Name: handling of the cotton rat in studies for the pre-clinical evaluation of oncolytic viruses
Uploaded: 2014-11-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses at JoVE.com

Breanne Cuddington holds a fellowship from the Canadian Breast Cancer Foundation. This work was sponsored by operating grants from the Cancer Research Society and the Canadian Cancer Society Research Institute (formerly the Canadian Breast Cancer Research Alliance). We thank Ann Tollefson (Saint Louis University School of Medicine) for LCRT cells and Dr. Kathleen Delaney and Marion Corrick for technical assistance with cotton rat housing and sedation.

NOT: kullanılan protokoller Hayvan Bakımı yönergelere Kanada Konseyi&#39;ne göre McMaster Üniversitesi&#39;nde kurumsal Hayvan Araştırmaları Etik Kurulu tarafından onaylanmıştır. Deneyler McMaster Üniversitesi Merkez Hayvan Tesisleri&#39;nde gerçekleştirildi. 1. Kültürleme fazla tercih Hücreler <ol><li> Dulbecco tadil edilmiş Eagle ortamı (DMEM) içinde kültür fazla tercih hücreleri,% 10 fetal sığır serumu (FBS), 2 mM L-glutamin, 100 U / ml penisilin ve 100 ug / ml streptomisin ile takviye edilmiştir. 37 ° C &#39;de, T-150 doku kültürü şişelerinden hücreler korumak ve% 5 CO2. Geçiş hücreleri% 90 konfluent tek tabaka (2-3 günde, Şekil 1) oluşturmak zaman. </li><li> Ön sıcak 1x fosfat tamponlu tuzlu su (PBS), hücrelerin bölünmesi önce 10 dakika için 37 ° C su banyosu içinde 1 x tripsin ve orta. </li><li> Aspire şişeden orta ve 1x PBS 5 ml hücreleri yıkayın. </li><li> Duruladıktan sonra, PBS aspire ve inkübehücreler kadar 1x tripsin 2 ml hücre şişeye (yaklaşık 2 dakika) çözülür. </li><li> Yumuşak ve (10 mi hücre süspansiyonu, toplam), 8 ml ortam içinde yeniden süspanse hücreler, hücrelerin yığınları parçalamak için yukarı ve aşağı pipet ve. </li><li> Yan hafifçe yan ve kaya şişeye (T-150 25 ml toplam) 24 ml ortam içine 1 ml hücre süspansiyonu, tohumlama ile, bir T-150 şişesi içinde hücrelerin muhafaza edin. Bir sonraki bölünme kadar 37 ° C&#39;de ve% 5 CO2 hücreleri koruyun. </li></ol> 2. fazla tercih Hücreleri Virüs Çoğaltma ve Sitotoksisite Değerlendirilmesi <ol><li> Virüs Çoğaltma NOT: yerli viral promoterlerin kontrolü altında yeşil floresan proteini (GFP) gibi bir floresan etiketi sentezleyen Virüs yapılan, virüs enfeksiyonu vizüalizasyon ve floresans plaka okuyucusu kullanılarak yayıldı. <ol><li> Sayma için kuyu bırakarak kültür plakaları içine Tohum fazla tercih hücreleri,. Tohum hücreleri gibi onlar bir gün sonra% 80-90 konfluent olacak. 10 5 cel bir konsantrasyon kullanınls / ml (oyuk başına 100 ul) 96 oyuklu düz tabanlı plakalar içinde bir gün sonra, istenen konfluent üretilir. </li><li> Bir sonraki gün, önceden sıcak 1x PBS, 1 x tripsin, 10 dakika önce deney başlamadan 37 ° C su banyosu içinde tam ve serumsuz ortam. </li><li> Iyi yüzeyi üzerine sallanmasıyla 1x PBS, 5 ml iyi sayma ve durulama hücrelerden aspire ortamı. </li><li> Durulamadan sonra, hücreler kadar 1x tripsin 2 ml PBS aspire ve inkübe hücreler şişeden (~ 2 dakika) çözülür. </li><li> Bir hemasitometre kullanarak sayılabilir aralığı içinde bir hücre yoğunluğu vermek üzere tam orta uygun hacimde tekrar süspansiyon hücreleri. Doğru bir hücre sayısını sağlamak için, önce iyice yukarı ve aşağı pipetleme hemasitometre aşılamak için hücre süspansiyonu karıştırın. </li><li> Enfeksiyon istenen çokluğu (İçişleri Bakanlığı) enfeksiyonu için gerekli virüs stokunun hacmini belirleyin. Birimleri Şekillendirme Gerekli Paque (pfu) = kaplama hücrelerinin sayısı * İçişleri Bakanlığı(Pfu / hücre) Virüs stokunun hacmi gerekli = gerekli pfu / virüs stok titresi (pfu / ml) </li><li> Tüpler, serum barındırmayan ortam içinde, virüs inokulum hazırlayın. Hücrelere inokulum eklemeden önce vorteks veya pipetle iyice karıştırın. </li><li> Bundan sonra DMEM +% 1 FBS bakım paylaşımı uygulama, 37 ° C de 1 saat süre ile hücreleri enfekte etmektedir. </li><li> Tarama plakaları bir ve iki gün sonrası enfeksiyon (pi) GFP floresan görselleştirmek için. </li></ol></li><li> Virüs Sitotoksisite NOT: Bileşik ışığa gibi düşük ışık koşullarında resazurin sitotoksisite deneyi gerçekleştirin. Aynı içeren ortam, sadece eşiğe düzeltmek için dahil edilmelidir. <ol><li> 1x PBS resazurin,% 5 (h / h) çözeltisi hazırlayın. Pipetleme tarafından çözüm karıştırın. </li><li> Hücrelerden aspire orta ve% 5 resazurin çözümü uygulayın. Iyi içeren ortamı sadece eşiğe düzeltmek için ekleyin. </li><li> 37 ° C&#39;de 30 dakika boyunca kuluçkaya bırakılır C, sonrabu, bir floresan plaka okuyucu (eksitasyon 530 nm, emisyon 595 nm) kullanılarak floresans okundu. </li><li> Eşiğe için düzeltme bulaşmamış kontrollere veri göreli analiz. </li></ol></li></ol> 3. Konut ve Taşıma <ol><li> Konut ve Diyet <ol><li> Ev pamuk fareleri tek tek kemirgen yatak (1/8 &quot;mısır koçanı yatak), artık zenginlik olarak 8 inç ve nestlets daha PVC boru (Şekil 2) bir bölümünü içeren polikarbonat sıçan kafeslerde de söndürme azaltmak için. </li><li> Üstünlük kafesin oturmak ve kemirgen yiyecek ve su şişesi içeren bir güvenilir çelik sepet kullanın. NOT: Bu kafes kurulum büyük önem kafes varlığının ucuna karşı zenginleştirme tüpün yerleştirilmesi ile, hayvan güvenli ve kolay bir yakalama sağlayacaktır. </li></ol></li><li> Kullanma <ol><li> Hayvan tesis teknisyenleri tarafından mermi önce önce heyecan verici bunları önlemek için, sabah pamuk fareleri Kolubir prosedür. </li><li> Tüm