Войдите в систему

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Этот метод демонстрирует эффективный способ подготовки к репликации дефектной ретровирусных запасов кодирования человека онкоген, а в дальнейшем использоваться для индукции миелопролиферативные заболевания в мышиной модели.

Аннотация

Наша лаборатория изучает человеческое миелопролиферативных заболеваний, вызванных такими как онкогены Bcr-Abl или фактор роста рецептора полученных онкогенов (ZNF198-FGFR1, Bcr-PDGFRα и т.д.). Мы можем моделировать и изучать человека-подобного заболевания у нашей модели мыши, путем пересадки клеток костного мозга ранее инфицированы ретровирусом выражения онкоген интересов. Репликация-дефектных ретровируса кодирования человеческих онкогенов и маркера (GFP, ППП, ген устойчивости к антибиотику, и т.д.) производится переходных протокол трансфекции с использованием 293T клеток человеческого эпителия почечных клеточной линии преобразуется продукт гена E1A аденовирусов. 293 клетки обладают необычным свойством высокой степени transfectable кальция фосфата (КАПО 4), до 50-80% эффективности трансфекции легко достижима. Здесь мы сотрудничаем трансфекции клеток 293 с ретровирусных вектор выражения онкоген интересов и плазмиды, что выражает кляп-пол-ENV упаковки функций, таких как одного генома упаковки строит кат или PCL, в данном случае EcoPak плазмиды. Начальная трансфекции является дальнейшее совершенствование использования хлорохину. Запасы ecotropic вируса, собранная, как культура супернатанта 48 часов. после трансфекции, можно хранить при температуре -80 ° С и использовали для заражения клеточных линий с учетом трансформации и в лабораторных исследованиях, или первичные клетки, такие как мышиные клетки костного мозга, которые затем могут быть использованы для трансплантации в нашей модели мыши .

протокол

  1. Вечером перед преобразованием, пластины 293T клетки в 3-5х10 6 кл / 6 см cultureplate ткани.

    Примечание: Мы используем клетки 293T за их простоту трансфекции и efficacyas вирусом клеток. Эти клетки являются несовершенными в упаковке вирус, если вспомогательную плазмиду вводят.

  2. Первое утро, аккуратно удалите средних и заменить 4 мл 293T ячейки мед содержащий 25 мМ Хлорохин. Положить в инкубаторе в течение 1 часа.

    Примечание: пластина должна быть около 80% вырожденная.

  3. Между тем, подготовка вирус решений смесь в течение 2 тарелки за раз, в 5 мл пробирок:
    1. 2 х 10 мг ретровирусных плазмиды построить
    2. 2 х 5 мг упаковка построить (EcoPak),
    3. 2 х 62 мл CaCl
    4. полный до 1 мл стерильной DDH 2 O

      Примечание: При ретровирусных плазмида кодирует онкоген интересов и маркер, EcoPak кодирует кляп-пол-окр. Вместе с 293T клетки, они будут производить ecotropic ретровируса (RV), специфичные для клеток мыши, но не инфекционного для человеческих клеток. Оба Хлорохин и CaCl 2 было показано, что повышение эффективности трансфекции.

  4. Добавить 1 мл 2 раза sterileHBS каплям к смеси, мягко вортексе трубки.
  5. Сразу же добавить это решение до 2 тарелки, 1 мл каждый, мягко, капля за каплей.
  6. Положить в инкубаторе в течение 7 до 11 часов.
  7. В вечернее время (от 7 до 11 часов. Позже), аккуратно удалите среды, и очень аккуратно заменить 5 мл свежего 293T среды. Положить в инкубаторе до полудня, на следующий день.

    Примечание: этот шаг важен, так как необходимо снять хлорохин из клеток. Если храниться в течение длительных периодов времени, хлорохин является токсичным. Решение в пластинах выглядит нечетким, в связи с очень тонкой, пылевидных осаждения трансфекции смеси.


    Примечание: Очень важно сделать все средства массовой информации изменения с особой нежностью, как клетки были сенсибилизированных хлорохин, и может легко отделить от пластины.

  8. На следующий день, 18 до 24 часов. , прежде чем извлекать вируса (около полудня), аккуратно удалите среды, и очень нежно заменить 3 мл свежего 293T среды. Заменить в инкубаторе O / N.
  9. Третье утро (от 18 до 24 часов. Позже), осторожно всасывать средний форму пластин с 10 мл шприца оснащен 18 G иглу. Это супернатант содержит ретровируса.
  10. Изменение иглой 45 мм, шприц фильтра, переверните шприц несколько раз перемешать раствор хорошо, проходит через фильтр супернатант, и аликвоту в cryotubes

    Примечание: В качестве альтернативы, если вы делаете 3 + пластин вируса, бассейн все супернатанты же вирус в 5 0 мл коническую трубку. Тщательно перемешать, затем аликвоты супернатантов содержащей ретровирус в cryotubes с помощью фильтра.

  11. Пробирки с вирусом полный супернатанты хранятся в -80 ° C до использования.

Обсуждение

Четыре критических точек будет гарантировать успех хорошего вирусного складе:

  1. 293T продуцирующие клетки должны быть очень здоровым, то есть они были разделены на очень регулярно, никогда не были заросшие, и высевают на оптимизированные плотностью 3,5-5 млн в 6 см планшета для культуры ткани, так что они достигают плотности 80% пластину на утро трансфекции.
  2. Добавление хлорохин повышает эффективность трансфекции и последующих титр вируса, около 3 - 5-кратный, путем стабилизации клетка lysozomes и увеличения доли ДНК, которая достигает ядра. Натрий бутират (другой лизосомы стабилизатора) также используется для этой цели. Хлорохин может быть опущен, в этом случае меняется среда 7-11 часов. после трансфекции в этот момент не требуется.
  3. Качества ДНК является очень важным. Предпочтительный метод очистки как вектор и упаковки плазмидных ДНК в два раза очищают CsCl-бромистый этидий плавучей центрифугирования плотности. Нам нравится концентрация ДНК, чтобы быть не менее 1 мг / мл, а отношение ОП 260/280 должна быть в пределах 1.75-1.90. Qiagen-очищенную ДНК также будет работать, хотя в руках авторов, результаты не столь хороши. Важно, что совокупный объем растворов ДНК малым (<50 мкл в целом на окончательное мл), чтобы избежать неблагоприятных последствий Трис и ЭДТА (ТЕ) по осадка фосфата кальция.
  4. Выбор диапазона ретровирусных вектор и ведущий упаковки построить очень важны. Для устойчивых выражений в мышиных гемопоэтических стволовых клеток, вектора на основе вируса саркомы миелопролиферативные является предпочтительным. Общие основы вектор MIG Р.И., содержащие MPSV длинную последовательность повторить терминал, сайт множественного клонирования для внедрения онкоген, а ниже по течению внутренний сайт вступления рибосомы связаны с геном для улучшения зеленого флуоресцентного белка (EGFP). Для трансдукции мыши HSC, вирус с ecotropic круг хозяев является оптимальным, но такие акции нестабильны при физиологической температуре и не могут быть сосредоточены центрифугированием.

Некоторые контрольно-пропускных пунктов: При желании, когда-то собирают, 293 клетки могут быть использованы для производства белка лизатов для иммуноблоттинга проверить экспрессию белков, кодируемых ретровирусных вектор (например, ТК). Мы также используем контроль LacZ кодирования плазмиды в отдельную табличку во время трансфекции (без упаковки вектора необходимо), чтобы проверить для трансфекции efficinecy бета-гал анализа, когда мы собираем супернатанта других плит. Обратите внимание: это будет тест клеток и реагентов, но не качество плазмиды используются для вируса решений.

Перед использованием любого вируса, титр должен быть определен. Это очень важно для того, чтобы соответствовать титры различных акций вирус в тот же эксперимент, и для обеспечения эффективного трансдукции гемопоэтических стволовых клеток.

Материалы

Все реагенты, используемые в трансфекции должны быть стерильными фильтрами (CaCl 2, 2x HBS, miliQ H 2 O) и все стерильно.

Ссылки

  1. DuBridge, R. B., Tang, P., Hsia, H. C., Leong, P. M., Miller, J. H., Calos, M. P. Analysis of mutation in human cells by using an Epstein-Barr virus shuttle system. Mol Cell Biol. 7, 379-387 (1987).
  2. Cherry, S. R., Biniszkiewicz, D., van Parijs, L., Baltimore, D., Jaenisch, R. Retroviral expression in embryonic stem cells and hematopoietic stem cells. Mol Cell Biol. 20, 7419-7426 (2000).
  3. Finer, M. H., Dull, T. J., Qin, L., Farson, D., Roberts, M. kat: A high-efficiency retroviral transduction system for primary human T lymphocytes. Blood. 83, 43-50 (1994).
  4. Naviaux, R. K., Costanzi, E., Haas, M., Verma, I. M. The pCL vector system: rapid production of helper-free, high-titer, recombinant retroviruses. J Virol. 70, 5701-5705 (1996).
  5. Pear, W. S., Miller, J. P., Xu, L., Pui, J. C., Soffer, B., Quackenbush, R. C., Pendergast, A. M., Bronson, R., Aster, J. C., Scott, M. L., Baltimore, D. Efficient and rapid induction of a chronic myelogenous leukemia-like myeloproliferative disease in mice receiving P210 bcr/abl-transduced bone marrow. Blood. 92, 3780-3792 (1998).
  6. Pear, W. S., Nolan, G. P., Scott, M. L., Baltimore, D. Production of high-titer helper-free retroviruses by transient transfection. Proc Natl Acad Sci USA. 90, 8392-8396 (1993).
  7. Stocking, C., Kollek, R., Bergholz, U., Ostertag, W. Long terminal repeat sequences impart hematopoietic transformation properties to the myeloproliferative sarcoma virus. Proc Natl Acad Sci USA. 82, 5746-5750 (1985).
  8. Van Etten, R. A. Models of chronic myeloid leukemia. Curr Oncol Rep. 3, 228-237 (2001).
  9. Van Etten, R. A. Studying the pathogenesis of BCR-ABL+ leukemia in mice. Oncogene. 21, 8643-8651 (2002).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

10293T

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены