저자 아무 승인 있다.

모든 동물 실험 독일 동물 보호 법률 (TierSchG)에 따라 수행 하 고 (낮은 작센 주 사무소 소비자 보호 및 식품 안전, 프로토콜에 대 한 지역 동물 복지 위원회에 의해 승인 되었다 TSA 14/1556)입니다. 이 모델에 대 한 적합 한 마우스의 최소 무게는 25 이다 g.
 1. 수술 전 준비 참고: 모든 프로시저 압력가 악기와 함께 깨끗 한, 비 살 균 조건 하에서 수행 됩니다.
<ol><li>장소 50-60 8 cm 긴 프로필 렌 중공 섬유 튜브에 병렬로 하 고 양쪽 모두 T 어댑터와 연결. 접착제와 속이 빈 섬유 및 T-어댑터의 외부 분기 사이 공간을 채우기.
	<li>허용 적어도 24 h 강화를 접착제에 대 한 <ol>. 표준 톰을 사용 하 여 T 어댑터에서 밖으로 확장 하는 빈 섬유를 자르고 연결 사이트를 실리콘 튜브를 당겨.</li>
	</ol></li> <li>2 Fr 폴리우레탄 정 (26 G branule)에서 27 G 금속 바늘을 삽입. 외과 블레이드를 사용 하 고 마이크로-가 위 현미경 (8-12 배 확대)을 3 ~ 4 fenestrations 약 0.15 cm의 각 보장 정의 원심 세 번째 내 최적의 정 맥 반환 흐름.
	<li>제거 완료 되 면 와이어 <ol>입니다. 무뚝뚝한 절 개 및 구조의 철회에 대 한 면봉을 사용 합니다. 거 즈 면봉 (5 x 5 cm 2)를 사용 하 여 조직의 탈수를 방지 하기 위해 초과 하는 액체를 흡수.</li>
	</ol></li> <li>못쓰게 볼륨을 준비. 완성 하기 위해 헤 파 린 못쓰게 솔루션 및 2.5 %v / v NaHCO 3 버퍼링의 8.4% 솔루션의 mL 당 30 IU를 추가 합니다. 사용 될 때까지 4 ° C에서이 솔루션을 저장.</li>
	<li>채우기 CPB 회로 (즉,, 펌프, 공기 사냥꾼, 튜브와 두 뉼) 정 맥 캐 뉼 러를 통해 850 µ L 못쓰게 솔루션. 일단, CPB 순환 동물 cannulation에 대 한 준비가 될 때까지 유지.</li>
</ol> 2. 동물 마 취 마 취 관리, 동물 유도 챔버 미만 2.5%를에 장소 <li><ol>v/v isoflurane/산소 혼합물. 페달 철수 반사, 꼬리 핀치 반사와 눈 깜박임 반사를 평가 하 여 적절 한 마 취를 확인 합니다. 눈 건조를 피하기 위해 수의 눈 연 고를 적용.</li>
	<li>온도 조절 기능을 가진 온난 패드에 동물을 배치합니다. 신체 온도 rectally 삽입 및 데이터 수집 시스템에 연결 된 프로브 측정.</li>
	<li>전체 마 취를 달성 후 동물 orotracheally 20 G 플라스틱 braunule를 사용 하 여, 구두로 삽입 및 시각적인 통제 기관에 밀어 넣어야. 기계 환기 마우스 통풍 기에 연결 하는 isoflurane 기화 기를 사용 하 여 시작 합니다. 동물 체중에 따라 조정 환기 250-350 µ L의 해 일 볼륨 이루어집니다.</li>
	<li>보장 완전 한 진통, 5 mg/kg 동물 bodyweight carprofen 피하 주사. 1.3-2.5% 산소에서 사이 isoflurane 농도 유지 하는 것이 좋습니다. Isoflurane 농도 절차의 단계에 따라 수동으로 조정 될 수 있습니다.</li>
</ol> 3. 과적 <ol><li>전체 마 취 및 삽 관 법, 달성 후 날카로운가 위를 잘 목에 중간 피부 절 개를 수행, 무딘 패션에서 근육을 분리 하 고 바로 경 정 맥과 왼쪽된 경 동맥을 노출. 준비 하는 동안 최소한의 혈액 손실 되도록 수의학 coagulator 양극 겸 자에 연결을 사용 하 여 작은 혈관 응고.</li>
	<li>Jugular 혈관의 준비, 후 cranially 8-0 비단 봉합을 사용 하 여 그것의 분기를 왼쪽된 일반적인 경 동맥의 원심 세그먼트 선.</li>
	<li>연결 동맥, 경 동맥에 정 맥의 끝 삽입의 인접 세그먼트에서 실리콘 커넥터 (0.5 m m ID, 1 m m OD), 장소 8-0 비단 봉합 슬립을 사용 하 여 동맥 유입 튜브를 27 G 정의 원심 끝 매듭.</li>
	<li>이죠 proximally 대동맥 아치에 3-4 m m 되도록 사전 정 팁을 정 팁의 정확한 위치, 후. 8-0 실크 매듭으로 확보 하 여 정 팁 수정.</li>
	<li>사용 microsurgical 집게와가 위, 무딘, 날카로운 해 부를 수행, 바로 경 정 맥 쇄 골, 가까이 sternocleidomastoid 근육을 옆으로 조직의 무딘 준비 하 여 노출과 선단부와 8-0 8 0 실크 매듭을 배치 근 위 끝을에서 루프.</li>
	<li>경 정 맥의 선단부의 결 찰 후 정 맥 정 맥의 끝에 바로 경 정 맥 및 오른쪽 아 트리 움 쪽으로 진행 하 고 실크 매듭을 사용 하 여 보안. 최적의 정 맥 반환, 그것은 우 심 실에 정 맥 팁을 미리 해야 할 수 있습니다.</li>
	<li>올바른 정 위치 달성 되 면 경 정 맥 혈관에 직접 주사를 통해 동물 bodyweight의 그램 당 덤플링의 2.5 IU를 추가 하 여 조직의 heparinization 수행.</li>
	<li>실시간 침입 압력 모니터링을 위한 cannulate 왼쪽된 대 퇴 동맥. 사 타 구니 영역을 노출 하 고 부드럽게 대 퇴 정 맥, 대 퇴 신경 25 X 배율 아래에서 일반적인 대 퇴 동맥을 분리.
	<li>Ligate 대 퇴 동맥의 말 초 부분 <ol>. 일시적으로 슬립 매듭 인접 부분을 가리고 하 고 마이크로 집게를 사용 하 여 앞쪽 벽에 작은 절 개를 하 게.</li>
		<li>이후에, 1 Fr 폴리우레탄 정 대 퇴 동맥으로 삽입 하 고 10-0 봉합 한 실크로 확보. 이 정 맥은 혈액 가스 분석을 위한 혈액 샘플을 추출 하는 데 사용 됩니다.</li>
	</ol></li> <li>펌프 하 여 심폐 바이패스 동맥 및 정 맥 뉼의 성공적인 배치 후 시작. 삽 관 법에서 CPB의 시작 시간은 약 45 분 펌프 속도 증가 시켜 조직의 압력 측정, 및 전체 (4-6 mL/min)을 2 분 이내 증가 혈액의 흐름에 따라 0.5 mL/min의 유량을 사용 하 여 시작.</li>
	<li>전체 모니터링은 위에서 시작 하 고 꼬리 방향으로 5mm가 날카로운가 위를 사용 하 여 상위 sternotomy 수행. Sternal 가장자리 출혈 방지를 즉시 응으십시오 대동맥 아치 두개골 방향에 오른쪽 경 동맥을 당겨 노출.</li>
	<li>최적 제어, 원주 무료 클램핑을 촉진 하기 위하여 주변 조직과 thymus에서 대동맥 아치. 오름차순 대동맥 주위 8-0 실크 루프를 배치 합니다. Cardioplegia에 대 한 교차 클램프를, 당겨 더 나은 노출에 두개골 방향에 실크 루프 오름차순 대동맥.</li>
</ol> 4. 심폐 바이패스 및 혈액 가스 분석 <ol><li>혈액 가스 분석 (BGA)를 사용 하 여 유리 모 세관 튜브 대 퇴 동맥 카 테 터를 통해 60-90 µ L 동맥 혈액을 수집.
	<ol><li>실리콘 튜브에 작은 클램프를 사용 하 고 카 테 터에서 튜브를 분리. 모 세관 튜브의 제어 충전 수 있도록 클램프에 천천히 압력 해제.</li>
		<li>는 실리콘 튜브 카 테 터를 다시 연결합니다. 다음 시간에 측정을 위한 혈액 가스 분석기에 모 세관 튜브를 삽입: 환기 (BGA1)와 형사 요의 개시 후 10 분 25 분 CPB의 및 호흡기 체포 (BGA2)의 15 분 후 CPB의 및 호흡기 체포 (BGA3)의 30 분 40 분 후 CPB의 55 분, 45 분의 호흡, 그리고 심장 마비 (BGA4)의 20 분 후</li></ol></li> <li>안정적인 CPB 흐름과에서 환기를 중지 하 여 테 호흡기 체포.</li>
	<li>환기의 종료 후 28 º C로 온난 패드를 설정 하 고 몸에 붙이기도 차가운 식 염 수에 젖은 거 즈를 사용 하 여 호흡 검거의 첫번째 20 분 내의 온도 28 º C에 동물을 냉각 시작.</li>
	<li>일단 28 º C의 온도 달성, 그리고 호흡기 체포의 30 분의 총 후에, cardioplegia 시작 하 CPB 회로에 7.45 %KCl 용액의 0.3 mL 관리.</li>
	<li>교차 하는 대동맥의 클램핑, 이전 배치 실크 루프 (단계 3.10) 더 나은 노출 위한 두개골 방향으로 당겨 및 대동맥의 상승 부분에 마이크로 serrefine 클램프를 배치.</li>
	<li>총 60 분 호흡 마비 및 심장 마비의 30 분을 수행합니다. 심장의 reperfusion 시작 오름차순 대동맥에서 마이크로 serrefine 클램프를 제거 합니다. 동시에, 다시 환기 하 고 따뜻한 동물 37 ° c.</li>
	<li>Reperfusion 완료 하 고 동물에는 normothermia에 도달 했습니다 CPB 펌프를 해제 하 여 종료 하 고 계속 20 분에 대 한 생리 적 측정 (예: 체온, 심전도, 및 침략 혈압) 모니터링</li>
	<li>실험의 끝에, exsanguinate (5 %isoflurane) 완전 취 동물 및 혈액 및 추가 분석 14 장기 수집.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Edmunds, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiopulmonary+Bypass+after+50+Years.">Cardiopulmonary Bypass after 50 Years.</a> N. Engl. J. Med. 351 (16), 1601-1603 (2004).</li><li>Goto, T., Maekawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebral+dysfunction+after+coronary+artery+bypass+surgery.">Cerebral dysfunction after coronary artery bypass surgery.</a> J. Anesth. 28 (2), 242-248 (2014).</li><li>Uysal, S., Reich, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurocognitive+outcomes+of+cardiac+surgery.">Neurocognitive outcomes of cardiac surgery.</a> J. Cardiothorac. Vasc. Anesth. 27 (5), 958-971 (2013).</li><li>Ballaux, P. K., Gourlay, T., Ratnatunga, C. P., Taylor, K. 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저자는 공개 없다.

