Authors acknowledge the financial support from CONACyT project numbers 167359 and 177138, and from DGAPA-UNAM project number IN201615.

1. SBDS 플래시 태그 단백질 발현 및 정제 주 : 이방성 실험 들어, 플래시 태그 시스테인은 시스테인 - - 프로의 Gly-Cys 또는 Cys이고-는 PCR에 의해 서열을 코딩하는 인간 SBDS의 C 말단에 추가 된 시퀀스에 대응. 이 구조는 발현 벡터 pRSET-A에 서브 클로닝하여 N- 말단 헥사 히스티딘 태그 (그의 태그)를 코딩하는 단백질을 발현하는 대장균 C41 세포에 형질 전환하고, 시퀀스 및 C 말단 플래시 태그 (10)를 부호화 인간 SBDS. <ol><li> SBDS 플래시 단백질 발현 <ol><li> 관할 E. 변환 표준 열 충격 프로토콜 (19)을 이용하여 플라스미드 pRSET-HisSBDS 플래시와 대장균 C41 셀. 100 μg의 / ㎖의 앰피 실린이 보충 된 고체 루리아 - 베르 타니 (LB) 배지에서 세포를 플레이트. LB 고체 배지 조성물은 10g의 NaCl, 5g 효모 추출물, 10g 트립 톤 1 L의 볼륨 20g 한천로 구성되어 있습니다. </li><li> 37 ° C에서 문화 형질 전환 된 박테리아까지600 nm의 (A 600)에서 흡광도를 100 μg의 / ㎖의 앰피 실린이 보충 된 LB 액체 매체의 1 L에 0.5-0.7에 도달한다. </li><li> 배양액에 0.5 mM의 이소 프로필 β-D-1- 티오 갈 락토 피 라노 사이드를 첨가하여 단백질 발현을 유도하고 추가 5 시간 동안 인큐베이션을 계속한다. </li><li> 4 ℃에서 10 분 동안 3,800 XG에서 원심 분리하여 세균 현탁액을 수집합니다. 뜨는을 제거합니다. 이 때, -20 ° C에서 세포 펠렛을 저장 있거나, 단백질 정제를 위해 즉시 사용한다. </li></ol></li><li> SBDS 플래시 단백질 정제 참고 : 모든 크로마토 그래피 단계는 고속 단백질 액체 크로마토 그래피 (FPLC) 시스템 또는 연동 펌프를 사용하여 수행됩니다. 니켈 2 + - 친 화성 크로마토 그래피는 5 ml의 빠른 흐름 열을 사용합니다. 음이온 교환 크로마토 그래피는 5 ml의 강한 설포 프로필의 양이온 교환 컬럼을 사용합니다. 3 ㎖의 유속 / 분의 모든 크로마토 그래피 단계를 이용 하였다. <ol><li> SBDS 용해 B 35 ml의 세포를 재현 탁uffer 4 분 OFF 10 초 ON과 30 초의 사이클을 사용하는 전체 시간 동안 초음파 처리하여 1mM의 페닐 메틸 설 포닐 플루오 라이드 (PMSF) 및 다운 Lyse 보충 (의 50 mM 인산 완충액 pH 7.5, 300 mM의 염화나트륨, 20 mM의 이미 다졸) 4에서 기음. </li><li> 4 ℃에서 50 분 동안 9,000 XG에서 샘플을 원심 분리기. </li><li> 뜨는을 유지하고 세포 파편을 제거하는 펠렛을 폐기합니다. </li><li> SBDS 용해 버퍼의 3 열 볼륨 (CV)와 니켈 2 + 친 화성 컬럼을 평형과 컬럼에 뜨는을 명확히 전체를 소개합니다. </li><li> SBDS 용해 버퍼의 3 CV로 세척하여 언 바운드 단백질을 제거하고 SBDS 용출 버퍼의 3 CV (50 mM의 인산 완충액 pH 7.5, 300 mM의 NaCl을, 250 mM의 이미 다졸)로 용출. </li><li> 50 mM의 인산염 완충액 pH 6.5 용출 된 단백질 6 배 희석하고 0.22 μm의 셀룰로오스 막을 통해 여과에 의해 가능한 집계를 제거합니다. </li><li> 낮은 소금 S 컬럼의 3 CV와 설포 프로필의 양이온 교환 컬럼을 평형완충액 (50 mM의 인산 완충액 pH 6.5, 50 mM의 염화나트륨) 및 이전 단계로부터의 단백질 샘플을 소개한다. </li><li> 워시 바운드 낮은 염 S 컬럼 완충액 3 CV로 소재의 50 mM 인산 완충액 pH 6.5, 1 M NaCl을 하나의 공정에서 단백질을 용출시킨다. </li><li> 50 mM의 인산염 완충액 pH 6.5 용출 된 단백질 3.3 배 희석. 15 분 동안 3800 × g으로 원심 분리하여 한외 여과 장치와 단백질을 농축시킨다. 플래시는 액체 질소의 단백질을 동결하고 추가로 사용할 때까지 -80 ° C에서 보관합니다. </li><li> SDS-PAGE 분석하고 쿠마시 20 염색으로 단백질의 순도를 확인한다. </li></ol></li></ol> 2. EFL1 단백질 발현 및 정제 참고 : EFL1는 걸 1/10 발산 프로모터 (21)와 벡터 pRS426의 사카로 마이 세스 세레 비지에 MAT 3&#39;UTR의 규정에 따라 표현되었다. 재조합 단백질은 담배 식각 바이러스 단백질 분해 효소에 융합 된 인간 EFL1 이성체 1 (부호화TEV) 인식 부위 및 C 말단에 헥사 히스티딘 태그. <ol><li> EFL1 단백질 발현 <ol><li> S. 변환 표준 아세트산 리튬 프로토콜 (22)을 이용하여 플라스미드 pRS426-EFL1TevHis와 cerevisiae에 BCY123 셀. 2 % (w / v)의 포도당 보충 우라실 (SD-URA)없이 미디어 밖으로 합성 드롭의 모든 형질 전환 된 세포를 플레이트. 는 SD-URA 매체의 구성 아미노산없이 8g 효모 질소베이스, 11g의 카사 미노산, 55 mg의 아데닌 설페이트, 55 mg의 티로신, 60 mg을 류신 1 L 부피 60 mg을 트립토판으로 구성되어 있습니다. </li><li> 600 0.5 % (w / v) 글루코오스로 보충 SD-URA 매체 1 1.8 L에 도달 할 때까지 배양은 30 ° C에서 효모 형질 전환. </li><li> 문화에 갈락토스 (/ V W) 2.8 %를 추가하여 단백질 발현을 유도하고 30 ° C에서 추가로 18 시간 동안 배양을 계속합니다. </li><li> 4 ℃에서 10 분 동안 3,800 XG에서 원심 분리하여 효모 현탁액을 수집합니다. 뜨는을 제거합니다.