işlemler sırasında, koruma için kalın deri eldiven giyin. </li><li> Hayvanlar öncelikle zenginleştirme tüplerinde kalır gibi, rutin temizlik sırasında yeni bir kafes içine sıçan aktarmak için kullanabilirsiniz. Alternatif olarak, işleyici kendi elini ulaşmasına izin biraz kafesi açmak, hayvan sonra sadece omuzlar üstünde cildi Eksfoliyant ve aşağı iterek ölçülü olabilir. Hayvan kendi dilini ısırabilir olarak Pratik bakım aşırı güç kullanmak değil. </li><li> Sabırlı olun ve hayvanlar güçlü bir uçuş veya dövüş yanıt var ve çalışıyor ve kafesin dışına atlayarak yakalama önlemek için çalışacağız olarak istikrarlı bir elinizi kullanın. Derinin büyük oluşacak gibi Önemlisi, kuyruk hayvanlar dokunmayın. </li><li> Tuzak doğrudan kullanım üzerindeki zenginleşme tüpler hayvanlar. Bu büyük ölçüde yaralanmaları ve kaçan azalır. </li></ol></li></ol> 4. Yakalama ve Anestezi <ol><li> Ele geçirmek <ol><li> Koruma için kalın deri eldiven giyinTüm işlemler sırasında iyon. </li><li> Hava ve bir kapak, kap ve gaz çıkış hortumunun (Şekil 3) takılan bir burun konisi sığacak kadar büyük bir indüksiyon odası için delikli bir büyük şeffaf plastik kap kullanın. </li><li> Prosedür daha verimli hale getirmek ve izofluran, bir inhalasyon anestezik hayvanların maruz kalma süresini azaltmak için çiftler halinde çalışın. Emin bir araştırmacı olun (işleyicisi # açılması ve kafes çelik kapağını yerine ve indüksiyon odasının kapağı (1 işleyicisi #) sorumludur ve onların ortak indüksiyon odasına tüp ve ulaşım hayvanın yakalanması için sorumlu 2). </li><li> Düz bir yüzeye yerleştirin ve kafesi dış kapağı çıkarın. Biraz çelik besleme tepsisini kaldırın ve kafes kenarları ve arka karşı paralel çok yavaş zenginleştirme tüp manevra. Gerekirse, hayvan ajitasyon önlemek için kafes açmadan zenginleştirme tüp manevra bir nesne kullanın (işlemekr # 1). </li><li> Hayvan ajite olur ve tüp bırakırsa, hayvan dinlenmek ve bir kez daha tüp (işleyici # 1) yerleşmek için yeterli zaman tanıyın. </li><li> Yavaşça ve kasıtlı kafes ile temas diğer ucunu tutarak, zenginleştirme tüp çelik kapak sağdaki kenarını kaldırın. Plastik kap (2 işleyicisi #) için yeterli bir alan, büyük olun. </li><li> Bir yumuşak, hızlı bir hareketle, zenginleştirme tüp üstünlük plastik kap itin. Tüp hayvan bindirme kafesin yüzü kabın temas halindedirler. Mümkün (işleyici # 2) olduğunca çabuk adımlar 4.1.6 ve 4.1.7 gerçekleştirin. </li><li> Çelik besleme tepsisini çıkarın ve # 2 (işleyici # 1) işleyicisi için plastik kap kapağı vermek. Süreç içinde sıkışıp hayvanın ekleri dikkatli olmak, kafes ve kabın yan arasındaki plastik kapağı kaydırın. Bu sonraki adım daha zor hale getirecek gibi kabı mühür etmeyin (işleyici # 2). </li></ol></li><li> Anesthesia <ol><li> Emin konteyner kapalı kalır emin olun ve indüksiyon odasına hayvan taşıma. Hızla odasında hayvan koyun ve bir sıvı hareketi (işleyici # 2) konteyner kapağı kaldırın. Açın ve hemen indüksiyon odası kapağı yerine (işleyici # 1). </li><li> Indüksiyon odasına (/ dak 5 L) izofluran akışının açın ve hızlı bir şekilde gaz dolaşımını kolaylaştırmak için indüksiyon odasından çıkarmadan tüp ve kap, hayvanın slayt point hangi uyuşukluk belirtileri için hayvan izlemek. </li><li> Sıçan tam anestezi olduğunda, çalışma yüzeyine taşıyın ve burun konisi (Şekil 3) içine burun ve ağız yerleştirin. Sıçan tam olarak güçlü bir ayak tutam tepkisiz olduğunda anestezi. </li><li> Kuruluk ve aşınmaları önlemek için hayvanın gözleri veteriner vazelin oftalmik merhem yerleştirin. Bu pamuk fareleri yaralanma olursa enfeksiyona eğilimli olabilir büyük gözleri var gibi önemli bir adımdır. </li> &lt;li&gt; dikkatlice izlemek ve sabit solunum hızını korumak ve hayvanın burnu prosedürü boyunca uydurma burun konisi içinde kalmasını sağlamak. Uygun izofluran akış hızını ayarlayın. izofluran miktarı her hayvan değişecektir uyutmak için gerekli. </li><li> Post-işlem, kendi kafesine hayvan dönün ve tam hareketlilik ve sternum yatma kavuşur sağlamak. </li></ol></li></ol> Subkutan Tümör Oluşumu için fazla tercih Hücreler 5. hazırlanması Not: fazla tercih biri, tamamen T-150 şişesi (% 90 konflüans) yaklaşık 2 x 10 7 hücreleri elde edilir. Ihtiyaç duyulan hücre sayısı gerekli T-150 şişelerinde sayı tabanıdır. Elde edilir gerekli hücrelerin toplam sayısını sağlamak için ekstra şişeler Tohum ve hazırlık ve ekstra enjeksiyonlar için gerekli olan sırasında kaybedilen hücreleri karşılamak için. Hücre canlılığı uzatmak için mümkün buz üzerinde hücreleri tutun. <ol><li> Balon hücreleri, aspire orta hasat1x PBS, 5 ml d durulama hücreleri. </li><li> PBS aspire ve hücreler, bir şişeye (yaklaşık 2 dakika) ayrışmasına kadar 1x tripsin 2 ml hücreleri inkübe edin. </li><li> Yumuşak ve (10 mi hücre süspansiyonu, toplam), 8 ml ortam içinde yeniden süspanse hücreler, hücrelerin yığınları parçalamak için yukarı ve aşağı pipet ve. Ek matara hücreleri hasat devam edin. </li><li> Bir konik tüp, 50 ml konik tüp başına yaklaşık 4, T-150s içine tüm hücre süspansiyonları havuzda toplayın. </li><li> Santrifüj, 4 ° C&#39;de 10 dakika boyunca 160 x g&#39;de tüpü. </li><li> Kültür ortamı basınçla bir hemositometre kullanılarak sayılabilir aralığı içinde bir hücre yoğunluğu vermek üzere bir PBS uygun hacmi (T-150 başına 10 ml PBS) hücre pelletini. Doğru bir hücre sayısını sağlamak için, önce iyice yukarı ve aşağı pipetleme hemasitometre yükleme hücre süspansiyonu karıştırın. </li><li> Toplam hücre sayısını hesaplayın: Hücrelerin toplam sayısı = hücre sayımı (hücre / ml) toplandı X yeniden süspansiyon hacmi (mi) </li><li> BelirlemekTüm enjeksiyonlar için gerekli olan hücre süspansiyonu hacmi. Deneme başına 2-3 ilave doz olun. Deri altına enjekte, 5 x 10 5 fazla tercih hücrelerinin toplam 3-4 gün içinde aşikar tümörler oluşturacaktır. Gerekli hücrelerin sayısı = 5 x 10 5 hücre x doz sayısı Birim hücre süspansiyonu gerekli (mi) = (* toplamı, püskürtme miktarının gerekli olan toplam hücreleri) /, (hasat edilmiş hücrelerin toplam sayısı) </li><li> Pipet gerekli PBS içeren bir konik tüp içine, hücre süspansiyonu hacmi ve iyice karıştırın. Eppendorf tüpleri içine kısım tek enjeksiyonu (100 ul). Enjeksiyon işlemi sırasında buz şok koruyun. </li></ol> 6. Enjeksiyonlar NOT: Bir süre başka izler hayvanın solunum hızı ve genel durumu ise anestezi altında iğne yapmak, iki araştırmacı olan prosedürleri uygulayın. Tüm enjeksiyonlar ve yeni bir iğne için insülin şırınga (29 g 0.3 mi, &#39;1/2 x) kullanarakHer bir hayvan. <ol><li> Deri altı enjeksiyonları <ol><li> Yakalama ve hayvan (bölüm 4) uyutmak. </li><li> Makası kullanarak enjeksiyon bölgesini tıraş. Pamuk sıçan kürk kalın ve enjeksiyonlar için pürüzsüz bir yüzey elde etmek için keskin bir düzeltici gerektirir. Bir pamuklu çubukla kullanarak% 70 etanol ile enjeksiyon bölgesini temizleyin ve ilerlemeden önce tamamen buharlaşmasına izin verin. </li><li> Yavaş ve sürekli bir şekilde çizerek hücreleri ile yüklenebilir şırıngalar (29 g x 1/2 &quot;, 0.3 ml) eklenmiştir. Kabarcıklar bazı kuvvet ile şırınga belirgin fiske iseniz. Kabarcıklar üst basarak kez sıvı kadar piston iğne üstünde olduğunu. </li><li> (Cilt çadırlaşması olarak anılacaktır) enjeksiyon yerinde cilt kaldırın ve iğne konik tarafı yukarı yerleştirin. İğnenin kas enjekte önlemek için cilt altında serbestçe hareket edin. </li><li> Eşit ve yavaş yavaş şırınga içeriğini boşaltınız. Aşağı iğne konik tarafı çekiniz. </li></ol></li><li> İntratümöral enjeksiyonlar <ol><li> Yakalama birhayvan (bölüm 4) uyutmak d. </li><li> Bir pamuklu çubukla kullanarak% 70 etanol ile enjeksiyon bölgesini temizleyin ve ilerlemeden önce tamamen buharlaşmasına izin verin. </li><li> Dik bir pozisyonda iğne tutarken yavaşça ve sürekli yukarı çizerek virüs inokulum ile yük şırıngalar (29 G 0.3 ml, &#39;1/2 x). Kabarcıklar bazı kuvvet ile şırınga belirgin fiske iseniz. Kabarcıklar üst basarak kez sıvı iğne üstünde olduğu kadar, sonra Pistonun. </li><li> Tümör içine iğne konik tarafı yukarı yerleştirin ve kısmen tümörün laserasyonunu önlemek için her hareketinden önce iğneyi çekilmesi, fan gibi desen iğne hareket ederken eşit ve yavaş yavaş şırınga içeriğini sınırdışı. Aşağı iğne konik tarafı çekiniz. NOT: Subkutan fazla tercih tümörler hızlı büyüyen 5-7 gün içinde yaklaşık 100 mm 3 ulaşan vardır. Ayrıca, nekrotik ve hemorajik merkezleri genellikle birkaç gün içinde tümörün yüzeyinde oluşan ve ca gerektirirreful izleme (Şekil 4). </li></ol></li><li> Periton içi enjeksiyonlar <ol><li> Yakalama ve hayvan (bölüm 4) uyutmak. </li><li> Pamuklu çubuklarla kullanarak% 70 etanol ile enjeksiyon bölgesini temizleyin ve ilerlemeden önce tamamen buharlaşmasına izin verin. </li><li> Yavaş yavaş ve sürekli yukarıya çizerek ilaç ile yük şırıngalar (29 G 0.3 ml, &#39;1/2 x). Kabarcıklar bazı kuvvet ile şırınga belirgin fiske iseniz. Kabarcıklar üst basarak kez sıvı iğne üstünde olduğu kadar, sonra Pistonun. </li><li> Karın sağ alt kadranda içine iğne takın. Kan ya da dışkı aspire değil emin olmak için tekrar pistonu çekin, bu iğnenin yanlış yerleştirme gösterir. Bu durum ortaya çıkarsa, iğneyi çıkartın ve yeni bir şırınga hazırlayın. İğne doğru yerleştirildiğinde, eşit ve yavaş yavaş şırınga içeriğini sınırdışı. </li></ol></li></ol> 7. Tümör eksizyonu ve Nekropsi <ol><li> Toplayın ve al temizlemek% 70 etanol önce hayvanın ötenazi için birlikte l araçları. </li><li> İstediğiniz yöntemle hayvan Euthanize, CO 2 inhalasyon (5-10 dakika / dak 2 L) tavsiye edilir. Vücut durumda herhangi bir anormallik için hayvan inceleyin. </li><li> Bir diseksiyon gemide sırt yatma hayvan koyun ve% 70 etanol ile hayvan temizleyin. </li><li> Alt karın cildi kaldırmak için cımbız kullanın. Makas kullanılarak deri ve kas yoluyla kesin ve hayvan uzunluğunu (çene anüs) çalıştıran bir medial kesi yapmak. </li><li> İki kesim, yanal göğüs kafesi tarafı yukarı bir ve kalp ve akciğerler maruz sternum üzerinden bir yaparak göğüs kafesi kesin. Herhangi bir metastaz 27,29 akciğerin lobları inceleyin. </li><li> Anormallikler için tüm organlarını incelemek ve renk, boyut ve tutarlılık içinde herhangi bir değişiklik kayıt. Gerekirse, iç dokuları incelemek için bir neşter ile organları insizyon. Özellikle, karaciğer, böbrekler, dalak ve mide yolu incelemek. </li><li> Metastaz için lenf düğümleri kontrol edin ve 27,29 genişleme. </li><li> Tümör toplamak için, cenah kesiler üstünde ve cilt cımbız ile vücuttan uzak çekilebilir şekilde tümör altında olun. Sıkıca cımbız ile cilt tutarken, dikkatli tümör ve dermis (Şekil 5) arasındaki keserek tümörü çıkarmak için bir neşter kullanabilirsiniz. </li><li> Hemen% 10 nötr tamponlu formalin etiketli bir kap içinde tümör yerleştirin. </li><li> Tümörün büyüklüğüne bağlı olarak, 1-2 gün izin (≤ 2 mm, küçük) ya da 5-6 gün histolojik analiz (Şekil 6) bölümler hazırlamadan önce sabitlemek için (&gt; 2 mm geniş). </li></ol>