우리는 완전 한 기능 임상 관련 모델 CPB의 마우스를 개발 했습니다. 쥐 데 심혈 관 질환의 30 개 이상의 긴장, 우리의 모델 CPB에 관련 된 새로운 미래의 프로토콜의 개발을 위한 출발점이 될 수 있습니다. 또한, 마우스 관련 시 약 및 녹아웃 아웃 마우스의 과다 때문이 모델 있지만 대체할 수 없습니다만 CPB의 현재 쥐 모델 CPB 관련 장기 손상에 관련 된 분자 메커니즘의 해 부를 촉진 한다. 날짜 하려면, CPB 하지 마우스 마이크로 oxygenator 데 충분히 작은 못쓰게 볼륨의 개발을 포함 한 기술적인 도전 뿐만 아니라 cannulation 기법, microsurgical 문제 때문에 적용 되었습니다. 약 90도 경험이 풍부한 microsurgeon의 근 면 한 일 안정적인 모델을 달성 하기 위해 필요 했다. 다른 롤러 펌프, 튜빙, 그리고 다양 한 저수지 CPB 기계의 이상 15 프로토타입은 테스트 하 고 지속적으로 개선 했다. 10 이상 버전 다른 oxygenators의 내장 되었고 현재 결과 달성 하기 위해 테스트. 우리의 새로운 모델 extracorporal 순환의 기존 쥐 모델 설치의 완전 한 재설계가 필요합니다. 첫째, 우리는 가장 작은 가능한 마이크로 oxygenator 허용 못쓰게 볼륨 내장 &#60; 0.3 mL. oxygenator 혈액 빈 섬유를 못쓰게 볼륨에 있는 뜻깊은 감소에 대 한 허용 그들 사이 흐르는 거꾸로 시스템을 사용 하 여 재설계 되었다.
우리의 모델의 개발 하는 동안 우리는 몇 가지 기술적인 문제가 발생 했습니다. 우리의 첫 번째 프로토타입 회로 최대 6 mL의 대형 못쓰게 볼륨 필요합니다. 이 헤모글로빈 값 4 g/dl와 보통 값 약 15의 극단적인 hemodilution에서 결과. 좋은 산소를 보여주는 BGA에도 불구 하 고 hypoxemia 절차 동안 급속 한 심장 마비로 이어지는 관찰 합니다. 적절 한 조직의 산소를 달성 하기 위해 보통 값은 25 이상 이어야 합니다. 튜브 크기 조정, 롤러 펌프의 디자인 변경, 소형된 공기 사냥꾼 생산 최적화 하 여 정 맥 및 동맥 뉼, 못쓰게 볼륨 크게 감소 했다 &#60; 0.9 mL.
적절 한 관류에도 불구 하 고 4-6 mL/min, 제공 하는 충분 한 정 맥 역류의 흐름은 필수적입니다. 오른쪽 아 트리 움 또는, 더 나은, 우 심 실에서 정 맥 정 맥의 배치는이 문제를 완화 한다. 관류 흐름 증가 정 맥 캐 뉼 러 또는 액체와 조직 부 종의 overperfusion 관련 손실의 어느 빠는 이끌어 낸다. 빠른 신진 대사를가지고, 마우스에 CO2 보존 하지 않으려면 우리는 600 mL/min의 흐름2 80 %FiO는 oxygenator 통해 산소 공급을 유지는 조직의 산소에 대 한 최적의 발견.
하나 발생할 수 있는 또 다른 문제는 이러한 반복 볼륨 대체 모든 30-40 분 interstitium 혈관 내 볼륨의 점진적 손실 이다. 하지만 hydroxyethyl 전 분 (HES)을 포함 하는 전해질 솔루션의 hyperosmolarity 방지 혈관 내 볼륨 감소, 독점적으로 사용 될 때 그것의 높은 점도 증가 일으키는 거 대 한 조직의 압력에 CPB 동안. oxygenator 동맥 정 맥에 인접 배관에 누설을이 끈다. 따라서, hyperosmolarity 및 적당 한 점도 사이의 균형을 달성 하기 위해 HES 포함 된 솔루션의 1:1 혼합물 및 다른 isotonic 균형된 액체 최적의 것 발견 되었다.
롤러 펌프의 운전 전자는 작은 직경 튜브 내에서 충분 한 흐름을 따라서 허용 회전 속도 높이기 위해 수정 되었습니다. 롤러 펌프에 의해 생성 하는 강한 흡입 아래 정 맥 시스템에 미세한 기포를 일반적입니다. 0.15 mL 아래 못쓰게 볼륨 소형된 공기 사냥꾼의이 문제를 해결합니다. 여분의 볼륨의 0.1 mL를 추가 하 고 정 맥 정 맥의 정확한 위치를 확인 외 형사 요 흐름을 줄이고 공기 색 전 증 회로에서 제거.
테스트 하려면 소설 심폐 바이패스 모델의 기술적 타당성, 여러 혈액 samplings가 필요 합니다. 혈액의 이상 0.2 mL을 제거 하는 것은 일반적으로 건강 한 마우스에 대 한 치명적인입니다. 산소와 hemodynamic 안정성을 보장 하기 위해서 우리의 실험에서 혈액 samplings 양의이 값 보다 훨씬 이었고 거의 0.9 mL 실험의 끝에 도달. 그럼에도 불구 하 고, hemodynamic 매개 변수 및 안정 되어 있는 산소는 혈액 값의 지속적인 감소에도 불구 하 고 관찰 했다. 따라서, 우리의 초기 타당성 모델은 주로 급성, 비 생존 프로토콜로 설계 되었습니다. 우리는 지금 필요성을 함으로써, 적은 혈액 샘플링을 할 것 이다 최소한 침략 적 생존 모델 개발.

