Ravi Alluri and Hilliard L. Kutscher are supported by Ruth L. Kirschstein National Research Service Award (NRSA) Institutional Research Training Grant 1T32GM099607.

すべての資機材は、収集され、適切に手続きの前に編成する必要があります。手順は、一貫した、再現可能なデータを提供するために、次の1つのステップからのシームレスな移行で行われるべきです。このプロトコルは、バッファロー退役軍人医療センターの施設内動物管理使用委員会によって設定された制度の方針に従っています。 注：雄および雌C57BL / 6マウスの両方がこのプロトコルのために使用しました。男女間のアルブミン漏出の有意な差は存在しません。 1.塩酸準備<ol><li> 4.72 mLの無菌生理食塩水（SNS）に1 N HClを281μLを添加することにより、56.2 mMのHClを滅菌してください。 1NのHCl（ - 50μL≈0）でpH 1.25に滴定します。 </li><li>損傷前にこの準備が新鮮ください。低pH SNSがバッファリングされていないとして、それは、塩酸傷害侮辱が一時的である保証します。 </li></ol> 2.麻酔および気管露光技術注意：傷害手順は麻酔ガス掃気用の木炭フィルター付きドラフト内で行われていることを確認。これは生存手術であるとして、無菌状態の維持が不可欠です。滅菌手袋を使用し、それぞれの動物に手術前にガラスビーズ手術器具の滅菌器内のすべての機器を滅菌します。手術部位を隔離するためにドレープの使用は、無菌性を維持することをお勧めします。それは麻酔の迅速な誘導、ならびに損傷後の急速な回復を可能にする比較的低い血液ガス溶解性を提供するように麻酔ガスとして、イソフルランを使用してください。 <ol><li> 2リットル/分の流量で酸素中2.75％イソフルランとチャンバ内麻酔を誘導することによって開始します。 </li><li>マウスが適切に（皮膚を破るまたは深部組織損傷を引き起こさないために十分に強いピンチつま先に反応しない）に麻酔されると、60に仰臥位で1-0編組絹縫合糸の長さ15cmと優れた切歯によるマウスを一時停止O解剖ボードを傾けます。&lt;/李&gt; <li>麻酔はノーズコーンを介してイソフルランを提供することにより、手術を通じて維持されていることを確認してください。乾燥を防ぐために、マウスの目に獣医の軟膏を適用します。 </li><li>電動トリマーで首の腹側部分を剃るおよび局所消毒液（ すなわち 、ポビドンヨード）を適用します。ガーゼで余分な防腐剤を取り外し、乾燥させてください（〜15から30秒）。 </li><li> （、前閉経期、および術後鎮痛を提供するために）100μLの0.5％ブピバカインと顎の下部に胸骨切痕から首の正中線を潜入。 </li><li>メスまたは湾曲した微細なハサミで首さ1.5cm縦正中切開 - 1を加えます。 （白軟骨リングによって識別される）気管を露出させるために2湾曲した鋸歯状の鉗子で鈍的切開により唾液腺の間の筋膜の膜を貫通しています。 </li><li>まだ2鋸歯状の鉗子を使用して、三菱UFJ証券との間で解剖しながら、傍気管筋組織の片側を把握し、側にそれを引っ張ります気管の長手方向に次のCLE繊維。 </li><li>切開面が確立されると、鉗子の第二の対は、気管の下で働いされているよう傍気管筋を後退させる続けます。鉗子の先端に1-0編組絹縫合糸の15cmのストランドを配置し、気管の後ろに縫合糸を配置するために乗り越えるために、これらの鉗子を使用してください。 </li></ol> 3.気管内点滴注入手順<ol><li>塩酸3.6 mLの/ kgで続いた空気の0.2 mLで22 G針に取り付けられた0.5 mLシリンジを充填することによって傷害点滴注射器を準備します。空気は、車両の分散を助けるように作用するだけでなく、麻酔の投与中無気肺を受けていてもよいものを肺胞のための肺胞リクルートメント手技ます。 注：術後鎮痛に関するローカルIACUCガイドラインに従って、あなたの地元の獣医師に相談してください。採用前に抗炎症特性を有する任意の鎮痛薬の使用には注意してください無菌の肺傷害のこのモデルをる。 </li><li>けがを管理するには、最初のイソフルラン投与を中止。それは鉗子つま先のピンチに反応し始めるまで15秒 - マウスの麻酔深度は、約10のために上昇することを可能にします。 </li><li>すぐに怪我の点滴注入ステップを始めます。麻酔深度が深すぎる場合、動物は、塩酸を含む負傷者に特に当てはまる傷害点眼、後に自発呼吸はありません。 </li><li>アシスタントは肺活量を追放するために胸郭を絞る必要があります。 </li><li>上方に引っ張ってトラクションを提供した後、1 番目と2 番目の喉頭下の軟骨環の間の気管内に注射針を挿入する気管の周りに以前に置か1-0編組絹縫合糸を使用してください。ベベルはちょうどできるだけ気管と平行として針で気管を過ぎるまで、針のベベルは、外科医、事前に直面している必要があります。 </li><li>ただのボーラス投与の前に胸をリリース遠位気道と肺胞の中に分散し、堆積を確保するために塩酸。 0.75秒 - およそ0.5にボーラスを堆積させます。最初の自発呼吸の全体傷害ボーラス量が肺に吸入されることを保証するために取られるまで、気管内に針を保管してください。 </li><li> 2皮膚ステープルまたは縫合糸 - 1のいずれかを使用して閉じる切開。 </li></ol> 4.回復<ol><li> 26 G針を5 mLの注射器を使用して、輸液蘇生のための首筋に皮下1mLのSNSを注入。最小限の流体損失が処置中にありますが、手術後のマウスは飲まないようにし、潜在的に脱水することができる傾向があります。また、腹腔内注射を介して SNSを提供しています。 </li><li> 100％のO 2で灌流し、37℃で加熱したチャンバー内にマウスを置きます。マウスが十分に戻ってハウジング内に配置される前に回収されることを確認してください。動物を監視し、歩行と完全にRまで、この時間の間に無人のままにしないでくださいecovered。 </li></ol> 5.気管支肺胞洗浄および肺処理<ol><li>ステップ2.1およびステップ2.2で説明したようにイソフルラン麻酔を誘導し、維持します。ステップ2.2で説明したつま先のピンチ方式を使用して麻酔の適切な面を確認してください。 </li><li>解剖ボード上の仰臥位に固定し、首を拡張するために、優れた切歯に引っ掛け1-0編組絹縫合糸のループを使用します。乾燥を防ぐために、目に獣医の軟膏を適用します。 </li><li>首の皮膚ステープルを除去した後、ハサミで下顎の前の首の切開部を介して下部腹壁から皮膚を通して正中縦切開を行います。 </li><li>ハサミで腹膜筋肉組織における正中切開を行い、後腹膜腔を露出するためにスポンジで腹部臓器を撤回。血液が必要な場合は、この時点で腹部大動脈または下大静脈から収集します。 </li><li> abdomを横断することにより放血を経由して動物を安楽死させますinal大動脈と下大静脈。 IACUCガイドラインによって確立され、次のステップで二国間の開胸術を利用することにより安楽死の二次確認方法は人道的に完了します。 </li><li>肺の虚脱を起こす振動板を穿孔。その後、はさみを切断骨を使用して、ダイアフラムを離れてカットし、胸骨の両側にし、上の胸郭の並列を切断。肺血管系をフラッシュするために右心室へのカルシウムとマグネシウムと5 mLの温かい（37℃）ハンクス液を注入容易にするために、胸骨のフラップを後退させるために、ロック止血剤を使用してください。 <ol><li>大動脈から血液を前に、この論文に記載されている手順と周辺サイトカインレベルを評価するために得られるように、血液を取得していない場合は、十分なフラッシュに肺血管系の循環を残すために、血液のために必要な流出を提供するために、左心室に小さな切開を作ります。 </li></ol></li><li> 60°傾斜に解剖ボードをプロップと目を使用E手順は、気管内20 Gのx½ &quot;のステンレス鋼カニューレを挿入促進し、1-0縫合糸で固定するためにステップ2.2で説明しました。 </li><li> 水平解剖ボードを置き、気管支肺胞洗浄（BAL）を行います。 <ol><li> BALを実行するには、3方活栓に2つの5 mLの注射器を取り付けます。 SNSの5 mLで1注射器を記入し、コックのポートにねじ込みます。 2 番目のポートに空の5 mLシリンジを取り付け、最後にステップ5.6に配置された気管内カニューレに活栓のオープンポートを接続します。第2のシリンジと、肺や洗浄にNSの1ミリリットルを植え付けます。 </li><li> 5合計1 mLのNSの点滴は、それが気管を引き裂くないように気管カニューレが保護されたと気管と平行に残っていることを注意しながら手順を繰り返します。 </li></ol></li><li>組織学的分析のために、ステップ5.7のように気管にカニューレを挿入。 24時間、20センチH 2 Oで10％中性緩衝ホルマリンで吹き込むことにより、肺を修正しました。 </li><li>各肺葉を削除carefully門の近くに気管支を横断することにより、ハサミやピンセットを使用して。前パラフィン中に包埋されることに組織学カセット内の各肺葉（5合計）を配置します。ミクロトームを用いて5μmの組織切片を切断し、ヘマトキシリンおよびエオシン、標準組織学的技術を用いて染色します。 6形態計測はまた、重症度、炎症を定量するために、組織学的スライド上で行うことができます。 4 </li><li> 4℃で3分間、1500×gで遠心分離することにより回収BALを処理します。将来の分析のために2.0 mlのマイクロ遠心チューブに等量で無細胞BAL上清を等分。 -80℃で保管してください。 </li><li> ELISAによるアルブミン濃度、または目的の任意の他の生物学的製品のBALを分析します。 BALから11ペレット化した細胞をcytoslide標本が生成され、カウント、および肺を評価するための白血球差分カウントの決意」のため、ライトギムザベースの染料で染色することができます炎症反応。 </li></ol>

<ol>
	<li>Knight, P. R., Rutter, T., Tait, A. R., Coleman, E., Johnson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+gastric+particulate+lung+injury:+a+comparison+and+interaction+with+acidic+pneumonitis.">Pathogenesis of gastric particulate lung injury: a comparison and interaction with acidic pneumonitis.</a> Anesth Analg. 77 (4), 754-760 (1993).</li><li>Raghavendran, K., Nemzek, J., Napolitano, L. M., Knight, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aspiration-induced+lung+injury.">Aspiration-induced lung injury.</a> Crit Care Med. 39 (4), 818-826 (2011).</li><li>Rubenfeld, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incidence+and+outcomes+of+acute+lung+injury.">Incidence and outcomes of acute lung injury.</a> N Engl J Med. 353 (16), 1685-1693 (2005).</li><li>Kennedy, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+acid+aspiration+lung+injury+in+the+rat:+biphasic+pathogenesis.">Acute acid aspiration lung injury in the rat: biphasic pathogenesis.</a> Anesthesia &amp; Analgesia. 69 (1), 87-92 (1989).</li><li>Kudoh, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+pentoxifylline+on+acid-induced+alveolar+epithelial+injury.">The effect of pentoxifylline on acid-induced alveolar epithelial injury.</a> Anesthesiology. 82 (2), 531-541 (1995).</li><li>Prophet, E. B., Mills, B., Arrington, J. B., Sobin, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Laboratory methods in histotechnology. , (1995).</li><li>Kyriakides, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+attack+complex+of+complement+and+neutrophils+mediate+the+injury+of+acid+aspiration.">Membrane attack complex of complement and neutrophils mediate the injury of acid aspiration.</a> J Appl Physiol. 87 (6), 2357-2361 (1999).</li><li>Yoshikawa, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+ventilator-induced+vascular+permeability+and+cytokine+responses+in+isolated+and+in+situ+mouse+lungs.">Acute ventilator-induced vascular permeability and cytokine responses in isolated and in situ mouse lungs.</a> J Appl Physiol. 97 (6), 2190-2199 (2004).</li><li>Eyal, F. G., Hamm, C. R., Coker-Flowers, P., Stober, M., Parker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neutralization+of+alveolar+macrophages+reduces+barotrauma-induced+lung+injury.">The neutralization of alveolar macrophages reduces barotrauma-induced lung injury.</a> FASEB J. 16 (4), 410-411 (2002).</li><li>Hermans, C., Bernard, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lung+epithelium-specific+proteins:+characteristics+and+potential+applications+as+markers.">Lung epithelium-specific proteins: characteristics and potential applications as markers.</a> Am J Respir Crit Care Med. 159 (2), 646-678 (1999).</li><li>Segal, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acid+aspiration-induced+lung+inflammation+and+injury+are+exacerbated+in+NADPH+oxidase-deficient+mice.">Acid aspiration-induced lung inflammation and injury are exacerbated in NADPH oxidase-deficient mice.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 292 (3), 760-768 (2007).</li><li>Matthay, M. A., Robriquet, L., Fang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alveolar+epithelium:+role+in+lung+fluid+balance+and+acute+lung+injury.">Alveolar epithelium: role in lung fluid balance and acute lung injury.</a> Proc Am Thorac Soc. 2 (3), 206-213 (2005).</li><li>Richard, J. C., Factor, P., Welch, L. C., Schuster, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+the+spatial+distribution+of+transgene+expression+in+the+lungs+with+positron+emission+tomography.">Imaging the spatial distribution of transgene expression in the lungs with positron emission tomography.</a> Gene Ther. 10 (25), 2074-2080 (2003).</li></ol>

The authors have no competing financial interests to disclose.

<html>目的は密接酸肺炎とその後のARDSの開発中に、ヒトに起こる病態生理学に似ている胃酸吸引を使用して、ALIの動物モデルを開発することでした。モデルの開発では、我々は、その低コスト、短生殖サイクル、および調査ツール（ すなわち 、モノクローナル抗体、トランスジェニック株）の豊富な、よく理解免疫系に高スループットのデータ収集を提供しています動物種を選択しました。 ヒトにおける胃酸の吸引痛烈に損傷を血清タンパク質の漏出を産生肺胞上皮および血管内皮バリア機能を以下ALI。 BALアルブミンは、その大きさは、他の血清タンパク質よりも小さいような肺の透過性の敏感なマーカーであることが示されています。さらに、アルブミンは、特異的ELISAアッセイを、比色アッセイからの様々な方法で評価することができます。 7 -外部参照 &quot;&gt; 9 気管支肺胞洗浄は、血漿タンパク質および炎症のマーカーは、健康な肺の肺胞腔内の最小の量で存在するような肺障害を検出するために臨床的状況において使用されています。上昇したBAL血漿タンパク質は、内皮バリア機能の喪失を示します。 10 胃酸の吸引の病態を解明するために、その限界の範囲内に動物モデルを開発し、特徴づけることが重要です。吸引イベントを模倣する最大の急性非致死肺損傷に関連する状態を定義する（ すなわち 、吸引のpH、およびボリュームを投与）、1は、胃吸引/ ALIモデルにおいて固有の変動を減らす必要があります。マウスでの最大非致死性肺損傷は、胃酸をシミュレートしてpH 1.25のHCl、3.6 mLの/ kgを吸引した後に発生します。 11胃酸吸引は、肺の肺胞液クリアランスの独立を変えます<html>血流や血管ろ過。胃酸の吸引/ ALI傷害の12病理組織学的特徴は好中球性炎症の斑状領域、肺胞出血、肺胞内および間質性浮腫を伴う急性炎症反応です。肺胞の最大数に損傷を引き起こす塩酸の分散を改善するためには、点滴の前に強制的に呼気を開始すべきです。これは、遠位気腔の分散を促進し、肺胞に最大の肺損傷を生成します。この呼気操縦は、胸部とリリース後の点滴の周圧縮することにより製造されます。これにより意図への損傷の車両を提供し、遠位の気腔に緑色蛍光タンパク質（AD-CMV-MNLS-HSV1sr39tk-EGFP）の分散を実証した肺をラットするアデノウイルスを提供するラットモデルで検証手法の修正版です部位（ 例えば 、肺胞）。 13 ve_content &quot;&gt;中咽頭への直接塩酸吸引アプリケーションに対する塩酸吸引点滴のためのオープン気管切開法を利用することにはいくつかの利点があります。中咽頭を介して非侵襲的点眼はに塩酸吸引の送達のための最も簡単で最も侵襲的な方法であります小さな動物の肺。しかし、最大の非致死性肺損傷を生成するために、吸引の必要な非常に低いpHに、点眼後いずれかの還流は上気道上皮の脱落、ポスト手続き閉塞性条件例えば 、喉頭浮腫、喉頭痙攣につながる。使用してオープン気管切開法は、塩酸が一貫対象地域（ 例えば 、遠位気道と肺胞嚢）したがって、ALIメカニズムを複製に到達することができる。一つは、ボーラスの空気を使用して、肺胞リクルートメント手技で塩酸吸引を組み合わせることにより、ALIを高めることができる「チェイサー「塩酸administrat中イオン。この手技は、揮発性麻酔の開始後、無気肺の肺胞を開きます。無気肺は、界面活性剤の機能を妨げ、V / Qミスマッチにつながる低い一回換気量を持っている動物の原因となる平滑筋の緊張を減少によって引き起こされる揮発性麻酔薬の吸入のよく知られた後遺症です。空気「チェイサー」は、外科的処置の後、定期的に患者に手術室で使用される肺胞リクルートメント手技に相当します。リクルートメント手技は、遠位気道と肺胞に塩酸の分散液中の有向傷害および補助のためのより大きな領域を提供します。一つは、これは、塩酸の以下の送達を増加させることが知られているように、自発呼吸の戻り次の呼吸速度を評価することによって成功した気管内注入を評価することができます。 私たちは、1 mLの単位で肺を洗浄するために5mLのNSの合計を使用します。マウスの通常のTLCは1 mLであるが、使用される大容量の回復を確実にしますけがを定量化するために、アルブミンの最大量。彼らが通常の状況下でpg / mlでの順に通常ある、これは、タンパク質とより多くのようにプロ炎症性メディエーターを希釈することを考慮することが重要です。可変性は、BAL液の一貫した処理により軽減することができます。この方法を利用する場合、偽手術を利用してコントロール動物は気管切開自体が炎症を生成するように、適切な比較を行うために行われるべきです。 マウスに十分な麻酔を提供するための別のアプローチは、このホワイト・ペーパーで説明するようイソフルラン吸入に比べてケタミンとキシラジンの腹腔内注射を介してであろう。このオプションは、最高のこの代替方法を実行する際に、その快適さのレベルに基づいて、研究者に委ねられています。揮発性麻酔薬は、正常な免疫系の生理機能を変化させることが知られているような利点は、免疫応答を有する最小化相互作用が含まれていました。 THEReは確実に人間のALIの組織病理を再現するために、さらなる調査が必要なマウスに使用される挿管方法で多くの進歩をされています。挿管技術に存在する問題は、次のとおりです。コードを越えてと竜骨上記の適切な気管内チューブの配置を、喉頭けいれんや気管支けいれん;そして、喉頭外傷は技術自体によって引き起こされます。これらは、この方法は採用開放気管切開法を用いて除去されます。この方法には制限がないわけではないが、気管切開自体は、さらに深刻な損傷のリスクを高める可能性が注射針を用いて行わ傷害と酸点滴を生産するように。その後、飲酒の欠如に二その周術期の血液量減少を悪化させるの痛みと、この手順から、目を覚ましたマウス。このように、この方法は、正しく実行した場合の損傷の量を減少させることができる挿管技術の代替を提供します。 結論として、この動物モデルは、オープンtracheostを採用します大丸有塩酸人間ALIの病態生理の理解を促進するために、胃酸の吸引をシミュレート点眼、およびARDSのその後の開発。人間の生理学的メカニズムが一意であるように、単一の動物モデルは、ALIのすべての特性を再現しません。このALIのマウスモデルまたは動物モデルの特性は、モデルの限界及び範囲内で解釈される場合には、生成されたデータは、ヒトにおける肺損傷応答の重要な要素の集束テストを提供することができます。研究者は、ALIのすべてのモデルに共通の限界を克服し、自分の仮説をテストし、使用されたモデルと人間の違いについて認識して1つ最も適しを使用する必要があります。 9

ARDSは、広範囲の肺の炎症を特徴とし、臨床的に低酸素血症との息の急性息切れとして見られています。これらの症状は、多くの場合、このような外傷、敗血症、輸血関連反応または吸引などの扇動イベント後24時間未満が起こります。これは、肺胞上皮およびタンパク質漏出し、その後硝子膜形成につながる血管内皮に局在好中球肺胞炎（ すなわち 、広範囲の炎症）によって組織病理学的特徴としています。吸い込んで化学性肺炎や誤嚥性肺炎に分類されます。 1胃吸引の酸性成分は、二次的細菌性肺炎を発症する肺炎と偏愛の両方に貢献しています。誤嚥性肺炎はALIとARDSのその後の発展のための主要な危険因子の一つです。 2 胃吸引がトンからの物質の吸入のように定義された急性事象であります彼は声帯を越えて気道に口腔咽頭細菌叢の有無にかかわらず胃。吸引内容は低pH胃液、細菌、血液、または食物粒子を含んでいてもよいです。胃の吸引は、多くの場合、絶食状態で典型的に集中治療室（ICU）の患者に発生し、このようにして酸性化し、胃内容物の吸引を制限するために、プロトンポンプ阻害剤上に置きました。一般の患者集団に比べて5倍高い - 米国のICU集団におけるALIの発生率は2.5です。胃の吸引は、二次細菌性肺炎（SBP）の開発のための独立した危険因子であるとして3残念ながら、これらの素因の条件は、多くの場合、吸引イベント後の肺においてより深刻な後遺症につながる可能性が胃の中で細菌異常増殖の状態につながります、ALIとARDS。 塩酸および胃内容物、または細菌を含んでも含まなくてもよい：胃の吸引は、2つの主要コンポーネントがありますまたは食品粒子。げっ歯類モデルにおいて単独で胃吸引の酸成分は、気道上皮上の低pHの直接苛性損傷の結果として、初期の炎症反応を生成します。 6時間 - これは、好中球浸潤および4での炎症反応が続いています。 4これらの2つの要因が、最終的にこのように肺胞および気道への流体およびタンパク質の血管外漏出につながる肺微小血管の完全性の破壊につながります。この病態生理を理解するために、さらに可能な治療介入を調査するために、関係する基礎となるメカニズムを解明する動物モデルを開発し、特徴づけることが重要です。単独の酸性吸引は膨大または呼吸樹の緩衝能力をバイパスし、肺胞に到達するのに十分な低pHである必要があります。これが発生しない場合は、唯一の一過性の上部、誘導気道損傷はARDSの重症後遺症につながるしにくい起こります。 5 &lt;/ SUP&gt; 負傷した肺胞上皮で正確に吸引イベントをエミュレートするためには、動物の自然な防御を迂回することが重要です。ヒトで見られる胃酸傷害を模倣ALIを生成するために、マウスの吸引モデルを使用して、1は、気管、気管支樹の違いを考慮する必要があります。この方法は利用オープン気管切開技術は両方の生理学的および組織学的にALIを再現する方法で、マウスおよびヒトの呼吸器木とモデルの違いけがをバイパスします。気管内挿管は、ALIを生成するために使用された歴史的に、しかし喉頭損傷することなく、マウスで行うことは困難と考えられています。したがって、この方法は、複数の研究者を横断し、最小限の手順起因する死亡率との一貫性のある結果が得られた潜在的な代替手段を提供しています。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>syringe, 1cc</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>309628</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>syringe, 5cc</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>309646</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle, 22 ga x 1 1/2&#34;</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305159</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle, 26 ga x 1 1/2&#34;</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1-O Braided Silk Suture</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>517730</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3&#34; Curved tissue serrated forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11065-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3&#34; Curved tissue &#34;toothed&#34; forceps, 1x2 teeth</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11067-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4&#34; curved micro dissecting scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14061-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bone cutting spring scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>16144-13</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 1/2&#34; curved locking hemostat</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>13021-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable Skin Stapler</td>
			<td>3M</td>
			<td>DS-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tracheal cannula (20 ga x 1/2&#34; stainless steal tubing adapter)</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>408210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>60-degree Incline Dissection Board</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.5% Bupivacaine</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine and &#34;Q-tip&#34; cotton applicator</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

open tracheostomy gastric acid aspiration murine model of acute lung injury results in maximal acute nonlethal lung injury

酸性肺炎、ヒトにおける無菌の急性肺損傷（ALI）の主要な原因です。酸性肺炎は、好中球肺胞炎を特徴とする急性呼吸窮迫症候群（ARDS）、無症候性、および損傷からの肺胞上皮と血管内皮の両方に臨床スペクトルに及びます。臨床的には、ARDSは低酸素血症の急性発症、二国間の斑状肺浸潤と非心原性肺水腫によって定義されます。ヒトでの研究は、下っ端のメカニズムについて様々な仮説につながっているARDSによって引き起こされる肺の生理学的および炎症性変化、についての貴重な情報をご提供しています。残念ながら、ARDSの病因、ならびに病態生理の広い範囲を決定する難しさは、治療戦略を開発するのに有用である可能性があり、重要な情報の不足をもたらしています。 ときに、その病因と病態生理を正確にreproduc翻訳動物モデルは価値がありますEAのコンセプトは、in vitroおよび臨床設定の両方で証明します。人間の気管・気管支樹の解剖学の大動物モデル（ 例えば 、羊）共有特性が、マウスモデルは、以下を含む他の利点のホスト提供：低コストを。より大きなデータ収集に自分自身を貸し短い生殖サイクル;よく理解免疫学的システム。そして十分に特徴付けゲノムは遺伝子欠失およびトランスジェニック株の様々な利用可能性につながります。低pH誘発されるARDSの堅牢なモデルは、主に肺胞上皮、二次血管内皮、ならびに肺胞につながる小さな気道を標的とネズミALIが必要です。また、別の有害および非有害侮辱の間に大きな違いが再現可能な損傷が重要です。 塩酸を用いて、ここで提示したマウス胃酸吸引モデルはオープン気管切開を採用し、低pH pneumonを再現病原シナリオを再現しますヒトでのITISけが。さらに、このモデルは、他の肺傷害（ 例えば 、食物粒子、病原性細菌）エンティティと低pH傷害の相互作用を調べるために使用することができます。

酸吸引性肺炎のマウスモデルの肺組織病理学上記の肺が（ 図1）切片にし、H＆E染色し、24時間後に低pH侮辱を除去した。としてマウスが負傷しました壊死細胞は、肺実質アーキテクチャ、細胞デブリ気腔内と有意なPMN浸潤の損失が明確に観察されています。臨床的に吸引と同様に、斑状PMN浸潤および線維性タンパク質の沈着の分野で得られた遠位の肺の空気スペースの異種損傷における我々のモデルの結果。これは、組織学的にヒトのARDS患者で観察されたパターンと非常に類似しています。 エアウェイズへのアルブミン漏出 酸吸引の特徴は、気道への血清タンパク質の漏れです。 SEV低pH肺胞傷害にこの病原性応答のerityはBALアルブミン濃度を測定することによって決定しました。 BAL中のアルブミン濃度は、通常の生理食塩水（NS）2時間でコントロールと5時間（ 図2）に比べて酸吸引後に増加しました。これは、酸吸引後の患者において観察された病態と一致しています。好中球の浸潤は、2時間後に酸吸引を生じ、最大非致死性の肺損傷は、5時間後に酸吸引で生じるように、時間点を選択しました。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54700/54700fig1.jpg" /> 図1： 塩酸吸引以下のCD-1マウス24時間の肺組織病理学。塩酸で負傷した無傷のマウス（AおよびB）およびマウスからのH＆E染色し、5μmの切片（C - H）。壊死細胞（矢じり）、LO実質アーキテクチャのSSは、気腔（矢印）とかなりの好中球の浸潤（*）内の細胞および破片が負傷したマウスからの肺全体に見られます。不均質な分布は、遠位の肺は、斑状の好中球浸潤および線維タンパク質沈着の領域で観察されます。これは、患者におけるARDSの病理組織学的検査に非常に類似しています。スケールバー= AとC = 2ミリメートル; B、D、F = 200ミクロン。 E = 100ミクロン; GおよびH =60μmです。 AとCでのボックスは、それぞれ、画像BとDに拡大される領域を示します。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54700/54700fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54700/54700fig2.jpg" /> 図2：酸吸引次エアウェイズへのアルブミン漏出。無細胞BAL液frのアルブミン濃度2時間および5時間後に酸吸引でOM C57BL / 6マウス。酸吸引は、5 H NS吸引対照と比較した（n = 9）対応のないt検定を用いました。エラーバーはSEMを示します。 * = p &lt;0.05。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54700/54700fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

Watch this Scientific Journal Video about Open Tracheostomy Gastric Acid Aspiration Murine Model of Acute Lung Injury Results in Maximal Acute Nonlethal Lung Injury at JoVE.com

Open Tracheostomy Gastric Acid Aspiration Murine Model of Acute Lung Injury Results in Maximal Acute Nonlethal Lung Injury

This protocol induces acute lung injury in a mouse that has close fidelity to the pathogenesis of acid pneumonitis observed in humans. We generate a maximal acute nonlethal low pH lung injury and account for differences in rodent-human anatomic respiratory structure using an open tracheostomy coupled with circumferential pressure release.

最大急性非致死肺損傷における急性肺損傷の結果のオープン気管切開胃酸吸引マウスモデル

Acid pneumonitis is a major cause of sterile acute lung injury (ALI) in humans. Acid pneumonitis spans the clinical spectrum from asymptomatic to acute ...

open-tracheostomy-gastric-acid-aspiration-murine-model-acute-lung

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

9.7K ビュー.  University at Buffalo, State University of New York. This protocol induces acute lung injury in a mouse that has close fidelity to the pathogenesis of acid pneumonitis observed in humans. We generate a maximal acute nonlethal low pH lung injury and account for differences in rodent-human anatomic respiratory structure using an open tracheostomy coupled with circumferential pressure release.

ビデオ: Open Tracheostomy Gastric Acid Aspiration Murine Model of Acute Lung Injury Results in Maximal Acute Nonlethal Lung Injury

Expired CO2 Measurement in Intubated or Spontaneously Breathing Patients from the Emergency Department

Carbon dioxide (CO2) along with oxygen (O2) share the role of being the most important gases in the human body. The measuring of expired CO2 at the mouth has solicited growing clinical interest among physicians in the emergency department for various indications: (1) surveillance et monitoring of the intubated patient; (2) verification of the correct positioning of an endotracheal tube; (3) monitoring of a patient in cardiac arrest; (4) achieving normocapnia in intubated head trauma patients; (5) monitoring ventilation during procedural sedation. The video allows physicians to familiarize themselves with the use of capnography and the text offers a review of the theory and principals involved. In particular, the importance of CO2 for the organism, the relevance of measuring expired CO2, the differences between arterial and expired CO2, the material used in capnography with their artifacts and traps, will be reviewed. Since the main reluctance in the use of expired CO2 measurement is due to lack of correct knowledge concerning the physiopathology of CO2 by the physician, we hope that this explanation and the video sequences accompanying will help resolve this limitation.

Expired CO2 Measurement in Intubated or Spontaneously Breathing Patients from the Emergency Department

This video describes how to perform CO2 measurement in intubated as well as spontaneously breathing patients. The main clinical indications refer to emergency situations: (1) verifying adequate positioning of an endotracheal tube; (2) achieving normocapnia in trauma patients; (3) monitoring ventilation in the case of procedural sedation.

期限切れのCO 2</sub救急部から気管挿管または自発呼吸患者の>の測定

Carbon dioxide (CO2) along with oxygen (O2) share the role of being the most important gases in the human body. The measuring of expired CO2 at the mouth ...

医学

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged mechanical ventilation, contributes to morbidity and mortality of critical illness, and studies on novel genetic or pharmacological targets are areas of intense investigation (1-3, 5, 8, 26, 30, 33-36). ALI is defined by the acute onset of the disease, which leads to non-cardiac pulmonary edema and subsequent impairment of pulmonary gas exchange (36). We have developed a murine model of ALI by using a pressure-controlled ventilation to induce ventilator-induced lung injury (2). For this purpose, C57BL/6 mice are anesthetized and a tracheotomy is performed followed by induction of ALI via mechanical ventilation. Mice are ventilated in a pressure-controlled setting with an inspiratory peak pressure of 45 mbar over 1 - 3 hours. As outcome parameters, pulmonary edema (wet-to-dry ratio), bronchoalveolar fluid albumin content, bronchoalveolar fluid and pulmonary tissue myeloperoxidase content and pulmonary gas exchange are assessed (2). Using this technique we could show that it sufficiently induces acute lung inflammation and can distinguish between different treatment groups or genotypes (1-3, 5). Therefore this technique may be helpful for researchers who pursue molecular mechanisms involved in ALI using a genetic approach in mice with gene-targeted deletion.

A murine model for ventilator induced lung injury is an important tool to study an acute lung injury in vivo. Here, we report an easy applicable in situ model for acute lung injury using high-pressure mechanical ventilation to induce acute failure of the lung.

マウスにおける急性肺障害を誘発するために圧力制御された換気

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

Acute and Chronic Tactile Sensory Testing after Spinal Cord Injury in Rats

Spinal cord injury (SCI) impairs sensory systems causing allodynia1-8. To identify cellular and molecular causes of allodynia, sensitive and valid sensory testing in rat SCI models is needed. However, until recently, no single testing approach had been validated for SCI so that standardized methods have not been implemented across labs. Additionally, available testing methods could not be implemented acutely or when severe motor impairments existed, preventing studies of the development of SCI-induced allodynia3. Here we present two validated sensory testing methods using von Frey Hair (VFH) monofilaments which quantify changes in tactile sensory thresholds after SCI4-5. One test is the well-established Up-Down test which demonstrates high sensitivity and specificity across different SCI severities when tested chronically5. The other test is a newly-developed dorsal VFH test that can be applied acutely after SCI when allodynia develops, prior to motor recovery4-5. Each VFH monofilament applies a calibrated force when touched to the skin of the hind paw until it bends. In the up-down method, alternating VFHs of higher or lower forces are used on the plantar L5 dermatome to delineate flexor withdrawal thresholds. Successively higher forces are applied until withdrawal occurs then lower force VFHs are used until withdrawal ceases. The tactile threshold reflects the force required to elicit withdrawal in 50% of the stimuli. For the new test, each VFH is applied to the dorsal L5 dermatome of the paw while the rat is supported by the examiner. The VFH stimulation occurs in ascending order of force until at least 2 of 3 applications at a given force produces paw withdrawal. Tactile sensory threshold is the lowest force to elicit withdrawal 66% of the time. Acclimation, testing and scoring procedures are described. Aberrant trials that require a retest and typical trials are defined. Animal use was approved by Ohio State University Animal Care and Use Committee.

We describe two tactile sensory testing methods for acute or chronic periods of spinal cord injury in rats. These validated procedures can detect the development and maintenance of allodynia-like sensations.

ラット脊髄損傷後の急性および慢性の触覚官能検査

Spinal cord injury (SCI) impairs sensory systems causing allodynia1-8. To identify cellular and molecular causes of allodynia, sensitive and valid sensory ...

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

マウスにおける急性腎障害とポスト傷害線維の虚血再灌流モデル

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms at work during MI and developing effective therapeutic approaches requires methodology to reproducibly simulate the clinical incidence and reflect the pathophysiological changes associated with MI. Here, we describe a surgical method to induce MI in mouse models that can be used for short-term ischemia-reperfusion (I/R) injury as well as permanent ligation. The major advantage of this method is to facilitate location of the left anterior descending artery (LAD) to allow for accurate ligation of this artery to induce ischemia in the left ventricle of the mouse heart. Accurate positioning of the ligature on the LAD increases reproducibility of infarct size and thus produces more reliable results. Greater precision in placement of the ligature will improve the standard surgical approaches to simulate MI in mice, thus reducing the number of experimental animals necessary for statistically relevant studies and improving our understanding of the mechanisms producing cardiac dysfunction following MI. This mouse model of MI is also useful for the preclinical testing of treatments targeting myocardial damage following MI.

We introduce a surgical method to induce experimental ischemia/reperfusion (I/R) injury to simulate myocardial infarction (MI) in mouse models that allows for more clarity in positioning of the ligation on the left anterior descending artery (LAD) to increase the reproducibility of MI experiments in mice.

左前下の動脈の結紮を通して心筋虚血再灌流傷害のマウスモデル

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

腸管虚血 - 再灌流傷害のマウスモデル

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

Induction and Phenotyping of Acute Right Heart Failure in a Large Animal Model of Chronic Thromboembolic Pulmonary Hypertension

The development of acute right heart failure (ARHF) in the context of chronic pulmonary hypertension (PH) is associated with poor short-term outcomes. The morphological and functional phenotyping of the right ventricle is of particular importance in the context of hemodynamic compromise in patients with ARHF. Here, we describe a method to induce ARHF in a previously described large animal model of chronic PH, and to phenotype, dynamically, right ventricular function using the gold standard method (i.e., pressure-volume PV loops) and with a non-invasive clinically available method (i.e., echocardiography). Chronic PH is first induced in pigs by left pulmonary artery ligation and right lower lobe embolism with biological glue once a week for 5 weeks. After 16 weeks, ARHF is induced by successive volume loading using saline followed by iterative pulmonary embolism until the ratio of the systolic pulmonary pressure over systemic pressure reaches 0.9 or until the systolic systemic pressure decreases below 90 mmHg. Hemodynamics are restored with dobutamine infusion (from 2.5 &#181;g/kg/min to 7.5 &#181;g/kg/min). PV-loops and echocardiography are performed during each condition. Each condition requires around 40 minutes for induction, hemodynamic stabilization and data acquisition. Out of 9 animals, 2 died immediately after pulmonary embolism and 7 completed the protocol, which illustrates the learning curve of the model. The model induced a 3-fold increase in mean pulmonary artery pressure. The PV-loop analysis showed that ventriculo-arterial coupling was preserved after volume loading, decreased after acute pulmonary embolism and was restored with dobutamine. Echocardiographic acquisitions allowed to quantify right ventricular parameters of morphology and function with good quality. We identified right ventricular ischemic lesions in the model. The model can be used to compare different treatments or to validate non-invasive parameters of right ventricular morphology and function in the context of ARHF.

We present a protocol to induce and phenotype an acute right heart failure in a large animal model with chronic pulmonary hypertension. This model can be used to test therapeutic interventions, to develop right heart metrics&#160;or to improve the understanding of acute right heart failure pathophysiology.

慢性血栓塞栓性肺高血圧症の大型動物モデルにおける急性右心不全の誘導とフェノタイピング

The development of acute right heart failure (ARHF) in the context of chronic pulmonary hypertension (PH) is associated with poor short-term outcomes. The ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. Various approaches have been described, such as the inhalation of aerosolized LPS as well as nasal or intratracheal instillation. The presented protocol describes a detailed step-by-step procedure to induce ALI in mice by direct intratracheal LPS instillation and perform FACS analysis of blood samples, bronchoalveolar lavage (BAL) fluid, and lung tissue. After intraperitoneal sedation, the trachea is exposed and LPS is administered via a 22 G venous catheter. A robust and reproducible inflammatory reaction with leukocyte invasion, upregulation of proinflammatory cytokines, and disruption of the alveolo-capillary barrier is induced within hours to days, depending on the LPS dosage used. Collection of blood samples, BAL fluid, and lung harvesting, as well as the processing for FACS analysis, are described in detail in the protocol. Although the use of the sterile LPS is not suitable to study pharmacologic interventions in infectious diseases, the described approach offers minimal invasiveness, simple handling, and good reproducibility to answer mechanistic immunological questions. Furthermore, dose titration as well as the use of alternative LPS preparations or mouse strains allow modulation of the clinical effects, which can exhibit different degrees of ALI severity or early vs. late onset of disease symptoms.

Presented here is a step-by-step procedure to induce acute lung injury in mice by direct intratracheal lipopolysaccharide instillation and to perform FACS analysis of blood samples, bronchoalveolar lavage fluid, and lung tissue. Minimal invasiveness, simple handling, good reproducibility, and titration of disease severity are advantages of this approach.

直接気管内リポ多糖刺激によるマウスの急性肺損傷の誘導

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

Inducing Acute Liver Injury in Rats via Carbon Tetrachloride (CCl4) Exposure Through an Orogastric Tube

Acute liver injury (ALI) plays a crucial role in the development of hepatic failure, which is characterized by severe liver dysfunction including complications such as hepatic encephalopathy and impaired protein synthesis. Appropriate animal models are vital to test the mechanism and pathophysiology of ALI and investigate different hepatoprotective strategies. Due to its ability to perform chemical transformations, carbon tetrachloride (CCl4) is widely used in the liver to induce ALI through the formation of reactive oxygen species. CCl4 exposure can be performed intraperitoneally, by inhalation, or through a nasogastric or orogastric tube. Here, we describe a rodent model, in which ALI is induced by CCl4 exposure through an orogastric tube. This method is inexpensive, easily performed, and has minimal hazard risk. The model is highly reproducible and can be widely used to determine the efficacy of potential hepatoprotective strategies and assess markers of liver injury.

Inducing Acute Liver Injury in Rats via Carbon Tetrachloride CCl4 Exposure Through an Orogastric Tube

This protocol describes a common and feasible method of inducing acute liver injury (ALI) via CCl4 exposure through an orogastric tube. CCl4 exposure induces ALI through the formation of reactive oxygen species during its biotransformation in the liver. This method is used to analyze the pathophysiology of ALI and examine different hepatoprotective strategies.

四塩化炭素(CCl4)を介したラットの急性肝損傷を誘発する(CCl4)オロ胃管による暴露

Acute liver injury (ALI) plays a crucial role in the development of hepatic failure, which is characterized by severe liver dysfunction including ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney due to its low molecular weight. Such accumulation causes the death of tubular cells and can induce the development of Acute Kidney Injury (AKI), which is characterized by a quick decrease in kidney function, tissue damage, and immune cells infiltration. If administered in specific doses cisplatin can be a useful tool as an AKI inducer in animal models. The zebrafish has appeared as an interesting model to study renal function, kidney regeneration, and injury, as renal structures conserve functional similarities with mammals. Adult zebrafish injected with cisplatin shows decreased survival, kidney cell death, and increased inflammation markers after 24 h post-injection (hpi). In this model, immune cells infiltration and cell death can be assessed by flow cytometry and TUNEL assay. This protocol describes the procedures to induce AKI in adult zebrafish by intraperitoneal cisplatin injection and subsequently demonstrates how to collect the renal tissue for flow cytometry processing and cell death TUNEL assay. These techniques will be useful to understand the effects of cisplatin as a nephrotoxic agent and will contribute to the expansion of AKI models in adult zebrafish. This model can also be used to study kidney regeneration, in the search for compounds that treat or prevent kidney damage and to study inflammation in AKI. Moreover, the methods used in this protocol will improve the characterization of tissue damage and inflammation, which are therapeutic targets in kidney-associated comorbidities.

This protocol describes the procedures to induce Acute Kidney Injury (AKI) in adult zebrafish using cisplatin as a nephrotoxic agent. We detailed the steps to evaluate the reproducibility of the technique and two techniques to analyze inflammation and cell death in the renal tissue, flow cytometry and TUNEL, respectively.

成体ゼブラフィッシュにおけるシスプラチンによる急性腎損傷モデル

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...