이 작업은 보조금 번호 P20GM103430에 따라 국립 보건원 (National Institutes of Health)의 국립 일반 의학 연구소 (National Institute of General Medical Sciences)와 브라이언트 보건 및 행동 과학 센터 (Bryant Center of Health and Behavioral Sciences)의 로드 아일랜드 기관 개발 상 (IDeA) 생물 의학 연구 우수 네트워크에 의해 부분적으로 지원되었습니다.

학부 연구 및 교육을 위한 염색체 형태 캡처(3C)

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C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromatin+architectural+proteins.">Chromatin architectural proteins.</a> Chromosome Research. 14 (1), 39-51 (2006).</li><li>Nalabothula, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chromatin+architectural+proteins+HMGD1+and+H1+bind+reciprocally+and+have+opposite+effects+on+chromatin+structure+and+gene+regulation.">The chromatin architectural proteins HMGD1 and H1 bind reciprocally and have opposite effects on chromatin structure and gene regulation.</a> BMC Genomics. 15, 92 (2014).</li><li>John, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromatin+accessibility+pre-determines+glucocorticoid+receptor+binding+patterns.">Chromatin accessibility pre-determines glucocorticoid receptor binding patterns.</a> Nature Genetics. 43 (3), 264-268 (2011).</li><li>Fawcett, D. 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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+21+-+Assay+for+transposase-accessible+chromatin+and+circularized+chromosome+conformation+capture,+two+methods+to+explore+the+regulatory+landscapes+of+genes+in+zebrafish.">Chapter 21 - Assay for transposase-accessible chromatin and circularized chromosome conformation capture, two methods to explore the regulatory landscapes of genes in zebrafish.</a> Methods in Cell Biology. 135, 413-430 (2016).</li><li>Dekker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+three+&amp;#34;C&amp;#34;+s+of+chromosome+conformation+capture:+controls,+controls,+controls.">The three &amp;#34;C&amp;#34; s of chromosome conformation capture: controls, controls, controls.</a> Nature Methods. 3 (1), 17-21 (2006).</li><li>Hag&#232;ge, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+analysis+of+chromosome+conformation+capture+assays+(3C-qPCR).">Quantitative analysis of chromosome conformation capture assays (3C-qPCR).</a> Nature Protocols. 2 (7), 1722-1733 (2007).</li><li>Lajoie, B. R., van Berkum, N. L., Sanyal, A., Dekker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=My5C:+Webtools+for+chromosome+conformation+capture+studies.">My5C: Webtools for chromosome conformation capture studies.</a> Nature Methods. 6 (10), 690-691 (2009).</li><li>Han, M., Wei, G., McManus, C. E., Hillier, L. W., Reinke, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolated+C.+elegans+germ+nuclei+exhibit+distinct+genomic+profiles+of+histone+modification+and+gene+expression.">Isolated C. elegans germ nuclei exhibit distinct genomic profiles of histone modification and gene expression.</a> BMC Genomics. 20 (1), 500 (2019).</li></ol>

저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

3C는 기본 분자 기술에 뿌리를 둔 강력한 기술입니다. 3C를 학부생과 함께 사용할 수 있는 흥미로운 기술로 만드는 것은 이러한 기본 도구의 기초입니다. 광범위한 규모로 염색질 역학을 관찰하는 최근 연구가 너무 많기 때문에 이러한 결과를 사용하여 단일 유전자 또는 게놈 영역에 대한 좁은 초점을 맞춘 실험을 고안하면 학부 연구에서 독특하고 영향력 있는 실험을 만들 수 있는 잠재력이 있습니다. 종종 이와 같은 실험은 학부생에게 너무 진보된 것으로 간주되지만 신중한 계획을 통해 쉽게 달성할 수 있습니다. 3C 라이브러리에 의해 캡처된 염색질 연결을 조사하도록 설계된 분석은 반정량적 종말점 PCR에서 전체 게놈 시퀀싱에 이르기까지 다양할 수 있다는 점에 유의하는 것이 중요합니다. 실제로, 제1 3C 논문(16 )으로부터의 데이터는 qPCR로부터 생성되었다. 이 광범위한 분석은 모든 3C 기술이 동일한 제품, 즉 핵에서 3D 연결을 나타내는 DNA 단편 라이브러리를 생성하기 때문에 모두 사용할 수 있습니다.
여기에 제시된 것은 학부 연구원에게 더 적합한 보다 유연하고 수용적인 프로토콜의 적응입니다. 위에 나열된 일시 중지 기간은 야간 지연을 의미합니다. 그러나 이러한 일시 중지는 주말에 걸쳐 연장 될 수 있으며 세포와 핵의 경우 몇 주 동안 연장 될 수 있습니다. 가장 중요한 고려 사항은 작업이 완료되는 시기입니다. 프로토콜에는 일시 중지가 옵션이 아닌 경우 시간에 민감한 단계가 있는 경우가 많습니다. 몇 가지 지점(1일차와 2일차) 외에도 샘플을 멈추고 동결할 수 있는 곳이 많이 있습니다. 이는 실험실 작업의 일정과 타이밍이 유연해야 하는 학부생과 함께 작업할 때 매우 중요합니다. 이러한 중지를 프로토콜에 엔지니어링하는 것 외에도 학부생은 쌍 또는 3-4명의 소그룹으로 작업하는 것이 좋습니다. 학생들은 서로를 지원하고 모든 사람이 안전하게 작업할 수 있도록 친구 시스템을 만들 수 있기 때문에 그룹은 이 프로토콜에 적합합니다. 실험실 작업도 다른 사람들과 함께 하면 더 재미있습니다. 그룹을 통해 학생들은 동일한 프로토콜을 수행하면서 염색질 조직에 초점을 맞춘 다양한 질문에 대해 작업할 수도 있습니다. 따라서 학생들이 별도의 프로젝트를 진행하는 동안에도 프로토콜은 그들의 노력을 연결하고, 이로 인해 서로를 지원할 수 있습니다.
다른 적응은 특정 전문 도구와 장비가 모든 학부 기관에서 반드시 발견되는 것은 아니라는 사실을 해결하기 위한 것입니다. 이러한 장비에는 qPCR 열순환기, 겔 문서화 시스템 및 나노 부피 분광계가 포함되지만 이에 국한되지는 않습니다. 실제로 이러한 장비는 편리하지만 필수 사항은 아닙니다. 여기서, 3C의 고전적인 방법은 프라이머 디자인 부분에서도 설명됩니다. 여기에는 관심 있는 게놈 유전자좌를 식별하고 그로부터 더 멀리 떨어진 염색질 접촉점에 대한 다른 게놈 유전자좌를 평가하는 것이 포함됩니다. 이 기술은 알려진 양수(연결) 및 음수(비연결) 유전자좌가 식별되는 Hi-C를 사용하는 데이터 세트와 같이 게시된 데이터 세트를 사용하는 경우에도 잘 작동합니다. 이러한 공개된 데이터 세트를 사용하여 실험을 설계하는 것은 염색질 연결을 성공적으로 식별할 수 있는 기회가 일반적으로 더 크기 때문에 교육 실험실에 대한 또 다른 훌륭한 적응입니다. 또한 연구 논문은 수업 시간에 토론하고 참고 자료로 사용할 수 있습니다.
이 프로토콜은 수정된 qPCR 접근 방식을 사용하여 3C 생성물 형성을 시각화합니다. 제어는 3C 기술의 성공에 필수적입니다. 각 실험은 샘플 대조군과 프라이머 대조군을 모두 사용하여 3C 절차의 완료를 결정합니다. 샘플 대조군에는 소화되지 않은 대조군(게놈 DNA)과 소화된 대조군이 포함됩니다. 소화되지 않은 대조군은 프라이머 세트에 대한 기준선 신호를 결정하고, 분해 효율을 결정하기 위해 가교 분해 대조군과 함께 사용되며, 제한 부위를 가로질러 지시된 임의의 프라이머에 대해 생성물의 감소가 있을 것으로 예상된다. 이 값을 소화되지 않은 대조군과 비교하면 샘플이 얼마나 잘 소화되었는지를 알 수 있습니다.
상기 PCR용 프라이머는 대조군 프라이머 및 테스트 프라이머를 포함한다. 대조군 프라이머는 분석되는 게놈 영역 근처에 있고 제한 부위를 포함하지 않는 프라이머 세트입니다. 이는 테스트 프라이머 PCR 산물의 풍부도를 결정하기 위한 기준선을 제공합니다. 테스트 프라이머는 관심 있는 특정 게놈 유전자좌에 대한 제한 부위 옆에 있는 정방향 및 역방향 프라이머입니다(그림 3). 이러한 프라이머 세트를 사용하는 반응은 소화 효율을 결정하기 위해 비교되는데, 이는 제한 부위가 절단된 경우 제품 풍부도가 떨어져야 하기 때문이다. 염색질 조직을 결정할 때 한 유전자좌의 한 테스트 프라이머를 다른 게놈 유전자좌의 다른 테스트 프라이머와 쌍을 이루어 이 두 유전자좌가 3D 공간에서 서로 가까이 있는지 확인합니다. 이 경우 PCR 산물은 3C 샘플을 템플릿으로 사용하는 경우에만 발견될 것으로 예상됩니다.
검증된 프라이머도 실패하는 경향이 있다는 점에 유의해야 합니다(그림 4: r14 프라이머 세트). 또한, PCR 산물은 대조 반응 및 염색질 연결이 예측되지 않는 반응(예: 결찰되지 않기 때문에 분해된 대조군)에서 자주 식별됩니다. 이러한 인스턴스는 시퀀싱되어 Sanger QC에 실패하거나 정의된 시퀀스 없이 반환됩니다(그림 5). 또한 전통적인 3C 실험은 주어진 양의 DNA로 생성할 수 있는 모든 가능한 결찰 단편을 나타내는 가교되지 않은, 소화 및 결찰된 DNA 샘플인 "대조 주형"을 생성합니다. "제어 템플릿"은 두 게놈 유전자좌 사이의 qPCR 신호 강도를 비교하여 신호가 실제 상호 작용을 나타내는지 아니면 무작위 연관을 나타내는지 결정하는 데 중요한 역할을 합니다. "제어 템플릿"을 만드는 것은 분석되는 염색질의 상당 부분을 인공 염색체의 형태로 포획하고 3C 샘플과 함께 처리해야 하기 때문에 문제가 될 수 있습니다. 이러한 구조를 확보하는 것은 실현 가능하지 않을 수 있으며, 하나를 만드는 것은 학기 프로젝트의 범위를 벗어날 수 있습니다. 이러한 어려움으로 인해 대조군 프라이머를 사용하는 것이 좋습니다. 제어 입문서는 "제어 템플릿"의 모든 기능을 대체하지는 않지만 데이터를 분석하여 "존재" 또는 "부재" 결정을 내릴 수 있는 기회를 제공합니다.
qPCR을 수행할 때 동일한 양의 샘플을 사용하는 것이 중요합니다. 이는 나노드롭과 같은 나노분광광도계를 사용하더라도 알려진 농도의 게놈 DNA로부터 표준 곡선을 생성하고 3C 샘플을 해당 선에 피팅하여 결정해야 합니다. 이 양은 기록되어 후속 PCR에 사용되어야 합니다. PCR 반응의 품질 또한 중요합니다. PCR이 qPCR에서 실행됨에 따라 형광을 사용하여 제품 존재비를 측정하고 기록합니다. 이 기록은 증폭 플롯에서 액세스할 수 있습니다. 프로그램이 완료되면 증폭 플롯을 확인하고 반응(템플릿 제어 없음 제외)에 기준선, 지수 및 고원/포화 단계의 세 단계가 있는지 확인하는 것이 중요합니다. 특히 임계값을 설정하기 위해 반응에 지수 위상이 있는지 확인하는 것이 중요합니다(아래 참조). 또한 연속 희석된 샘플의 경우 샘플의 희석과 일치하는 Ct 값의 이동이 있어야 합니다(가장 높은 농도는 가장 낮은 Ct 값을 가지며 가장 낮은 농도는 가장 높은 Ct 값을 갖습니다). 증폭 플롯에서 이러한 변화를 반영하지 않는 샘플은 새로운 희석이 필요하거나 3C 샘플 형성에 더 큰 문제가 있음을 나타냅니다. 마지막으로, 표준 곡선을 생성하는 동안, PCR 소프트웨어는 PCR 효율 및R2 값을 계산할 것이다. PCR 효율은 90% 이상이어야 하고,R2 값은 0.99보다 커야 한다. 이러한 조건 중 하나라도 충족되지 않으면 샘플 또는 PCR 프라이머에 문제가 있을 수 있습니다.
qPCR 후, 소화 백분율 및 3C 상호작용의 존재는 각 반응에 대한 qPCR Ct를 사용하여 계산할 수 있습니다. 이를 결정하기 위해서는 먼저 PCR 반응에 대한 임계 값을 설정해야합니다. 이것은 일반적으로 qPCR 기계와 함께 제공되는 소프트웨어를 사용하여 수행됩니다. 임계값을 설정하면 샘플 Ct 값을 비교하는 데 사용할 PCR 산물의 농도가 정의됩니다. 임계값은 증폭의 지수 단계에서 PCR 반응의 증폭 곡선을 이등분해야 합니다. 지수 증폭이 있는 PCR 반응(이 경우 대조군 프라이머 및 테스트 프라이머 반응)만 비교할 수 있는데, 이는 반응이 동일한 속도로 DNA를 증폭하고 충실하게 비교할 수 있는 유일한 방법이기 때문입니다. 3C 그래프를 분석할 때 조건부 양성 반응은 대조군 샘플, 게놈 대조군 및 소화 대조군보다 더 많은 생성물을 가진 반응으로 식별됩니다(그림 4B). 그러나 이러한 샘플은 PCR 산물의 겔 정제 후 Sanger 염기서열 분석을 사용하여 추가로 검증해야 합니다.
Sanger 염기서열 분석 후 QC를 통과한 시료는 Blat를 사용하여 분석할 수 있습니다. 이 분석의 목표는 샘플이 제한 부위 옆에 있는 두 표적 게놈 유전자좌의 서열을 가지고 있는지 확인하는 것입니다(이 프로토콜의 경우 DpnII). 두 서열이 모두 확인되면 3C 단편이 검증된 것으로 간주될 수 있습니다. Blat의 결과가 예상된 서열을 반환하지 않는 경우, 이는 하나 또는 두 프라이머가 최적이 아님을 나타낼 수 있으며, 그 결과 위양성 qPCR 결과가 발생할 수 있습니다. 거짓 양성 샘플에 대한 추적 파일에는 정의되지 않은 기본 피크가 있으며 Seq 보고서에는 대부분 "n" 기본 호출이 포함됩니다.
Sanger 검증은 인공성 PCR 산물 형성으로 인한 위양성이 가능하기 때문에 필수적입니다. 이러한 위양성은 염기서열 분석 산물이 예상되는 표적 서열 또는 적절한 3C 단편의 DpnII 부위 특성을 가지고 있지 않을 때 식별할 수 있습니다(그림 5). PCR 단편의 시퀀싱은 또한 실험을 위한 또 다른 데이터 포인트를 제공하고 학생들에게 3C 기술이 핵 내의 3D 공간에서 함께 모이는 먼 게놈 유전자좌를 식별하고 있다는 사실을 알려줍니다.
3C 기술은 유연하고 간단한 절차로 학부생을 위한 풍부한 기초 분자 기술을 제공합니다. 이 3C 기술은 차세대 시퀀싱(NGS)을 통합하는 다른 3C 기술의 출발점이기도 합니다. 이러한 유형의 실험은 학부생을 생물 정보학의 중요한 측면에 노출시킬 수 있으며 여기에 설명 된 기본 원칙에 뿌리를두고 있습니다. 학부 경험과 참여는 젊은 과학자로서의 성공과 발전의 열쇠입니다. 이러한 기회를 제공함으로써 학부생은 기본 원리에 대한 이해를 강화하는 동시에 최첨단 기술과 질문에 대처할 수 있는 자신감을 키울 수 있습니다.

유기체의 게놈은 기능에 필요한 모든 유전자뿐만 아니라 언제 어떻게 사용해야 하는지에 대한 모든 지침을 담고 있습니다. 이것은 게놈에 대한 접근을 조절하는 것을 세포의 가장 중요한 기능 중 하나로 만듭니다. 유전자 기능을 제어하는 많은 메커니즘이 있습니다. 그러나 기본 수준에서 유전자 조절은 특정 DNA 서열(시스 조절 서열)에 결합하는 조절 전사 인자(트랜스 인자)의 능력으로 귀결됩니다. 이것은 타고난 능력이 아닙니다. 대신, 그것은 핵에서 게놈의 조직/구조에 의해 지배되며, 이는 트랜스인자 1,2,3에 대한 시스-조절 서열의 가용성/노출을 제어합니다. 트랜스 인자가 시스 조절 서열을 찾을 수 없으면 트랜스 인자가 규제 작업을 수행 할 수 없습니다. 이것은 게놈이 핵에서 어떻게 구성되어 있는지 이해하는 것을 중요한 탐구의 원천으로 만들었습니다.
간기 동안 핵의 진핵 염색체는 핵층과 핵 매트릭스에 고정된 자체 영역을 차지하므로 염색체를 스파게티 접시의 국수가 아니라 피자 조각처럼 만든다는 것이 널리 받아들여지고 있습니다. 염색체는 염색체의 일부를 비틀고 반복하는 단백질-DNA 상호 작용(염색질)에 의해 부분적으로 응축됩니다. 전자 현미경, 3차원 DNA 형광 제자리 혼성화(FISH) 및 DNA 태깅 기술(즉, 형광 및 인공 DNA 메틸화)을 통해 염색질의 비활성 도메인은 핵 주변을 따라 단단히 채워져 있는 것으로 밝혀졌습니다 4,5,6, 활성, 덜 응축된 염색질의 일부는 핵 내부에서 발견됩니다 7,8,9, 10입니다. 이 실험은 염색체 역학에 대한 광각 보기를 제공하지만 DNase 11,12 및 뉴클레오솜13,14,15 연구에서 관찰된 유전자 프로모터 주변에서 국부적으로 발생하는 변화를 포착하는 데는 거의 도움이 되지 않습니다.
고분해능 염색질 역학을 여는 열쇠는 3D 염색체 매핑 기술인 3C의 공식화였습니다. 3C 기법 자체는 염색질의 가교, 제한 효소에 의한 염색질 분해, 염색질 결찰 및 DNA 정제의 네 가지 주요 단계로 구성됩니다(그림 2). 이 과정에 의해 생성된 새로운 인공 DNA 단편은 선형적으로 멀리 떨어져 있는 DNA 조각들 사이의 밀접한 물리적 연관성을 나타내도록 특성화될 수 있다(16). 3C 기술은 3C의 초기 단계를 활용하여 더 광범위한 게놈 전체 질문(예: Hi-C, 4C, ChIP-C)을 하는 여러 스핀오프 기술을 만드는 기초가 되었습니다. 이 3C 기술 제품군은 염색체가 위상 관련 도메인(TAD)이라고 하는 여러 개별 단위로 구성되어 있음을 확인했습니다. TAD는 게놈에 암호화되어 있으며 고리가 없는 경계 16,17,18,19 옆에 있는 염색질 루프에 의해 정의됩니다. TAD 경계는 CCCT 결합 인자(CTCF) 및 응집력을 포함하여 진화적으로 보존되고 유비쿼터스한 두 가지 요인에 의해 유지되며, 이는 개별 TAD 내의 루프가 상호 작용하는 것을 방지합니다(16,20). 루프는 트랜스 인자와 조절 서열의 상호 작용, CTCF 및 응집력에 의해 매개됩니다21.
3C 기술을 사용하는 많은 연구가 광범위한 게놈 전반에 걸친 질문을 하고 복잡한 샘플 수집 기술을 사용하지만 3C 기술의 공식화는 기본 분자 생물학 기술을 기반으로 합니다. 따라서 3C는 학부 연구 및 교육 실험실 모두에 배포하기에 흥미로울 수 있습니다. 3C 기술은 더 작은 집중 질문에 사용할 수 있으며 질문의 초점과 방향에 따라 확장 또는 축소(단일 유전자22, 염색체16 및/또는 게놈18)에 본질적으로 유연합니다. 이 기술은 또한 광범위한 모델 시스템 7,16,19,23에 적용되었으며 그 용도에 있어 다재다능한 것으로 입증되었습니다. 따라서 3C는 학생들이 일반적인 분자 생물학 기술에 대한 경험을 쌓을 수 있는 동시에 지시된 질문에 답하는 데 귀중한 경험을 얻을 수 있다는 점에서 학부생에게 훌륭한 기술입니다.
여기에 제시된 것은 이전에 발표된 프로토콜24,25,26,27에 기초한 3C 라이브러리 준비를 위한 적응된 프로토콜이다. 이 프로토콜은 약 1 × 107 셀에 최적화되어 있지만 1 × 105 셀로 3C 라이브러리를 생성했습니다. 이 프로토콜은 다재다능한 것으로 입증되었으며 제브라피쉬 배아, 제브라피쉬 세포주 및 젊은 성인(YA) Caenorhabditis elegans(회충)에서 3C 라이브러리를 생성하는 데 사용되었습니다. 이 프로토콜은 또한 포유류 세포주와 추가 적응을 통해 효모에 적합해야 합니다.
이러한 적응의 목표는 학부생이 3C에 더 쉽게 접근할 수 있도록 하는 것입니다. 학부 교수 실험실에서 수행할 수 있는 것과 유사한 기술을 사용하도록 주의를 기울였습니다. 3C 기술은 학부생이 벤치, 교실 및 졸업 후 노력에서 발전에 도움이 될 기본 분자 생물학 기술을 배울 수 있는 많은 학습 기회를 제공합니다.

<table><tbody><tr><td>37% Formaldehyde&amp;nbsp;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>F8775</td><td></td></tr><tr><td>100% Ethanol</td><td>Millapore-Sigma</td><td>E7023</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>MP Biomedical</td><td>215350280</td><td></td></tr><tr><td>chloroform</td><td>Millapore-Sigma</td><td>C0549</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete, EDTA-free Protease Inhibitor Cocktail</td><td>Millapore-Sigma</td><td>COEDTAF-RO</td><td>mixed to 50x in water. Diluted to 1x in Sucrose buffer and GB buffer fresh</td></tr><tr><td>Dithiothreitol (DTT)</td><td>Millapore-Sigma</td><td>D0632</td><td>1 M stock diluted to 500 &amp;micro;M in Sucrose buffer and GB buffer fresh</td></tr><tr><td>DpnII</td><td>NEB</td><td>R0543M</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Millapore-Sigma</td><td>G9012</td><td></td></tr><tr><td>glycine</td><td>Millapore-Sigma</td><td>G8898</td><td></td></tr><tr><td>glycogen</td><td>Millapore-Sigma</td><td>10901393001</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Millapore-Sigma</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Millapore-Sigma</td><td>P3911</td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>P5655</td><td></td></tr><tr><td>methyl green pyronin&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>HT70116</td><td></td></tr><tr><td>MgAc&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Thermoscientific</td><td>1222530</td><td></td></tr><tr><td>Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>S5136</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Millapore-Sigma</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>phenol-chloroform&amp;nbsp;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>P3803</td><td></td></tr><tr><td>Pronase</td><td>Millapore-Sigma</td><td>11459643001</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>IBI Scientific</td><td>IB05406</td><td></td></tr><tr><td>qPCR Ready mix (Phire Taq etc)</td><td>Millapore-Sigma</td><td>KCQS07</td><td></td></tr><tr><td>RNase A&amp;nbsp;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>R6148</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Acetate</td><td>Millapore-Sigma</td><td>S2889</td><td></td></tr><tr><td>sodium dodecyl sulfate (SDS)</td><td>Millapore-Sigma</td><td>L3771</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Millapore-Sigma</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNA Ligase</td><td>Promega</td><td>M1804</td><td></td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>Millapore-Sigma</td><td>108319</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Millapore-Sigma</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA&amp;nbsp;</td><td>Millapore-Sigma</td><td>T4049</td><td></td></tr></tbody></table>

getting an a with the 3cs: chromosome conformation capture for undergraduates

염색체 형태 포획(3C)은 염색질의 3차원 조직에 대한 자세한 정보를 제공하는 유사한 기술 제품군(예: Hi-C, 4C 및 5C, 여기서는 3C 기술이라고 함)을 생성한 강력한 도구입니다. 3C 기술은 암세포의 염색질 조직 변화를 모니터링하는 것부터 유전자 프로모터와의 인핸서 접촉 식별에 이르기까지 광범위한 연구에 사용되었습니다. 이러한 기술을 사용하는 많은 연구가 복잡한 샘플 유형 (즉, 단일 세포 분석)으로 게놈 전반에 걸친 큰 질문을하고 있지만, 종종 손실되는 것은 3C 기술이 광범위한 연구에 적용 할 수있는 기본 분자 생물학 방법에 기반을두고 있다는 것입니다. 염색질 조직에 대한 긴밀한 초점을 맞춘 문제를 해결함으로써 이 최첨단 기술을 사용하여 학부 연구 및 교육 실험실 경험을 향상시킬 수 있습니다. 이 논문은 3C 프로토콜을 제시하고 학부 연구 및 교육 경험에서 주로 학부 기관에서 구현하기 위한 적응 및 강조점을 제공합니다.