심장과 폐 우회 (CPB)의 병원에 도입, 이후 그것은 심장 수술1에 필수적인 역할을 담당해 왔습니다. 현대 심장 수술, 장기 CPB 시간 광범위 한 대동맥 개조 및 결합 된 절차를 수행 하기 위해 필수적입니다. 기술의 진보 엄청난 되었습니다, extracorporal 순환의 사용은 관련 내부-와 수술 후 조직 및 지역 기관 손상2,3.
대형 동물 모델 생리 적 프로세스4,5에 CPB의 역할을 조사 하기 위해 개발 되었습니다. 이러한 모델은 CPB의 일부에 대 한 통찰력 관련 합병증 제공, 비록 그들은 매우 비용이 많이 드는 고 분자 도구 (예, 항 체)는 매우 제한 된. 작은 동물에 더 많은 비용 효율적인 대안 개발 되었습니다. 그들의 개발 이후 여러 연구 쥐와 토끼5,6,7,,89CPB 모델을 최적화 하기 위해 실시 되었습니다. 병 태 생리 질병 프로세스;의 측정을 위한 좋은 기초를 제공 하는 이러한 모델 그러나, 그들은 아직도 조사 하는 세포와 체액 성 면역학 관련 항 체 및 시 약의 부족 때문에 충분 하지 않습니다. 이 연구의이 분야에서 그들의 역할을 손상 한다.
우리는 최근 CPB의 마우스 모델을 개발 했습니다. 때문에 다양 한 마우스 관련 시 약 및 유전자 변형 쥐, 마우스 모델은 일반적 생리 적, 분자, 그리고 면역학 연구10,11에 대 한 선택의 모델입니다. 따라서, 우리의 모델 임상 관련 질병12,13사용할 수 있는 많은 쥐 종자는 다양 한 comorbidities 관하여 CPB의 연구를 촉진 한다. 따라서,이 종이 자세하게에서 설명 합니다, 쥐에 CPB를 수행 하는 방법을. 깊은 호흡과 순환 상 검거 후 산소와 hemodynamic 매개 변수는 밀접 하 게 모니터링 됩니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1191">
	<tbody>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:297px;">Sterofundin</td>
			<td style="width:279px;">B.Braun Petzold GmbH</td>
			<td style="width:181px;">PZN:8609189</td>
			<td style="width:435px;">priming volume, 1:1 with Tetraspan</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Tetraspan 6% HES Solution</td>
			<td style="width:279px;">B. Braun Melsungen AG</td>
			<td style="width:181px;">PZN: 05565416</td>
			<td>priming volume, 1:1 with Sterofundin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Heparin Natrium 25.000</td>
			<td style="width:279px;">Ratiopharm GmbH</td>
			<td style="width:181px;">PZN: 3029843</td>
			<td>2.5 IU per ml of priming solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">NaHCO3 8,4% Solution</td>
			<td style="width:279px;">B. Braun Melsungen AG</td>
			<td style="width:181px;">PZN: 1579775</td>
			<td>3% in priming solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">KCL 7,45 % Solution</td>
			<td style="width:279px;">B. Braun Melsungen AG</td>
			<td style="width:181px;">PZN: 2418577</td>
			<td>0.1 ml for cardioplegia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Carprofen</td>
			<td style="width:279px;">Zoetis Inc., USA</td>
			<td>PZN:00289615 08859153</td>
			<td>5 mg/kg/BW</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">1 Fr PU Catheter</td>
			<td style="width:279px;">Instechlabs INC., USA</td>
			<td style="width:181px;">C10PU-MCA1301</td>
			<td>carotid artery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">2 Fr PU Catheter</td>
			<td style="width:279px;">Instechlabs INC., USA</td>
			<td style="width:181px;">C20PU-MJV1302</td>
			<td>jugular vein</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Vasofix Safety catheter 20G</td>
			<td style="width:279px;">B.Braun Medical</td>
			<td style="width:181px;">4268113S-01</td>
			<td>orotracheal intubation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">8-0 Silk suture braided</td>
			<td>Ashaway Line &#38; Twine Mfg. Co., USA</td>
			<td style="width:181px;">75290</td>
			<td>ligature</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:279px;">Piramal Critical Care Deutschland GmbH</td>
			<td style="width:181px;">PZN:9714675</td>
			<td>narcosis</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CLINITUBES blood capillaries</td>
			<td style="width:279px;">Radiomed GmbH</td>
			<td style="width:181px;">51750132</td>
			<td>blood sampling 60 - 95 microliter</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Spring Scissors - 6mm Blades</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">15020-15</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Spring Scissors - 2mm Blades</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">15000-03</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Halsted-Mosquito Hemostat</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">13009-12</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Dumont #55 Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">11295-51</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Castroviejo Micro Needle Holder - 9cm</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">12060-02</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Micro Serrefines</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>18555-01</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Bulldog Serrefine</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td style="width:181px;">18050-28</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:297px;">MiniVent Ventilator for Mice (Model 845)</td>
			<td style="width:279px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:181px;">73-0044</td>
			<td>mechanical ventilation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Isoflurane Vaporizer Drager 19.1</td>
			<td style="width:279px;">Dr&#228;gerwerk AG &#38; Co. KGaA</td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>anesthesia 1.3 -2.5%</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PowerLab data acquisition device 4/35</td>
			<td>ADInstruments Ltd, New Zealand</td>
			<td style="width:181px;">PL3504</td>
			<td>invasive pressure, ECG, temperature</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">ABL 800 Flex</td>
			<td>Radiometer GmbH</td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>blood gas analysis</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">NMRI mice</td>
			<td style="width:279px;">Charles River Laboratories</td>
			<td style="width:181px;">Crl:NMRI(Han)</td>
			<td>male, 30-35 g, 12 weeks old, housed at least 1 week before the experiment</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cardiopulmonary bypass in a mouse model: a novel approach