<ol>
	<li>Cervantes-Garcia, D., Ortiz-Lopez, R., Mayek-Perez, N., Rojas-Martinez, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oncolytic+virotherapy.">Oncolytic virotherapy.</a> Ann Hepatol. 7 (1), 34-45 (2008).</li><li>Vaha-Koskela, M. J., Heikkila, J. E., Hinkkanen, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oncolytic+viruses+in+cancer+therapy.">Oncolytic viruses in cancer therapy.</a> Cancer Lett. 254 (2), 178-216 (2007).</li><li>Abril, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Both+viral+and+host+factors+contribute+to+neurovirulence+of+bovine+herpesviruses+1+and+5+in+interferon+receptor-deficient+mice.">Both viral and host factors contribute to neurovirulence of bovine herpesviruses 1 and 5 in interferon receptor-deficient mice.</a> J Virol. 78 (7), 3644-3653 (2004).</li><li>Nakamichi, K., Matsumoto, Y., Otsuka, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defective+infection+of+bovine+herpesvirus+1+in+non-permissive+murine+cells.">Defective infection of bovine herpesvirus 1 in non-permissive murine cells.</a> J Vet Med Sci. 63 (10), 1139-1142 (2001).</li><li>Boukhvalova, M. S., Blanco, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cotton+rat+sigmodon+hispidus+model+of+respiratory+syncytial+virus+infection.">The cotton rat sigmodon hispidus model of respiratory syncytial virus infection.</a> Curr Top Microbiol Immunol. 372, 347-358 (2013).</li><li>Papp, Z., Babiuk, L. A., Baca-Estrada, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+immunity+in+the+respiratory+tract+and+protection+from+bovine+herpesvirus+type+1+infection+by+different+routes+of+immunization+with+recombinant+adenovirus.">Induction of immunity in the respiratory tract and protection from bovine herpesvirus type 1 infection by different routes of immunization with recombinant adenovirus.</a> Viral Immunol. 11 (2), 79-91 (1998).</li><li>Hughes, T. C. R., Lilley, C. E., Ponce, R., Kaufman, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+analysis+of+an+oncolytic+herpesvirus+encoding+granulocyte-macrophage+colony+stimulating+factor+for+the+treatment+of+malignant+melanoma.">Critical analysis of an oncolytic herpesvirus encoding granulocyte-macrophage colony stimulating factor for the treatment of malignant melanoma.</a> Journal of Oncolytic Virotherapy. 3, 11-20 (2014).</li><li>Jones, C., Chowdhury, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+biology+of+bovine+herpesvirus+type+1+(BHV-1),+its+role+as+a+cofactor+in+the+bovine+respiratory+disease+complex+and+development+of+improved+vaccines.">A review of the biology of bovine herpesvirus type 1 (BHV-1), its role as a cofactor in the bovine respiratory disease complex and development of improved vaccines.</a> Anim Health Res Rev. 8 (2), 187-205 (2007).</li><li>Jones, C., Chowdhury, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bovine+herpesvirus+type+1+(BHV-1)+is+an+important+cofactor+in+the+bovine+respiratory+disease+complex.">Bovine herpesvirus type 1 (BHV-1) is an important cofactor in the bovine respiratory disease complex.</a> Vet Clin North Am Food Anim Pract. 26 (2), 303-321 (2010).</li><li>Hushur, O., Takashima, Y., Matsumoto, Y., Otsuka, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Restriction+of+bovine+herpesvirus+1+(BHV-1)+growth+in+non-permissive+cells+beyond+the+expression+of+immediate+early+genes.">Restriction of bovine herpesvirus 1 (BHV-1) growth in non-permissive cells beyond the expression of immediate early genes.</a> J Vet Med Sci. 66 (4), 453-455 (2004).</li><li>Cuddington, B. P., Dyer, A. L., Workenhe, S. T., Mossman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oncolytic+bovine+herpesvirus+type+1+infects+and+kills+breast+tumor+cells+and+breast+cancer-initiating+cells+irrespective+of+tumor+subtype.">Oncolytic bovine herpesvirus type 1 infects and kills breast tumor cells and breast cancer-initiating cells irrespective of tumor subtype.</a> Cancer Gene Ther. 20 (5), 282-289 (2013).</li><li>Cuddington, B. P., Mossman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Permissiveness+of+Human+Cancer+Cells+to+Oncolytic+Bovine+Herpesvirus+1+Is+Mediated+in+Part+by+KRAS+Activity.">Permissiveness of Human Cancer Cells to Oncolytic Bovine Herpesvirus 1 Is Mediated in Part by KRAS Activity.</a> J Virol. 88 (12), 6885-6895 (2014).</li><li>Small, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+phase+I+trial+of+intravenous+CG7870,+a+replication-selective,+prostate-specific+antigen-targeted+oncolytic+adenovirus,+for+the+treatment+of+hormone-refractory,+metastatic+prostate+cancer.">A phase I trial of intravenous CG7870, a replication-selective, prostate-specific antigen-targeted oncolytic adenovirus, for the treatment of hormone-refractory, metastatic prostate cancer.</a> Mol Ther. 14 (1), 107-117 (2006).</li><li>Freytag, S. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phase+I+study+of+replication-competent+adenovirus-mediated+double+suicide+gene+therapy+for+the+treatment+of+locally+recurrent+prostate+cancer.">Phase I study of replication-competent adenovirus-mediated double suicide gene therapy for the treatment of locally recurrent prostate cancer.</a> Cancer Res. 62 (17), 4968-4976 (2002).</li><li>Benjamin, R., Helman, L., Meyers, P., Reaman, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+phase+I/II+dose+escalation+and+activity+study+of+intravenous+injections+of+OCaP1+for+subjects+with+refractory+osteosarcoma+metastatic+to+lung.">A phase I/II dose escalation and activity study of intravenous injections of OCaP1 for subjects with refractory osteosarcoma metastatic to lung.</a> Hum Gene Ther. 12 (12), 1591-1593 (2001).</li><li>Prince, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Cotton+Rat+in+Biomedical+Research.">The Cotton Rat in Biomedical Research.</a> Animal Welfare Information Center Newsletter. 5 (2), 3-5 (1994).</li><li>Tsai, J. C., Garlinghouse, G., McDonnell, P. J., Trousdale, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+experimental+animal+model+of+adenovirus-induced+ocular+disease.+The+cotton+rat.">An experimental animal model of adenovirus-induced ocular disease. The cotton rat.</a> Arch Ophthalmol. 110 (8), 1167-1170 (1992).</li><li>Ginsberg, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+for+investigating+the+molecular+pathogenesis+of+adenovirus+pneumonia.">A mouse model for investigating the molecular pathogenesis of adenovirus pneumonia.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (5), 1651-1655 (1991).</li><li>Russell, S. J., Peng, K. W., Bell, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oncolytic+virotherapy.">Oncolytic virotherapy.</a> Nat Biotechnol. 30 (7), 658-670 (2012).</li><li>Mossman, K. L., Saffran, H. A., Smiley, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+virus+ICP0+mutants+are+hypersensitive+to+interferon.">Herpes simplex virus ICP0 mutants are hypersensitive to interferon.</a> J Virol. 74 (4), 2052-2056 (2000).</li><li>Mossman, K. L., Smiley, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+virus+ICP0+and+ICP34.5+counteract+distinct+interferon-induced+barriers+to+virus+replication.">Herpes simplex virus ICP0 and ICP34.5 counteract distinct interferon-induced barriers to virus replication.</a> J Virol. 76 (4), 1995-1998 (2002).</li><li>Hummel, J. L., Safroneeva, E., Mossman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+ICP0-Null+HSV-1+and+interferon+signaling+defects+in+the+effective+treatment+of+breast+adenocarcinoma.">The role of ICP0-Null HSV-1 and interferon signaling defects in the effective treatment of breast adenocarcinoma.</a> Mol Ther. 12 (6), 1101-1110 (2005).</li><li>Papp, Z., Middleton, D. M., Mittal, S. K., Babiuk, L. A., Baca-Estrada, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mucosal+immunization+with+recombinant+adenoviruses:+induction+of+immunity+and+protection+of+cotton+rats+against+respiratory+bovine+herpesvirus+type+1+infection.">Mucosal immunization with recombinant adenoviruses: induction of immunity and protection of cotton rats against respiratory bovine herpesvirus type 1 infection.</a> J Gen Virol. 78 (11), 2933-2943 (1997).</li><li>Papp, Z., Babiuk, L. A., Baca-Estrada, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+pre-existing+adenovirus-specific+immunity+on+immune+responses+induced+by+recombinant+adenovirus+expressing+glycoprotein+D+of+bovine+herpesvirus+type+1.">The effect of pre-existing adenovirus-specific immunity on immune responses induced by recombinant adenovirus expressing glycoprotein D of bovine herpesvirus type 1.</a> Vaccine. 17 (7-8), 933-943 (1999).</li><li>Mittal, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+systemic+and+mucosal+immune+responses+in+cotton+rats+immunized+with+human+adenovirus+type+5+recombinants+expressing+the+full+and+truncated+forms+of+bovine+herpesvirus+type+1+glycoprotein+gD.">Induction of systemic and mucosal immune responses in cotton rats immunized with human adenovirus type 5 recombinants expressing the full and truncated forms of bovine herpesvirus type 1 glycoprotein gD.</a> Virology. 222 (2), 299-309 (1996).</li><li>Steel, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Syngeneic+Cotton+Rat+Cancer+Model+for+Replicating+Adenoviral+Vectors.">Syngeneic Cotton Rat Cancer Model for Replicating Adenoviral Vectors.</a> Molecular Therapy. 13 (1), 123 (2006).</li><li>Toth, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cotton+rat+tumor+model+for+the+evaluation+of+oncolytic+adenoviruses.">Cotton rat tumor model for the evaluation of oncolytic adenoviruses.</a> Hum Gene Ther. 16 (1), 139-146 (2005).</li><li>Toth, K., Spencer, J. F., Wold, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocompetent,+semi-permissive+cotton+rat+tumor+model+for+the+evaluation+of+oncolytic+adenoviruses.">Immunocompetent, semi-permissive cotton rat tumor model for the evaluation of oncolytic adenoviruses.</a> Methods Mol Med. 130, 157-168 (2007).</li><li>Steel, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocompetent+syngeneic+cotton+rat+tumor+models+for+the+assessment+of+replication-competent+oncolytic+adenovirus.">Immunocompetent syngeneic cotton rat tumor models for the assessment of replication-competent oncolytic adenovirus.</a> Virology. 369 (1), 131-142 (2007).</li><li>Workenhe, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunogenic+HSV-mediated+oncolysis+shapes+the+antitumor+immune+response+and+contributes+to+therapeutic+efficacy.">Immunogenic HSV-mediated oncolysis shapes the antitumor immune response and contributes to therapeutic efficacy.</a> Mol Ther. 22 (1), 123-131 (2014).</li><li>Sobol, P. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adaptive+antiviral+immunity+is+a+determinant+of+the+therapeutic+success+of+oncolytic+virotherapy.">Adaptive antiviral immunity is a determinant of the therapeutic success of oncolytic virotherapy.</a> Mol Ther. 19 (2), 335-344 (2011).</li><li>Prince, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Cotton+Rat+in+Biomedical+Research.">The Cotton Rat in Biomedical Research.</a> Animal Welfare Information Center Newsletter. 5 (2), (1994).</li></ol>

The authors acknowledge there are no financial conflicts of interest related to this research.

Cotton rats are highly excitable and have a strong flight response. Therefore, special care should be taken to minimize any undue stress on the animal. The cage setup described will allow for safe and easy capture of the animals, with the placement of the enrichment tube being of the utmost importance. When setting up cages, ensure that the enrichment tubes meet the size and shape requirements, and are placed in proper orientation in the cage. It is also important to ensure that any technicians who might be aiding in animal maintenance are informed of the specific requirements for housing. Taking these precautions will reduce agitation of the animal prior to performing procedures. It is also advisable that procedures be performed in the morning, before any handling by technicians or animal facility staff. Commencing procedures with calm animals will aid in their capture and handling.
The use of nestlets is highly recommended. In the wild, these rodents make their nests out of cotton so they are more comfortable when given the option to build them in their cages. A nest can also aid in animal capture, such that the presence of the animal in the enrichment tube may no longer be required. In this case, the plastic container may be placed directly on top of the animal from above. This action is of particular use as an experiment progresses as the rats may adapt to avoid the traditional capture method.
When handling cotton rats it is of the utmost importance that the researcher remain calm and make deliberate movements. These animals can sense unease and will respond to the perceived emotional state of the handler. Wearing thick leather gloves, following the procedures as described and approaching them calmly and with confidence will protect from bite injuries.
There are conflicting reports in the literature regarding the response of cotton rats to anesthetics 26,32. Sedation of cotton rats for extended periods of time using isoflurane is not recommended 32. We have found that, with careful monitoring, animals can be sedated using isoflurane for approximately 15-20 minutes without adverse effects. In our experience the rats respond rapidly to isoflurane and are fully sedated within several minutes. Likewise, waking occurs in less than a minute in most cases. However, anesthetizing an animal under intense stress alters their response to isoflurane, such that during waking they experience a lack of hind limb motor control and will stumble around the cage. This effect does not appear to have any lasting impact as the animal can execute proper motor control within several minutes of recovery. 
When preparing the LCRT cells for tumor injections, it is imperative that the cells be kept on ice whenever possible to prolong viability. Mix the cells with a large bore pipet to avoid shearing the cells. Furthermore, to ensure that all tumors grow at a similar rate we recommend staggering the preparation of multiple cell suspensions when more than five animals are being injected. This will avoid slower growth of tumors in animals injected last due to decreased viability of the LCRT cells. 
Excising the tumor tissue from the skin using a scalpel better maintains the tumor architecture and vasculature for histology in comparison to using tweezers to pinch the tumor from the skin. Although perfusion with phenobarbital will best preserve tissues for histopathology, obtaining a license for barbiturates was a limiting factor and was not performed. Thus, necropsies were performed immediately following euthanasia to preserve tissues. In our experience, this allowed for an accurate assessment of the pathology associated with our treatment. 
Overall, the major limiting factor is the requirement for two researchers for handling procedures. Although the procedures can be performed by one handler, the process is greatly facilitated, and the stress of the animals significantly reduced, using two handlers. These procedures require practice and careful planning. Allow sufficient time to carry out methods calmly and deliberately. There exists significant stigma about the aggressive nature of these animals and the difficulty in their handling. This article serves to make these animals more accessible to researchers by detailing a simple, established handling method that effectively minimizes stress and injury to both the researcher and the animals. Using the methods we have described, cotton rats represent an excellent animal model for the study of many immune therapies, including oncolytic virotherapy.

Onkolitik virüsler (OV) seçici olarak normal ve tümörlü hücrelerde 1,2 arasındaki biyokimyasal farklılıklar yararlanılarak tümör hücreleri içinde replike. Doğal olarak meydana gelen doğal tipte virüs ifade seçici oncolysis elde etmek için bir mutasyon gerekmez olanlar, seçici oncolysis elde etmek için tasarlanmış olmalıdır ki bu: Ovs iki türü vardır. Belirli bir tümör türü içinde mutasyonların koleksiyonu OV 2 normal hücreler üzerinde selektif büyüme avantajı doğasını belirler. kullanılarak Ovs güvenlik ve faydaları, klinik çalışmalarda 3-7&#39;de gösterilmiştir. Onkolitik viroterapi alanında ilerlemelere rağmen iyi modeller Ovs antitümör etkinliğini değerlendirmek için gerekli olduğunu düşündüren, klinik öncesi ve klinik sonuçlar arasındaki boşlukları söz konusudur. Sığır herpes virüs tip 1 (BHV-1) Herpesviridae ailesinin üyesi ve Alphaherpesviridae alt familyası olduğunu. BHV-1 başlatılmaktadırates kötü bir soğuk 8,9 benzeyen belirtiler geniş bir yelpazede tezahür, sığırlarda solunum hastalığı kompleksi bovin. BHV-1 gibi, heparan sülfat ve adiponektin-1, 10, HSV-1 tarafından kullanılan bağlanma ve giriş reseptörleri bağlar. Bununla birlikte, adiponektin-2 10 yerine CD155 bağlanır. BHV-1 verimli girerek, normal ve transforme hücreler sıçangil 3,4,10 çoğaltma başlatmak için mümkün olduğu şekilde çok dar bir konakçı yelpazesine sahiptir. Bu geleneksel fare modelleri kullanımı sorunlu hale getirir. BHV-1 onkolitik kapasite in vitro 11,12 gösterilmiştir. BHV-1 göğüs kanseri hücreleri ve meme kanseri başlatan hücrelerin 11,12 dahil olmak üzere histolojik kaynaklı çeşitli insan tümör hücreleri içinde replikasyonunu başlatır ve öldürmek için gösterilmiştir. Bununla birlikte, BHV-1 ve anti-tümör kapasitesi İmmün kapsamında, in vivo olarak değerlendirilmesi gerekir. İnsan Adenovirüs (Ad), hangi57 tanımlanan serotipi en yaygın insanlarda solunum hastalığa neden vardır. Onkolitik Ad vektorlerı çeşitli klinik denemeler 13-15 ilerlemesini ile anti-tümör etkinliği için değerlendirilmiştir. Umut verici klinik öncesi verilere rağmen, klinik sonuçlar beklentilerini kısa düştü. Virüsün 16,17 bağışıklık tepkilerinin zayıflatılmış sergileyen, ancak insan tümör ksenograft modelleri, tipik olarak, Reklam vektörlerin antitümör etkinliğini incelemek için kullanılır. Ayrıca, singeneik fare modelleri, Reklam enfeksiyona olmayan toleranslılar 17,18 pratik bu modelleri kullanarak konak bağışıklık tepkilerinin değerlendirme yapılırken. konukçu bağışıklık sisteminin Ovs tümör hücre ölümünü 19 ortaya olan en etkili bir mekanizma olarak tanımlanmıştır. Ile tolerize edilmiş ve tolerize edilmiş olmayan tümörle birleşmiş antijeni arasında antitümör tepkiler (TAD) modelleri farklıdır ve büyük ölçüde OV tedavinin başarısını etkiler. HSV-1 OV KM100 (ICP0 n21220) 20,21 1814 VP16 bir murin Polyoma Orta T antijeni meme kanseri modelinde 22 tümör taşıyan farelerin% 80 tümör regresyonu ortaya çıkardı. Bununla birlikte, HER-2 / neu modellerinde KM100 antitümör etkinliği, transgenik farelerde sinjeneik farelerde% 20 tam bir gerileme ve tümör staz arasında değişmiştir, fareler HER2 tolerans kazandırma. Birlikte bu veriler tamamen iyi tamamen tedavi başarısını belirlemek özellikleri anlamak için insan bağışıklık manzara özetlemek hayvan modelleri kullanılarak Ovs değerlendirilmesinin önemini vurgulamak. (5 gözden gibi), Kuzey ve Güney Amerika yerli pamuk sıçan (Sigmodon hispidus), en sık RSV enfeksiyonuyla bir model olarak kullanılmaktadır. Bunlar 6,23 kompleks sığır solunum hastalığı ile bağlantılı patoloji özetlemek olarak pamuk fareleri aynı zamanda anti-BHV-1 aşı araştırmalarında kullanılmıştır. Pamuk sıçan Ayrıca, BHV-1 enfeksiyonuimmünojenik olan sürekli mukozal hem de sistemik bağışıklık tepkilerini 6,23-25 ​​uyarılması. Hücre hatları, spontan fibrosarkom ve meme bezi (fazla tercih) ve kemik (TÇHK ve VCRT) sırasıyla 26 ve osteosarkom elde edilmiştir. Pamuk fareler Reklam enfeksiyona yatkın olarak onkolitik Reklam vektörleri in vivo etkinliğini değerlendirmek ve insanlarda 27-29 benzer bir patoloji gösteren için kullanılmıştır. OVS öncesi klinik değerlendirme için immün sistemi baskılanmış modellerin kullanımı sadece tedaviye klinik yanıtlar daha az göstergesidir ancak onkolitik viroterapi 30,31 dikkate bağışıklık sisteminin rol almak için başarısız. Bu nedenle, singenik ve meme kanseri ve osteosarkom tümör-Tolerize pamuk sıçan modelleri, geleneksel kemirgen modelleri kullanılarak okudu olamaz gibi BHV-1 gibi OVS ve Ad öncesi klinik etkinliğini değerlendirmek için ilgili modellerdir.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s modified Eagle&amp;rsquo;s medium&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>11965-092</td><td>May use any brand&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>1X Phosphate Buffered Saline&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Can prepare in lab, filter to sterilize</td></tr><tr><td>200 mM L-glutamine</td><td>Gibco</td><td>25030164</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>100x Antibiotic-Antimycotic&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Quality Biological Inc.</td><td>110-001-101HI</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>T-150cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; tissue culture flask</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-80</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>1X TypLE Express</td><td>Life Technologies</td><td>12604-013</td><td></td></tr><tr><td>12-well cell culture plate, flat bottom</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-29</td><td>May use any brand, must be tissue culture treated</td></tr><tr><td>alamarBlue</td><td>Life Technologies</td><td>DAL1025</td><td>May use an alternative reagent for determination of cell viability</td></tr><tr><td>8640 Teklad 22/5 Rodent diet</td><td>Harlan&amp;nbsp;</td><td>8640</td><td></td></tr><tr><td>1/8&amp;rdquo; corncob rodent bedding</td><td>Harlan</td><td>7092</td><td></td></tr><tr><td>Nestlets</td><td>Ancare</td><td>-</td><td>Made of pulped virgin cotton fiber, dust-free and autoclavable</td></tr><tr><td>50 mL Conical tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-432-22</td><td>May use any brand, must be sterile</td></tr><tr><td>Isoflurane USP, 99.9 %, inhalation anesthetic</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>M60302</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td>Can prepare in lab</td></tr><tr><td>10 % Neutral Buffered Formalin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>NAPCO NapFlow 1200 Class II A/B3 Biosafety Microbiological Safety Cabinet (cell culture hood)</td><td>NAPCO</td><td>Model used not currently available</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Thermo Fisher Scientific Precision Heated Water Bath</td><td>Fisher Scientific</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>Reichert Bright-line Hemacytometer</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z359629</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Typhoon Trio BioAnalyzer&amp;nbsp;</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any fluorescence plate reader</td></tr><tr><td>Tecan Safire&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; Multi-detection Microplate Reader</td><td>Tecan</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any fluorescence plate reader</td></tr><tr><td>Allegra 6R benchtop centrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>366816</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Table Top Anaesthesia machine</td><td>VetEquip</td><td>Model used not currently available&amp;nbsp;</td><td>May use any brand, must be portable</td></tr><tr><td>Wahl Peanut Mini Clippers</td><td>Wahl</td><td></td><td>May use any brand of small clippers</td></tr><tr><td>Insulin syringes 29 G x 1/2&#039;, 0.3 mL</td><td>BD</td><td>329464</td><td>May use any brand. Insulin syringes are recommended as they make injections easier through the rat&amp;rsquo;s tough skin.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Cotton swabs</td><td>MedPro</td><td>018-425</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Sharp-Pointed Dissecting Scissors</td><td>Fisher Scientific</td><td>8940</td><td>May use any brand</td></tr><tr><td>Dissecting Tissue Forceps</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-812-41</td><td>May use any brand</td></tr></tbody></table>

