition in the living mouse. In combination with transgenic mouse models, DRP recording may serve as a powerful tool to investigate disease-associated spinal pathophysiology. In vivo recording has several advantages compared to ex vivo isolated spinal cord preparations, e.g. the possibility of simultaneous recording or manipulation of supraspinal networks and induction of DRP by stimulation of peripheral nerves.

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

GABAergic presynaptic inhibition is a powerful inhibitory mechanism in the spinal cord important for motor and sensory signal integration in spinal cord networks. Underlying primary afferent depolarization can be measured by recording of dorsal root potentials (DRP). Here we demonstrate a method of in vivo recording of DRP in mice.

Dorsal Kök Potansiyel Kayıt By Farelerde Spinal Presinaptik Engellenme Ölçme<em&gt; In Vivo</em

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of ...

Simultaneous Electrophysiological Recording and Micro-injections of Inhibitory Agents in the Rodent Brain

Here we describe a method for the construction of a single-use &#8220;injectrode&#8221; using commercially accessible and affordable parts. A probing system was developed that allows for the injection of a drug while recording electrophysiological signals from the affected neuronal population. This method provides a simple and economical alternative to commercial solutions. A glass pipette was modified by combining it with a hypodermic needle and a silver filament. The injectrode is attached to commercial microsyringe pump for drug delivery. This results in a technique that provides real-time pharmacodynamics feedback through multi-unit extracellular signals originating from the site of drug delivery. As a proof of concept, we recorded neuronal activity from the superior colliculus elicited by flashes of light in rats, concomitantly with delivery of drugs through the injectrode. The injectrode recording capacity permits the functional characterization of the injection site favoring precise control over the localization of drug delivery. Application of this method also extends far beyond what is demonstrated here, as the choice of chemical substance loaded into the injectrode is vast, including tracing markers for anatomic experiments.

Here, we craft a glass pipette with dual functions: inhibition of deep brain structures by microinjections of drugs and real-time monitoring of their effects through simultaneous electrophysiological recordings.

Eşzamanlı Elektrofizyolojik Kayıt ve kemirgen Beyindeki inhibitör Ajanların Mikro-enjeksiyon

Here we describe a method for the construction of a single-use &#8220;injectrode&#8221; using commercially accessible and affordable parts. A probing ...

Acute In Vivo Electrophysiological Recordings of Local Field Potentials and Multi-unit Activity from the Hyperdirect Pathway in Anesthetized Rats

Converging evidence shows that many neuropsychiatric diseases should be understood as disorders of large-scale neuronal networks. To better understand the pathophysiological basis of these diseases, it is necessary to precisely characterize in which way the processing of information is disturbed between the different neuronal parts of the circuit. Using extracellular in vivo electrophysiological recordings, it is possible to accurately delineate neuronal activity within a neuronal network. The application of this method has several advantages over alternative techniques, e.g., functional magnetic resonance imaging and calcium imaging, as it allows a unique temporal and spatial resolution and does not rely on genetically engineered organisms. However, the use of extracellular in vivo recordings is limited since it is an invasive technique that cannot be universally applied. In this article, a simple and easy to use method is presented with which it is possible to simultaneously record extracellular potentials such as local field potentials and multiunit activity at multiple sites of a network. It is detailed how a precise targeting of subcortical nuclei can be achieved using a combination of stereotactic surgery and online analysis of multi-unit recordings. Thus, it is demonstrated, how a complete network such as the hyperdirect cortico-basal ganglia loop can be studied in anesthetized animals in vivo.

Acute In Vivo Electrophysiological Recordings of Local Field Potentials and Multi-unit Activity from the Hyperdirect Pathway in Anesthetized Rats

In this study, the methodology is presented on how to perform multi-site in vivo electrophysiological recordings from the hyperdirect pathway under urethane anesthesia.

Akut<emIn vivo</em&gt; Anestezi Uygulanan Sıçanlarda Hiperdirect Pathway&#39;den Lokal Alan Potansiyellerinin Elektrofizyolojik Kayıtları ve Çoklu Ünite Aktivitesi

Converging evidence shows that many neuropsychiatric diseases should be understood as disorders of large-scale neuronal networks. To better understand the ...

Recording and Modulation of Epileptiform Activity in Rodent Brain Slices Coupled to Microelectrode Arrays