심장 중재 동안 장기간된 심폐 바이패스 본질적인 되면서 절차 최적화에 대 한 고 장시간된 extracorporal 순환 기관 피해를 최소화 하기 위한 임상 수요 증가 발생 합니다. 이 문서의 목표 마우스에 심폐 바이패스의 완전 한 기능 및 임상 관련 모델을 설명 했다. 우리는 장치를 설계, 관류 회로 최적화와 microsurgical 기술에 보고합니다. 이 모델은 여러 피 도면에 대 한 필요성으로 인해 생존와 호환 되지 않습니다는 급성 모델. 이 모델 마우스 (예를 들어, 마커, 녹아웃, 등)에 사용할 수 있는 도구의 범위 때문에 장기 손상 및 다른 관련 심폐 바이패스의 효과의 분자 메커니즘에 조사를 촉진 한다 comorbidities입니다.

이 프로토콜에서는 관류 회로, 수술 절차, 및 마우스의 CPB 동안 생리 적인 매개 변수 모니터링. 적절 하 게 숙련 된 microsurgeon에 의해 수행 하면 결과 지속적으로 그리고 reproducibly 얻을 수 있습니다.
적절 한 조직 관류를 유지 하려면 평균 동맥 압력 및 여분의 볼륨의 추가 형사 요 혈을 조정 하 여 40과 60 mmHg 사이 항상 유지 됩니다. 동물, 볼륨 상태와 체온의 무게에 따라 extracorporal 혈 실험 기간 동안 볼륨 손실의 보정 회로를 못쓰게 솔루션의 0.1 mL의 추가 하 여 이루어집니다 2.3-6.5 mL/분 사이 유지 동안 형사 요. 조직의 pH 안정화 NaHCO2의 8.4 mmol/L을 추가 하 여 이루어집니다. 모든 유체는 공기 색전술의 위험을 줄이기 위해 공기 트래핑 저수지를 통해 관리 됩니다.
생리 적 매개 변수는 4 다른 시간 점 (그림 1)에서 BGA를 사용 하 여 평가 했다 고 대표 성공적인 CPB 절차에서 측정 표 1에 표시 됩니다.
가 측정 회로 (표 1)을 못쓰게 볼륨의 추가 때문에 hemodilution를 표시합니다. 그러나 없었다,, 수혈에 대 한 필요가 없습니다 헤모글로빈 수준 실험 (표 1)의 과정 동안 충분 한 수준에서 유지 되었다. 조직의 동맥 pO2, 산소 포화, pCO2 만료 값 마이크로 oxygenator (표 1)의 우수한 기능을 검증. pCO2 만료 FiO2 0.8에서 산소/공기 혼합물을 사용 하 여 최적 이었다.
BGA는 또한 CPB 동안 동물의 대사 상태에 대 한 통찰력을 제공합니다. 환기와 CPB의 개시, 후 동맥 pH 상승 했다 (표 1). 이 효과 종종 호흡기 체포 시작 되 면 감소 됩니다. 실험 과정에서 pH에 점진적 감소를 보였다 (표 1). 연속 버퍼링 동맥 pH와 젖 산 증에 대 한 보상 필요 했다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56017/56017fig1.jpg"> 
그림 1 : 실험 일정. 삽 관 법, 환기, 호흡 마비, CPB, 심장 마비, reperfusion, 냉각/다시-온난화, 및 BGA 샘플링 포인트의 타이밍. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56017/56017fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="535">
	<colgroup>
		<col>
		<col span="4">
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:183px;"></td>
			<td style="width:88px;">BGA1</td>
			<td style="width:88px;">BGA2</td>
			<td style="width:88px;">BGA3</td>
			<td style="width:88px;">BGA4</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">헤모글로빈 (g/dl)</td>
			<td>8.9</td>
			<td>6.8</td>
			<td>6.8</td>
			<td>5.6</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">보통</td>
			<td>27.5</td>
			<td>21.2</td>
			<td>21.3</td>
			<td>17.7</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pO2 (mmHg)</td>
			<td>508</td>
			<td>506</td>
			<td>504</td>
			<td>271</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pCO2 (mmHg)</td>
			<td>24.5</td>
			<td>20.3</td>
			<td>20</td>
			<td>36.4</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sO2 (%)</td>
			<td>100</td>
			<td>100</td>
			<td>100</td>
			<td>100</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pH</td>
			<td>7.56</td>
			<td>7.65</td>
			<td>7.36</td>
			<td>7.32</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">젖 (mmol/L)</td>
			<td>2.6</td>
			<td>3.1</td>
			<td>3</td>
			<td>6.9</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
표 1: 마우스에 성공적인 CPB에서 대표 BGA 결과. BGA는 실험의 과정을 통해 4 개의 다른 시간 지점에서 촬영.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56017/56017fig2.jpg"> 
그림 2 : 마우스에서 CPB 회로의 회로도. 정 맥 캐 뉼 러 (파란색)에 배치 됩니다 통해 열 등 한 베 나 정 맥 바로 경 정 맥 및 동맥 정 맥에는 대동맥을 통해 왼쪽된 경 동맥 (빨간색). 산소를 혈액은 왼쪽된 경 동맥에 공기 사냥꾼 저수지를 통해 양수 된다. 온도 rectally, 측정와 압력은 대 퇴 동맥을 통해 모니터링 ECG 전극 피하 배치 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56017/56017fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

이 문서에서는 마우스에 심폐 바이패스를 수행 하는 방법을 설명 합니다. 이 새로운 모델은 장기 손상에 관여 하는 분자 메커니즘의 조사를 촉진할 것 이다.