handling of the cotton rat in studies for the pre-clinical evaluation of oncolytic viruses

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact. For this strategy to be successful, recent studies have shown that involvement of the host immune system is essential. Therefore, oncolytic virotherapy should be evaluated within the context of an immunocompetent model. Furthermore, the study of antitumor therapies in tolerized animal models may better recapitulate results seen in clinical trials. Cotton rats, commonly used to study respiratory viruses, are an attractive model to study oncolytic virotherapy as syngeneic models of mammary carcinoma and osteosarcoma are well established. However, there is a lack of published information on the proper handling procedure for these highly excitable rodents. The handling and capture approach outlined minimizes animal stress to facilitate experimentation. This technique hinges upon the ability of the researcher to keep calm during handling and perform procedures in a timely fashion. Finally, we describe how to prepare cotton rat mammary tumor cells for consistent subcutaneous tumor formation, and how to perform intratumoral and intraperitoneal injections. These methods can be applied to a wide range of studies furthering the development of the cotton rat as a relevant pre-clinical model to study antitumor therapy.

Nedeniyle pamuk sıçanların son derece heyecanlı doğası, aşina olmak ve bir klinik öncesi hayvan modeli olarak kullanımı kolaylaştıracak hayvanların stresi azaltmak için optimize prosedürler kullanılarak için. Uygun kullanım tekniklerinin kullanımı da araştırmacı riskini en aza indirecektir. Pamuk fareleri kullanırken sakin kalmak zorunludur. sıçanlar son derece heyecanlı ve onların kafesini kaçmaya çalışacaktır. Bir zenginleştirme tüpü ve kaçış girişimleri en aza indirecek nestlets kullanılması. Şekil 2 zenginleştirme tüp yerleştirilmesi de dahil olmak üzere pamuk sıçanlarda, yakalanması yardımcı olmak için en uygun kafes kurulumunu göstermektedir. Rekaptürünün yardımcı olmak için mümkünse Ayrıca, küçük bir odada çalışmak. Kaçış olursa, o zaman net yakalama konteyner ile örtün ya da aşırı güç kullanımı için dikkatli olmak, eldivenli ellerle kapak, sakin ve hareketsiz kalması hayvan için bekleyin. Bir fare aksine, pamuk sıçan uzun bir burun a sahiphich anestezik gaz teslim uyan farklı bir burun gerektirir. 3 düzgün bir pamuk sıçan uygun ve izofluran teslim maksimize etmek tasarlanmış bir burun konisi tasvir Şekil. Bir fitingin bir lastik membran kullanılarak sıçan burun travmaya neden olabilir. Iskarta hayvanlar elde Mümkünse fareler üzerinde onları denemeden önce enjeksiyon teknikleri uygulamaya (o aksi diğer araştırmacılar, pamuk sıçanlar veya tarafından gerekli değildir). Bu araştırmacı iğneler ve nasıl güvenli bir şekilde işlemek için aşinalık kazanmak için izin verir. Kendi cilt fare kıyasla kalın ve sert olduğu gibi İnsülin Şırınga pamuk sıçanlarda enjeksiyonlar için önerilmektedir. Bununla birlikte, daha büyük bir iğne (21 x g 1 &#39;) bağlı enjeksiyon esnasında hücre makaslama hücre canlılığının kaybolmasına önlemek için, tümör hücre enjeksiyonu için kullanılabilir. Güvenlik önlemleri Böyle bir kavuz konteyner içine iğneler ve uygun bertaraf recapping değil, takip edilmelidir. injecyaşayan tümör hücrelerinin siyon uygun tümör oluşumu için çok önemlidir. Şekil 1A pamuk farelere enjeksiyon için hazırlanabilir fazla tercih hücre sağlıklı tek tabaka göstermektedir. Buna karşılık Şekil 1B, düşük canlılığı ve enjeksiyonlar için kullanılmamalıdır fazla tercih hücrelerini göstermektedir. Bu enjeksiyonlar için hücrelerin sayılması bu tür Tripan mavi lekeleme gibi bir yöntem kullanılarak tümör hücre canlılığı doğrulamak için önemlidir. fazla tercih hücrelerinden oluşan tümörler hızla büyüyen ve nekrotik merkezleri genellikle (Şekil 4A) oluşturmak. Bu nedenle, tümör oluşumu ülser (Şekil 4B) önlemek için dikkatli bir şekilde kontrol edilmelidir. Ülserasyon oluşursa hayvan sepsis enfeksiyon ve olası ölüm önlemek için feda edilmelidir. Anti-tümör tedavileri etkileri genellikle en iyi histolojik analizi ile incelenmiştir. Bu tümör otopsisi eksizyonu gerektirir. Bakımı tümör dokusu bütünlüğü res olacakin vivo tümör daha kesin bir temsili bir örnek olarak da arızanın. Şekil 5, tümör dikkatli bir neşter ve cımbızla çevreleyen dokudan ayrılır hangi bir eksizyon tekniği gösterir. Uygun histolojik analiz etkileyen, tümör delinmesine ya da tümör dokusu bütünlüğünü bozabilir cımbız kullanarak çevreleyen dokudan zorla çekerek tümörü çıkarma. Şekil 6&#39;da görüldüğü gibi tümör yoğun ve çok vaskülarize yapı, bu eksizyon tekniği ile muhafaza edilmektedir. Birçok Ovs ile olduğu gibi bu, tümör damar sistemini etkiler tedavi analizinde önemlidir. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/52232/52232fig1highres.jpg" /> Şekil 1:. Sağlıklı fazla tercih Hücrelerin parlak-alan mikroskopi görüntüsü (A) fenotip (~ 90% canlı) pamuk farelere enjeksiyon için hazırlanması için hazır fazla tercih hücreleri. Fazla tercih hücrelerinin (B) İstenmeyen fenotip enjeksiyon için uygun değildir. Yuvarlak hücreler ölü ya da (bir okla gösterilen) ölüyor vardır. Görüntüler 10X büyütmede ele geçirildi; Ölçek çubuğu = 1 mm. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52232/52232fig2highres.jpg" /> Şekil 2: pamuk sıçanların yakalama kolaylığı için kafes kurulumu örneği kafes ve hayvan yakalama nestlets yardımları dahil sonunda karşı zenginleştirme tüp optimal yerleştirme.. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52232/52232fig3highres.jpg" /> Şekil 3:. Anestezi pamuk sıçanlara izofluran teslimat için uydurma Anestezi burun konisi imal burun konisi burun travma olmaksızın izofluran gazın doğru teslim sağlamak için pamuk sıçan uzatılmış burun uyuyor. <img alt = &quot;Şekil 4&quot; src = &quot;/ files / ftp_upload / 52.232 / 52232fig4highres.jpg&quot; /&gt; Şekil 4: a. Deri altı fazla tercih tümör üzerinde Nekrotik doku (A), tümör dokusunun nekrozu erken aşamaları. Hayvan dikkatlice (B) tam açık ülser ilerlemesini önlemek için izlenmelidir. enfeksiyon ve sepsis gibi tümör ülserleşirse neden olabilir, eğer hayvan kurban edilmelidir. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/52232/52232fig5highres.jpg" /> Şekil 5:. Histoloji için bir subkutan fazla tercih tümör eksizyonu, bir pamuk sıçan kanadında subkutan tümör dikkatle böylece histolojik analiz için tümör mimarisinin daha iyi temsil sağlayarak, tümör dokusu bütünlüğünü korumak için bir neşter kullanarak deriden uzaklaştırılır. <img alt="Şekil 6," src="/files/ftp_upload/52232/52232fig6highres.jpg"/&gt; Şekil 6: a. Deri altı fazla tercih tümörden histolojik doku kesiti fazla tercih tümör doku morfolojisi hematoksilin ve eozin (H &amp; E) ile boyandı parafine gömülü bölümleri kullanılarak incelendi. Görüntü 20X büyütmede ele geçirildi; Ölçek çubuğu = 1 mm.

Watch this Scientific Journal Video about Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses at JoVE.com

Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses

Cotton rats are extremely excitable and have a strong flight-or-fight response. A handling method optimized to reduce the stress of the animals is described which will make cotton rats more accessible as a preclinical model.

Oncolytic virüs klinik öncesi Değerlendirme Çalışmaları Pamuk Rat Taşıma

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact.  For this strategy to be ...

handling-cotton-rat-studies-for-pre-clinical-evaluation-oncolytic

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

9.3K Görüntüleme.  McMaster University. Cotton rats are extremely excitable and have a strong flight-or-fight response. A handling method optimized to reduce the stress of the animals is described which will make cotton rats more accessible as a preclinical model. 

Video: Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses

Genome-wide RNAi Screening to Identify Host Factors That Modulate Oncolytic Virus Therapy

High-throughput genome-wide RNAi (RNA interference) screening technology has been widely used for discovering host factors that impact&#160;virus replication. Here we present the application of this technology to uncovering host targets that specifically modulate the replication of Maraba virus, an oncolytic rhabdovirus, and vaccinia virus with the goal of enhancing therapy. While the protocol has been tested for use with oncolytic Maraba virus and oncolytic vaccinia virus, this approach is applicable to other oncolytic viruses and can also be utilized for identifying host targets that modulate virus replication in mammalian cells in general. This protocol describes the development and validation of an assay for high-throughput RNAi screening in mammalian cells, the key considerations and preparation steps important for conducting a primary high-throughput RNAi screen, and a step-by-step guide for conducting a primary high-throughput RNAi screen; in addition, it broadly outlines the methods for conducting secondary screen validation and tertiary validation studies. The benefit of high-throughput RNAi screening is that it allows one to catalogue, in an extensive and unbiased fashion, host factors that modulate any aspect of virus replication for which one can develop an in vitro assay such as infectivity, burst size, and cytotoxicity. It has the power to uncover biotherapeutic targets unforeseen based on current knowledge.

Here we describe a protocol for employing high-throughput RNAi screening to uncover host targets that can be manipulated to enhance oncolytic virus therapy, specifically rhabodvirus and vaccinia virus therapy, but it can be readily adapted to other oncolytic virus platforms or for discovering host genes that modulate virus replication generally.

Tedavi Oncolytic virusu modüle ana faktörleri tanımlamak için genom çapında RNAi tarama

High-throughput genome-wide RNAi (RNA interference) screening technology has been widely used for discovering host factors that impact&#160;virus ...

Kanser Araştırmaları

A Method for Remotely Silencing Neural Activity in Rodents During Discrete Phases of Learning

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while animals are engaged in learning and memory tasks. The approach combines pharmacogenetics (Designer-Receptors-Exclusively-Activated-by-Designer-Drugs) with a behavioral paradigm (sensory preconditioning) that is designed to distinguish between different forms of learning. Specifically, viral-mediated delivery is used to express a genetically modified inhibitory G-protein coupled receptor (the Designer Receptor) into a discrete brain region in the rodent. Three weeks later, when designer receptor expression levels are high, a pharmacological agent (the Designer Drug) is administered systemically 30 min prior to a specific behavioral session. The drug has affinity for the designer receptor and thus results in inhibition of neurons that express the designer receptor, but is otherwise biologically inert. The brain region remains silenced for 2-5 hr (depending on the dose and route of administration). Upon completion of the behavioral paradigm, brain tissue is assessed for correct placement and receptor expression. This approach is particularly useful for determining the contribution of individual brain regions to specific components of behavior and can be used across any number of behavioral paradigms.

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while rats are engaged in learning and memory tasks. The approach combines pharmacogenetics (Designer-Receptors-Exclusively-Activated-by-Designer-Drugs) with a behavioral paradigm (sensory preconditioning) that is designed to distinguish between different components of learning.

Öğrenmenin Ayrık Aşama sırasında Kemirgenler uzaktan suskunluğu Sinir Aktivitesi Bir Yöntem

This protocol describes how to temporarily and remotely silence neuronal activity in discrete brain regions while animals are engaged in learning and ...

Davranış

Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis. In recent years, oncolytic virotherapies have proven themselves to be potentially powerful tools to fight malignancy. Due to the unique dual blood supply in the liver, it is possible to apply therapies locally to orthotopic liver tumors, which are predominantly fed by arterial blood flow. We have previously demonstrated that hepatic arterial delivery of oncolytic viruses results in safe and efficient transduction efficiency of multifocal HCC lesions, resulting in significant prolongation of survival in immune competent rats. This procedure closely mimics the application of transarterial embolization in patients, which is the standard palliative care provided to many HCC patients. The ability to administer tumor therapies through the hepatic artery in rats allows for a highly sophisticated preclinical model for evaluating novel viral vectors under development. Here we describe the detailed protocol for microdissection of the hepatic artery for infusion of oncolytic virus vectors to treat orthotopic HCC.

Oncolytic virotherapies are under development as novel therapeutics for the treatment of hepatocellular carcinoma (HCC). Here we describe a method for locoregional therapy of HCC via hepatic arterial administration of oncolytic virus.

Sıçanlarda Ortotopik HCC Lokorejyonel Tedavisi için oncolytic virüs transarteryel İdaresi

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis.  In recent years, oncolytic virotherapies have proven ...

Tıp

Generation of Transgenic Rats using a Lentiviral Vector Approach

Transgenic animal models are fundamentally important for modern biomedical research. The incorporation of foreign genes into early mouse or rat embryos is an invaluable tool for gene function analysis in living organisms. The standard transgenesis method is based on microinjecting foreign DNA fragments into a pronucleus of a fertilized oocyte. This technique is widely used in mice but remains relatively inefficient and technically demanding in other animal species. The transgene can also be introduced into one-cell-stage embryos via lentiviral infection, providing an effective alternative to standard pronuclear injections, especially in species or strains with a more challenging embryo structure. In this approach, a suspension that contains lentiviral vectors is injected into the perivitelline space of a fertilized rat embryo, which is technically less demanding and has a higher success rate. Lentiviral vectors were shown to efficiently incorporate the transgene into the genome to determine the generation of stable transgenic lines. Despite some limitations (e.g., Biosafety Level 2 requirements, DNA fragment size limits), lentiviral transgenesis is a rapid and efficient transgenesis method. Additionally, using female rats that are mated with a fertile male strain with a different dominant fur color is presented as an alternative to generate pseudopregnant foster mothers.

This article aims to provide the methodology for lentiviral transgenesis in rat embryos using multiple injections of a virus suspension into the zygote perivitelline space. Female rats that are mated with a fertile male strain with a different dominant fur color is used to generate pseudopregnant foster mothers.

