Механическая вентиляция легких широко применяется при дыхательной недостаточности, частично или полностью заменяя спонтанную вентиляцию легких. Его управление требует предварительных знаний и опыта. Однако некоторые исследования показывают, что профессионалы чувствуют себя неуверенно в его управлении.
Любые претензии, отсутствие подготовки или предварительных знаний. Экспериментальные модели облегчают концепцию искусственной вентиляции легких и визуализации механики легких с помощью визуальной обратной связи. Первоначально полученный вес животного подбирается для корректировки медикаментов и седативных препаратов, необходимых для проведения процедуры.
Вводят кетамин пять миллиграмм на килограмм, а мидазолам точечно 25 миллиграмм на килограмм внутримышечно. Затем проколите краевую ушную вену венозным катетером 20 G и введите внутривенно пропофол, пять миллиграмм на килограмм для индукции анестезии. Вводят три миллилитра гепарина внутривенно для восьми сердечно-легочных блокад экстракции и перфузии.
После анестезии провести оротрахеальную интубацию канюлей диаметром 6,5 миллиметров. Канюля трахеи должна быть надежно зафиксирована, чтобы предотвратить смещение во время процедуры. После подготовки подключите НМО через канюлю к искусственной вентиляции легких и поддерживайте анестезию НМО 1,5% изофтора в 50% вдыхаемой фракции кислорода.
И фентанил, 10 микрограмм на килограмм болюса, плюс 10 микрограмм на килограмм в час непрерывной инфузии. Оценка глубины седации выполняется на основании мониторинга гемодинамических параметров и использования газоанализатора. Отрегулируйте механический аппарат искусственной вентиляции легких для модели с регулируемым объемом с дыхательным объемом восемь миллилитров на килограмм.
Режим проветривания и другие настройки выбираются на экране аппарата ИВЛ. Частота дыхания должна быть скорректирована таким образом, чтобы поддерживать концентрацию CO2 в конце выдоха на уровне от 35 до 45 миллиметров ртутного столба. Сделайте разрез грудины, достаточно большой, чтобы получить доступ к грудной полости, на два сантиметра выше манубриума и на два сантиметра ниже ксифоидного отростка грудины, и расположите реберные ребра, расширяя поле зрения во время процедуры.
Сделайте разрез трахеи горизонтально с помощью скальпеля. Разрез должен быть достаточно большим, чтобы ввести новую канюлю трахеи, удалив ротовую трахеальную трубку. Надуйте манжету только что введенной канюли трахеи.
Прикрепите новую канюлю трахеи непосредственно к трахее. Канюля трахеи не зашивается, а просто завязывается, чтобы избежать протечек и движений во время помещения легких в вентиляционную коробку. С помощью скальпеля рассекают ткани, чтобы удалить сердечно-легочную блокаду из грудной клетки.
В конце увеличьте концентрацию изофлурана до 5% и введите 10 миллилитров хлористого калия. После рассечения тканей зажмите оротрахеальную канюлю соответствующими щипцами Кали в конце вдоха, поддерживая легкое в надуванном состоянии. Отключите механический вентилятор.
Разрежьте аортальную артерию и поместите аспиратор внутрь грудной полости, чтобы удалить экстравазированную кровь и сохранить визуализацию полости. Нижнюю легочную связку следует осторожно отпустить, чтобы избежать разрыва легочной артерии. Извлеките сердечно-легочную блокаду из грудной клетки, зажав оротрахеальную канюлю, и поместите ее на поднос.
Канюлируйте легочную артерию с помощью однопросветного катетера большого диаметра и подключите его к инфузионному набору, чтобы непрерывно вводить 2000 миллилитров 9% физиологического раствора до тех пор, пока из аорты не вытечет прозрачная жидкость. Физиологический раствор следует вводить с нормальной скоростью. Избегайте сдавливания мешка для внутривенных вливаний.
После очищения потока зашивают аортальную артерию и вводят еще сто миллилитров физиологического раствора. Физиологический раствор остается внутри легких до конца эксперимента. После подготовки легких расположите их вертикально внутри акриловой коробки и подключите канюлю трахеи к аппарату искусственной вентиляции легких.
Убедитесь, что канюля трахеи надежно закреплена в трахее. Отрегулируйте механический аппарат ИВЛ для режима регулирования объема со следующими параметрами. Объем тау, шесть миллилитров на килограмм.