마우스 모델에서 심폐 바이패스: 새로운 접근

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

cardiopulmonary-bypass-in-a-mouse-model-a-novel-approach

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

10.8K 조회수.  Hannover Medical School. 이 문서에서는 마우스에 심폐 바이패스를 수행 하는 방법을 설명 합니다. 이 새로운 모델은 장기 손상에 관여 하는 분자 메커니즘의 조사를 촉진할 것 이다.

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Vascular Occlusion Training for Inclusion Body Myositis: A Novel Therapeutic Approach

Inclusion body myositis (IBM) is a rare idiopathic inflammatory myopathy. It is known to produces remarkable muscle weakness and to greatly compromise function and quality of life. Moreover, clinical practice suggests that, unlike other inflammatory myopathies, the majority of IBM patients are not responsive to treatment with immunosuppressive or immunomodulatory drugs to counteract disease progression1. Additionally, conventional resistance training programs have been proven ineffective in restoring muscle function and muscle mass in these patients2,3. Nevertheless, we have recently observed that restricting muscle blood flow using tourniquet cuffs in association with moderate intensity resistance training in an IBM patient produced a significant gain in muscle mass and function, along with substantial benefits in quality of life4. Thus, a new non-pharmacological approach for IBM patients has been proposed. Herein, we describe the details of a proposed protocol for vascular occlusion associated with a resistance training program for this population.

The present article presents the details pertaining to the application of resistance training associated to vascular occlusion in IBM patients.

포함 바디 Myositis에 대한 혈관의 폐색 교육 : 소설 치료 접근

Inclusion body myositis (IBM) is a rare idiopathic inflammatory myopathy. It is known to produces remarkable muscle weakness and to greatly compromise ...

연구

의학

Bronchial Thermoplasty:  A Novel Therapeutic Approach to Severe Asthma

Bronchial thermoplasty is a non-drug procedure for severe persistent asthma that delivers thermal energy to the airway wall in a precisely controlled manner to reduce excessive airway smooth muscle. Reducing airway smooth muscle decreases the ability of the airways to constrict, thereby reducing the frequency of asthma attacks. Bronchial thermoplasty is delivered by the Alair System and is performed in three outpatient procedure visits, each scheduled approximately three weeks apart. The first procedure treats the airways of the right lower lobe, the second treats the airways of the left lower lobe and the third and final procedure treats the airways in both upper lobes. After all three procedures are performed the bronchial thermoplasty treatment is complete.
Bronchial thermoplasty is performed during bronchoscopy with the patient under moderate sedation. All accessible airways distal to the mainstem bronchi between 3 and 10 mm in diameter, with the exception of the right middle lobe, are treated under bronchoscopic visualization. Contiguous and non-overlapping activations of the device are used, moving from distal to proximal along the length of the airway, and systematically from airway to airway as described previously. Although conceptually straightforward, the actual execution of bronchial thermoplasty is quite intricate and procedural duration for the treatment of a single lobe is often substantially longer than encountered during routine bronchoscopy. As such, bronchial thermoplasty should be considered a complex interventional bronchoscopy and is intended for the experienced bronchoscopist. Optimal patient management is critical in any such complex and longer duration bronchoscopic procedure. This article discusses the importance of careful patient selection, patient preparation, patient management, procedure duration, postoperative care and follow-up to ensure that bronchial thermoplasty is performed safely.
Bronchial thermoplasty is expected to complement asthma maintenance medications by providing long-lasting asthma control and improving asthma-related quality of life of patients with severe asthma. In addition, bronchial thermoplasty has been demonstrated to reduce severe exacerbations (asthma attacks) emergency rooms visits for respiratory symptoms, and time lost from work, school and other daily activities due to asthma.

Bronchial thermoplasty is a non-drug procedure for severe persistent asthma that delivers thermal energy to the airway wall in a precisely controlled manner to reduce excessive airway smooth muscle. Reducing airway smooth muscle decreases the ability of the airways to constrict, thereby reducing the frequency of asthma attacks.

기관지 Thermoplasty : 심한 천식에 소설 치료 접근

Bronchial thermoplasty is a non-drug procedure for severe persistent asthma that delivers thermal energy to the airway wall in a precisely controlled ...

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient management strategies. Orthotopic mouse models of oral cancer have been developed to facilitate the study of factors that impact invasion and serve as model system for evaluating anti-tumor therapeutics. In these systems, visualization of disseminated tumor cells within oral cavity tissues has typically been conducted by either conventional histology or with in vivo bioluminescent methods. A primary drawback of these techniques is the inherent inability to accurately visualize and quantify early tumor cell invasion arising from the primary site in three dimensions. Here we describe a protocol that combines an established model for squamous cell carcinoma of the tongue (SCOT) with two-photon imaging to allow multi-vectorial visualization of lingual tumor spread. The OSC-19 head and neck tumor cell line was stably engineered to express the F-actin binding peptide LifeAct fused to the mCherry fluorescent protein (LifeAct-mCherry). Fox1nu/nu mice injected with these cells reliably form tumors that allow the tongue to be visualized by ex-vivo application of two-photon microscopy. This technique allows for the orthotopic visualization of the tumor mass and locally invading cells in excised tongues without disruption of the regional tumor microenvironment. In addition, this system allows for the quantification of tumor cell invasion by calculating distances that invaded cells move from the primary tumor site. Overall this procedure provides an enhanced model system for analyzing factors that contribute to SCOT invasion and therapeutic treatments tailored to prevent local invasion and distant metastatic spread. This method also has the potential to be ultimately combined with other imaging modalities in an in vivo setting.