Lentiviral Vektör Yaklaşımı Kullanarak Transgenik Sıçanların Üretimi

Transgenic animal models are fundamentally important for modern biomedical research. The incorporation of foreign genes into early mouse or rat embryos is ...

Biyomühendislik

Methods and Tips for Intravenous Administration of Adeno-associated Virus to Rats and Evaluation of Central Nervous System Transduction

Adeno-associated virus (AAV) vectors are a key reagent in the neurosciences for clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), optogenetics, cre-lox targeting, etc. The purpose of this manuscript is to aid the investigator attempting expansive central nervous system (CNS) gene transfer in the rat via tail vein injection of AAV. Wide-scale expression is relevant for conditions with widespread pathology, and a rat model is significant due to its greater size and physiologic similarities to humans compared to mice. In this example application, a wide-scale neuronal transduction is used to mimic a neurodegenerative disease that affects the entire spinal cord, amyotrophic lateral sclerosis (ALS). The efficient wide-scale CNS transduction can also be used to deliver therapeutic protein factors in pre-clinical studies. After a post-injection expression interval of several weeks, the effects of the transduction are evaluated. For a green fluorescent protein (GFP) control vector, the amount of GFP in the cerebellum is estimated quickly and reliably by a basic imaging program. For motor disease phenotypes that are induced by the ALS related protein transactive response DNA-binding protein of 43 kDa (TDP-43), the deficits are scored by escape reflex and rotarod. Beyond disease modeling and gene therapy, there are diverse potential applications for the wide-scale gene targeting described here. The expanded use of this method will aid in expediting hypothesis testing in the neurosciences and neurogenetics.

Methods for a wide-scale central nervous system gene delivery in the rat are covered. In this example, the purpose is to mimic a disease that affects the entire spinal cord. The widespread transduction can be used to deliver a therapeutic protein to the CNS from a one-time, peripheral administration.

Yöntemleri ve merkezi sinir sistemi iletim değerlendirilmesi ve Adeno ilişkili virüs fareler için intravenöz Yönetim için ipuçları

Adeno-associated virus (AAV) vectors are a key reagent in the neurosciences for clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), ...

Nörobilim

A Rat Model of EcoHIV Brain Infection

It has been well studied that the EcoHIV infected mouse model is of significant utility in investigating HIV associated neurological complications. Establishment of the EcoHIV infected rat model for studies of drug abuse and neurocognitive disorders, would be beneficial in the study of neuroHIV and HIV-1 associated neurocognitive disorders (HAND). In the present study, we demonstrate the successful creation of a rat model of active HIV infection using chimeric HIV (EcoHIV). First, the lentiviral construct of EcoHIV was packaged in cultured 293 FT cells for 48 hours. Then, the conditional medium was concentrated and titered. Next, we performed bilateral stereotaxic injections of the EcoHIV-EGFP into F344/N rat brain tissue. One week after infection, EGFP fluorescence signals were detected in the infected brain tissue, indicating that EcoHIV successfully induces an active HIV infection in rats. In addition, immunostaining for the microglial cell marker, Iba1, was performed. The results indicated that microglia were the predominant cell type harboring EcoHIV. Furthermore, EcoHIV rats exhibited alterations in temporal processing, a potential underlying neurobehavioral mechanism of HAND as well as synaptic dysfunction eight weeks after infection. Collectively, the present study extends the EcoHIV model of HIV-1 infection to the rat offering a valuable biological system to study HIV-1 viral reservoirs in the brain as well as HAND and associated comorbidities such as drug abuse.

Here, we present a protocol to establish a new rat model of active HIV infection using chimeric HIV (EcoHIV), which is critical for enhancing our understanding of HIV-1 viral reservoirs in the brain and offering a system to study HIV-associated neurocognitive disorders and associated comorbidities (i.e., drug abuse).

EcoHIV Beyin Enfeksiyonunun Bir Sıçan Modeli

It has been well studied that the EcoHIV infected mouse model is of significant utility in investigating HIV associated neurological complications. ...

Monitoring Endoplasmic Reticulum Calcium Homeostasis Using a Gaussia Luciferase SERCaMP

The endoplasmic reticulum (ER) contains the highest level of intracellular calcium, with concentrations approximately 5,000-fold greater than cytoplasmic levels. Tight control over ER calcium is imperative for protein folding, modification and trafficking. Perturbations to ER calcium can result in the activation of the unfolded protein response, a three-prong ER stress response mechanism, and contribute to pathogenesis in a variety of diseases. The ability to monitor ER calcium alterations during disease onset and progression is important in principle, yet challenging in practice. Currently available methods for monitoring ER calcium, such as calcium-dependent fluorescent dyes and proteins, have provided insight into ER calcium dynamics in cells, however these tools are not well suited for in vivo studies. Our lab has demonstrated that a modification to the carboxy-terminus of Gaussia luciferase confers secretion of the reporter in response to ER calcium depletion. The methods for using a luciferase based, secreted ER calcium monitoring protein (SERCaMP) for in vitro and in vivo applications are described herein. This video highlights hepatic injections, pharmacological manipulation of GLuc-SERCaMP, blood collection and processing, and assay parameters for longitudinal monitoring of ER calcium.

Monitoring Endoplasmic Reticulum Calcium Homeostasis Using a Gaussia Luciferase SERCaMP

Endoplasmic reticulum calcium homeostasis is disrupted in diverse pathologies. A secreted ER calcium monitoring protein (SERCaMP) reporter can be used to detect disruptions in the ER calcium store. This protocol describes the use of a Gaussia luciferase SERCaMP to examine ER calcium homeostasis in vitro and in vivo.

Bir kullanılması Endoplazmik retikulum kalsiyum dengesi İzleme<em&gt; Gaussia</em&gt; Lusiferaz SERCaMP

The endoplasmic reticulum (ER) contains the highest level of intracellular calcium, with concentrations approximately 5,000-fold greater than cytoplasmic ...

Biyoloji

Viral Transgene Expression in Rodent Hearts and the Assessment of Cardiac Arrhythmia Risk

Heart disease is the leading cause of morbidity and mortality worldwide. Due to the ease of handling&#160;and abundance of transgenic strains, rodents have become essential models for cardiovascular research. However, spontaneous lethal cardiac arrhythmias that often cause mortality in heart disease patients are rare in rodent models of heart disease. This is primarily due to the species differences in cardiac electrical properties between human&#160;and rodents and poses a challenge to the study of cardiac arrhythmias using rodents. This protocol describes an approach to enable efficient transgene expression in mouse and rat ventricular myocardium using echocardiography-guided intramuscular injections of recombinant virus (adenovirus and adeno-associated virus). This work also outlines a method to enable reliable assessment of cardiac susceptibility to arrhythmias using isolated, Langendorff-perfused mouse and rat hearts with both adrenergic and programmed electrical stimulations. These techniques are critical for studying heart rhythm disorders associated with adverse cardiac remodeling after injuries, such as myocardial infarction.

The present protocol describes methods for transgene expression in rat and mouse hearts by direct intramyocardial injection of the virus under echocardiography guidance. Methods for the assessment of the susceptibility of hearts to ventricular arrhythmias by the programmed electrical stimulation of isolated, Langendorff-perfused hearts are also explained here.

Kemirgen Kalplerde Viral Transgen Ekspresyonu ve Kardiyak Aritmi Riskinin Değerlendirilmesi

Heart disease is the leading cause of morbidity and mortality worldwide. Due to the ease of handling&#160;and abundance of transgenic strains, rodents ...

Establishing an Active HIV Infection in a Rat Model

Source: Li, H., McLaurin, et al. <a href="https://app-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/v/62137">A Rat Model of EcoHIV Brain Infection.</a> J. Vis. Exp. (2021).
This video demonstrates the procedure of injecting chimeric HIV viruses into the cortex of a rat&#39;s brain, where the virus RNA integrates into the host genome, replicates, and spreads to establish an active HIV infection in the experimental model.

Bir Sıçan Modelinde Aktif HIV Enfeksiyonu Oluşturulması

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuropathology

Infectious Diseases

Targeting Liver Tumors with Oncolytic Viruses via the Hepatic Artery

Source: Altomonte, J. et al., <a href="https://app-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/v/53757">Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats.</a>&#160;J. Vis. Exp. (2016)
The video demonstrates locoregional delivery of oncolytic viruses through hepatic arterial injection as a therapeutic approach for hepatocellular carcinoma. These viruses selectively replicate in tumor cells, inducing cell lysis and releasing tumor cell-associated antigens. This process triggers immunogenic cell death, inducing an anti-tumor response.

Oncolytic virüs klinik öncesi Değerlendirme Çalışmaları Pamuk Rat Taşıma

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler