この研究は、若手研究（）（＃16680015）、萌芽研究（＃16653065）、特定領域研究（＃18023022、＃費補助金のための - 補助の補助金によって支えられて教育、文化、スポーツ、科学、および日本における技術省から18016012と＃18053015）、医薬基盤研究所（NIBIO）の健康科学の基礎的研究の推進から、補助金、助成インニューロインフォマティクス日本センター（NIJC）、理研からの援助

<ol><li>明/暗移行試験に用いる装置は、ドアとパーティション（大原アンドカンパニー、東京）で同じサイズの2つのセクションに分かれてケージ（21x42x25センチ）から成っていた。 </li><li>マウスは、食物と水にアドリブでアクセス権を持つ12時間の明/暗サイクル（午前7時点灯）で部屋にケージに3〜4を収容している。理想的には、2つのコントロールと2つの変異体は、すぐにそれらは離乳時に遺伝子型をしているとマウスを再組織し、一緒に収容されている。行動試験は、午前9:00の間で行われ、最初の試験が始まる前に、マウスを含む全てのケージが動作テストの部屋に30分を転送しているPM 6:00です。 </li><li>他のチャンバー（2ルクス）暗であるのに対し、一つのチャンバは、明るく、白色ダイオード（390ルクス）で点灯します。マウスは、ダークサイドに配置され、マウスは赤外線カメラによって検出された後、ドアが自動的に3秒を開かれます。光チャンバーを入力してレイテンシが不安のような行動の指標になりうる可能性があるのでドアが、マウスは実験者から逃れるために彼らの動機とリリースの直後に光チャンバーを入力しないようにするために使用されます。 </li><li>マウスは、10分間オープンドアを持つ二つの部屋間を自由に移動することが許可されます。行動データ（画像LD4）を取得し、分析に使用されるアプリケーションは、パブリックドメインの画像Jプログラム（国立精神衛生研究所でbyWayne Rasbandを開発し、http://rsb.info.nih.gov/ijで入手可能に基づいています。剛宮川（オハラアンドカンパニー、東京、日本から利用可能）によって変更された/）、。 </li><li>距離は、各チャンバー内遷移の合計数、各チャンバー内で費やされた時間、および画像LD4プログラムによって記録された光chamberareを入力してレイテンシを旅した。 </li><li>各試行の後、すべてのチャンバは嗅覚手がかりに基づいてバイアスを防ぐために、スーパー次亜塩素水で洗浄されています。 </li></ol>

<ol>
	<li>Austin, C. P., Aiba, A., Takao, K., Miyakawa, T., Takao, K., Yamasaki, N., Miyakawa, T., Crawley, J. N., Crawley, J. N., Crawley, J., Goodwin, F. K., Miyakawa, T., Crabbe, J. C., Wahlsten, D., Dudek, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+knockout+mouse+project.">The knockout mouse project.</a> Nat Genet. 36, 921-924 (2004).</li></ol>