Temporal lobe epilepsy (TLE) is the most common partial complex epileptic syndrome and the least responsive to medications. Deep brain stimulation (DBS) is a promising approach when pharmacological treatment fails or neurosurgery is not recommended. Acute brain slices coupled to microelectrode arrays (MEAs) represent a valuable tool to study neuronal network interactions and their modulation by electrical stimulation. As compared to conventional extracellular recording techniques, they provide the added advantages of a greater number of observation points and a known inter-electrode distance, which allow studying the propagation path and speed of electrophysiological signals. However, tissue oxygenation may be greatly impaired during MEA recording, requiring a high perfusion rate, which comes at the cost of decreased signal-to-noise ratio and higher oscillations in the experimental temperature. Electrical stimulation further stresses the brain tissue, making it difficult to pursue prolonged recording/stimulation epochs. Moreover, electrical modulation of brain slice activity needs to target specific structures/pathways within the brain slice, requiring that electrode mapping be easily and quickly performed live during the experiment. Here, we illustrate how to perform the recording and electrical modulation of 4-aminopyridine (4AP)-induced epileptiform activity in rodent brain slices using planar MEAs. We show that the brain tissue obtained from mice outperforms rat brain tissue and is thus better suited for MEA experiments. This protocol guarantees the generation and maintenance of a stable epileptiform pattern that faithfully reproduces the electrophysiological features observed with conventional field potential recording, persists for several hours, and outlasts sustained electrical stimulation for prolonged epochs. Tissue viability throughout the experiment is achieved thanks to the use of a small-volume custom recording chamber allowing for laminar flow and quick solution exchange even at low (1 mL/min) perfusion rates. Quick MEA mapping for real-time monitoring and selection of stimulating electrodes is performed by a custom graphic user interface (GUI).

We illustrate how to perform recording and electrical modulation of 4-aminopyridine-induced epileptiform activity in rodent brain slices using microelectrode arrays. A custom recording chamber maintains tissue viability throughout prolonged experimental sessions. Live electrode mapping and selection of stimulating pairs are performed by a custom graphical user interface.

Kayıt ve modülasyon Epileptiform aktivite elektrot dizilerin birleştiğinde kemirgen beyin dilimleri içinde

Temporal lobe epilepsy (TLE) is the most common partial complex epileptic syndrome and the least responsive to medications. Deep brain stimulation (DBS) ...

Evaluation of Hemisphere Lateralization with Bilateral Local Field Potential Recording in Secondary Motor Cortex of Mice

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical areas of mice, which are useful for evaluating possible laterality deficits, as well as for assessing brain connectivity and coupling of neural network activities in rodents. The pathological mechanisms underlying Alzheimer&#39;s disease (AD), a common neurodegenerative disease, remain largely unknown. Altered brain laterality has been demonstrated in aging people, but whether or not abnormal lateralization is one of the early signs of AD has not been determined. To investigate this, we recorded bilateral LFPs in 3-5-month-old AD model mice, APP/PS1, together with littermate wild type (WT) controls. The LFPs of the left and right secondary motor cortex (M2), specifically in the gamma band, were more synchronized in APP/PS1 mice than in WT controls, suggesting a declined hemispheric asymmetry of bilateral M2 in this AD mouse model. Notably, the recording and data analysis processes are flexible and easy to carry out, and can also be applied to other brain pathways when conducting experiments that focus on neuronal circuits.

We present in vivo electrophysiological recording of the local field potential (LFP) in bilateral secondary motor cortex (M2) of mice, which can be applied to evaluate hemisphere lateralization. The study revealed altered levels of synchronization between the left and right M2 in APP/PS1 mice compared to WT controls.

Fareler Ikincil motor korteks bilateral lokal saha potansiyel kayıt ile Yarımküre lateralizasyon değerlendirilmesi

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical ...

Investigating Long-term Synaptic Plasticity in Interlamellar Hippocampus CA1 by Electrophysiological Field Recording

The study of synaptic plasticity in the hippocampus has focused on the use of the CA3-CA1 lamellar network. Less attention has been given to the longitudinal interlamellar CA1-CA1 network. Recently however, an associational connection between CA1-CA1 pyramidal neurons has been shown. Therefore, there is the need to investigate whether the longitudinal interlamellar CA1-CA1 network of the hippocampus supports synaptic plasticity.
We designed a protocol to investigate the presence or absence of long-term synaptic plasticity in the interlamellar hippocampal CA1 network using electrophysiological field recordings both in vivo and in vitro. For in vivo extracellular field recordings, the recording and stimulation electrodes were placed in a septal-temporal axis of the dorsal hippocampus at a longitudinal angle, to evoke field excitatory postsynaptic potentials. For in vitro extracellular field recordings, hippocampal longitudinal slices were cut parallel to the septal-temporal plane. Recording and stimulation electrodes were placed in the stratum oriens (S.O) and the stratum radiatum (S.R) of the hippocampus along the longitudinal axis. This enabled us to investigate the directional and layer specificity of evoked excitatory postsynaptic potentials. Already established protocols were used to induce long-term potentiation (LTP) and long-term depression (LTD) both in vivo and in vitro. Our results demonstrated that the longitudinal interlamellar CA1 network supports N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor-dependent long-term potentiation (LTP) with no directional or layer specificity. The interlamellar network, however, in contrast to the transverse lamellar network, did not present with any significant long-term depression (LTD).

We used recording and stimulation electrodes in longitudinal hippocampal brain slices and longitudinally positioned recording and stimulation electrodes in the dorsal hippocampus in vivo to evoke extracellular postsynaptic potentials and demonstrate long-term synaptic plasticity along the longitudinal interlamellar CA1.