이 절차는 하나의 실험 3C 샘플과 두 개의 대조군 샘플(소화되지 않은 및 소화됨)을 생성합니다. 이들 3개의 샘플을 이용하여, qPCR을 수행하였다. 이러한 결과로부터, 소화 효율을 계산하고(수학식 1) 기록하였다(표 1). 이러한 계산으로부터, 3C 샘플은 시험된 7개의 게놈 유전자좌에 걸쳐 대략 88%의 소화 효율(표 1의 평균)을 갖는 것으로 결정되었다.
다음으로, 샘플은 유전자좌 특이적 프라이머(표 2)와 qPCR의 조합을 사용하여 서로 다른 게놈 유전자좌 사이의 장거리 염색질 접촉의 존재에 대해 테스트되었습니다. 이러한 결과를 사용하여 대조군 프라이머 세트에 대한 제품 존재비를 계산하고(방정식 2) 비교를 위해 그래프로 표시했습니다(그림 4). 이 데이터는 10 개의 반응 중 8 개가 장거리 상호 작용에 대한 조건부 양성임을 나타냅니다.
이어서, PCR 반응을 아가로스 겔 상에서 실행하였다. 8개의 조건부 양성 반응과 1개의 음성 반응에 대해 예상되는 PCR 산물을 겔 정제하고 Sanger 시퀀싱을 위해 보냈습니다. 대표적인 양성(파란색 화살표, 파란색 상자) 및 음성(빨간색 화살표, 빨간색 상자) 반응에 대한 결과가 표시됩니다(그림 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65213/65213fig01.jpg"> 그림 1: 핵의 염색체 구조. 핵 내부의 가상의 염색체 조직. (A) 핵 외피, 검은 선; (b) 핵층, 오렌지색; (c) 헤테로크로마틴, 압축선; (D) 유크로마틴, 느슨한 루프. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/65213/65213fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65213/65213fig02.jpg"> 그림 2: 3C 프로토콜의 개략도. 선형 염색체의 먼 부분(파란색, 노란색, 분홍색)은 조절 루프를 통해 핵 내에서 서로 가깝게 연결됩니다. (A) 루프 구조는 전사 인자(회색 원 및 검은색 별)에 의해 매개됩니다. 이러한 상호 작용은 화학적 가교를 통해 보존됩니다. (B) 루프는 효소 소화를 통해 끊어집니다(검은색 선). (C) 멀리 있는 염색질 조각은 소화에 의해 생성된 접착 말단을 통해 함께 결찰됩니다. (D) DNA는 단백질로부터 정제된다. (E) 단편 내의 서열이 식별되고 게놈에 다시 매핑됩니다. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/65213/65213fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65213/65213fig03.jpg"> 그림 3: 3C 프라이머 구성표. 3C 프라이머는 관심 게놈 위치에서 다양한 거리에 있는 제한 부위를 중심으로 설계되었습니다. 분홍색 화살표는 DpnII 부위를 둘러싼 실험용 프라이머 세트를 나타냅니다. 실험 프라이머를 혼합하고 일치시켜 해당 영역의 염색질 루핑을 평가할 수 있습니다. 주황색 프라이머는 DpnII 부위가 없는 음성 대조군을 나타냅니다. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/65213/65213fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65213/65213fig04.jpg"> 그림 4: 3C 실험에 대한 대표적인 qPCR 데이터. 3C 테스트 프라이머 세트의 상대적 풍부도. (A) 소화되지 않은 대조군(파란색), 소화된 대조군(회색) 및 3C 샘플(주황색)에서 생성물의 상대적 풍부도를 보여주는 대조군 그래프. (b) 3C 실험; 소화되지 않은 대조군(파란색), 분해된 대조군(회색) 및 3C 샘플(주황색)에서 테스트 프라이머 조합으로 인한 제품의 상대적 풍부도. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/65213/65213fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65213/65213fig05.jpg"> 그림 5: 3C qPCR 산물의 시각화. 상단, qPCR 종말점 제품이 표시된 젤amples와 함께. 하단, 표시된 반응에 대한 대표적인 Sanger 서열 추적 파일. 주황색 샘플은 거짓 양성의 예이며( 그림 4, r38/34 참조), 파란색 샘플은 추적 위에 표시된 DpnII 부위가 있는 참 양성의 예입니다. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/65213/65213fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>사이트</td>
			<td>% 소화</td>
		</tr><tr><td>R8</td>
			<td>86.98</td>
		</tr><tr><td>R3 (알3)</td>
			<td>88.44</td>
		</tr><tr><td>R38 (영어)</td>
			<td>89.64</td>
		</tr><tr><td>R34 (영어)</td>
			<td>87.55</td>
		</tr><tr><td>R33 (알33)</td>
			<td>87.85</td>
		</tr><tr><td>R14 (영어)</td>
			<td>86.97</td>
		</tr><tr><td>R47 (영어)</td>
			<td>89.45</td>
		</tr></tbody></table>표 1: 계산된 소화 효율.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>이름</td>
			<td colspan="3">순서</td>
			<td>게놈 유전자좌</td>
		</tr><tr><td>r3 FWD</td>
			<td colspan="3">ACGCAAGTAAAATTCTGGTTTTTGACC</td>
			<td>chrX:11361475</td>
		</tr><tr><td>r3 RVS</td>
			<td colspan="3">TTTCCTGAGCTCTCTAACCATGTTTGC</td>
			<td>chrX:11361561</td>
		</tr><tr><td>r38 FWD</td>
			<td colspan="3">TTACTTCTGAAGTAATCTTTTCTTATCCCC</td>
			<td>chrX:5859700</td>
		</tr><tr><td>r38 RVS</td>
			<td colspan="3">AGACGAGCTGATTAAAAGTAGTTGAGAG</td>
			<td>chrX:5859775</td>
		</tr><tr><td>r34 FWD (전륜)</td>
			<td colspan="3">ATTTGTGGATTGCGTGGAGACG</td>
			<td>chrX:5429702</td>
		</tr><tr><td>r34 RVS</td>
			<td colspan="3">AATAATCCTCTTAACAAACGTGGCC</td>
			<td>chrX:5429777</td>
		</tr><tr><td>r33 FWD</td>
			<td colspan="3">아가그트그ccaaaataaattgagctaac</td>
			<td>chrX:6296704</td>
		</tr><tr><td>r33 RVS</td>
			<td colspan="3">TTCAGAAAAGTAAACTTTGACTTGGAACG</td>
			<td>chrX:6296807</td>
		</tr><tr><td>r14 FWD</td>
			<td colspan="3">AATTATCGATTTTTCCATCGCGCAG</td>
			<td>chrX:8036367</td>
		</tr><tr><td>r14 RVS</td>
			<td colspan="3">ATTTCAATGAAAATGTAAAAATGTTCCTTC</td>
			<td>chrX:8036427</td>
		</tr><tr><td>r47 FWD</td>
			<td colspan="3">ATCTAGACTTGATAATATTTGTGTGTCCTC</td>
			<td>chrX:9464939</td>
		</tr><tr><td>r47 RVS</td>
			<td colspan="3">AAGTTCTGCAACTGTTAGATGAATAACAC</td>
			<td>chrX:9465064</td>
		</tr><tr><td>r8 FWD</td>
			<td colspan="3">GAGAATGTTGTTCTGTAACTGAAAACTTG</td>
			<td>chrX:11094257</td>
		</tr><tr><td>r8 RVS</td>
			<td colspan="3">TTACGAAATTTGGTAGTTTTGGACC</td>
			<td>chrX:11094362</td>
		</tr><tr><td>제어 프라이머 FWD</td>
			<td colspan="3">CAATCGTCTCGCTCACTTGTC</td>
			<td>chrX:7608049</td>
		</tr><tr><td>제어 프라이머 RVS</td>
			<td colspan="3">갓트가그카아카그카크캉</td>
			<td>chrX:7608166</td>
		</tr></tbody></table>표 2: 대표적인 3C 실험을 위한 프라이머.

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저자 스포트라이트: 3C로 A 받기: 학부생을 위한 염색체 형태 포착  

여기에서는 학부 참여 및 학습에 중점을 두고 염색체 형태 캡처(3C) 기술의 적응을 자세히 제시합니다.

3C로 A 받기: 학부생을 위한 염색체 형태 캡처

Chromosome conformation capture (3C) is a powerful tool that has spawned a family of similar techniques (e.g., Hi-C, 4C, and 5C, referred to here as 3C ...

우리의 연구는 염색질 조직이 유전자 발현을 제어하는 방법을 밝히는 것을 목표로 합니다. 초점은 유전자 활성을 제어하기 위해 유전자 수준에서 염색질을 조절하는 요인을 결정하는 것입니다. 현재 염색체 확인 캡처(3C)와 유사한 기술이 이 분야에서 발전하는 데 사용됩니다.시료 채취 및 염기서열 분석 기술에 대한 투자는 3C 기술이 우리에게 보여줄 수 있는 것을 밀어붙였습니다. 현재 가장 큰 실험 과제는 균일한 염색질 구조를 가진 샘플을 수집하는 것입니다. 샘플의 이질성은 혼란스러운 결과를 초래합니다.앞으로 우리는 염색질 조직의 변화가 암에서 어떤 역할을 하는지에 초점을 맞출 것입니다.

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Genetics

Getting an A with the 3Cs: Chromosome Conformation Capture for Undergraduates

3.1K 조회수.  Bryant University. 우리의 연구는 염색질 조직이 유전자 발현을 제어하는 방법을 밝히는 것을 목표로 합니다. 초점은 유전자 활성을 제어하기 위해 유전자 수준에서 염색질을 조절하는 요인을 결정하는 것입니다. 현재 염색체 확인 캡처(3C)와 유사한 기술이 이 분야에서 발전하는 데 사용됩니다.시료 채취 및 염기서열 분석 기술에 대한 투자는 3C 기술이 우리에게 보여줄 수 있는 것을 밀어...

비디오: 저자 스포트라이트: 3C로 A 받기: 학부생을 위한 염색체 형태 포착  

Methyl-binding DNA capture Sequencing for Patient Tissues

Methylation is one of the essential epigenetic modifications to the DNA, which is responsible for the precise regulation of genes required for stable development and differentiation of different tissue types. Dysregulation of this process is often the hallmark of various diseases like cancer. Here, we outline one of the recent sequencing techniques, Methyl-Binding DNA Capture sequencing (MBDCap-seq), used to quantify methylation in various normal and disease tissues for large patient cohorts. We describe a detailed protocol of this affinity enrichment approach along with a bioinformatics pipeline to achieve optimal quantification. This technique has been used to sequence hundreds of patients across various cancer types as a part of the 1,000 methylome project (Cancer Methylome System).

Here we present a protocol to investigate genome wide DNA methylation in large scale clinical patient screening studies using the Methyl-Binding DNA Capture sequencing (MBDCap-seq or MBD-seq) technology and the subsequent bioinformatics analysis pipeline.

환자 조직에 대한 메틸 결합 DNA 캡처 시퀀싱

Methylation is one of the essential epigenetic modifications to the DNA, which is responsible for the precise regulation of genes required for stable ...

연구

유전학

Generation of a Gene-disrupted Streptococcus mutans Strain Without Gene Cloning

Typical methods for the elucidation of the function of a particular gene involve comparative phenotypic analyses of the wild-type strain and a strain in which the gene of interest has been disrupted. A gene-disruption DNA construct containing a suitable antibiotic resistance marker gene is useful for the generation of gene-disrupted strains in bacteria. However, conventional construction methods, which require gene cloning steps, involve complex and time-consuming protocols. Here, a relatively facile, rapid, and cost-effective method for targeted gene disruption in Streptococcus mutans is described. The method utilizes a 2-step fusion polymerase chain reaction (PCR) to generate the disruption construct and electroporation for genetic transformation. This method does not require an enzymatic reaction, other than PCR, and additionally offers greater flexibility in terms of the design of the disruption construct. Employment of electroporation facilitates the preparation of competent cells and improves the transformation efficiency. The present method may be adapted for the generation of gene-disrupted strains of various species.

Generation of a Gene-disrupted Streptococcus mutans Strain Without Gene Cloning

We describe a facile, rapid, and relatively inexpensive method for the generation of gene-disrupted Streptococcus mutans strains; this technique may be adapted for the generation of gene-disrupted strains of various species.

유전자 교란 mutans 연쇄 상 구 균 긴장 없이 유전자 복제의 생성

Typical methods for the elucidation of the function of a particular gene involve comparative phenotypic analyses of the wild-type strain and a strain in ...

Generation of Genome-wide Chromatin Conformation Capture Libraries from Tightly Staged Early Drosophila Embryos

Investigating the three-dimensional architecture of chromatin offers invaluable insight into the mechanisms of gene regulation. Here, we describe a protocol for performing the chromatin conformation capture technique in situ Hi-C on staged Drosophila melanogaster embryo populations. The result is a sequencing library that allows the mapping of all chromatin interactions that occur in the nucleus in a single experiment. Embryo sorting is done manually using a fluorescent stereo microscope and a transgenic fly line containing a nuclear marker. Using this technique, embryo populations from each nuclear division cycle, and with defined cell cycle status, can be obtained with very high purity. The protocol may also be adapted to sort older embryos beyond gastrulation. Sorted embryos are used as inputs for in situ Hi-C. All experiments, including sequencing library preparation, can be completed in five days. The protocol has low input requirements and works reliably using 20 blastoderm stage embryos as input material. The end result is a sequencing library for next generation sequencing. After sequencing, the data can be processed into genome-wide chromatin interaction maps that can be analyzed using a wide range of available tools to gain information about topologically associating domain (TAD) structure, chromatin loops, and chromatin compartments during Drosophila development.

Generation of Genome-wide Chromatin Conformation Capture Libraries from Tightly Staged Early Drosophila Embryos

This work describes a protocol for the generation of high resolution in situ Hi-C libraries from tightly staged pre-gastrulation Drosophila melanogaster embryos.

단단히 준비 초기 초파리 배아에서 게놈 넓은 Chromatin 구조 캡처 라이브러리의 생성

Investigating the three-dimensional architecture of chromatin offers invaluable insight into the mechanisms of gene regulation. Here, we describe a ...

CRISPR-Mediated Reorganization of Chromatin Loop Structure

Recent studies have clearly shown that long-range, three-dimensional chromatin looping interactions play a significant role in the regulation of gene expression, but whether looping is responsible for or a result of alterations in gene expression is still unknown. Until recently, how chromatin looping affects the regulation of gene activity and cellular function has been relatively ambiguous, and limitations in existing methods to manipulate these structures prevented in-depth exploration of these interactions. To resolve this uncertainty, we engineered a method for selective and reversible chromatin loop re-organization using CRISPR-dCas9 (CLOuD9). The dynamism of the CLOuD9 system has been demonstrated by successful localization of CLOuD9 constructs to target genomic loci to modulate local chromatin conformation. Importantly, the ability to reverse the induced contact and restore the endogenous chromatin conformation has also been confirmed. Modulation of gene expression with this method establishes the capacity to regulate cellular gene expression and underscores the great potential for applications of this technology in creating stable de novo chromatin loops that markedly affect gene expression in the contexts of cancer and development.

Chromatin looping plays a significant role in gene regulation; however, there have been no technological advances that allow for selective and reversible modification of chromatin loops. Here we describe a powerful system for chromatin loop re-organization using CRISPR-dCas9 (CLOuD9), demonstrated to selectively and reversibly modulate gene expression at targeted loci.

Recent studies have clearly shown that long-range, three-dimensional chromatin looping interactions play a significant role in the regulation of gene ...

High-throughput Identification of Gene Regulatory Sequences Using Next-generation Sequencing of Circular Chromosome Conformation Capture (4C-seq)

The identification of regulatory elements for a given target gene poses a significant technical challenge owing to the variability in the positioning and effect sizes of regulatory elements to a target gene. Some progress has been made with the bioinformatic prediction of the existence and function of proximal epigenetic modifications associated with activated gene expression using conserved transcription factor binding sites. Chromatin conformation capture studies have revolutionized our ability to discover physical chromatin contacts between sequences and even within an entire genome. Circular chromatin conformation capture coupled with next-generation sequencing (4C-seq), in particular, is designed to discover all possible physical chromatin interactions for a given sequence of interest (viewpoint), such as a target gene or a regulatory enhancer. Current 4C-seq strategies directly sequence from within the viewpoint but require numerous and diverse viewpoints to be simultaneously sequenced to avoid the technical challenges of uniform base calling (imaging) with next generation sequencing platforms. This volume of experiments may not be practical for many laboratories. Here, we report a modified approach to the 4C-seq protocol that incorporates both an additional restriction enzyme digest and qPCR-based amplification steps that are designed to facilitate a greater capture of diverse sequence reads and mitigate the potential for PCR bias, respectively. Our modified 4C method is amenable to the standard molecular biology lab for assessing chromatin architecture.

High-throughput Identification of Gene Regulatory Sequences Using Next-generation Sequencing of Circular Chromosome Conformation Capture 4C-seq

The identification of physical interactions between genes and regulatory elements is challenging but has been facilitated by chromosome conformation capture methods. This modification to the 4C-seq protocol mitigates PCR bias by minimizing over-amplification of PCR templates and maximizes the mappability of reads by incorporating an addition restriction enzyme digest step.

차세대 시퀀싱의 원형 염색체 구조를 사용 하 여 유전자 규제 시퀀스의 높은 처리량 Id (4 C-seq)를 캡처

The identification of regulatory elements for a given target gene poses a significant technical challenge owing to the variability in the positioning and ...

Identification of Enhancer-Promoter Contacts in Embryoid Bodies by Quantitative Chromosome Conformation Capture (4C)

During mammalian development, cell fates are determined through the establishment of regulatory networks that define the specificity, timing, and spatial patterns of gene expression. Embryoid bodies (EBs) derived from pluripotent stem cells have been a popular model to study the differentiation of the main three germ layers and to define regulatory circuits during cell fate specification. Although it is well-known that tissue-specific enhancers play an important role in these networks by interacting with promoters, assigning them to their relevant target genes still remains challenging. To make this possible, quantitative approaches are needed to study enhancer-promoter contacts and their dynamics during development. Here, we adapted a 4C method to define enhancers and their contacts with cognate promoters in the EB differentiation model. The method uses frequently cutting restriction enzymes, sonication, and a nested-ligation-mediated PCR protocol compatible with commercial DNA library preparation kits. Subsequently, the 4C libraries are subjected to high-throughput sequencing and analyzed bioinformatically, allowing detection and quantification of all sequences that have contacts with a chosen promoter. The resulting sequencing data can also be used to gain information about the dynamics of enhancer-promoter contacts during differentiation. The technique described for the EB differentiation model is easy to implement.

Identification of Enhancer-Promoter Contacts in Embryoid Bodies by Quantitative Chromosome Conformation Capture 4C

We report the application of quantitative chromosome conformation capture followed by high-throughput sequencing in embryoid bodies generated from embryonic stem cells. This technique allows to identify and quantitate the contacts between putative enhancers and promoter regions of a given gene during embryonic stem cell differentiation.

정량적 염색체 형성(4C)에 의한 배아체에서 증강-프로모터 접촉 식별

During mammalian development, cell fates are determined through the establishment of regulatory networks that define the specificity, timing, and spatial ...