이 때, -20 ° C에서 세포 펠렛을 저장 있거나, 단백질 정제를 위해 즉시 사용한다. </li></ol></li><li> EFL1의 단백질 정제 참고 : 모든 크로마토 그래피 단계는 FPLC 시스템 또는 연동 펌프를 사용하여 수행됩니다. 니켈 2+ - 친 화성 크로마토 그래피 / 분으로 3 ㎖의 유속으로 5 ㎖ 패스트 플로우 칼럼을 사용한다. 크기 배제 크로마토 그래피에 의해 125 ml의 컬럼 1 ㎖ / 분의 유속으로 수퍼 덱스 200 수지로 미리 충전을 사용한다. <ol><li> 1mM의 PMSF 및 1 ㎜의 벤즈 아미 딘이 보충 EFL1 용해 완충액 (50 mM Tris-HCl pH를 8, 300 mM의 염화나트륨, 20 mM의 이미 다졸, 5 밀리미터의 MgCl 2, 10 % 글리세롤) 50ml에 세포를 재현 탁에 의해 세포를 파괴 4 ℃에서, 2 분 ON 및 OFF 15 분 6 분 사용주기의 총 시간을 유리 비드 (Ø = 0.5 mm)를 이용하여 비드 비터 마찰. </li><li> 4 ℃에서 50 분 동안 9,000 XG에서 샘플을 원심 분리기. </li><li> 뜨는을 유지하고 세포 파편을 제거하는 펠렛을 폐기합니다. </리&gt; <li> EFL1 용해 버퍼의 3 CV와 니켈 2 + 친 화성 컬럼을 평형과 열의에 모든 명확히 뜨는을 소개합니다. </li><li> EFL1 용해 완충액 3 CV로 세척하여 결합되지 않은 단백질을 제거하고 EFL1 용출 완충제 3 CV (50mM 트리스 - 염산 pH를 8, 300 mM의 NaCl을 250 mM의 이미 다졸, 5 밀리미터의 MgCl 2, 10 % 글리세롤)로 용출. </li><li> 이방성 완충액 1.5 CV (50mM 트리스 - 염산 pH를 7.5, 300 mM의 NaCl을 5 밀리미터의 MgCl 2, 10 % 글리세롤, 5 밀리미터 β 머 캅토 에탄올)으로 크기 배제 컬럼을 평형화. </li><li> 1 ml의 원하는 볼륨으로 3,800 XG에서 원심 분리하여 한외 여과 장치와 니켈 2 + 친 화성 컬럼에서 용출 EFL1 단백질에 집중. 크기 제외 칼럼에 샘플을 소개합니다. </li><li> 용출 된 단백질을 수집하고 약 30 μM의 최종 농도로 한외 여과로 농축시켰다. 플래시는 더 사용할 때까지 -80 ° C에서 액체 질소와 저장소에있는 단백질을 동결. 일 확인SDS-PAGE 분석하고 쿠마시 20 염색으로 단백질 E 순도. </li></ol></li></ol> 플래시 형광 염료 4 &#39;, 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) 플루 오레와 SBDS 플래시 3. 라벨링 <ol><li> , 4 &#39;의 3 nmol의와 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) 이방성 버퍼의 5 μl의 볼륨에 형광 염료를 SBDS 플래시 단백질의 3 nmol의 혼합. </li><li> 반응이 4 ℃에서 8 시간 동안 진행하자. 무료 염료를 제거하기 위해 밤새 이방성 버퍼에 대한 샘플을 투석. </li><li> 표지 단백질의 %를 정량화하기 위해 램버트 - 비어 법을 사용합니다. 280 nm의 적절한 용적을 석영 큐벳을 사용하여 분광 광도계의 508 nm에서의 흡광도를 측정한다. 참고 : 다음과 같은 몰 흡수 계수 (M -1 cm -1)을 고려 : <img alt="Equation1B" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq1B.jpg" /></li><li> 수학 식 2 사용하여 라벨 SBDS 플래시 단백질의 농도를 계산한다. <img alt="Equation2" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq2.jpg" /></li><li> 이전 단계에서 계산 된 C SBDS 플래시를 대체하여 식 (3) 사용하여 총 SBDS 단백질의 농도를 계산한다. <img alt="Equation3" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq3.jpg" /></li><li> 식 4 사용하여 라벨이 단백질의 비율을 계산합니다. <img alt="Equation4" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq4.jpg" /></li></ol> 4. 형광 이방성 실험 주 : 이방성 실험 편광 도구와 데이터 수집은 장치의 소프트웨어에서 제공 이방성 프로그램을 사용하여 수행 하였다 구비 한 분광에서 수행 하였다. 여기 파장은 8 nm의 스펙트럼 대역폭을 갖는 494 nm에서 설정하고, 발광은 530 ± 25 ㎚의 밴드 패스 필터를 사용하여 기록 하였다. 측정은 5mm 경로 길이 (10) 200 ㎕를 큐벳에 25 ℃에서 수행 하였다. <ol><li><html> 형광 큐벳에서, 이방성 버퍼에 30 nM의 SBDS 플래시의 200 μl를 배치하고 30 μM의 EFL1 2 μl를 적정한다. 철저하게 혼합하고 반응이 이방성 값을 측정하기 전에 3 분간 방치 할 수 있습니다. </li><li> EFL1 40 μL의 총 부피 때까지 단계를 반복 4.1이 추가되었습니다. </li></ol> 5. 데이터 분석 <ol><li> 비선형 최소 자승 회귀 알고리즘을 사용하여 적절한 결합 모델에 데이터를 장착한다. 가장 흔한 결합 모델 방정식은 표 1에 제시되어있다. </li><li> 피팅 (23)의 잔류를 검사하여 단백질 사이의 상호 작용을 설명하는 가장 좋은 모델을 평가합니다. 추가 실험으로 선택한 모델을 지원합니다. </li></ol> 표 1. 일반 단백질 - 단백질 상호 작용 결합 모델을 설명하는 수학적 방정식.0 / 54640table1large.jpg &quot;대상 =&quot;_ 빈 &quot;&gt;이 테이블의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="1 번 테이블" src="/files/ftp_upload/54640/54640table1.jpg" />

