Ensaio de triagem à base de SA-β-galactosidase para a identificação de medicamentos Senoterapêuticos

A senescência celular é o fator-chave no desenvolvimento de patologias crônicas relacionadas à idade. A identificação da terapêutica que visam as células senescentes mostra a promessa de estender o envelhecimento saudável. Aqui, nós apresentamos um ensaio novo à tela para a identificação do senotherapeutics baseado na medida da atividade associada da senescência β-galactosidase em únicas pilhas.

A senescência celular é uma das marcas de envelhecimento conhecidas por influenciar negativamente uma vida saudável. Drogas capazes de matar células senescentes especificamente na cultura celular, denominado senolíticos, pode reduzir a carga celular senescente in vivo e estender healthspan. Foram identificadas várias classes de senolíticos até à data, incluindo inibidores da HSP90, inibidores da família Bcl-2, piperlongumina, um peptídeo inibitório FOXO4 e a combinação de Dasatinib/quercetina. A detecção de SA-β-GAL em um aumento do pH lisossomal é um dos melhores marcadores caracterizados para a detecção de células senescentes. Medições de células ao vivo de atividade de β-galactosidase (SA-β-GAL) associada à senescência usando o substrato fluorescente C₁₂FDG em combinação com a determinação do número total de células usando um corante de Hoechst de intercalação de DNA abre a possibilidade de tela para medicamentos senoterapêuticos que reduzem a atividade geral de SA-β-GAL por morte de células senescentes (senolíticos) ou suprimindo SA-β-GAL e outros fenótipos de células senescentes (senomorphics). O uso de uma plataforma de aquisição e análise de imagens fluorescentes de alto conteúdo permite a triagem rápida e de alta produtividade de bibliotecas de medicamentos para efeitos em SA-β-GAL, morfologia celular e número de células.

A senescência celular foi descrita pela primeira vez por Leonard Hayflick e Paul Moorhead, que mostraram que as células normais tinham uma capacidade limitada de proliferar na cultura¹. As células senescentes não proliferam apesar da presença de nutrientes, fatores de crescimento e falta de inibição de contato, mas permanecem metabolicamente ativos². Esse fenômeno é conhecido como senescência replicativa e foi atribuído principalmente ao encurtamento do telômero, pelo menos nas células humanas³. Estudos adicionais mostraram que as células também podem ser induzidas a sofrer senescência em resposta a outros estímulos, como estresse oncogênico (senescência induzida por oncogenes, OIS), dano de DNA, drogas citotóxicas ou irradiação (senescência induzida por estresse, SIS)^{4 , 5. º , 6}. em resposta a danos de DNA, incluindo a erosão do telômero, células ou senesce, iniciar o crescimento celular descontrolado, ou submeter-se a apoptose se o dano não pode ser reparado. Neste caso, a senescência da pilha parece ser benéfica porque actua em uma maneira supressiva do tumor². Em contraste, a senescência é aumentada com o envelhecimento devido ao acúmulo de danos celulares, incluindo danos ao DNA. Desde que as pilhas senescentes podem secretar cytokines, metaloproteinases e fatores de crescimento, denominados o phenotype secretora senescência-associado (SASP), este aumento idade-dependente na senescência celular e no SASP contribui à homeostase diminuída do tecido e subsequentemente envelhecimento. Além disso, esse aumento dependente da idade na carga de senescência é conhecido por induzir doenças metabólicas, sensibilidade ao estresse, síndromes de progeria e cicatrização prejudicada^7,8 e é, em parte, responsável pelas inúmeras doenças como aterosclerose, osteoartrite, degeneração muscular, formação de úlcera e doença de Alzheimer^{9,10,11,12,13}. Eliminar as células senescentes pode ajudar a prevenir ou atrasar a disfunção tecidual e estender o Califórnia¹⁴. Isso tem sido demonstrado em modelos de camundongo transgênico^14,15,16, bem como usando drogas senolíticas e combinações de drogas que foram descobertas através de ambos os esforços de triagem de drogas e análise Bioinformatica de vias induzidas especificamente em células senescentes¹⁷,^18,19,^20,21,22. A identificação de medicamentos senoterapêuticos mais ideais, capazes de reduzir de forma mais efetiva a carga celular senescente, é um passo importante no desenvolvimento de abordagens terapêuticas para o envelhecimento saudável.

As pilhas senescent mostram características fenotípicas e moleculars característicos, na cultura e in vivo. Estes marcadores da senescência podiam ser a causa ou o resultado da indução da senescência ou de um subproduto de mudanças moleculars nestas pilhas. No entanto, nenhum único marcador é encontrado especificamente em células senescentes. Atualmente, a detecção de β-galactosidase (SA-β-GAL) associada à senescência é um dos métodos mais caracterizados e estabelecidos com base em uma única célula para medir a senescência in vitro e in vivo. SA-β-GAL é uma hidrolase lisossomal com uma atividade enzimática ótima em pH 4. A mensuração de sua atividade em pH 6 é possível porque as células senescentes apresentam aumento da atividade lisossomal^23,24. Para as células vivas, o aumento do pH lisossomal é obtido por alcalinização lisossomal com o inibidor vacuolar H⁺-ATPase bafilomicina a1 ou o inibidor da acidificação endossômica cloroquina^25,26. 5-dodecanoylaminofluorescein di-β-D-galactopyranoside (C₁₂FDG) é usado como substrato em células vivas, pois retém o produto clivada nas células devido à sua 12 fração lipofílica de carbono²⁵. Importante, a atividade do SA-β-GAL própria não é conectada diretamente com nenhum caminho identificado em pilhas senescentes e não é necessário induzir a senescência. Com este ensaio, as células senescentes podem ser identificadas mesmo nas populações de células heterogêneas e nos tecidos de envelhecimento, como biópsias de pele de indivíduos mais velhos. Ele também tem sido usado para mostrar uma correlação entre a senescência celular e envelhecimento²³ , pois é um marcador confiável para detecção de células senescentes em vários organismos e condições^27,28,29, a ³⁰. Aqui, um ensaio de triagem de SA-β-GAL de alta taxa de transferência baseado no substrato fluorescente C₁₂FDG usando fibroblastos embrionários do mouse primário (mefs) com a senescência de células induzida por estresse oxidativo robusto é descrito e suas vantagens e desvantagens são discutidos. Embora este ensaio possa ser executado com tipos diferentes da pilha, o uso de Ercc1-deficiente, mefs danificado do reparo do ADN permite a indução mais rápida da senescência condições do stress oxidativo. Em camundongos, a expressão reduzida do reparo do DNA endonuclease ERCC1-XPF causa o reparo danificado do ADN, acumulação acelerada de dano endógeno do ADN, ROS elevados, deficiência orgânica mitochondrial, carga senescentes aumentada da pilha, perda da função da pilha de haste e envelhecimento prematuro, semelhante ao envelhecimento natural^31,32. Similarmente, os MEFs Ercc1-deficientes submetem-se à senescência mais ràpida na cultura¹⁷. Uma característica importante do ensaio senescente de MEF é que cada poço tem uma mistura de células senescentes e não senescentes, permitindo a demonstração clara de efeitos específicos de células senescentes. No entanto, embora acreditemos que o uso de estresse oxidativo nas células primárias para induzir a senescência é mais fisiológico, este ensaio também pode ser usado com linhas celulares onde a senescência é induzida com agentes nocivos do DNA, como etoposide ou irradiação.

O uso de animais foi aprovado pelo Comitê institucional de cuidados e uso de animais da Scripps Florida.