A comprehensive overview of the techniques involved in generating a mouse model of oral cancer and quantitative monitoring of tumor invasion within the tongue through multi-photon microscopy of labeled cells is presented. This system can serve as a useful platform for the molecular assessment and drug efficacy of anti-invasive compounds.

구강 편평 세포 암종의 Orthotopic 마우스 모델에서 종양 세포 침략의 다중 광자 이미징

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normothermic 심장 마비와 심폐 소생술의 : 국소 빈혈 - Reperfusion 상해의 마우스 모델

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Currently, the most effective therapy for the treatment of morbid obesity to induce significant and maintained body weight loss with a proven mortality benefit is bariatric surgery1,2. Consequently, there has been a steady rise in the number of bariatric operations done worldwide in recent years with the Roux-en-Y gastric bypass (gastric bypass) being the most commonly performed operation3. Against this background, it is important to understand the physiological mechanisms by which gastric bypass induces and maintains body weight loss. These mechanisms are yet not fully understood, but may include reduced hunger and increased satiation4,5, increased energy expenditure6,7, altered preference for food high in fat and sugar8,9, altered salt and water handling of the kidney10 as well as alterations in gut microbiota11. Such changes seen after gastric bypass may at least partly stem from how the surgery alters the hormonal milieu because gastric bypass increases the postprandial release of peptide-YY (PYY) and glucagon-like-peptide-1 (GLP-1), hormones that are released by the gut in the presence of nutrients and that reduce eating12.
During the last two decades numerous studies using rats have been carried out to further investigate physiological changes after gastric bypass. The gastric bypass rat model has proven to be a valuable experimental tool not least as it closely mimics the time profile and magnitude of human weight loss, but also allows researchers to control and manipulate critical anatomic and physiologic factors including the use of appropriate controls. Consequently, there is a wide array of rat gastric bypass models available in the literature reviewed elsewhere in more detail 13-15. The description of the exact surgical technique of these models varies widely and differs e.g. in terms of pouch size, limb lengths, and the preservation of the vagal nerve. If reported, mortality rates seem to range from 0 to 35%15. Furthermore, surgery has been carried out almost exclusively in male rats of different strains and ages. Pre- and postoperative diets also varied significantly.
Technical and experimental variations in published gastric bypass rat models complicate the comparison and identification of potential physiological mechanisms involved in gastric bypass. There is no clear evidence that any of these models is superior, but there is an emerging need for standardization of the procedure to achieve consistent and comparable data. This article therefore aims to summarize and discuss technical and experimental details of our previously validated and published gastric bypass rat model.

Numerous studies using gastric bypass rat models have been recently conducted to uncover the underlying physiological mechanisms of Roux-en-Y gastric bypass operations. This article aims to demonstrate and discuss the technical and experimental details of our published gastric bypass rat model to understand advantages and limitations of this experimental tool.

쥐에서 Roux-EN-Y 위장 바이패스 수술

Currently, the most effective therapy for the treatment of morbid obesity to induce significant and maintained body weight loss with a proven mortality ...

A Novel Surgical Approach for Intratracheal Administration of Bioactive Agents in a Fetal Mouse Model

Prenatal pulmonary delivery of cells, genes or pharmacologic agents could provide the basis for new therapeutic strategies for a variety of genetic and acquired diseases. Apart from congenital or inherited abnormalities with the requirement for long-term expression of the delivered gene, several non-inherited perinatal conditions, where short-term gene expression or pharmacological intervention is sufficient to achieve therapeutic effects, are considered as potential future indications for this kind of approach. Candidate diseases for the application of short-term prenatal therapy could be the transient neonatal deficiency of surfactant protein B causing neonatal respiratory distress syndrome1,2 or hyperoxic injuries of the neonatal lung3. Candidate diseases for permanent therapeutic correction are Cystic Fibrosis (CF)4, genetic variants of surfactant deficiencies5 and &alpha;1-antitrypsin deficiency6.
Generally, an important advantage of prenatal gene therapy is the ability to start therapeutic intervention early in development, at or even prior to clinical manifestations in the patient, thus preventing irreparable damage to the individual. In addition, fetal organs have an increased cell proliferation rate as compared to adult organs, which could allow a more efficient gene or stem cell transfer into the fetus. Furthermore, in utero gene delivery is performed when the individual's immune system is not completely mature. Therefore, transplantation of heterologous cells or supplementation of a non-functional or absent protein with a correct version should not cause immune sensitization to the cell, vector or transgene product, which has recently been proven to be the case with both cellular and genetic therapies7.
In the present study, we investigated the potential to directly target the fetal trachea in a mouse model. This procedure is in use in larger animal models such as rabbits and sheep8, and even in a clinical setting9, but has to date not been performed before in a mouse model. When studying the potential of fetal gene therapy for genetic diseases such as CF, the mouse model is very useful as a first proof-of-concept because of the wide availability of different transgenic mouse strains, the well documented embryogenesis and fetal development, less stringent ethical regulations, short gestation and the large litter size.
Different access routes have been described to target the fetal rodent lung, including intra-amniotic injection10-12, (ultrasound-guided) intrapulmonary injection13,14 and intravenous administration into the yolk sac vessels15,16 or umbilical vein17. Our novel surgical procedure enables researchers to inject the agent of choice directly into the fetal mouse trachea which allows for a more efficient delivery to the airways than existing techniques18.

We developed a novel surgical approach for intratracheal administration of bioactive agents into the mouse fetus. The delivery route is more efficient in targeting the fetal mouse lungs than the commonly used intra-amniotic injection. This procedure has to date not been described in a mouse model.

