S.M.H. 건강 연구 (CIHR), 심장 및 스트로크 재단의 캐나다 (HSFC) 및 앨버타 혁신적인 건강 솔루션 (AiHS);에 대 한 캐나다 기관에서 박사 장학금에 의해 지원 되었다 J.E.H.는 국가 심 혼, 폐 및 혈액 연구소 PO1HL-51971에서 교부 금에 의해 지원 됩니다.

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여기 우리 설명, 시연 하 고 의식 마우스, 이동 하 고 그들의 홈 장에서 편안 하 게 휴식 무료에서 방사선학의 대상된 평가 대 한 새로운 방법을 확인. 동맥 압력 radiotelemeter, 내재 주입 정 맥 카 테 터와 맞춤형 바이 폴라 방사선학 전극의 외과 주입, 다음 마우스 수술에서 회복 하 고 48-72 시간에 그대로 남았다. 마우스 편안 하 게 정착 남아 새 장에 그들의 가정 (를 포함 하 여 실험 기간) 항상 음식, 물, 환경 농축에 대 한 무제한 액세스를. 조사에 의해 모든 다음 실험 조작 원격 고 동물을 disquiet 하지 않았다. 품질 및 방사선학 신호 해석,이 이렇게 완전히 제거 구속 뿐만 아니라 마 취와 수술 외상의 바람직하지 못한와 피할 수 없는 생리 적 합병증과 신체적, 정신적 스트레스의 다른 소스 동물입니다. 따라서, 동 정적인 신경 활동 측정의 해석을 변함없이 영향 있는 이러한 심각한 혼란 요소를 효과적으로 삭제 되었다.
모든 마우스 좋은 건강에을 일찍 수술 24 시간 후, 밝기, 활동, 응답성, 먹고, 마시고, 손질로 쾌활 하 고 예비 동작 등 일반적인 동작을 표시 합니다. 모든 동물 이러한 특성을 전시 하 고 적극적으로 실행 가능한 방사선학 신호 기록 수 여부에 관계 없이 제공 된 환경 농축 약혼. 비록 완전히 복구 시간이 필요 복원 radiotelemetric 프로브의 다음 주입은 소문에 하면 4-7 일9, 동맥 압력 반환 정상으로 훨씬 더 빨리, 값에 의해 표시 된 대로 정상적인 혈압 혈압과 심장 박동에 대 한 여기를 보고. 사실, 이러한 심장 혈관 매개 변수는 이전에 보고 된 최대 허용 했다 마찬가지로 계측 동물에서 10 일 수술8,10에서 회복 하기 위해 그.
유체-채워진 카 테 테 르 통해 혈압 측정을 위한 radiotelemetric 프로브를 사용 하 것은 고의적으로,이 쥐에 게 스트레스를 감소 하 고 또한 더 명확 하 고 신뢰할 수 있는 혈액과 펄스 압력 신호 및 심장 박동 값11을 생성. 이후 자주 플러시하고 액체 가득 동맥 카 테 테 르는 필연적으로 방해 하지 동물, heparinized 염 분으로 유지의 필요가 완전히 제거 기록 혈압 telemetric 기술을 사용 하 여 추가 이점을 포즈. 또한, 수술, 고정 및 정 맥 카 테 터와 바이 폴라 전극 리드 보호 우리의 접근 방법부터 피하 포켓12리드의 임시 저장소를 설명 하는 다른 보고서에 비해 이상적 이다 exteriorizing의 접근 심지어 간단한 다시 마 취와 수술 조작 실험 기록, 직전 동물의 의심할 여 지 없이 마우스를 교란 고 품질과 뛰어나고 정교 중요 한 자율 신경의 손상 방지 데이터입니다.
이 메서드는 품질 조용히 마우스를 쉬고 편안, 배경 잡음에 명확 하 게 구별 전기 활동의 특성 파열에 의해 시연 진정한 방사선학 신호를 생성 합니다. 또한, 방사선학 및 문학13,14에서 보고 먹고 조용한 손질 같은 동물에 신체 활동에 일반적인 응답을 보여주었다. 자연 스러운 움직임 또는 동물의 경계와 예상 방사선학 특성 증가 감안할 때, 그것은 따라서 절대적 참고 실험 분석을 목적으로이 기간을 제외 하 고는 기록의 세그먼트에 집중 하는 동물을 조용히 휴식 하 고. 이 데이터의 가능한 오해를 방지할 수 있습니다. 데이터 오해도 이어질 수 있는 다른 요소에는 ECG 펄스15신호 오염 뿐만 아니라 전기 노이즈 또는 간섭, 포함 됩니다. Exteriorized 부분의 전극 리드의 과도 한 움직임의 방사선학 신호 품질에도 영향을 미칠 수 있다 고는 불안정 하거나 "떨리는"으로 나타날 수 있습니다. 때때로 신호 간섭 수의 이러한 소스 표시 및 자발적으로 확실 하 게 기록 하는 동안 사라지고 분석5,,1516에서 제외 해야 합니다. 추가 고려는 기록을 얻을 수 있습니다 하는 시간 이다. 혈압과 방사선학 할 다릅니다 circadian 리듬과 실험을 실시이 잠재적으로 혼란 함을 주 죠 요소를 피하기 위해 하루 중 같은 시간에 이상적입니다 그래서 중요 하다. 이 연구에서 우리 않았다 관찰 하지 circadian 진동으로 인해 혈압과 방사선학의 중대 한 다양성으로 우리 사이 오전 10 6-잘 일광 주기의 동물 주택 시설 내에서 모든 매개 변수를 기록. 이 보고서의 또 다른 중요 한 구성 요소 처럼, 실제로 동맥 baroreflex와 최은 방사선학 신호의 유효성 검사입니다. 조직의 혈액 압력에 있는 급속 한 감소와 약리학 유도 드롭 증가와 동시에 방사선학의 해발 고도 감안할 때, 동맥 baroreflex는 가장 확실히 그대로-자체의 그 폐색 이식 보여줍니다는 radiotelemetry 한 경 동맥에 카 테 터 정상적인 심장 혈관 기능을 방해 하지 않습니다. 늄 추가와 절 봉쇄 시 방사선학 신호의 가상 실종 postganglionic 방사선학의 기록을 확인합니다.
그러나 우리와이 분야에서 다른 인식 만성 계측 동물, 특히 쥐, 자율 신경의 장기적인 생존 능력을 유지 하기 어려운 남아 있다, 쥐에 대 한 더 이상 수술 후 회복 기간을 제공 하는 이상적인 것입니다. 방사선학 신호 품질 저하 수술 후 몇 일간의 과정 동안, 하지만 여전히 안정적으로 기록 하 진정한 방사선학 모든 마우스에서 적어도 3 일 연속에 대 한 동물의 절반 정도에서 최대 5 일 동안 가능 했다. 그 자체로이 성취 생쥐에서 자율 연구의 분야에 획기적인을 의미합니다. 여러 실험을 기록 하 고 재판에서 같은 동물 다른 일에, 물론, 예 심 순서 및 적절 한 초기 기록의 랜덤 수를 제어할 수로 또한,이 방법 귀중 한 유전자 변형 동물의 사용을 극대화 각 실험17전에. 그것은 의식 설치류18,19,20 telemetric 신경 기록 쥐 에 대 한 기술 발전 등에서 실시 하는 장기 동 정적인 신경 녹음의 성공적인 보고서를 보고 격려 15,21. 의식이 마우스에 사용 하기 위해이 기술의 소형화 출간 이며 그 동안, 우리는이 기술을 확장 하는 실험적인 창 고 아마도 더 이상 허용 교감 신경 섬유의 장 수를 증가 하기 위하여 향상 노력 수술 후 회복 시간입니다. 그러나,이 방법 유용 하 고 쉽게 접근 하 고 저렴 한 대체/보완 어떤 미래 발달 든 지에 남아 telemetric 신경 녹음 기술의 마우스, 전용된 장비 및 일반 장치에 투자 필요에 유지 보수입니다.
쥐에 있는 심장 혈관과 자율 기능을 평가 하기 위한 신뢰할 수 있는 기술에 대 한 필요 정말 대 단, 모델 생물 의학 연구의 분야에서 유전자 변형 마우스에 점점 관심을 고려 적이 있다. 그러나 생리학, 있다 아직까지 표준화 및 마우스에서 자율 기능을 평가 하기 위한 접근을 최적화 갈의 많은 분야에서 큰 진보를 만들어왔다. 날짜 하려면, 의식 마우스12감각 신경 활동의 한 보고서 설명 측정이입니다. 이 방법은 방광 감각 신경 활동의 측정을 설명 하 고 과정에서 마 취와 수술 조작 실험 녹음 직전 피하 배치 카의 쥐의 물리적 구속을 포함 실험 프로토콜12의. 이러한 요소는 신경 신장 신경 뿐만 아니라 관심의 다양 한 기록에 확실히 맞출 수 존재 방식으로 완전히 피할 수 있는 스트레스를 알려져 있습니다. 그러나 의식 쥐에서 교감 신경 측정 더 최근에, 보고 되었습니다, 그리고,이 측정은 크게 실시 시간 진통 관리22의 언급으로 수술 준비를 다음. 자율 기능 이러한 보고서 이외에도 달리 되어 마 취 쥐에 독점적으로 평가. 문학의 철저 한 검토 생성 한 다양 한 접근, 시간-긴 실험 기간, 마 취 조합/복용량, 기계 환기와 자주 창조적인 조치를 일부 유사 베어링 상태에서 마우스를 유지 하는 생리 (즉 산소는 동물의 코를 향해 직접 날 려)23,,2425,26,27,28,29, 30,31. 이러한 연구 중 혈압 값의 보고서는 결 석, 또는 abysmally 낮은-조직의 동맥 압력2의 생리 적인 범위입니다. 이것은 많은 수준에 있지만 특히 문제가 그래서이 동물에 자율 기능에 대 한 적절 한 평가 걱정 주어 혈압과 자율 톤 사이 설립된 링크. 스스로 마 취 에이전트 직접 그 마 취 따 윈 공감 활동을 제안 하는 많은 보고서와 동 정적인 음색에 영향을. 사실, 증거, 보여 그 우 레 탄, 급성 신경 실험32기록에 대 한 가장 널리 선택된 마 취 복용량 독립적으로 감소 방사선학33 고 동맥 baroreflex34을 억제. 반대로, 다른 보고서는 우 레 탄 동 정적인 음색35증가 것이 좋습니다. 그러나 허락 하신다면, 이러한 연구는 일반적으로 기록 된 기준선에서 변화로 실험 신경 활동 비교, 위에 설명한 조건 하에서 자율 신경의 상태 변경된 대단한 걸로 신경에 개별 변경 내용 감지 활동입니다.
이 방법의 도전 의식이 신경 녹음에 대 한 마우스의 성공적인 준비에 필요한 외과 기술에 주로 있다. 그러나 제작이 기술을 연마에 대 한 투자 이상의 품질과 직접적인 방사선학 데이터의 신뢰성에 의해 보상 된다. 이 접근은 완전히 자율 제어 플라즈마 카 테 콜 아민 수준, 쥐에서 매우 불안정 하 고 고통 없이 수집된36수 있는 혈액의 양에 의해 제한 등의 간접 평가로 인 한 한계를 circumvents. 또한, 플라즈마 카 테 콜 아민 수준 뿐만 아니라 약리 자율 봉쇄 견적 전반적인 자율은 일반적으로 더 많은 관심의 특정 신경 인구의 개별 기여 반대1 톤. 그러나 혈압과 심장 박동 추적의 파워 스펙트럼 분석을 통해 자율 톤의 수학 평가이 기술은 쥐36,37적응 되지 않을 수 있습니다 인간의 과목, 자율 기능을 평가 하는 데 유용 합니다. 따라서, 의식, 편안 하 게 휴식 마우스에서 신경 활동의 직접 샘플링은 밀접 하 게 피사체의 자연, 그대로 자율 상태를 반영 하 고 선택 된 신경에의 기여의 정교한 평가 용이 하 게 이상적 이다 관심의 생리 적 현상입니다.

생물 의학 연구의 여러 영역에서 마우스를 사용 하 여 관심 수많은 유전자 조작된 모델의 개발을 확장 하 고 있습니다. 대부분의 경우, 기술 진보는 생리학에서 마우스의 사용 증가와 속도 유지 그리고 지금 쥐에 있는 중요 한 생리 적 파라미터 측정을 위해 특별히 개발 된 소형된 장치의 인상적인 선택을. 비록 telemetric 장치에 대 한 직접 측정의 자율 의식 쥐에서 신경 톤 10 년 동안 사용할 수 있다, 의식 쥐의 신경 활동을 평가 하기 위한 소형된 장치는 현재 사용할 수 없습니다. 조사는 일반적으로 간접 방법 (플라즈마 또는 소변 catecholamines, 약리 자율 봉쇄, 혈액의 패턴의 스펙트럼 분석으로 자율 신 경계에의 기여를 평가 하 여이 제한을 회피합니다 압력/심장 박동)1.
이러한 접근 귀중 한 정보를 제공 하는 동안 결과 고립 된 인구 조사 현상에 신경의의 개별 기여를 공개 하는 것 보다는 전반적인 자율 톤의 세계적인 사진입니다. 또는, 특정 신경에서 활동의 직접 녹음 처형 되었습니다 마 취 쥐에는 다양 한 문제를 포즈. 시간 수술을 다음과 같은 몇 가지에 대 한 마 취 마우스에 생리 적 범위 내에서 안정 된 혈압을 유지 하는 것이 상당히 어렵습니다. 사실, 이러한 유형의 실험에서 혈압은 종종 unreported 또는 매우 낮은 수준에서 (즉, 60-80 mmHg 대 > 의식 마우스에서 100mmHg)2. 전시에 마 취 마우스 종종 심장 혈관 시스템의 취약성 걸로 하겠습니다 혈압과 공감 톤3, 간의 종속 관계를 주어 자율 신경 활동의 의미 있는 평가 4.
이 한계를 의식에서 신장 교감 신경 활동 (방사선학)의 직접 녹음에 대 한 새로운 방법을 해결 하기 위해 억제 쥐, 그대로 자신의 집 새 내에서 개발 되었다. 모두이 기술의 성공적인 구현에 대 한 수술 및 실험 방법을 자세히 설명 합니다. 이 준비는 동시에 정 맥 마우스를 방해 하지 않고 관심의 에이전트에 추가 기능이 있는 방사선학, 뿐만 아니라 radiotelemetry 통해 동맥 압력 기록 조사 수 있습니다.
24 시간 수술 후 마우스 정상적으로 동작 하 고 통증이 나 조 난의 표시를 전시 하지 않습니다. 다음 실험 녹음은 마우스 위에 편안 하 게 음식, 물, 환경 농축에 대 한 무제한 액세스를 가정 그것의 감 금에서 동안 수술 후 48-72 시간을 시작할 수 있습니다. 명확한 방사선학 추적 표시 됩니다 하 고 (예: 식사 및 정리) 동물의 정상적인 신체 움직임에이 신경 인구의 특성 응답 조직 혈압의 약리 변조 뿐만 아니라 시연. 품질 및 방사선학 신호의 특이성 더 절 봉쇄에 의해 유효성이 검사 됩니다. 이 원고는이 기술은5의 처음 게시 된 설명에 시청각 보완 포함 되어 있습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Teflon-coated stainless steel multiple stranded wire</td>
			<td>A-M Systems</td>
			<td>793200</td>
			<td>0.001in diameter bare; 0.0055in diameter coated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#11 Scalpel Blade</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>ALMM9011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Soldering Iron and solder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Any make or model suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Male miniature pin connectors</td>
			<td>A-M Systems</td>
			<td>520200</td>
			<td>Brass with gold plating</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Female miniature pin connectors</td>
			<td>A-M Systems</td>
			<td>520100</td>
			<td>Brass with gold plating</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat Shrink tubing</td>
			<td>Radio Shack</td>
			<td>Model #: 278-1610 |&#160;Catalog #: 2781610</td>
			<td>1.6 mm diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene 90 (PE90) tubing</td>
			<td>VWR</td>
			<td>CA-63018-703</td>
			<td>0.86mm inner diameter; 1.27mm outer diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting microscope</td>
			<td>Leica Microsystems</td>
			<td>Leica M80</td>
			<td>Any make or model also suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene 10 (PE10) tubing</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>PE10&#160;50 FT</td>
			<td>0.28mm inner diameter; 0.61mm outer diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super Glue Liquid</td>
			<td>Loctite</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Liquid Formula; any brand suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super Glue Gel</td>
			<td>Loctite</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Gel Formula; any brand suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene tubing</td>
			<td>Scientific Commodities</td>
			<td>BB31695-PE/13</td>
			<td>For pedestal 2.7mm inner diameter; 4.0mm outer diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hospital Sterilization Services &#38; Ozone Sterilization packets</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Contact local hospital sterilization services</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane anesthesia</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>05260-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Deltaphase isothermal heat pads &#38; surgical table</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>39OP</td>
			<td>Keep heat pads warm in a 37&#176;C water bath; Corresponding surgical table essential</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate</td>
			<td>Amdipharm Mercury Company Limited</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane vaporizer system &#38; flow gauge</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>VP I</td>
			<td>Include medical grade oxygen supply</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14173-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine spring scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15006-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small cotton-tipped applicators</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>23400100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine Straight Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11254-20</td>
			<td>#5, FST by Dumont Biologie Tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Angled Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11251-35</td>
			<td>#5/45 FST by Dumont</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Absorbent Spears</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>18105-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>BR701605&#160;ALDRICH</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kwik-Sil 2 component Silicone Polymer</td>
			<td>World Precision Instruments (WPI)</td>
			<td>KWIK-SIL</td>
			<td>Purchase extra specialized tips from WPI</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-0 Polysorb Suture</td>
			<td>Tyco Healthcare</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Silk Suture</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>SUT-S&#160;104</td>
			<td>Deknatel brand, spool</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Radiotelemetry Probe</td>
			<td>Data Sciences International (DSI)</td>
			<td>TA11-PAC10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Radiotelemetry Receiver</td>
			<td>Data Sciences International (DSI)</td>
			<td>PhysioTel RPC-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ambient Pressure Reference</td>
			<td>Data Sciences International (DSI)</td>
			<td>Apr-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure Output Adapter</td>
			<td>Data Sciences International (DSI)</td>
			<td>R11CPA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rena Pulse Tubing</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td>RPT-040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion Swivel</td>
			<td>Instech Solomon</td>
			<td>375/D/22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swivel Support Arm &#38; Mount</td>
			<td>Instech Solomon</td>
			<td>SMCLA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polysulfone button&#160;</td>
			<td>Instech Solomon</td>
			<td>LW62S/6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel spring</td>
			<td>Instech Solomon</td>
			<td>PS62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vetbond surgical adhesive</td>
			<td>3M</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triple Antibiotic Ointment</td>
			<td>Fougera</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PowerLab 8 Channel Data Acquisition System &#38; Software</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>PowerLab 8/35</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC Insulated Cable</td>
			<td>Belden</td>
			<td>PVC Audio Connection Cable 32 AWG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Preamplification Headstage</td>
			<td>Dagan Corporation</td>
			<td>Model 4002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Differential Amplifier</td>
			<td>Dagan Corporation</td>
			<td>EX4-400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Nitroprusside</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>71778-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenylephrine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>P6126-5G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Physiological Saline 0.9% NaCl</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td></td>
			<td>Contact local hospital supplier</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hexamethonium</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>H0879-5G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless Steel top anti vibration table</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Custom designed in-house; Solid steel plate on a benchtop is also suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Faraday cage</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Custom designed and constructed in-house</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small animal hair trimmer</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Drugstore, men&#39;s beard trimmer suitable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dipilatory Cream</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Veet brand, sensitive skin formula</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Povidone Iodine</td>
			<td>Purdue Products</td>
			<td>Betadiene</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70% Ethanol</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steel microretractors</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Made in-house. Bend a steel paper clip &#38; loop 4-0 silk to form a retractor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostats</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>13011-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat Gun</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>09-201-27</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