1. geração de fibroblastos embrionários senescentes murinos (MEF) – 12-15 dias

1. Isole o tipo selvagem e o Ercc1^-/- mefs dos ratos fêmeas grávidos no dia embrionário 13 (E13) como descrito previamente³³.
   Nota: todas as etapas seguintes são executadas em uma capa da cultura do tecido circunstâncias assépticas e usando instrumentos estéreis.
2. Resect a cabeça do embrião acima dos olhos.
3. Retire o tecido vermelho (coração e fígado) e use-os para genotipagem, se necessário.
4. Prepare 500 mL de uma mistura de 1:1 de Dulbecco ' s Modified Eagle ' s Medium (DMEM) e de Ham ' s F10 com 10% de soro bovino fetal, 1x aminoácidos não essenciais, penicilina e estreptomicina como meio de crescimento e aqueça-o até 37 ° c por cerca de 15 min antes de cada utilização. Armazene o meio de crescimento em 4 ° c.
5. Incubar o resto do embrião com 0,25% de tripsina/EDTA por 10 min.
6. Mince o embrião em 1 mm peças e pipetar o tecido para cima e para baixo várias vezes.
7. Adicionar 10 mL de meio de crescimento e tecidos de placa de um embrião por placa de cultura de células de 10 cm de diâmetro (passagem 0).
8. Cultivar células a 37 ° c, 3% O_2,5% co₂.
   Nota: apenas células MEF anexar a placas de cultura de tecido não revestidos nestas condições.
9. Mude o meio todos os dias na passagem 0 para remover os fragmentos não-anexados do tecido e da pilha.
   Nota: dependendo do tamanho do embrião e da qualidade do isolamento, a célula geralmente atinge a confluência após 2 a 3 dias.
10. Tripsinização
    1. Retire cuidadosamente o meio de crescimento e lave as células com 10 mL de 1X PBS duas vezes.
    2. Adicionar 2 mL de uma solução de 0, 25% de Trypsin/EDTA às células em placas de 10 cm de diâmetro e incubar a 37 ° c por 2-3 min.
    3. Certifique-se de que as células são separadas da superfície inspecionando as células o microscópio.
    4. Termine a digestão do tripsina adicionando a mesma quantidade de meio de crescimento.
    5. Transfira as células para um tubo cônico e células centrífugas em 200 x g por 3 min e descarte o sobrenadante.
    6. Reressuscita as células cuidadosamente em meio de crescimento fresco, contagem de células e semente-los em novas placas na densidade da célula projetada.
11. Para subcultivo não-senescente dividir células confluentes 1:4 e estender para outra passagem em 3% O₂, 37 ° c para produzir mais células (passagem 1).
    Nota: neste ponto as células podem ser mantidas em cultura ou armazenadas para uso posterior em nitrogênio líquido, em cryovials contendo aproximadamente 1 milhão células cada. Esta etapa também oferece a possibilidade de gerar um lote misto de células de diferentes animais para reduzir a variabilidade proveniente de uma única análise animal.
12. Para induzir a senescência celular, as células confluentes de separação de sementes da passagem 1 em uma proporção de 1:4 e incubar-los em 20% O₂, 37 ° c, 5% co₂ para 3 dias; Estas condições da cultura são atmosféricas para o oxigênio.
    Nota: o cultivo de células e blastocistos concentrações de oxigênio ambiente pode elevar os marcadores de senescência celular especificamente quando o reparo de dano de DNA é prejudicado^34,35,36.
13. Repita este procedimento para mais 2 passagens.
14. Para monitorar a senescência celular, meça o aumento gradual no diâmetro da pilha e no volume da pilha durante cada etapa do tripsinização usando um sistema avançado do contador de pilha de Coulter.
15. Avaliar a redução da proliferação celular pela determinação da duplicação da população (DP) utilizando a equação
    PDT = (t₂-t₁)/3,32 x (log n₂ – log n₁)
    Nota: o tempo de duplicação populacional só foi utilizado para células não senescentes.
16. Use o Wild-Type da passagem adiantada ou as pilhas de Ercc1^-/- MEF que foram mantidas em 3% O₂, 37 ° c, 5% co₂ como pilhas non-senescent do controle.

2. ensaio de triagem de β-GAL associado senescente – 2-3 dias

1. Prepare soluções de estoque de 10 mM em DMSO de todas as drogas a serem testadas e armazene alíquotas em-80 ° c. Não congelar-thaw soluções de ações, pois isso pode diminuir a atividade de drogas.
   Nota: aqui, o inibidor HSP90 17DMAG foi usado como uma droga senolítica capaz de matar especificamente as células senescentes¹⁷.
2. No dia do experimento descongelar a alíquota, diluir as drogas em meio de cultura fresca e adicionar às células contendo meio condicionado em uma proporção de 1:1 para produzir a concentração final em meio de crescimento.
3. Use placas de pré-diluição 96-well para diluições seriais e combinações de medicamentos.
   Nota: para as células MEF, foi empiricamente determinado que as concentrações de DMSO não devem exceder 2% e as células de controle tratadas com as maiores concentrações de DMSO usadas devem ser incluídas em cada corrida.
4. Semente 5 x 10³ células senescentes ou 3 x 10³ células não senescentes por poço em 96 placas de poços pelo menos 6 h antes do tratamento em 100 μl de meio de crescimento e incubar a 20% O₂, 37 ° c, 5% co₂.
   Nota: as células devem ser cerca de 80% confluentes antes do tratamento.
5. Use a parede preta/cultura inferior desobstruída do tecido, 96 placas bem tratadas para minimizar o conversa cruzada e o fundo do sinal fluorescente.
   Nota: no entanto, placas claras também foram testadas com êxito.
6. Adicione diluições da droga às pilhas de MEF e incubar para 24 h a 48 h 20% O₂, 37 ° c, 5% co₂ circunstâncias.
7. Mantenha as células não senescentes 3% O₂, 37 ° c, 5% co₂ condições.
8. Para a alcalinização lisossomal, prepare uma solução de 10 mm de bafilomicina a1, alíquota e mantenha-se congelado a-20 ° c.
9. Para a análise de fluorescência da atividade SA-β-GAL, prepare uma solução de 2 mM C₁₂FDG Stock, armazene a-20 ° c e proteja-a da luz.
10. Para a solução de trabalho, prepare 100 μM C₁₂FDG em meio de crescimento no dia do experimento.
    Nota: todas as etapas (incubação) envolvendo C₁₂FDG devem ser executadas no escuro.
11. Retire a solução medicamentosa e lave as células 1 vez com 100 μL de 1X PBS.
12. Induzir a alcalinização lisossomal por células de pré-tratamento com 90 μL de uma solução de bafilomicina a1 de 100 nM preparada em meio de cultura de células frescas por 1 hora a 20% O₂, 37 ° c, 5% co₂.
13. Adicionar 10 μL de 100 μM C₁₂FDG solução de trabalho para o meio de cultura (concentração final 10 μm).
14. Incubar células por 2 h.
15. Adicionar 2 μL de um corante 100 μg/mL Hoechst 33342 (concentração final 2 μg/mL) à cultura e incubar durante 20 min.
16. Remova a mídia e adicione 100 μL de meio de crescimento fresco.