태아 마우스 모델에서 Bioactive 에이전트의 Intratracheal 관리를위한 소설 외과 접근

Prenatal pulmonary delivery of cells, genes or pharmacologic agents could provide the basis for new therapeutic strategies for a variety of genetic and ...

Evaluation of a Novel Laser-assisted Coronary Anastomotic Connector - the Trinity Clip - in a Porcine Off-pump Bypass Model

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the Trinity Clip, is developed based on the excimer laser-assisted nonocclusive anastomosis technique. The Trinity Clip connector enables simplified, sutureless, and nonocclusive connection of the graft to the coronary artery, and an excimer laser catheter laser-punches the opening of the anastomosis. Consequently, owing to the complete nonocclusive anastomosis construction, coronary conditioning (i.e., occluding or shunting) is not necessary, in contrast to the conventional anastomotic technique, hence simplifying the off-pump bypass procedure. Prior to clinical application in coronary artery bypass grafting, the safety and quality of this novel connector will be evaluated in a long-term experimental porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) study. In this paper, we describe how to evaluate the coronary anastomosis in the porcine OPCAB model using various techniques to assess its quality. Representative results are summarized and visually demonstrated.

This paper describes a novel nonocclusive coronary anastomotic connector in a porcine off-pump coronary artery bypass (OPCAB) model. This easy-to-use coronary connector has intrinsic potential to facilitate minimally invasive OPCAB surgery.

삼위 일체 클립 - - 소설 레이저를 이용한 관상 동맥 문합 커넥터의 평가 돼지 오프 펌프 바이 패스 모델에

To simplify and facilitate beating heart (i.e., off-pump), minimally invasive coronary artery bypass surgery, a new coronary anastomotic connector, the ...

A Novel Approach for the Administration of Medications and Fluids in Emergency Scenarios and Settings

The available routes of administration commonly used for medications and fluids in the acute care setting are generally limited to oral, intravenous, or intraosseous routes, but in many patients, particularly in the emergency or critical care settings, these routes are often unavailable or time-consuming to access. A novel device is now available that offers an easy route for administration of medications or fluids via rectal mucosal absorption (also referred to as proctoclysis in the case of fluid administration and subsequent absorption). Although originally intended for the palliative care market, the utility of this device in the emergency setting has recently been described. Specifically, reports of patients being treated for dehydration, alcohol withdrawal, vomiting, fever, myocardial infarction, hyperthyroidism, and cardiac arrest have shown success with administration of a wide variety of medications or fluids (including water, aspirin, lorazepam, ondansetron, acetaminophen, methimazole, and buspirone). Device placement is straightforward, and based on the observation of expected effects from the medication administrations, absorption is rapid. The rapidity of absorption kinetics are further demonstrated in a recent report of the measurement of phenobarbital pharmacokinetics. We describe here the placement and use of this device, and demonstrate methods of pharmacokinetic measurements of medications administered by this method.

This study presents a novel device that offers an easy route to quickly provide medications and fluids in patients with limited or difficult IV access. This small-diameter device is placed in the distal third of the rectum, allowing for ongoing medication and fluids administration.

The available routes of administration commonly used for medications and fluids in the acute care setting are generally limited to oral, intravenous, or ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. Research models for bypass graft failure are essential for a better understanding of pathobiological and pathophysiological processes during graft patency loss. Large animal models, such as pigs or sheep, resemble human anatomical structures but require special facilities and equipment. This video describes a rat vein interposition model to investigate vein graft patency loss. Rats are inexpensive and easy to handle. Compared to mouse models, the convenient size of rats permits better operability and enables a sufficient amount of material to be obtained for further diverse analysis. In brief, the inferior epigastric vein of a donor rat is harvested and used to replace a segment of the femoral artery. Anastomosis is conducted via single stitches and sealed with fibrin glue. Graft patency can be monitored non-invasively using duplex sonography. Myointimal hyperplasia, which is the main cause for graft patency loss, develops progressively over time and can be calculated from histological cross sections.

This video demonstrates a model to study the development of myointimal hyperplasia after venous interposition surgery in rats.

정맥 삽입 위치 모델 : 바이 패스 이식 개통을 연구하기위한 적절한 모델

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and drugs. It is widely used in many studies on the physiological functions of vascular smooth muscle, the pathogenesis of vascular diseases such as hypertension, and the development of smooth muscle relaxant drugs. The mouse is a widely used model animal with a large pool of disease models and genetically modified strains. We introduced this method to measure the isometric contraction of mouse mesenteric artery in detail. A 1.4-mm segment of mouse mesenteric resistance artery was isolated and mounted on a myograph chamber by passing two steel wires through its lumen. After equilibration and normalization steps, the vessel segment was potentiated by a high-K+ solution twice prior to the contraction assay. As an example of the application of this method in drug development, we measured the relaxant effect of a novel natural substance, neoliensinine, isolated from a Chinese herb, embryos of the lotus seed (Nelumbo nucifera Gaertn.) on mouse mesenteric arteries. The vessel segments mounted on the myograph chamber were stimulated with a high-K+ solution. When the force tension reached a stable sustained phase, cumulative doses of neoliensinine were added to the chamber. We found that neoliensinine had a dose-dependent relaxant effect on smooth muscle contraction, thus suggesting that it bears potential activity against hypertension. In addition, as the vessel segment can survive at least 4 hours after mounting and maintain contractility induced by the high-K+ solution for many times, we suggest that the wire myograph system may be used for the time-consuming process of drug screening.

The wire myograph technique is used to investigate vascular smooth muscle functions and screen new drugs. We report a detailed protocol for measuring the isometric contractility of the mouse mesenteric artery and for screening new relaxants of vascular smooth muscle.

Myography 와이어를 사용 하 여 마우스 Mesenteric 동맥의 isometric 수축 측정

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...