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M., Jezewska, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescence+Intensity,+Anisotropy,+and+Transient+Dynamic+Quenching+Stopped-Flow+Kinetics.">Fluorescence Intensity, Anisotropy, and Transient Dynamic Quenching Stopped-Flow Kinetics.</a> Spectroscopic Methods of Analysis. 875, 105-133 (2012).</li><li>Asano, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+interaction+between+EFL1+and+SBDS+is+mediated+by+an+intrinsically+disordered+insertion+domain.">Direct interaction between EFL1 and SBDS is mediated by an intrinsically disordered insertion domain.</a> Biochem Biophys Res Commun. 443 (4), 1251-1256 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose and they have no competing financial interests.

단백질과 대부분의 생화학 실험에 관계없이 사용되는 기술, 순수 단백질뿐만 아니라, 그들 중 많은 양뿐만 아니라 필요합니다. 그것은 여기에 제시된 경우와 같이이 때문에, 실험의 이러한 유형에 사용되는 단백질은, 이종 발현에 의해 얻어진다. 개화 분광법은 공부 분자에 형광의 존재를 필요로한다. 이들은 대부분의 단백질에 공통적 모두에 존재할 것이기 때문에, 방향족 잔기가 단백질 - 단백질 상호 작용을 연구하기 위해 분석을 그 신호를 복잡하게 이용하지만, 단백질의 고유 형광을 구성 수용체 단백질과 리간드. 또한 트립토판의 수명은 형광 이방성 실험하기에는 너무 짧다. 이러한 이유로, 단백질 연구 중 하나 외인성 형광 단을 추가하는 것이 일반적이다. 이를 위해, 형광 염료 4 &#39;, 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) - (F) 사이의 배위 결합을 통해 SBDS의 C 말단에 첨가유전 공학에 의한 단백질에 도입 된 tetracysteine ​​모티브로 luorescein. 형광을 지탱 단백질을 선택하면 임의의 문제가 아니다. 때문에 (SBDS 29 kDa 이상 EFL1 127 kDa의) 여기에 연구 된 단백질의 크기에, 우리는 무료 표지 - EFL1 사이 것으로 예상 변화에 비해 EFL1 복잡한에 큰 무료 표지 - SBDS 사이의 이방성의 변화와 그 예상 SBDS에 바인딩. 이 점을 염두에 베어링, 플래시 태그는 SBDS에보다는 EFL1에 소개되었다. 형광 이방성 실험을 설정하는 데 사용되는 용액의 흡수되면 또 다른 중요한 파라미터는 고려한다. 큐벳에서 용액의 광학 밀도는 여기 및 방출 파장에서 0.1보다 크지 않아야하며, 전체 적정에 따라 일정하게 유지한다. 그렇지 않으면 내부 필터 효과 측정을 방해 할 수 있고 보정되어야한다. 여기에 제시된 실험에서 연구 된 단백질 excitat의 파장에서 흡수하지 않는다이온 또는 4 &#39;, 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) - 플루오 레세 인 염료의 방출; 따라서 내부 필터 효과는 문제를 부과하지 않는다. 데이터 수집에 대해서는, 그 후 데이터를 올바르게 맞도록, 상기 결합 곡선을 따라 전이를 통해 여러 데이터 요소와 잘 정의 된 상하부 기준을 가질 필요가있다. 그렇지 않으면, 데이터를 피팅하는 것은 부정확 및 결합 모드에 관한 정보가 손실 될 수있다. 이 유리 리간드의 농도는 다음 두 개의 대수 유닛에 의해 해리 상수 이상 상이 필요가 흉 결합 곡선을 설명하지만,이 실험적으로 달성하기 어려울 수있다. 단백질과의 친 화성이 매우 높은 경우 큰 농도 의한 리간드의 용해도 문제로 달성 될 수는 없지만 하한에서, 장치의 감도에 대한 문제는, 특히 발생할 수있다. SBDS 사이의 상호 작용을 테스트 할 때 명확하게 예시 된S143L 질환 돌연변이와 EFL1. 이 돌연변이는 EFL1가 70 μM까지 농축 할 수 있고, 단백질이 적정 10시 5 배 ≈ 희석되는 이후 적당한 결합 곡선을 얻을 수 없었다 정도로 EFL1 결합 파괴. 따라서, 적정 방식을 최적화하고 덜 정확한 맞춤을 야기하는 위치에 발생하지 않는 리간드 농도로 이동하는지 확인 친화 대략적 추정치를 가질 필요가있다. 예를 들어, 그림 3에 제시된 결합 곡선의 초기 점을 누락 것은 하나의 결합 부위의 모델을 향해 연구원 오해의 소지가 쌍곡선처럼 보이게됩니다. 수집되면, 데이터는 추정 된 결합 모델에 적합 하였다. 형광 데이터를 비교하여, 이방성 데이터 추가 조작없이 사용할 수 있고, 희석 효과에 대한 보정을 필요로하지 않는다. 표 1에 제시된 방정식을 고려하는 것이 [L] ≈적정의 모든 지점에서 [L] 0. 단백질과의 친 화성이 적정 리간드 고갈의 첫 번째 포인트가 발생하는 등 매우 높은 경우에 발생할 수 없습니다. 이 시나리오에서, 더 복잡한 다른 이차 방정식 (23)의 데이터에 맞게 필요한 기재. 여기에 설명 된 실험에서, 리간드 EFL1은 무시할 수 SBDS 플래시의 농도 적정의 각 지점에서 EFL1 농도의 변화에 ​​비하여 항상 과량이었다. 결과 부분에서 논의 된 바와 같이, 두 개의 동일하지 않은 결합 부위 모델에 최적 실험 데이터 (도 3c)를 설명했다. 그룹에서 얻어진 부가 정보 생화학이 EFL1 SBDS와 사이의 상호 작용을 설명하는 정확한 모델이라는 개념을 지원한다 (데이터는 보이지 않음). 상호 작용이 모드는 EFL1 SBDS과 같은 다중 도메인 단백질이다에서 일반적이며, 몇몇 실시 예는 문헌 24-26에 존재한다. 그러나, 인자신의 리간드에 대해 서로 다른 친화력을 가진 별개의 결합 부위의 상호 작용 모델로 나타날 수있는 비특이적 상호 작용을 배제 할 LSO 중요합니다. 이를 위해하는 스캐 챠드 플롯은 매우 유용합니다. 다른 기술에 비해, 형광 이방성 신호 형성된 복합체의 양을보고하고, 따라서 그 데이터와 함께 스캐 챠드 플롯을 구축 할 수있다. 오목의 스캐 챠드 플롯 긍정적 협동성 또는 리간드 불안정성 (도 4)와 두 개의 다른 결합 부위 모델을 의미하는 동안, 볼록 스캐 챠드 곡선 음 협동성 또는 비특이적 결합을 갖는 두 개의 다른 결합 부위 모델을 제안한다. 실험 데이터의 분석 및 EFL1 SBDS (도 4d)에 대한 두 개의 독립적 인 결합 부위의 모델을지지하는 오목 형상의 스캐 챠드 플롯을 보여 주었다. 또한, 포지티브 협동성은 1.8 ± 0.02의 힐 계수 값 결과 언덕 분석을 수행 한 결과를 확인 하였다 (데이터는 보이지 않음). 다른 단백질 - 단백질 결합 모델 그림 4. 스캐 챠드 플롯. (A) 단일 결합 부위 또는 상호 작용하지 않는 여러 개의 동일한 사이트. (B) 음의 협동성 또는 비 특이 적 결합과 여러 다른 결합 부위. (C) 긍정적 인 협동성 또는 리간드 불안정과 여러 다른 결합 부위. SBDS 플래시에 EFL1의 적정에서 얻은 실험 이방성 데이터의 분석 결과 (D) 스캐 챠드 플롯. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54640/54640fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 형광 이방성 시험 조건에서 용액을 유지하기 위해 연구 된 분자를 필요로하는 용액 계, 트루 평형 기술이다. 안을 연구하는 데 사용할 수 있습니다LY 전장 단백질뿐만 아니라, 번역 후 변형을 가진 단백질 도메인 돌연변이 단백질 또는 펩티드 사이의 상호 작용의 상호 작용. 또한, 형광 이방성은 형광 성 멤브레인 프로브를 사용 지질막으로 단백질의 결합을 측정하는데 사용될 수있다. 이 접근법은 성공적 α-synuclein의 시냅스 소포 27 포장에 미치는 영향을 연구하기 위해 사용되었다. 형광 이방성의 주요 이점 중 하나는 해당 해리 상수 역학적 정보와 함께 얻어 지도록 연구 된 분자의 결합에 대한 정량적 인 정보를 제공한다는 것이다. 다른 생물 물리학 적 기술들은 또한 이러한 정보를 획득하기 위해 사용될 수 있지만, 형광의 이방성이 적은 양의 시료가 필요하며 여기에 제시된 바와 같이, 단지 평형 않고 수행 될 수 있지만, 또한, 관계를 얻기 위해, 예컨대 정지 흐름 형광 측정 급속한 동력학을 사용 그리고 해리 속도상수 (각각에 K와 오프 K) 28. 이점과 다른 생물 리 학적 기법에 대한 형광 이방성 단점 비교표를 표 2에 제시되어있다. 설명 된 모든 방법은 진정한 평형 기술이다 그들 중에 자유롭고 결합 분획 기계적 분리하는 공정을 포함하지 않기 때문에. 결과 섹션에서 언급 한 바와 같이 표지 단백질의 형광 강도가 크게 상호 작용에 따라 변경하는 경우,이 속성은 바인딩의 친 화성을 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 그러나, 상호 작용으로부터 얻어진 형광 강도의 변화는 상호 작용 분자 자체에 외적 형광 물질의 가능한 간섭을 제시; 즉, 대응하는 비 - 표지 된 단백질의 해리 상수 (K D의) 값의 가능한 변경. 이와 같이, 형광 이방성 CH보다는 덜 침습적 인 방법으로 간주 될 수있다형광 강도의 상호 작용에 따라 변경되지 않을 때 전자가 적용되어야 이후 형광 강도 ANGES. 단백질의 다량이 필요하지만이 라벨없는 방법이기 때문에,이 점에서, 등온 적정 열량 측정 (ITC)은 분자의 상호 작용의 진정한 K D의 값을 제공 할 수있다. 열 차이만을 처리의 엔탈피보고하고 복잡하지 량이 29을 형성하기 때문에 한편, 기계적 정보는 얻을 수 없다. 비교하여, 정제 된 단백질이 있지만 단지 결합 모드에 반 정량적 인 정보를 제공하지 않아도 효모 두 하이브리드 또는 단편 상보성 분석과 같은 생체 내 방법이다. 효모 두 하이브리드 방식으로 결합하여 미러 유닛의 강도를 발현 할 수 있다는 사실에도 불구하고,이 연구자의 제어 중 일정한 많은 요소를 변경할 수있는 실제 평형 아니다. 표 2. 장점과 단백질 - 단백질 상호 작용을 연구하는 데 일반적으로 사용되는 생물 물리학 기술의 단점. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54640/54640table2large.jpg" target="_blank">이 테이블의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="표 2" src="/files/ftp_upload/54640/54640table2.jpg" />