3. análise de imagem fluorescente de alto conteúdo quantitativo

1. Use uma plataforma de aquisição e análise de imagem fluorescente de alto conteúdo para adquirir imagens fluorescentes das células nos dois canais apropriados para a captura de fluorescência Hoechst e C12FDG (por exemplo, predefinições de canal DAPI e FITC, respectivamente).
   Nota: os protocolos de aquisição requerem a definição de várias variáveis que são específicas para o ensaio. O objetivo de um protocolo de aquisição é capturar um número adequado de imagens fluorescentes em foco de números suficientes de células para análise quantitativa a jusante.
2. Desenvolva um protocolo de análise apropriado selecionando cada canal e definindo, ajustando um ou mais critérios seletivos, o que qualifica como um recurso de interesse em cada canal.
   1. Para o núcleo, use os pré-conjuntos de segmentação (por exemplo, segmentação nuclear, segmentação de vesículas, segmentação por citoplasma) que permitirão a identificação de organelas celulares com base em vários critérios, incluindo morfologia, tamanho e sinal Intensidade. Ajustar estes critérios para incluir núcleos, excluindo fragmentos nucleares e detritos que podem ter um sinal, mas que são, por exemplo, muito grande ou muito pequeno para ser núcleos.
   2. Verifique o sinal no canal FITC que é a fluorescência de clivada C₁₂FDG e representa a quantidade de atividade de β-galactosidase associada à senescência nas células.
      Nota: as células senescentes têm maior atividade de β-galactosidase associada à senescência do que as células não senescentes; Entretanto, a fluorescência de C₁₂FDG será não-discreta e contínua, necessitando o estabelecimento de um limiar entre o que é considerado um c₁₂FDG-positivo e uma pilha de c₁₂FDG-Negative.
   3. Usando o software analítico disponível comercialmente, gere uma contagem de instâncias em que uma região definida ao redor do núcleo (uma célula presuntiva) sobrepôs pelo menos uma vez com um limite acima de C₁₂FDG.
      Observação: o software analítico gera automaticamente uma contagem usando a vinculação de destino. Esta é a definição prática do ensaio de uma célula senescente, C₁₂FDG-positivo.
3. Analise todas as amostras em triplicado com 3-5 campos por poço e valores médios e desvios padrão sendo calculados de acordo.
4. Calcule a porcentagem de células senescentes usando a seguinte fórmula:
   Células senescentes (%) = x 100

4. parâmetros de validação do ensaio

1. Para todas as amostras foram calculados o coeficiente de variações intra e inter-Assay (% CVs) utilizando a seguinte fórmula:
   CV intra-ensaio (n = 10 repetições mensuradas em um experimento) = x 100 (%)
   CV inter-Assay (n = 5 experimentos independentes) = x 100 (%)
2. Para fins de triagem, determinar o valor de Z ', um parâmetro estatístico para avaliar a qualidade de um ensaio, a partir de células tratadas com 200 nM rapamicina para 24 h em 20% O₂, 37 ° c, 5% co₂ (um controle positivo para medicamentos senoterapêuticos) e não tratada células senescentes (controlo negativo).
   Nota: o valor de Z ' foi calculado de acordo com Zhang et al.³⁷. Os valores de Z entre 0,5 e 1 indicam que um ensaio pode ser utilizado para a triagem de fármacos.

A atividade de SA-β-GAL pode ser detectada em células induzidas a continuamente por várias formas de exaustão replicativa, estresse genotóxico e oxidativo, à ativação do oncogene^23,25,38. No modelo atual utilizando células de fibroblastos embrionárias com deficiência de camundongo Ercc1, as condições de crescimento normoxicas (20% O₂) foram suficientes para induzir a senescência celular após cultivá-las por algumas passagens. O tipo selvagem MEFs também sofre senescência, mas requer passagens adicionais a 20% O₂. A Figura 1 mostra o fluxo de trabalho do ensaio de triagem a partir do isolamento de células MEF primárias de embriões de camundongo com deficiência de Ercc1, à indução de senescência celular por estresse oxidativo e, finalmente, à análise de dados microscópicos obtidos com um microscópio fluorescente de alto conteúdo. A Figura 2 mostra imagens representativas de culturas celulares MEF contendo células (jovens) não senescentes (Figura 2, esquerda), cerca de 50% de células senescentes na passagem 5 (Figura 2, centro) e células senescentes tratadas com um fármaco senolítico ( Figura 2, direita). A Figura 3a mostra imagens representativas para análises quantitativas automáticas e geradas por software de células senescentes. A Figura 3B demonstra a eliminação da atividade da β-galactosidase de fundo por bafilomicina-a. A Figura 4 mostra possíveis desfechos de culturas de células senescentes tratadas com drogas, incluindo a morte celular senescente (senolítica) e a senescência modulando (senomórfica) drogas como descrito em Fuhrmann-Stroissnigget al. a ¹⁷.

Figura 1. Visão geral esquemática do ensaio de triagem e cronograma. As pilhas de MEF são isoladas dos ratos grávidos e põr sobre placas plásticas tratadas cultura da pilha por alguns dias para expandir. As células de passagem precoce podem ser congeladas em nitrogênio líquido e podem ser usadas para triagem em um momento posterior. A senescência celular é induzida pelo estresse oxidativo por passagem em 20% O₂ e as células são expostas a drogas, uma vez que atingiram um estado senescente robusto. A análise de dados incluindo o total de quantidade e as células senescentes restantes é realizada. A linha do tempo, em dias, indica a duração de um experimento. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 2. Imagens representativas de células não senescentes, senescentes e senescentes tratadas com 100 nM da droga senolítica 17DMAG. A fluorescência azul indica a coloração do ADN com Hoechst 33324 visto que a fluorescência verde indica a mancha de SA-β-GAL com C₁₂FDG. A coloração verde-clara representa as células senescentes positivas SA-β-GAL, enquanto a coloração Dim representa as células SA-β-GAL baixas ou negativas, não senescentes. Por favor, note que as células senescentes geralmente têm maior tamanho celular e são achatado. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3. Representativas imagens de uma cultura de célula de MEF senescente analisada com software comercial. (A) células SA-β-GAL positivas (SA-β-GAL⁺) são delineadas em verde (setas verdes), SA-β-GAL negativa (SA-β-GAL^-) são delineadas em vermelho (setas vermelhas). Os painéis esquerdo e direito mostram o sinal nuclear (Hoechst) e C₁₂FDG (FITC), respectivamente. Somente as áreas que mancham o positivo para Hoechst (contenha um núcleo) são consideradas como pilhas. (B) uma comparação das células tratadas e sem tratamento de Bafilomicina-a. A atividade residual da®-galactosidase presente em todas as células é reduzida pela acidificação lisossomal por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4. Esquema de possíveis resultados do tratamento medicamentoso. As drogas podem ter efeitos diferentes em células senescentes e não senescentes, incluindo matar células senescentes (senolíticos) ou suprimir o fenótipo senescente SA-β-GAL (senomorphics). Juntas, estas duas classes são denominadas senoterapêuticas. Este número foi modificado de Fuhrmann-Stroissnigget al. ¹⁷. please estalam aqui para ver uma versão maior desta figura.

SA-β-GAL é um biomarcador bem definido para a senescência celular originalmente descoberta por Dimri et al. (1995) mostrando que os fibroblastos humanos senescentes aumentaram a atividade da SA-β-GAL quando analisados em pH 6²³ em comparação com as células proliferantes. Entretanto, os ensaios in vitro e in vivo para SA-β-GAL foram estabelecidos para diferentes tipos de células e tecidos^25,39,40. A fluorescência baseou o método da único-pilha para medir o SA-β-GAL em pilhas vivos descritas neste protocolo é uma ferramenta preliminar excelente da seleção para drogas que influenciam a senescência da pilha¹⁷. Entretanto, embora SA-β-GAL seja considerada como um dos marcadores mais convenientes para detecção de células senescentes, marcadores adicionais para senescência celular como a detecção de reguladores de ciclo celular P16^Ink4A e P21⁴¹, senescência associada as proteínas do phenotype secretora (SASP) gostam de IL-6, TNFα, HMGB1and NF-κB⁴², marcadores do reparo do dano do ADN como υh2ax e os focos associados do dano do ADN de telômero (TAFs)^43,44, focos associados do heterocromatina da senescência ( SAHF) ⁴⁵ou marcadores morfológicos básicos como o tamanho da célula e a granularidade precisam estar no lugar como ensaios confirmatórios para garantir o potencial senoterapêutico das drogas⁴⁰. Uma vez que a transição de uma célula normal para uma célula senescente é um processo lento, o passo crítico neste método é encontrar o limiar que distingue entre C₁₂FDG positivo (senescente) e negativo (normal) células. Isso deve ser determinado empiricamente para cada tipo de célula e C₁₂FDG positivo e controles negativos devem ser incluídos em cada experimento.

Além de Ercc1^-/- mefs estressados oxidativos, esse método pode ser modificado para outros tipos de células aderentes. As pilhas de haste mesenquimais Ercc1-deficientes oxidadas-destacadas (MSCS) e as pilhas humanas IMR90 etoposide-tratadas foram testadas já com sucesso no ensaio e podem ser usadas para telar para drogas¹⁷. No entanto, os tempos para induzir a senescência, bem como os tempos de tratamento medicamentoso e concentrações podem variar.

A limitação principal desta técnica é que a atividade de SA-β-GAL mostrou aumentar determinadas condições senescent-independentes tal inibição do contato da pilha ou confluência celular elevada^46,47. Áreas que contenham "pilhas de células" e culturas celulares com células mais confluentes podem ser facilmente determinadas e devem ser excluídas das análises. Além, a mancha do fundo das vesículas fluorescentes verdes do lipofuscina do automóvel aumentada em pilhas senescentes pode ocorrer. Em culturas senescentes de células MEF são negligenciáveis devido ao brilho de C₁₂FDG mas deve ser examinado para cada tipo de célula⁴⁶. A mancha de Hoechst do ADN geralmente não conduz à mancha do fundo. Algum anel de fenol contendo drogas, no entanto, pode ser fluorescente na luz UV. O aumento do tamanho da exclusão do sinal positivo UV da fluorescência até o tamanho de núcleos reais da pilha pôde ajudar a impedir a deteção indesejada destas drogas.

A característica mais significativa do ensaio descrito é o fato de que as células senescentes e não senescentes são encontradas no mesmo ambiente, permitindo a avaliação de efeitos de drogas em células senescentes e não senescentes simultaneamente. A deteção do número total da pilha contando núcleos da pilha dá uma primeira indicação sobre o potencial da matança da pilha de uma droga. Um declínio nos números de pilha e na senescência da pilha sugere geralmente às drogas senolytic visto que um número de pilha constante com um número reduzido de pilhas senescentes indica geralmente drogas senomórficas. Devido ao tempo curto da incubação da droga, os efeitos como a proliferação simultânea de pilhas não-senescentes e a morte da pilha de pilhas senescentes que conduzem ao número de pilha constante (por exemplo, efeito senolytic com resultado senomórfico) não podem ser governados para fora mas são considerados altamente Improvável.

Futuras aplicações desta técnica incluem a possibilidade de integrar marcadores de células ao vivo adicionais (por exemplo, marcador de apoptose como Anexinv e 7AAD⁴⁰) ou marcadores para diferentes compartimentos intracelulares, como mitocôndrias ou lisossomos no sistema de ensaio. A monitoração concomitante de SA-β-GAL e outros marcadores celulares durante o tratamento medicamentoso pode ajudar a elucidar o mecanismo celular subjacente.

Os autores não têm nada a revelar.

Este trabalho foi apoiado pelo NIH Grants AG043376 (Project 2 e Core A, PDR; Projeto 1 e núcleo B, LJN) e AG056278 (projeto 3 e núcleo A, PDR; e projeto 2, LJN) e uma concessão da Fundação de Glenn (LJN).