novel approach for simultaneous recording of renal sympathetic nerve activity and blood pressure with intravenous infusion in conscious, unrestrained mice.

신장 교감 신경 생리 적 및 병 태 생리 현상에 크게 기여 한다. 만성 신장 질환, 고혈압, 심장 마비, 당뇨병, 비만 등 연구의 많은 분야에 큰 관심은 신장 교감 신경 활동 (방사선학) 평가. 교감 신경의 역할의 명확한 평가 따라서 실험 결과의 적절 한 해석 및 질병 과정의 이해에 대 한 필수적입니다. 방사선학은 전통적으로 마 취 설치류, 쥐를 포함 하 여 측정 되었습니다. 그러나, 마우스 일반적으로 전시 매우 낮은 조직 혈압과 hemodynamic 불안정성 몇 시간 동안 마 취와 수술 하는 동안. 방사선학의 의미 해석 교감 신경 음색 및 심장 혈관 상태 사이의 친밀 한 관계를 주어진이 비 생리 적 상태에 의해 혼동 됩니다. 전통적인 접근의 이러한 제한을 해결 하기 위해 우리 의식, 자유롭게 이동 마우스에서 방사선학을 측정 하기 위한 새로운 방법을 개발. 마우스 만성 라디오-telemeters 혈압으로 jugular 정 맥 주입 카 테 터와 방사선학의 직접 녹음에 대 한 사용자 정의 설계 된 양극 전극의 지속적인 모니터링으로 계측 되었다. 48-72 시간 복구 기간에 따라 생존 율 100% 이었고 모든 쥐 행동 일반적으로. 이 시간 포인트에서 방사선학 성공적으로 각각 4와 마우스의 50%와 70%에서 수술 후 5 일 취득 가능한 신호와 마우스의 80%에 기록 되었다. 생리 혈액 압력 모든 쥐에 기록 되었다 (116±2 mmHg, n = 10). 기록 된 방사선학 먹고 정리, 문학에서 확고 한으로 증가. 또한, 방사선학 절 봉쇄 및 약리 작용 혈압의 변조에 의해 확인 되었다. 여기, 의식, 자유롭게 이동 마우스에 방사선학의 명확한 기록에 대 한 효과적이 고 관리 방법을 설명 합니다.

설명 된 프로토콜에 따라 생존 율 100%-모든 쥐가이 연구 살아남 고 잘 수술 절차에 따라 복구에 계측 했다. 수술 준비, 모든 마우스 행동을 일반적으로, 일반적인 식사, 전시 손질 및 예비 동작의 24 시간 이내 아니 동물이 이번에 통증이 나 조 난의 흔적을 보여주었다. 48 시간 수술, 검증 하 고 명확한 방사선학 신호 12 쥐에서 10에 기록 되었다. 그러나이 신호는 수술이 쥐 72 시간 후에 유지 되었다, 진정한 방사선학 신호 기록 했다 7 (70%)에 쥐의 하루 4, 5 일 후 수술에 의해 단 5 (50%) 마우스. 심전도 신호에 의해 전기 노이즈 또는 오염이 높은-품질 방사선학 신호를 전시 하지 않았다 쥐 euthanization의 시간까지 건강에 아직도 있었다.
의식이 쥐 48 시간 후 수술에서 동맥 압력은 596±22 bpm의 해당 의미 심장 박동으로 116±2 mmHg (n = 10). 이 시간에 혈압과 방사선학의 대표적인 샘플의 동시 녹음 방사선학 (그림 2)의 명확 하 게 표시 하 고 독특하게 리듬 버스트를 시연 했다. 식사 및 정리, 직접 관찰 하 고 (그림 3)는 또한 제시 했다 직원에 의해 지적, 같은 정상적인 활동으로 예상 하는 방사선학의 일반적인 증가 합니다. 높은-품질 방사선학 또한 기록 했다 순차적으로 조사를 받고 쥐의 50%에서 최대 수술 준비 (그림 4) 후 5 일. 혈압과 심장 박동 5 일 조사 기간에 대 한 안정적인 유지 하 고 값 다른 우리 최대 10 일 수술 후 회복 (표 1)8의 다음 기록 했다.
방사선학 신호를 확인 하 고 동맥 baroreflex와 실제로 개입 확인, 혈압 약리학 나트륨 nitroprusside과 phenylephrine의 정 맥 주입으로 조작 했다. 방사선학의 동맥 압력; 나트륨 nitroprusside 유발 감소에 대 한 응답에서 독특하게 증가 반대로, 방사선학 phenylephrine 유발 증가 동맥 압력 (그림 5)에 따라 사실상 침묵 했다. 양적, 나트륨 nitroprusside 기준선 수준 이상 77±9% 방사선학의 상승에 대응 62±3 mmHg로 혈압 감소 (n = 5; P < 0.05, 그림 6). 마찬가지로, phenylephrine 관리, 다음과 같은 동맥 압력 도달 137±6 mmHg, 방사선학 기준선 수준 79±2% 감소 (n = 5; P < 0.05, 그림 6). 또한, 방사선학 완전히 탈락 했다 다음 늄 (그림 7)와 함께 절 봉쇄 방사선학 신호 후 절 자연 설정.
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig1.jpg"> 그림 1: 건설 및 이식 신장 교감 신경 전극의 배치. 디자인 및 이식 신장 교감 신경 전극의 권장된 배치 도식 묘사 (A) 양극 리드 핀 커넥터를 장착 하 고 세 번째 접지 와이어. (B) 전선 exteriorized 리드를 보호 하기 위해 폴 리 에틸렌 (PE) 90 튜브를 통해 스레드입니다. (C) 접지 와이어에서 바이 폴라 리드를 분리 하기 위하여 전극 팁의 디자인. (D) 전극 팁 촉진 최적의 위치; 90 ° 각도로 구 부 러 신장 신경 번들 양극 리드에 수직 고 왁 스 기반 실험실 영화에서 기본 조직을 접촉 하는 접지 와이어 리드 격리 됩니다. 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig2.jpg"> 그림 2: 대표 녹음 동맥 압력 및 신장 교감 신경 활동 (방사선학). 조직 동맥 혈압의, 방사선학 및 의식, 조용히 휴식 마우스에서 통합된 방사선학 동시 녹음 수술 준비 다음 48 시간을 보여 주는 샘플 추적입니다. 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig3.jpg"> 그림 3: 응답 신장 교감 신경 활동 (방사선학)의 정상적인 신체 활동을. 대표 조직 동맥 혈압의, 방사선학 및 두 의식 쥐 48 및 72 시간 수술 초기에 고 (A) 활성 손질 또는 (B) 조용한 식사의 시작 시에 통합된 방사선학 갖춘 동시 녹음을 추적 합니다. 큰 화살표는 나머지에서 신체 활동의 시작을 나타냅니다. 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig4.jpg"> 그림 4: 장기 신장 교감 신경 활동 (방사선학) 신호 생존. 한 의식, 조용히 휴식 마우스 몇 일 수술 준비에에서 혈압과 방사선학의 순차적 대표 기록. (A) 2 일, (B) 3 일, (C) 4 일 및 (D) 5 일 후 수술. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig5.jpg"> 그림 5: 동맥 baroreflex로 신장 교감 신경 활동 (방사선학) 신호 유입. (C) phenylephrine 대표적인 녹음 동맥 혈압 및 방사선학의 나머지에서 의식 마우스에서 (A) 초기 동안 및 (B) 나트륨 nitroprusside의 후속 정 맥 관리 후 다음. 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig6.jpg"> 그림 6: 신장 공감 responsivity 동맥 혈압의 정량. 나트륨 nitroprusside와 phenylephrine 약리 조작 동맥 혈압 및 신장 교감 신경 활동 (방사선학)의 양적 응답. (A) 기준 (검은 바, 116±2 mmHg)와 나트륨 nitroprusside (회색 바, 62±3 mmHg)과 phenylephrine (오픈 바, 137±6 mmHg)의 후속 정 맥 주사 관리에 따라 동맥 압력을 의미 합니다. (B) 대응 나트륨 nitroprusside (회색 바, 77±9%) 또는 phenylephrine (오픈 바;-79±2%) 하는 동안 방사선학 응답 합니다. 방사선학 표현 기준, 평균 ± SEM.에서에서 백분율 변경 * 기준에서 중요 한 차이 (p < 0.05, n = 5). 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" src="/files/ftp_upload/54120/54120fig7.jpg"> 그림 7: 신장 교감 신경 활동 (방사선학)의 후 절 자연. (A) (B) 직후 늄 및 (C) 사후 절 봉쇄 기준선에서 동맥 혈압 및 방사선학의 대표적인 추적입니다. 권한5재현. <a href="https://cloudflare-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54120/54120fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>동물 ID</td>
			<td> </td>
			<td>2d</td>
			<td>3d</td>
			<td>4 d</td>
			<td>5 d</td>
		</tr>
<tr>
<td>A</td>
			<td>mmHg</td>
			<td>112</td>
			<td>110</td>
			<td>108</td>
			<td>109</td>
		</tr>
<tr>
<td> </td>
			<td>bpm</td>
			<td>657</td>
			<td>551</td>
			<td>626</td>
			<td>616</td>
		</tr>
<tr>
<td>B</td>
			<td>mmHg</td>
			<td>115</td>
			<td>107</td>
			<td>111</td>
			<td>110</td>
		</tr>
<tr>
<td> </td>
			<td>bpm</td>
			<td>582</td>
			<td>652</td>
			<td>662</td>
			<td>668</td>
		</tr>
<tr>
<td>C</td>
			<td>mmHg</td>
			<td>115</td>
			<td>118</td>
			<td>113</td>
			<td>111</td>
		</tr>
<tr>
<td> </td>
			<td>bpm</td>
			<td>591</td>
			<td>599</td>
			<td>689</td>
			<td>664</td>
		</tr>
<tr>
<td>D</td>
			<td>mmHg</td>
			<td>114</td>
			<td>115</td>
			<td>116</td>
			<td>110</td>
		</tr>
<tr>
<td> </td>
			<td>bpm</td>
			<td>457</td>
			<td>513</td>
			<td>599</td>
			<td>531</td>
		</tr>
<tr>
<td>E</td>
			<td>mmHg</td>
			<td>109</td>
			<td>109</td>
			<td>103</td>
			<td>105</td>
		</tr>
<tr>
<td> </td>
			<td>bpm</td>
			<td>632</td>
			<td>687</td>
			<td>699</td>
			<td>689</td>
		</tr>
</tbody></table>표 1: 기준 평균 동맥 압력 및 심장 박동 값 계측된 마우스 이상 5 일 연속 수술에. 권한5재현.

Watch this Scientific Journal Video about Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice. at

Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice.

마 취 쥐 비 생리 조직 혈압, 혈압과 자율 신 경계 사이의 친밀 한 관계를 주어진 자율의 의미 있는 평가 하는 걸로 전시. 따라서, 동시에 기록적인 신장 교감 신경 활동을 의식 쥐의 정 맥 주입 혈압 소설 방법 요약.

신장 동 정적인 신경 활동의 의식, 정 맥 주입 혈압 동시 녹음에 대 한 새로운 접근 방식을 억제 쥐.

Renal sympathetic nerves contribute significantly to both physiological and pathophysiological phenomena. Evaluating renal sympathetic nerve activity ...

novel-approach-for-simultaneous-recording-renal-sympathetic-nerve

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

10.0K 조회수.  University of Alberta. 마 취 쥐 비 생리 조직 혈압, 혈압과 자율 신 경계 사이의 친밀 한 관계를 주어진 자율의 의미 있는 평가 하는 걸로 전시. 따라서, 동시에 기록적인 신장 교감 신경 활동을 의식 쥐의 정 맥 주입 혈압 소설 방법 요약.

비디오: Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice.

Delivery of Therapeutic Agents Through Intracerebroventricular (ICV) and Intravenous (IV) Injection in Mice

Despite the protective role that blood brain barrier plays in shielding the brain, it limits the access to the central nervous system (CNS) which most often results in failure of potential therapeutics designed for neurodegenerative disorders 1,2. Neurodegenerative diseases such as Spinal Muscular Atrophy (SMA), in which the lower motor neurons are affected, can benefit greatly from introducing the therapeutic agents into the CNS. The purpose of this video is to demonstrate two different injection paradigms to deliver therapeutic materials into neonatal mice soon after birth. One of these methods is injecting directly into cerebral lateral ventricles (Intracerebroventricular) which results in delivery of materials into the CNS through the cerebrospinal fluid 3,4. The second method is a temporal vein injection (intravenous) that can introduce different therapeutics into the circulatory system, leading to systemic delivery including the CNS 5. Widespread transduction of the CNS is achievable if an appropriate viral vector and viral serotype is utilized. Visualization and utilization of the temporal vein for injection is feasible up to postnatal day 6. However, if the delivered material is intended to reach the CNS, these injections should take place while the blood brain barrier is more permeable due to its immature status, preferably prior to postnatal day 2. The fully developed blood brain barrier greatly limits the effectiveness of intravenous delivery. Both delivery systems are simple and effective once the surgical aptitude is achieved. They do not require any extensive surgical devices and can be performed by a single person. However, these techniques are not without challenges. The small size of postnatal day 2 pups and the subsequent small target areas can make the injections difficult to perform and initially challenging to replicate.

Delivery of Therapeutic Agents Through Intracerebroventricular ICV and Intravenous IV Injection in Mice

This article demonstrates two very different methods of injection: 1) into the brain (intracerebroventricular) and 2) systemic (intravenous) to introduce the therapeutic agents into the central nervous system of neonatal mice.

마우스에 Intracerebroventricular을 통해 치료 대리점 납품 (ICV)과 정맥 (IV) 사출

Despite the protective role that blood brain barrier plays in shielding the brain, it limits the access to the central nervous system (CNS) which most ...

연구

의학

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold standard" method for assessing insulin action in vivo. During an insulin clamp, hyperinsulinemia is achieved by a constant insulin infusion. Euglycemia is maintained via a concomitant glucose infusion at a variable rate. This variable glucose infusion rate (GIR) is determined by measuring blood glucose at brief intervals throughout the experiment and adjusting the GIR accordingly. The GIR is indicative of whole-body insulin action, as mice with enhanced insulin action require a greater GIR. The insulin clamp can incorporate administration of isotopic 2[14C]deoxyglucose to assess tissue-specific glucose uptake and [3-3H]glucose to assess the ability of insulin to suppress the rate of endogenous glucose appearance (endoRa), a marker of hepatic glucose production, and to stimulate the rate of whole-body glucose disappearance (Rd).
The miniaturization of the insulin clamp for use in genetic mouse models of metabolic disease has led to significant advances in diabetes research. Methods for performing insulin clamps vary between laboratories. It is important to note that the manner in which an insulin clamp is performed can significantly affect the results obtained. We have published a comprehensive assessment of different approaches to performing insulin clamps in conscious mice1 as well as an evaluation of the metabolic response of four commonly used inbred mouse strains using various clamp techniques2. Here we present a protocol for performing insulin clamps on conscious, unrestrained mice developed by the Vanderbilt Mouse Metabolic Phenotyping Center (MMPC; URL: www.mc.vanderbilt.edu/mmpc). This includes a description of the method for implanting catheters used during the insulin clamp. The protocol employed by the Vanderbilt MMPC utilizes a unique two-catheter system3. One catheter is inserted into the jugular vein for infusions. A second catheter is inserted into the carotid artery, which allows for blood sampling without the need to restrain or handle the mouse. This technique provides a significant advantage to the most common method for obtaining blood samples during insulin clamps which is to sample from the severed tip of the tail. Unlike this latter method, sampling from an arterial catheter is not stressful to the mouse1. We also describe methods for using isotopic tracer infusions to assess tissue-specific insulin action. We also provide guidelines for the appropriate presentation of results obtained from insulin clamps.

The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is the gold standard for assessing insulin action in vivo. A method for performing insulin clamps in mice is described. This includes a method for arterial catheterization that permits experiments to be performed in conscious, unrestrained mice with minimal stress.

의식 억제 마우스에 인슈린 과다 - euglycemic 클램프

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

혈액 샘플링, 마약 관리 및 의식 검사 중 혈압과 심장 박동을 측정 대퇴 동맥혈과 정맥 Catheterization

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents

Glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional methods to evaluate GFR are cumbersome and time-consuming. In addition, serial blood or urine samples are required, with the associated stress for the experimental animals. A recent technique significantly reduces the investment in time and resources, minimizing the invasiveness and the animal stress, but being equally valid as the traditional approaches. The method measures transcutaneously renal function. Using an optical device and the exogenous renal marker fluorescein isothiocyanate (FITC)-sinistrin, this technique is capable of measuring the elimination kinetics of the marker through the skin. With neither blood nor urine samples nor the associated laboratory assays needed, the results of the transcutaneous measurement are almost instantaneously available. The method has been already validated in different species and successfully applied in several models of renal pathology. Moreover, due to its minimally invasive characteristics, it is suitable for sequential measurements within the same animal. Here is provided a detailed protocol to carry out the transcutaneous assessment of renal function in rodents.