Capturing Chromosome Conformation Across Length Scales

Chromosome conformation capture (3C) is used to detect three-dimensional chromatin interactions. Typically, chemical crosslinking with formaldehyde (FA) is used to fix chromatin interactions. Then, chromatin digestion with a restriction enzyme and subsequent religation of fragment ends converts three-dimensional (3D) proximity into unique ligation products. Finally, after reversal of crosslinks, protein removal, and DNA isolation, DNA is sheared and prepared for high-throughput sequencing. The frequency of proximity ligation of pairs of loci is a measure of the frequency of their colocalization in three-dimensional space in a cell population.
A sequenced Hi-C library provides genome-wide information on interaction frequencies between all pairs of loci. The resolution and precision of Hi-C relies on efficient crosslinking that maintains chromatin contacts and frequent and uniform fragmentation of the chromatin. This paper describes an improved in situ Hi-C protocol, Hi-C 3.0, that increases the efficiency of crosslinking by combining two crosslinkers (formaldehyde [FA] and disuccinimidyl glutarate [DSG]), followed by finer digestion using two restriction enzymes (DpnII and DdeI). Hi-C 3.0 is a single protocol for the accurate quantification of genome folding features at smaller scales such as loops and topologically associating domains (TADs), as well as features at larger nucleus-wide scales such as compartments.

Hi-C 3.0 is an improved Hi-C protocol that combines formaldehyde and disuccinimidyl glutarate crosslinkers with a cocktail of DpnII and DdeI restriction enzymes to increase the signal-to-noise ratio and the resolution of chromatin interaction detection.

길이 척도에 걸친 염색체 형태 포착

Chromosome conformation capture (3C) is used to detect three-dimensional chromatin interactions. Typically, chemical crosslinking with formaldehyde (FA) ...

Mapping Mammalian 3D Genome Interactions with Micro-C-XL

Three-dimensional (3D) chromosome organization is a major factor in genome regulation and cell-type specification. For example, cis-regulatory elements, known as enhancers, are thought to regulate the activity of distal promoters via interaction in 3D space. Genome-wide chromosome conformation capture (3C)-technologies, such as Hi-C, have transformed our understanding of how genomes are organized in cells. The current understanding of 3D genome organization is limited by the resolution with which the topological organization of chromosomes in 3D space can be resolved. Micro-C-XL measures chromosome folding with resolution at the level of the nucleosome, the basic unit of chromatin, by utilizing micrococcal nuclease (MNase) to fragment genomes during the chromosome conformation capture protocol. This results in an improved signal-to-noise ratio in the measurements, thus facilitating the better detection of insulation sites and chromosome loops compared to other genome-wide 3D technologies. A visually supported, detailed, step-by-step protocol for preparing high-quality Micro-C-XL samples from mammalian cells is presented in this article.

A protocol for mapping the three-dimensional genome organization with nucleosome resolution using the genome-wide chromosome conformation capture method Micro-C-XL is presented here.

Micro-C-XL을 사용한 포유류 3D 게놈 상호 작용 매핑

Three-dimensional (3D) chromosome organization is a major factor in genome regulation and cell-type specification. For example, cis-regulatory elements, ...

Hi-C: A Method to Study the Three-dimensional Architecture of Genomes.

The three-dimensional folding of chromosomes compartmentalizes the genome and and can bring distant functional elements, such as promoters and enhancers, into close spatial proximity 2-6. Deciphering the relationship between chromosome organization and genome activity will aid in understanding genomic processes, like transcription and replication. However, little is known about how chromosomes fold. Microscopy is unable to distinguish large numbers of loci simultaneously or at high resolution. To date, the detection of chromosomal interactions using chromosome conformation capture (3C) and its subsequent adaptations required the choice of a set of target loci, making genome-wide studies impossible 7-10.
We developed Hi-C, an extension of 3C that is capable of identifying long range interactions in an unbiased, genome-wide fashion. In Hi-C, cells are fixed with formaldehyde, causing interacting loci to be bound to one another by means of covalent DNA-protein cross-links. When the DNA is subsequently fragmented with a restriction enzyme, these loci remain linked. A biotinylated residue is incorporated as the 5' overhangs are filled in. Next, blunt-end ligation is performed under dilute conditions that favor ligation events between cross-linked DNA fragments. This results in a genome-wide library of ligation products, corresponding to pairs of fragments that were originally in close proximity to each other in the nucleus. Each ligation product is marked with biotin at the site of the junction. The library is sheared, and the junctions are pulled-down with streptavidin beads. The purified junctions can subsequently be analyzed using a high-throughput sequencer, resulting in a catalog of interacting fragments.
Direct analysis of the resulting contact matrix reveals numerous features of genomic organization, such as the presence of chromosome territories and the preferential association of small gene-rich chromosomes. Correlation analysis can be applied to the contact matrix, demonstrating that the human genome is segregated into two compartments: a less densely packed compartment containing open, accessible, and active chromatin and a more dense compartment containing closed, inaccessible, and inactive chromatin regions. Finally, ensemble analysis of the contact matrix, coupled with theoretical derivations and computational simulations, revealed that at the megabase scale Hi-C reveals features consistent with a fractal globule conformation.

The Hi-C method allows unbiased, genome-wide identification of chromatin interactions (1). Hi-C couples proximity ligation and massively parallel sequencing. The resulting data can be used to study genomic architecture at multiple scales: initial results identified features such as chromosome territories, segregation of open and closed chromatin, and chromatin structure at the megabase scale.

안녕하세요 - C : Genomes의 3 차원 구조를 공부하는 방법.

The three-dimensional folding of chromosomes compartmentalizes the genome and and can bring distant functional elements, such as promoters and enhancers, ...

생물학

Deciphering High-Resolution 3D Chromatin Organization via Capture Hi-C

The spatial organization of the genome contributes to its function and regulation in many contexts, including transcription, replication, recombination, and repair. Understanding the exact causality between genome topology and function is therefore crucial and increasingly the subject of intensive research. Chromosome conformation capture technologies (3C) allow inferring the 3D structure of chromatin by measuring the frequency of interactions between any region of the genome. Here we describe a fast and simple protocol to perform Capture Hi-C, a 3C-based target enrichment method that characterizes the allele-specific 3D organization of megabased-sized genomic targets at high-resolution. In Capture Hi-C, target regions are captured by an array of biotinylated probes before downstream high-throughput sequencing. Thus, higher resolution and allele-specificity are achieved while improving the time-effectiveness and affordability of the technology. To demonstrate its strengths, the Capture Hi-C protocol was applied to the mouse X-inactivation center (Xic), the master regulatory locus of X-chromosome inactivation (XCI).