세포는 끊임없이 서로 상호 작용 생체 거대 분자의 다수 포함되어 있습니다. 이 연관은 신호 전달, 유전자 발현 및 다른 이들 세포 이동의 조절에서 이들의 기능을 담당 세포 경로에 참여 착물을 일으킨다. 세포 내에서 발생하는 모든 단백질 - 단백질 상호 작용은 상호 작용 체라고하는 네트워크를 포함한다. 사카로 마이 세스 세레 비지에서의 단백질의 70 % 이상이 상호 작용 파트너 일을하는 것으로 나타났다. 셀의 상호 작용 체를 이해하고 그 기능은 복잡성과 생물의 다양성에 관련 정보를 제공합니다. 여러 방법은 단백질 - 단백질 상호 작용을 확인하고 특성화하기 위해 설명되었다. 효모 두 하이브리드 2, 단백질 단편 보완 분석 (3), 질량 분석 및 단백질 microarra에 결합 친 화성 정제 4로 넣어 방법을 통해 높은 다른YS는 5,6- 작용을 식별하기 위해 사용된다. 식별되면,이를 검증하기 위해 필요하며, 이는 경우에 따라 달라질 수있다. 일반적으로, 이들 실험은 유전자 결실 또는 단백질 중 하나의 과다 발현에 의해 상호 작용 쌍 등의 각 부재의 수준에서 작용 자체를 방해 포함하고 상기 다른 부재의 특성의 변화 나 함수를 찾고 세포 수준. 이어서, 생물 리 학적 기법 7은 분자 수준에서 단백질 - 단백질 상호 작용을 특성화하기 위해 사용된다. 열량 형광 분광법 정량적 및 기계적으로이를 설명하기 위해 사용되는 동안이를 위해, 단백질 복합체의 구조는 X 선 결정학, 핵 자기 공명 및 극저온 전자 현미경에 의해 결정된다. 본 연구에서는 형광의 이방성이는 GTPase EFL1 및 SBD 간의 상호 작용을 특성화하는 방법을 사용 하였다S 단백질. 이 단백질은 60S 리보솜 서브 유닛 (8)의 표면에서 진핵 개시 인자 (6)의 방출을 촉진하여 리보솜의 합성에 참여하고 있습니다. SBDS 단백질 EFL1는 구아노 신 다이 포스페이트 (10, 11)에 대한 그것의 친화도를 감소시키는 구아닌 뉴클레오타이드 교환 인자로서 Shwachman 증후군 다이아몬드-9 및 행위로 알려진 질환 돌연변이된다. SBDS의 질병 돌연변이는 EFL1과의 상호 작용을 폐지하고, 따라서 그것의 활성화를 방지 할 수 있습니다. 형광의 이방성은 일반적으로 단백질 - 펩타이드 또는 단백질 - 핵산 상호 작용을 연구하는 생물학 분야에 사용된다. 이것은 형광 물질이 부분적으로 편광 된 방사의 편광 결과 여기 있다는 원리에 기초한다. 형광 이방성은 수학 식 1에 의해 정의된다 : <img alt="Equation1" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq1.jpg" /> 나는 절 내가 VH는 어디에수직 편광 된 광 (12)에 시료가 여기 될 때 수직 (VV) 및 가로 (VH)의 형광 발광 강도를 편광. 형광 이방성 형광의 회전 확산 속도에 영향을주는 요인에 민감하므로, 온도, 용액의 점도 및 형광 물질의 겉보기 분자 크기에 따라 달라진다. 또 다른 단백질과 같은 변화와 상호 작용할 때 형광 증가를 함유하는 단백질의 겉보기 크기이어서 이방성의 변화로 평가 될 수있다. 구체적으로는, 그것의 형광 수명을 용액 상대적으로 천천히 회전 형광 비교적 큰 이방성을 나타내는 것 때문에 큰 I VV의 값 I VH 작은 값을 가질 것이다. 자신의 형광 수명에 빠르게 상대 공중제비 형광, 나는 절 내가 VH는 유사합니다 및 이방성 값이 작은 것 (12) </sup&gt; (그림 1). 또한, 노이즈 측정에 좋은 이방성 신호를 들면, 대상 분자의 회전 상관 시간 유사한 형광 수명을 가진 형광 물질이 필요하다. 그렇지 않으면 정확하게 복잡 프리 단백질과 그 이방성의 차이를 기록 할 수 없다. 예를 들어, 다 100의 저 분자량 화합물에 부착 같은 형광 또는 로다 민과 같은 4 NSEC 가까운 수명과 형광 프로브의 이방성은 0.05이다. kDa의 0.29로 그 이방성 값을 증가 (160)의 분자에 결합; 정확하게 측정 할 수있는 차이. 반면에, 그 증가 분자 크기가 변화 65 내지 1,000 kDa의 결합 반응에 관여 동일한 형광 프로브는 정확하게 측정하기에는 너무 작 0.3-0.28의 이방성이 변화 될 것이다. 이 시나리오에서 400 나노초의 수명이 프로브 (12)에 더 적합 할 것이다. <p클래스 = &quot;jove_content&quot;&gt; <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54640/54640fig1.jpg" /> 형광 이방성 절차를 측정하는 데 사용되는 장치의 개략도 1.도. 단백질 - 단백질 상호 작용의 실험 측정 형광 이방성을 수행하는 데 사용되는 장치의 개략도. 상호 작용 파트너의 결합에 증가 빠른 디스플레이 작은 이방성을 공중제비 형광. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54640/54640fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 형광 응용 연구 분자 중 어느 하나의 형광의 존재를 필요로한다. 형광의 세 가지 유형이 단백질 - 단백질 상호 작용을 연구하는 방법 : 1) 단백질에 존재하는 트립토판 잔류 물, 2) 녹색 형광 단백질 (GFP)와 deriva 같은 화학적으로 부착 된 형광 3) 형광 융합 파트너tives. 대부분의 단백질은 그 구조의 상호 작용을 측정하는 것이 가장 간단한 방법 대응 형광 스펙트럼의 변화를 모니터링함으로써 또는 트립토판 잔기의 형광 강도의 변화를 감시함으로써이다 트립토판 잔기를 갖는다. 그러나, 트립토판 잔기의 분석을 복잡 단백질 모두에 존재할 수있다. 형광 인한 상호 작용을 형광의 속성을 변경하는 한편, 또는 결합 부위 근처에 위치해야하며 상호 자체를 방해 할 수있다. 같은 GFP와 같은 부피가 큰 형광체를 사용할 때 특별한주의가 필요합니다. 이 형광체 중에 결합 연구에 사용 할 수없는 경우는, 관여하는 단백질의 하나 외인성 형광체를 도입 할 필요가있다. 많은 화학적으로 합성 된 형광체는 존재 공유 같은 아민 기 (라이신 또는 N 말단의 측쇄) 및 시스테인의 티올기를 그들의 반응성기를 통해 단백질에 부착 될 수있다. 에프요오도 아세트 아미드 및 말레이 미드가 티올 - 반응성 기 (13) 동안 이소 티오 시아 네이트 및 숙신 이미 딜 에스테르로 luorophore 유도체 아미드 기와 반응. 형광 애플리케이션에서 가장 일반적으로 사용되는 염료는 플루오 레세 인 유도체 및 로다 민 그린 염료, 쿠마린, BODIPY 형광 단 알렉사 형석 염료이다. 상업적으로 입수 가능한 형광체와 그 사용의 자세한 목록은 참고 문헌 14, 15에서 볼 수있다. 성공적인 라벨링, 반응성 그룹은 단백질 표면에 노출되어야하지만 의한 폴리펩티드 전형적으로 존재하는 반응성 관능기의 다수는 부위 특이 적 변형을 얻는 것은 매우 어렵다. 이 연구에 대한 관심의 단백질, SBDS, 여러 사이트 표시 될 수 있습니다 5 무료 시스테인, 33 라이신이 포함되어 있습니다. 불균일 한 표시는 결합에 영향을 미칠 수있는 다른 형광 분자가 결합에 따라 상이한 형광 강도 신호를 유도 할 수있다으로 데이터 분석을 복잡하게한다. 비켜하려면이 문제를 rcome 우리는 플래시 형광, 4 &#39;부위 - 직접 라벨, 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) - 플루오 레세 SBDS 단백질을 사용 하였다. 이 모티프는 X 시스테인 (16, 17) 이외의 아미노산 서열로 이루어진 플래시 CCXXCC 태그로 알려진 네 개의 이격 시스테인에 대한 높은 친 화성을 갖는 arsenoxide 염료이다. 이 tetracysteine ​​모티브 함께 단백질의 전체 스크롤의 중단을 방지하기 위해 적당한 링커로 유전 공학에 의해 N- 또는 단백질의 C 말단에 부가된다. 플래시 염료 및 플래시 태그 이루어지는 쌍은 원래 셀 17 거주 지역 사이트 별 라벨 단백질 설계되었지만, 또한 여기에 열거 된 바와 같이 시험 관내에서 정제 된 단백질의 라벨을 사용할 수있다. 또한, 효소 적 전략은 단백질 (18)의 부위 특이 적 작용을 가능하게하기 위해 개발되어왔다. 이 논문에서는 형광 이방성 (A)의 유용성을 설명SA 도구는 단백질 - 단백질 상호 작용을 연구합니다. 정량적 인 정보는 실험 데이터의 피트로부터 얻어 질 수있는 반면 결합은 결합 곡선 형상의 간단한 검사에 의해 평가 될 수있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="674">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">0.5 mm Glass beads</td>
			<td style="width:112px;">Biospec Products</td>
			<td style="width:119px;">11079105</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Tris Base</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">TRIS01</td>
			<td style="width:225px;">Ultra pure</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Glycerol</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">G5516</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">dye 4&#8217;, 5&#8217;-bis(1,3,2 dithioarsolan-2-yl) fluorescein</td>
			<td style="width:112px;">ThermoFischer Scientific</td>
			<td style="width:119px;">LC6090</td>
			<td style="width:225px;">This kit contains the dye to label a FlAsH tag</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Ampiciline</td>
			<td style="width:112px;">IBI Shelton Scientific, Inc</td>
			<td style="width:119px;">IB02040</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">D(+)-Glucose Anhydrous</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">GLU03</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">D(+)-Galactose</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">GAL03</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">L-Leucine</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">DOC0157</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">L-Tryptofan&#160;</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">DOC0189</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Bezamidine hydrochloride</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">B6506-5G</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:219px;">PMSF</td>
			<td style="width:112px;">Gold Biotechnology, Inc</td>
			<td style="width:119px;">P-470-25</td>
			<td style="width:225px;">Phenylmethylsulfonyl fluoride</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">NaCl</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">NAC02</td>
			<td style="width:225px;">Sodium Chloride&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Glycerol</td>
			<td style="width:112px;">Tecsiquim, S.A. de C.V.</td>
			<td style="width:119px;">GT1980-6</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">MgCl2</td>
			<td style="width:112px;">Merck Millipore Corporation</td>
			<td style="width:119px;">1725711000</td>
			<td style="width:225px;">Magnesium Chloride</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Imidazole</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">I2399-500G</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">2-Mercaptoethanol</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">M6250-100ML</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">K2HPO4</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">P3786-500G</td>
			<td style="width:225px;">Potassium phosphate dibasic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">NaH2PO4</td>
			<td style="width:112px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">S3139-500G</td>
			<td style="width:225px;">Sodium phosphate monobasic</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Yeast nitrogen base without amino acids</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">CYN0410</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Yeast extract</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">YEM03</td>
			<td style="width:225px;">Micro Granulated</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">L-Tyroisne</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">DOC0193</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Adenine sulphate</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">DOC0230</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Casamino acids</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">CAS03</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Tryptone</td>
			<td style="width:112px;">IBI Shelton Scientific, Inc</td>
			<td style="width:119px;">IB49182</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">IPTG</td>
			<td style="width:112px;">Formedium</td>
			<td style="width:119px;">IPTG025</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Name of Material</td>
			<td style="width:112px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:225px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Filtration units</td>
			<td style="width:112px;">Merck Millipore Corporation</td>
			<td style="width:119px;">UFC901096</td>
			<td style="width:225px;">Amicon Ultra-15, membrana PLGC Ultracel-PL, 10&#160;kDa</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:219px;">Membrane Filter</td>
			<td style="width:112px;">Merck Millipore Corporation</td>
			<td style="width:119px;">GSWP04700</td>
			<td style="width:225px;">Membrane Filter, mixed cellulose esters, Hydrophilic, 0.22&#160;&#181;m, 47&#160;mm, white, plain</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Ni2+ affinity column</td>
			<td style="width:112px;">QIAGEN</td>
			<td style="width:119px;">30760</td>
			<td style="width:225px;">Cartridge pre-filled with 5 ml Ni-NTA Superflow</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Strong Sulfopropyl cation exchanger column</td>
			<td style="width:112px;">GE Healthcare Life Science</td>
			<td style="width:119px;">17-5157-01</td>
			<td style="width:225px;">HiTrap SP Sepharose FF 5 ml</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Size Exclusion column</td>
			<td style="width:112px;">GE Healthcare Life Science</td>
			<td style="width:119px;">28989335</td>
			<td style="width:225px;">HiLoad 16/600 Superdex 200 PG</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Fluorescence cell</td>
			<td style="width:112px;">Hellma Analytics</td>
			<td style="width:119px;">111-057-40</td>
			<td style="width:225px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:219px;">Name of Equipment</td>
			<td style="width:112px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:225px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Spectrophotometer</td>
			<td style="width:112px;">Agilent Technologies</td>
			<td style="width:119px;">G6860AA</td>
			<td style="width:225px;">Cary 60 UV-Vis</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:219px;">Shaker</td>
			<td style="width:112px;">ThermoFischer Scientific</td>
			<td style="width:119px;">SHKA4000-7</td>
			<td style="width:225px;">MaxQ 4000 Benchtop temperature range Ambient-15&#176; to 60&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Centrifuge</td>
			<td style="width:112px;">ThermoFischer Scientific</td>
			<td>75004271</td>
			<td style="width:225px;">Heraeus Megafuge 16R</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:219px;">FPLC</td>
			<td style="width:112px;">Pharmacia Biotech</td>
			<td style="width:119px;">Discontinued</td>
			<td style="width:225px;">FPLC system conductivity UV-MM II monitor P500 pump fraction</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:219px;">Spectrofluorometer</td>
			<td style="width:112px;">Olis</td>
			<td style="width:119px;">No applicable</td>
			<td style="width:225px;">Olis DM 45 with Polarization Toolbox</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