ПИЭП, пять сантиметров воды. Вдыхаемая фракция кислорода, 21%Частота дыхания, 15. Время паузы на вдохе, 10%Настройки выбираются на экране аппарата искусственной вентиляции легких.
Для начала набора увеличьте PEEP с пяти до шести сантиметров воды, а затем увеличивайте его поэтапно по два сантиметра воды, пока не достигнете 14 сантиметров воды. PEEP увеличивается с помощью экранной кнопки на аппарате искусственной вентиляции легких. Каждое значение PEEP сохраняется в течение 10 минут во время регистрации механики легких.
Достигнув 14 сантиметров воды, постепенно уменьшайте PEEP в уменьшениях на два сантиметра воды, пока не достигнете шести сантиметров воды, а затем уменьшите его до пяти сантиметров воды. Во время этого снижения значение PEEP сохраняется в течение пяти минут, при этом регистрируется механика легких. В конце этапа набора аккуратно зажмите канюлю трахеи зажимом во время вдоха, поддерживая легкие в надувании.
Откройте акриловую коробку. Достаньте легкие из акриловой коробки и аккуратно поместите их в стеклянную емкость. Поместив легкие в стеклянную емкость, убедитесь, что зажим плотно закрыт, и залейте 500 миллилитрами 9%-ного солевого раствора.
Хранят легкие в холодильнике в стеклянной таре, завернутой в полиэтиленовую пленку, при температуре от двух до восьми градусов Цельсия в течение 24 часов. Повторите процесс для искусственной вентиляции легких и маневра набора овулов в течение пяти дней подряд. После каждого завершения процесса помещайте легкие в стеклянную емкость и храните ее в холодильнике.
Мы анализируем легкие в течение пяти дней подряд, повторяя весь процесс, как описано в блок-схеме. Мы смогли показать, как вели себя переменные легких до и после рекрутинга, и установить устойчивость модели легких ex vivo в исследуемом периоде. Мы наблюдали существенные различия между всеми переменными до и после рекрутинговых маневров.
Пиковое давление, давление плато и давление при движении снижались после маневра, в то время как динамическая податливость увеличивалась, демонстрируя раскрытие коллапсированных альвеол и увеличение площади легких. Сопротивление дыхательных путей также увеличилось после вербовки. Показано, что модель эффективна для демонстрации визуальных изменений в механике легких с помощью маневра альвеолярного набора, а также ее эффективность для изучения и преподавания механики легких.
Кроме того, мы показываем, что модель можно использовать не менее пяти дней подряд. В пилотном исследовании мы начали с PEEP в пять сантиметров воды, а затем увеличили его с шагом в пять сантиметров воды до 25 сантиметров. Однако пиковое и плато-давление достигают значений, превышающих 40 и 30 сантиметров воды соответственно, с образованием свищей.
Таким образом, мы решили выполнить постепенное увеличение с шагом в два сантиметра, чтобы обеспечить лучший анализ поведения давлений с течением времени и понять пределы PEEP в вашей модели регистрации ex-vivo. Нет никакой разницы между устойчивым или инкрементальным инфляцией по отношению к смертности, но, помимо того, что это наиболее часто используемая инкрементальная инфляция, она может облегчить поэтапный анализ механики легких. Были проведены исследования с использованием моделей XV over C с положительным и отрицательным давлением с различными инициативами, такими как разработка аналогичной модели для доклинических исследований, верификация распределения аэрозолей и создание педиатрических симуляций.
Несмотря на различные цели, такие исследования открывают возможности для наших новых исследований, помогают применять нашу модель обучения. Хотя исследования показали, что использование вентиляции с положительным давлением в объемной модели XV может привести к резкому набору, с большей локальной деформацией, чем вентиляция с отрицательным давлением. Необходимо создавать модели положительного давления, потому что наши пациенты, как правило, подвергаются положительному давлению во время искусственной вентиляции легких, так как ограничением мы обладаем, во-первых, знанием анатомии любого животного, чтобы ноги можно было правильно удалить.
Во-вторых, модель оценивалась не более пяти дней. В-третьих, эта модель хорошо подходит как раз для обучения вентиляции. И, наконец, для того, чтобы перенести его результаты на всех людей, важно учитывать ограничения животной модели.
Модель легких X vivo жизнеспособна и воспроизводима, она может быть представлена к рекрутинговым маневрам с визуализацией легочных механических переменных. Модель позволяет по-новому взглянуть на легкие, находящиеся на искусственной вентиляции легких, облегчая обучение этим концепциям с помощью визуальной обратной связи.