Determination of glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional procedures to measure this parameter are cumbersome and require a large investment of time. Here we describe a faster and minimally invasive method to determinate GFR transcutaneously.

의식 설치류에서 신장 기능의 경피 평가

Glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional methods to evaluate GFR are cumbersome and ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

텔레 메 트리를 사용하여 자유롭게 이동 마우스의 장기 혈압 측정

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for erectile dysfunction. However, the methods used vary between laboratories, and pitfalls still exist. The goal of this study was to describe a surgical technique that would provide a reliable and reproducible model. By exposing the ischiocavernosus muscle at its point of insertion on the ischial tuberosity, the penile crus could be cannulated with minimal dissection and injury to the structures involved in erectile function. Repeated stimulation of the CN, without the need for lifting and drying, was achieved by using a 125 &#181;m bipolar silver electrode and biocompatible silicon glue to isolate the electrode-nerve complex. This method prevents neuropraxia by reducing stretching and drying the nerve and provides complete isolation of the nerve, negating electrical leakage and preventing stimulation of alternative pathways.

This study describes a simplified surgical procedure and technique for performing cavernous nerve stimulation with the isolation of the nerve-electrode complex using silicone glue and intracavernous pressure measurement.

동굴 같은 신경 자극 및 쥐에 Intracavernous 압력의 녹음

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively affect skeletal muscle. This can result in a loss of muscle mass (atrophy) and/or loss of muscle quality (reduced force per unit of muscle mass), both of which are prevalent in chronic disease, muscle-specific disease, immobilization, and aging (sarcopenia). Skeletal muscle function in animals can be evaluated by a range of different tests. All tests have limitations related to the physiological testing environment, and the selection of a specific test often depends on the nature of the experiments. Here, we describe an in vivo, non-invasive technique involving a helpful and easy assessment of force frequency-curve (FFC) in mice that can be performed on the same animal over time. This permits monitoring of disease progression and/or efficacy&#160;of a potential therapeutic treatment.

Measurement of rodent skeletal muscle contractile function is a useful tool that can be used to track disease progression as well as efficacy of therapeutic intervention. We describe here the non-invasive, in vivo assessment of the dorsiflexor muscles that can be repeated over time in the same mouse.

비-침략 적 쥐에서 Dorsiflexor 근육 기능 평가

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

동시 심전도 기록 및 침략 적 혈액 압력 측정 쥐에

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. The baroreflex is a key homeostatic mechanism to counteract acute, short-term changes in arterial BP and to maintain BP in a relatively narrow physiological range. BP is sensed by baroreceptors located in the aortic arch and carotid sinus. When BP changes, signals are transmitted to the central nervous system and are then communicated to the parasympathetic and sympathetic branches of the autonomic nervous system to adjust HR. A rise in BP causes a reflex decrease in HR, a drop in BP causes a reflex increase in HR.
Baroreflex sensitivity (BRS) is the quantitative relationship between changes in arterial BP and corresponding changes in HR. Cardiovascular diseases are often associated with impaired baroreflex function. In various studies reduced BRS has been reported in e.g., heart failure, myocardial infarction, or coronary artery disease. 
Determination of BRS requires information from both BP and HR, which can be recorded simultaneously using telemetric devices. The surgical procedure is described beginning with the insertion of the pressure sensor into the left carotid artery and positioning of its tip in the aortic arch to monitor arterial pressure followed by the subcutaneous placement of the transmitter and ECG electrodes. We also describe postoperative intensive care and analgesic management. After a two-week period of post-surgery recovery long-term ECG and BP recordings are performed in conscious and unrestrained mice. Finally, we include examples of high-quality recordings and the analysis of spontaneous baroreceptor sensitivity using the sequence method.

The baroreflex is a heart-rate regulation mechanism by the autonomic nervous system in response to blood-pressure changes. We describe a surgical technique to implant telemetry transmitters for continuous and simultaneous measurement of electrocardiogram and blood pressure in mice. This can determine spontaneous baroreflex sensitivity, an important prognostic marker for cardiovascular disease.

의식이 있는 마우스에서 자발적인 압력반사 민감도를 결정하기 위해 결합된 원격 측정 ECG 및 혈압 전송기 이식

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. ...

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to detect drug exposure. The rat blood sampling method determines the quality of the plasma and further affects the precision of the test results. The subclavian vein blood collection method described in this protocol collects blood samples repeatedly in the conscious state of animals to meet the needs of PK and TK tests. The skills of restraint handling and appropriate procedure of needle incision ensure the success rate of blood collection. It is easy to operate while ensuring the quality of plasma and at the same time catering to animal welfare. However, this method requires skilled operation, and an improper one may cause animal weakness, pain, lameness, and even mortality. The current method has been used in the testing facility for a 4-week oral toxicity study in Sprague Dawley (SD) rats with TK. The maximum amount of blood collected within 24 h did not exceed 20% of the animal's total blood. The animals' body weight was more than 200 g for males and females. The data showed that the animals' bodyweight increased steadily every week, and the clinical observation was normal after repetitive sample collection.

The present protocol describes a simple and efficient method for collecting blood from the subclavian vein in rats. It enables rapid, timely, and easily identifiable sampling without anesthesia and obtains high-quality blood through repetitive sample collection.

의식 쥐의 쇄골 하 정맥에서 반복적 인 혈액 샘플링

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...