fluorescence anisotropy as a tool to study protein-protein interactions

단백질 - 단백질 상호 작용은 살아있는 유기체의 기능에 필수적인 역할을한다. 상호 작용이 식별되고 확인되면 그 구조 및 기계적인 레벨을 특성화하는 것이 필요하다. 여러 생화학 및 생물 물리학 적 방법은 이러한 목적을 위해 존재한다. 형광 표지 된 단백질의 형광 강도가 단백질 - 단백질 상호 작용에 따라 일정하게 유지 될 때 그 중에서도 형광 이방성 특히 사용하는 강력한 기술이다. 이 방법에서, 형광 표지 된 단백질을 선택적으로 수신 빔의 상대적인 방향에 따른 형광체의 일부를 여기 적절한 파장의 수직 편광 된 광에 의해 여기된다. 다음과 같이 생성 된 배출량은 누구의 수직 및 수평 평면에 관계 이방성 (r)을 정의하는 방향성을 가지고 : r은 (I VV -I VH가) / (I VV + 2I VH), 나는 절과 I = 위치 <sUB&gt; VH는 각각 수직 및 수평 성분의 형광 강도이다. 형광 이방성 형광 단백질 - 단백질 상호 작용에 따라 변경되는 단백질에 부착 된 형광 물질, 즉 겉보기 분자 크기의 회전 확산 민감하다. 본 텍스트에서, 단백질 - 단백질 상호 작용을 연구 도구로서 형광 이방성의 사용은 상기 Shwachman - 다이아몬드 증후군 (SBDS) 돌연변이 단백질 및 연장 인자와 같은-1는 GTPase (EFL1) 간의 바인딩을 해결하기 위해 예시 하였다. 종래, 형광 물질로 표지 단백질은 티올 기 (시스테인) 또는 단백질의 아미노 그룹 (N- 말단 아민 또는 리신)에서 수행된다. 그러나 SBDS 그것의 사이트에 직접 표시를 허용하지 않았다 여러 시스테인과 라이신을 보유하고있다. 대안 기술 염료 4 &#39;로, 5&#39;- 비스 (1,3,2 dithioarsolan -2- 일) - 플루오 레세 인은 특별히 tetracysteine ​​모티브 Cys- 라벨을 사용한시스테인 - 프로의 Gly-Cys 또는 Cys이고-는 유전자 재조합 SBDS 단백질의 C 말단에 설계. 실험 데이터의 피팅은이 단백질 사이의 결합 모드에 양적 기계적인 정보를 제공합니다.

어떤 이방성 실험을 수행하기 위해 그 종의 혼합물의 관찰 이방성을 수학 식 5에 의해 표현되기 때문에, 형광체의 형광 강도의 큰 변화를 배제하는 것이 중요하다 : <img alt="Equation5" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq5.jpg" /> F 내가 각 구성 요소 및 R의 소수 형광을 나타낸다 내가 해당 이방성이다. 각 성분의 소수 형광 양에 따라 식 (6)에 의해 정의되는 농도 및 상대적인 형광 : <img alt="Equation6" src="/files/ftp_upload/54640/54640eq6.jpg" /> X i는 일의 몰 비율을 나타냅니다전자 내가 종 i 번째의 양자 수율입니다 종 및 Ø를 토륨. 형광 강도가 적정 따라 극적으로 변경되는 경우 이에 따라,이 아닌 이방성 신호의 형광 신호의 변화의 함수로서 복합체 형성을 측정 또는 형광 강도 이방성 모두 맞춤으로써 관찰 이방성 값을 정정하거나 더 낫다 데이터. SBDS 플래시의 형광은 형광 이방성이 두 단백질 사이의 결합을 측정하기에 적합 제안 (그림 2) EFL1 결합시하지에 띄는 변화를 않습니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/54640/54640fig2.jpg" /> EFL1의 농도를 증가의 적정시 SBDS 플래시 그림 2. 형광 방출. 형광의 형광 방출의 변화가 negligibl 있습니다전자 및 적정 따라 랜덤. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54640/54640fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> SBDS 플래시에 EFL1의 적정로부터 얻어진 곡선 결합 형광 이방성의 예는도 3에 도시되어있다. 질적 그래프의 형상이 명확하게 첨가시 이방성 신호의 증가에 의해 입증되는 바와 같이 두 개의 단백질이 상호 작용하는 것을 도시 EFL1. 또한, 이방성 값이 적정 끝에 모든 SBDS 플래시 EFL1 단백질과 복합체에 존재하는 것을 시사 정체기에 도달 하였다. 정량적 이들 단백질의 상호 작용을 기술하고, 추정 된 결합 모델에 비선형 최소 제곱 회귀를 사용하여 데이터에 적합하고 해당 해리 평형 상수 수득하고있다. 한 바인딩 사이트 모델을 피팅하는 appropri하지 않았다ately 실험 데이터 (그림 3A)를 설명합니다. 이 바인딩 곡선 피팅 추적에서뿐만 아니라 감지 및 무작위 적이있는 맞는 (이론과 실험 데이터 사이의 차이)의 잔차의 편차에서뿐만 아니라 분명하다. 이는 단일 결합 부위 모델은 쌍곡선보다는도 3에 제시된 실험 데이터에서 관찰 된 것과 같은 S 자형 곡선에 의해 수학적으로 기술되어 있다는 사실과 잘 일치. 한편, 모델 같은 동일한 두 개의 상이한 구속력 사이트는 실험 데이터와 맞는 쇼 잔차 2 사이트 연관 모델 (도 3B-C)를지지하는 체계적인 편차를 더 설명한다. 다른 실험 정보의 부재와 EFL1 SBDS 간의 결합기구에 해당하는 두 모델의 확립하는 것이 곤란하다. 그럼에도 불구하고, SBDS 및 EFL1 두 단량체 단백질, 그래서 diffic입니다ULT는 두 개의 동일한 결합 부위 모델을 직시합니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/54640/54640fig3.jpg" /> . (A) 단일 사이트, (B) 두 개의 동일한 사이트 : EFL1 및 SBDS 플래시 간의 상호 작용도 3 형광 이방성 결합 등온선은 상부 그래프의 각각의 실선은 상이한 결합 모델 데이터의 피트에 대응 및 (C)는 두 개의 동일하지 않은 사이트. 낮은 플롯은 해당 모델에 맞는 잔차를 나타냅니다. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54640/54640fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Fluorescence Anisotropy as a Tool to Study Protein-protein Interactions

단백질 상호 작용은 세포의 기능의 핵심이다. 열량 및 분광 기술은 일반적으로 그 특성을하는 데 사용됩니다. 여기에서 우리는 Shwachman - 다이아몬드 증후군 (SBDS)에 돌연변이 단백질과 신장 인자 같은 1는 GTPase (EFL1) 사이의 상호 작용을 연구하는 도구로 형광 이방성을 설명합니다.

단백질 - 단백질 상호 작용을 연구하는 도구로 형광 이방성

Protein-protein interactions play an essential role in the function of a living organism. Once an interaction has been identified and validated it is ...

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Nanyang Technological University

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30.3K 조회수.  Universidad Nacional Autónoma de México.  단백질 상호 작용은 세포의 기능의 핵심이다. 열량 및 분광 기술은 일반적으로 그 특성을하는 데 사용됩니다. 여기에서 우리는 Shwachman - 다이아몬드 증후군 (SBDS)에 돌연변이 단백질과 신장 인자 같은 1는 GTPase (EFL1) 사이의 상호 작용을 연구하는 도구로 형광 이방성을 설명합니다. 

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Utilizing the Ethylene-releasing Compound, 2-Chloroethylphosphonic Acid, as a Tool to Study Ethylene Response in Bacteria

Ethylene (C2H4) is a gaseous phytohormone that is involved in numerous aspects of plant development, playing a dominant role in senescence and fruit ripening. Exogenous ethylene applied during early plant development triggers the triple response phenotype; a shorter and thicker hypocotyl with an exaggerated apical hook. Despite the intimate relationship between plants and bacteria, the effect of exogenous ethylene on bacteria has been greatly overlooked. This is partly due to the difficulty of controlling gaseous ethylene within the laboratory without specialized equipment. 2-Chloroethylphosphonic acid (CEPA) is a compound that decomposes into ethylene, chlorine, and phosphate in a 1:1:1:1 molar ratio when dissolved in an aqueous medium of pH 3.5 or greater. Here we describe the use of CEPA to produce in situ ethylene for the investigation of ethylene response in bacteria using the fruit-associated, cellulose-producing bacterium Komagataeibacter xylinus as a model organism. The protocols described herein include both the verification of ethylene production from CEPA via the Arabidopsis thaliana triple response assay and the effects of exogenous ethylene on K. xylinus cellulose production, pellicle properties and colonial morphology. These protocols can be adapted to examine the effect of ethylene on other microbes using appropriate growth media and phenotype analyses. The use of CEPA provides researchers with a simple and efficient alternative to pure ethylene gas for the routine determination of bacterial ethylene response.

The protocols outlined herein facilitate the convenient investigation of bacterial ethylene responses by utilizing 2-chloroethylphosphonic acid (CEPA). Ethylene is produced in situ through the decomposition of CEPA in an aqueous bacterial growth medium, circumventing the requirement for pure ethylene gas.

도구로 에틸렌 방출 화합물, 2- 클로로 에틸 산을 활용하여 박테리아의 에틸렌 응답을 공부하기

Ethylene (C2H4) is a gaseous phytohormone that is involved in numerous aspects of plant development, playing a dominant role in senescence and fruit ...

연구

생화학

Using Scaffold Liposomes to Reconstitute Lipid-proximal Protein-protein Interactions In Vitro

Studies of integral membrane proteins in vitro are frequently complicated by the presence of a hydrophobic transmembrane domain. Further complicating these studies, reincorporation of detergent-solubilized membrane proteins into liposomes is a stochastic process where protein topology is impossible to enforce. This paper offers an alternative method to these challenging techniques that utilizes a liposome-based scaffold. Protein solubility is enhanced by deletion of the transmembrane domain, and these amino acids are replaced with a tethering moiety, such as a His-tag. This tether interacts with an anchoring group (Ni2+ coordinated by nitrilotriacetic acid (NTA(Ni2+)) for His-tagged proteins), which enforces a uniform protein topology at the surface of the liposome. An example is presented wherein the interaction between Dynamin-related protein 1 (Drp1) with an integral membrane protein, Mitochondrial Fission Factor (Mff), was investigated using this scaffold liposome method. In this work, we have demonstrated the ability of Mff to efficiently recruit soluble Drp1 to the surface of liposomes, which stimulated its GTPase activity. Moreover, Drp1 was able to tubulate the Mff-decorated lipid template in the presence of specific lipids. This example demonstrates the effectiveness of scaffold liposomes using structural and functional assays and highlights the role of Mff in regulating Drp1 activity.

Using Scaffold Liposomes to Reconstitute Lipid-proximal Protein-protein Interactions In Vitro

This paper describes a method for assessing the interactions and assemblies of integral membrane proteins in vitro with various partner factors in a lipid-proximal environment.

비계 리포좀을 사용하여 근위 지질 단백질 - 단백질 상호 작용을 재구성<em&gt; 체외</em

Studies of integral membrane proteins in vitro are frequently complicated by the presence of a hydrophobic transmembrane domain. Further complicating ...

Biotinylated Cell-penetrating Peptides to Study Intracellular Protein-protein Interactions

Here we present a protocol to study intracellular protein-protein interactions that is based on the widely used biotin-avidin pull-down system. The modification presented includes the combination of this technique with cell-penetrating sequences. We propose to design cell-penetrating baits that can be incubated with living cells instead of cell lysates and therefore the interactions found will reflect those that occur within the intracellular context. Connexin43 (Cx43), a protein that forms gap junction channels and hemichannels is down-regulated in high-grade gliomas. The Cx43 region comprising amino acids 266-283 is responsible for the inhibition of the oncogenic activity of c-Src in glioma cells. Here we use TAT as the cell-penetrating sequence, biotin as the pull-down tag and the region of Cx43 comprised between amino acids 266-283 as the target to find intracellular interactions in the hard-to-transfect human glioma stem cells. One of the limitations of the proposed method is that the molecule used as bait could fail to fold properly and, consequently, the interactions found could not be associated with the effect. However, this method can be especially interesting for the interactions involved in signal transduction pathways because they are usually carried out by intrinsically disordered regions and, therefore, they do not require an ordered folding. In addition, one of the advantages of the proposed method is that the relevance of each residue on the interaction can be easily studied. This is a modular system; therefore, other cell-penetrating sequences, other tags, and other intracellular targets can be employed. Finally, the scope of this protocol is far beyond protein-protein interaction because this system can be applied to other bioactive cargoes such as RNA sequences, nanoparticles, viruses or any molecule that can be transduced with cell-penetrating sequences and fused to pull-down tags to study their intracellular mechanism of action.

This is a protocol to study intracellular protein-protein interactions based on the biotin-avidin pull-down system with the novelty of combining cell-penetrating sequences. The main advantage is that the target sequence is incubated with living cells instead of cell lysates and therefore the interactions will occur within the cellular context.

Biotinylated 세포 관통 펩 티 드 세포내 단백질-단백질 상호 작용을 공부 하

Here we present a protocol to study intracellular protein-protein interactions that is based on the widely used biotin-avidin pull-down system. The ...

Using Three-color Single-molecule FRET to Study the Correlation of Protein Interactions

Single-molecule F&#246;rster resonance energy transfer (smFRET) has become a widely used biophysical technique to study the dynamics of biomolecules. For many molecular machines in a cell proteins have to act together&#160;with interaction partners in a functional cycle to fulfill their task. The extension of two-color to multi-color smFRET makes it possible to simultaneously probe more than one interaction or conformational change. This not only adds a new dimension to smFRET experiments but it also offers the unique possibility to directly study the sequence of events and to detect correlated interactions when using an immobilized sample and a total internal reflection fluorescence microscope (TIRFM). Therefore, multi-color smFRET is a versatile tool for studying biomolecular complexes in a quantitative manner and in a previously unachievable detail.
Here, we demonstrate how to overcome the special challenges of multi-color smFRET experiments on proteins. We present detailed protocols for obtaining the data and for extracting kinetic information. This includes trace selection criteria, state separation, and the recovery of state trajectories from the noisy data using a 3D ensemble Hidden Markov Model (HMM). Compared to other methods, the kinetic information is not recovered from dwell time histograms but directly from the HMM. The maximum likelihood framework allows us to critically evaluate the kinetic model and to provide meaningful uncertainties for the rates.
By applying our method to the heat shock protein 90 (Hsp90), we are able to disentangle the nucleotide binding and the global conformational changes of the protein. This allows us to directly observe the cooperativity between the two nucleotide binding pockets of the Hsp90 dimer.

Here, we present a protocol to obtain three-color smFRET data and its analysis with a 3D ensemble Hidden Markov Model. With this approach, scientists can extract kinetic information from complex protein systems, including cooperativity or correlated interactions.

3 색 단일 분자 무서 워를 사용 하 여 단백질 상호 작용의 상관 관계를 연구 하

Single-molecule F&#246;rster resonance energy transfer (smFRET) has become a widely used biophysical technique to study the dynamics of biomolecules. For ...

A Yeast 2-Hybrid Screen in Batch to Compare Protein Interactions

Screening for protein-protein interactions using the yeast 2-hybrid assay has long been an effective tool, but its use has largely been limited to the discovery of high-affinity interactors that are highly enriched in the library of interacting candidates. In a traditional format, the yeast 2-hybrid assay can yield too many colonies to analyze when conducted at low stringency where low affinity interactors might be found. Moreover, without a comprehensive and complete interrogation of the same library against different bait plasmids, a comparative analysis cannot be achieved. Although some of these problems can be addressed using arrayed prey libraries, the cost and infrastructure required to operate such screens can be prohibitive. As an alternative, we have adapted the yeast 2-hybrid assay to simultaneously uncover dozens of transient and static protein interactions within a single screen utilizing a strategy termed DEEPN (Dynamic Enrichment for Evaluation of Protein Networks), which incorporates high-throughput DNA sequencing and computation to follow the evolution of a population of plasmids that encode interacting partners. Here, we describe customized reagents and protocols that allow a DEEPN screen to be executed easily and cost-effectively.

Batch processing of yeast 2-hybrid screens allows for direct comparison of the interaction profiles of multiple bait proteins with a highly complex set of prey fusion proteins. Here, we describe refined methods, new reagents, and how to implement their use for such screens.

단백질 상호 작용을 비교 하는 배치에 효 모 2 잡종 스크린

Screening for protein-protein interactions using the yeast 2-hybrid assay has long been an effective tool, but its use has largely been limited to the ...

A Fluorescence Fluctuation Spectroscopy Assay of Protein-Protein Interactions at Cell-Cell Contacts

A variety of biological processes involves cell-cell interactions, typically mediated by proteins that interact at the interface between neighboring cells. Of interest, only few assays are capable of specifically probing such interactions directly in living cells. Here, we present an assay to measure the binding of proteins expressed at the surfaces of neighboring cells, at cell-cell contacts. This assay consists of two steps: mixing of cells expressing the proteins of interest fused to different fluorescent proteins, followed by fluorescence fluctuation spectroscopy measurements at cell-cell contacts using a confocal laser scanning microscope. We demonstrate the feasibility of this assay in a biologically relevant context by measuring the interactions of the amyloid precursor-like protein 1 (APLP1) across cell-cell junctions. We provide detailed protocols on the data acquisition using fluorescence-based techniques (scanning fluorescence cross-correlation spectroscopy, cross-correlation number and brightness analysis) and the required instrument calibrations. Further, we discuss critical steps in the data analysis and how to identify and correct external, spurious signal variations, such as those due to photobleaching or cell movement.
In general, the presented assay is applicable to any homo- or heterotypic protein-protein interaction at cell-cell contacts, between cells of the same or different types and can be implemented on a commercial confocal laser scanning microscope. An important requirement is the stability of the system, which needs to be sufficient to probe diffusive dynamics of the proteins of interest over several minutes.

This protocol describes a fluorescence fluctuation spectroscopy-based approach to investigate interactions among proteins mediating cell-cell interactions, i.e. proteins localized in cell junctions, directly in living cells. We provide detailed guidelines on instrument calibration, data acquisition and analysis, including corrections to possible artefact sources.

셀 연락처에서 단백질 단백질 상호 작용의 형광 변동 분광학 분석 결과

A variety of biological processes involves cell-cell interactions, typically mediated by proteins that interact at the interface between neighboring ...

Application of Biolayer Interferometry (BLI) for Studying Protein-Protein Interactions in Transcription

A transcription factor&#160;(TF) is a protein that regulates gene expression by interacting with the RNA polymerase, another TF, and/or template DNA. GrgA is a novel transcription activator found specifically in the obligate intracellular bacterial pathogen Chlamydia. Protein pulldown assays using affinity beads have revealed that GrgA binds two &#963; factors, namely &#963;66 and &#963;28, which recognize different sets of promoters for genes whose products are differentially required at developmental stages. We have used BLI to confirm and further characterize the interactions. BLI demonstrates several advantages over pulldown: 1) It reveals real-time association and dissociation between binding partners, 2) It generates quantitative kinetic parameters, and 3) It can detect bindings that pulldown assays often fail to detect. These characteristics have enabled us to deduce the physiological roles of GrgA in gene expression regulation in Chlamydia, and possible detailed interaction mechanisms. We envision that this relatively affordable technology can be extremely useful for studying transcription and other biological processes.

Application of Biolayer Interferometry BLI for Studying Protein-Protein Interactions in Transcription

Interactions of transcription factors (TFs) with the RNA polymerase are usually studied using pulldown assays. We apply a Biolayer Interferometry (BLI) technology to characterize the interaction of GrgA with the chlamydial RNA polymerase. Compared to pulldown assays, BLI detects real-time association and dissociation, offers higher sensitivity, and is highly quantitative.

전사에서 단백질-단백질 상호 작용을 연구하기 위한 생체층 간섭측정기(BLI) 적용

A transcription factor&#160;(TF) is a protein that regulates gene expression by interacting with the RNA polymerase, another TF, and/or template DNA. GrgA ...

Evaluation of Protein&#8211;Protein Interactions using an On-Membrane Digestion Technique

Numerous intracellular proteins physically interact in accordance with their intracellular and extracellular circumstances. Indeed, cellular functions largely depend on intracellular protein&#8211;protein interactions. Therefore, research regarding these interactions is indispensable to facilitating the understanding of physiologic processes. Co-precipitation of associated proteins, followed by mass spectrometry (MS) analysis, enables the identification of novel protein interactions. In this study, we have provided details of the novel technique of immunoprecipitation-liquid chromatography (LC)-MS/MS analysis combined with on-membrane digestion for the analysis of protein&#8211;protein interactions. This technique is suitable for crude immunoprecipitants and can improve the throughput of proteomic analyses. Tagged recombinant proteins were precipitated using specific antibodies; next, immunoprecipitants blotted onto polyvinylidene difluoride membrane pieces were subjected to reductive alkylation. Following trypsinization, the digested protein residues were analyzed using LC-MS/MS. Using this technique, we were able to identify several candidate associated proteins. Thus, this method is convenient and useful for the characterization of novel protein&#8211;protein interactions.

Here, we present a protocol for an on-membrane digestion technique for the preparation of samples for mass spectrometry. This technique facilitates the convenient analysis of protein&#8211;protein interactions.

온-막 소화 기술을 사용한 단백질-단백질 상호 작용의 평가

Numerous intracellular proteins physically interact in accordance with their intracellular and extracellular circumstances. Indeed, cellular functions ...

In Vivo Hydroxyl Radical Protein Footprinting for the Study of Protein Interactions in Caenorhabditis elegans

Fast oxidation of proteins (FPOP) is a hydroxyl radical protein footprinting (HRPF) method used to study protein structure, protein-ligand interactions, and protein-protein interactions. FPOP utilizes a KrF excimer laser at 248 nm for photolysis of hydrogen peroxide to generate hydroxyl radicals which in turn oxidatively modify solvent-accessible amino acid side chains. Recently, we expanded the use of FPOP of in vivo oxidative labeling in Caenorhabditis elegans (C. elegans), entitled IV-FPOP. The transparent nematodes have been used as model systems for many human diseases. Structural studies in C. elegans by IV-FPOP is feasible because of the animal&#8217;s ability to uptake hydrogen peroxide, their transparency to laser irradiation at 248 nm, and the irreversible nature of the modification. The assembly of a microfluidic flow system for IV-FPOP labeling, IV-FPOP parameters, protein extraction, and LC-MS/MS optimized parameters are described herein.

In Vivo Hydroxyl Radical Protein Footprinting for the Study of Protein Interactions in Caenorhabditis elegans

In vivo fast photochemical oxidation of proteins (IV-FPOP) is a hydroxyl radical protein footprinting technique that allows for mapping of protein structure in their native environment. This protocol describes the assembly and set-up of the IV-FPOP microfluidic flow system.

체노하브디염 예쁜꼬마선충의 단백질 상호작용 연구를 위한 생체내 하이드록실 라디칼 단백질 발자국

Fast oxidation of proteins (FPOP) is a hydroxyl radical protein footprinting (HRPF) method used to study protein structure, protein-ligand interactions, ...

Optical Tweezers to Study RNA-Protein Interactions in Translation Regulation

RNA adopts diverse structural folds, which are essential for its functions and thereby can impact diverse processes in the cell. In addition, the structure and function of an RNA can be modulated by various trans-acting factors, such as proteins, metabolites or other RNAs. Frameshifting RNA molecules, for instance, are regulatory RNAs located in coding regions, which direct translating ribosomes into an alternative open reading frame, and thereby act as gene switches. They may also adopt different folds after binding to proteins or other trans-factors. To dissect the role of RNA-binding proteins in translation and how they modulate RNA structure and stability, it is crucial to study the interplay and mechanical features of these RNA-protein complexes simultaneously.&#160;This work illustrates how to employ single-molecule-fluorescence-coupled optical tweezers to explore the conformational and thermodynamic landscape of RNA-protein complexes at a high resolution. As an example, the interaction of the SARS-CoV-2 programmed ribosomal frameshifting element with the trans-acting factor short isoform of zinc-finger antiviral protein is elaborated. In addition, fluorescence-labeled ribosomes were monitored using the confocal unit, which would ultimately enable the study of translation elongation. The fluorescence coupled OT assay can be widely applied to explore diverse RNA-protein complexes or trans-acting factors regulating translation and could facilitate studies of RNA-based gene regulation.

This protocol presents a complete experimental workflow for studying RNA-protein interactions using optical tweezers. Several possible experimental setups are outlined including the combination of optical tweezers with confocal microscopy.