すべての手順は、京都大学の動物の利用とケア委員会によって承認された。剛宮川は、BIRD、日本科学技術振興機構、埼玉県、日本に関連付けられています。

マウスのゲノム配列のすべてが決定されているが、これらの遺伝子のほとんどの機能は知られていない。技術を遺伝子標的、しかし、マウスの特定の遺伝子を削除したり操作するために使用することができます（相葉ら、2007;。。Aust​​inら、2004）。特定の行動上の特定の遺伝子の影響は、その後、変異マウスの行動解析を行うことによって決定することができる（高尾と宮川、2006;高尾らは、2007年。）。変異マウスの行動表現型解析のためのテストとして、ダーク/ライト遷移テストは、マウスの動作（ローリー、2000）のような不安を測定するために最も広く使用されている試験の一つです。テストは、明るく照らされた領域へのマウスの自然な嫌悪感にと新たな環境で彼らの自発的な探索行動（ローリー、1985）に基づいています。テストは、抗不安薬の治療（ローリー、1985）に敏感です。装置は、暗室と明るく照明室で構成されています。 5センチメートル広い3センチの高さ制限されたオープニングは、2つのチャンバーを接続します。マウスは2つのチャンバー間を自由に移動することが許可されます。明るい室と時間の期間内のエントリの数は、マウスで明るい空間不安の指標として、そこに使用されて過ごした。 ダーク/ライト遷移テストは、もともとローリーと同僚（クローリーとグッドウィン、1980）によって開発されました。元のバージョンと我々のテストの間に2つの違いがあります。二つの部屋の大きさは、テストの我々のバージョンで同じであるのに対し、最初に、光室は、オリジナルバージョンの暗室よりも大きいです。第二に、オリジナルバージョンでは、光室は天井がなく、我々は光室の天井と壁のために不透明な白いプラスチックを使用しながら、光室の壁は、透明であった（クローリーとグッドウィン、1980）。これらの違いは、すなわち光室の大きさと開放性は、同時明るい空間不安の検出だけでなく、テストの元のバージョンのオープンスペースの不安を可能にする。当研究室では、しかし、オープンスペースマウスの不安様行動は高架式十字迷路でテストされます。不透明な壁と天井、光室の大きさ、そして私たちの特定の光/闇遷移テストのプロトコルは、元のバージョンに比べて明るい空間不安を検出するための、より特化です。 ダーク/ライト遷移テストと高架式十字迷路は両方不安様行動を評価するために使用されますが、結果は必ずしも一貫性がありません。例えば、前脳特異的カルシニューリンノックアウトマウスは、光/闇遷移テストに光室での時間の減少量を過ごすが、高架式十字迷路のオープンアームでの時間の増加量（宮川ら、2003） 。我々は、明/暗移行テストと高架式十字迷路試験はそのような明るい空間不安とオープンスペースの不安のような振る舞いのような不安のような振る舞いの異なる側面を、評価するという仮説を立てた。この仮説をテストするには、我々は、大規模なデータの両方のテストで同じマウスを使用して収集された設定を使用していました。当研究室では、我々は遺伝子の行動の重要性をスクリーニングするために多くのドメインをカバーする行動テストバッテリーを行う。テストバッテリーの寿命は数週間が完了する必要があります。テスト期間中は、マウスのケージは、私たちの施設でラックに保持されます。マウスが他の機関から研究室に輸送されている場合、それらは少なくとも1週間のために私たちの施設の環境に慣れています。馴化期間の後、マウスは、一般的なヘルスチェックと神経学的スクリーニング（宮川ら、2003）に供される、およびこれらの簡単な検査の後、マウスは明/暗移行試験に供されています。映画に示すように、テストは、実験室への慣れの30分後の防音実験室で行われている。 我々は映画に示されているプロトコルを使用して、遺伝子組み換え変異マウスの60以上の系統を評価し、3000以上のマウス（野生型と変異マウスを含む）のための生データの大きなセットを持っている。我々は、生データの大きなセットを活用するために因子分析を行った。インデックス（未発表データ）の間にいくつかの有意な相関があったものの、実際、我々は、各試験（未発表データ）から別の要因を検出..これらのデータは、我々が今構築している公的データベースの一部として開示されます。 我々のテストバッテリーでは、野生型の同腹子は、通常、コントロールとして使用されます。背景の株として、C57BL/6Jマウスは、一般的に使用されています。我々はテスト電池の変異マウスのコントロールとして使用されるC57BL/6Jマウスのデータを収集した。私たちの光/闇遷移テストでC57BL/6Jマウスから得られた指標は、（;平均SEM、N = 795）、以下の通りであった走行距離：光室で846.5 8.88センチメートル、暗室で1478.5 9.53センチメートルを、時間の持続時間は費やして：光の215.8 1.85秒、暗闇の中で395.8 1.86秒、コンパートメント間の遷移の数：30.52 0.43;光チャンバーを入力してレイテンシ：64.94 2.40秒チャンバーへの入り口付近マウスの動きはカメラによって検出され、cの両方に費やされる時間としてカウントされますhambers。このため、時間の平均期間の合計は、光の中で過ごし、暗闇のコンパートメントで試験の全期間（600秒）よりも大きかったこと。 我々のプロトコルでは、マウスが最初に暗い部屋に置かれている。 3秒暗室でマウスを配置した後、チャンバーの間にドアが自動的に開き、マウスは2つのチャンバー間を自由に移動できます。 215.8 1.85秒、暗闇の中で過ごした時間の長さ：316.3 2.11秒[時間暗所で過ごした行うC57BL/6Jマウスは、（P &lt;0.0001、持続時間は、光の中で過ごした場合暗室よりも光室に少ない時間を過ごす初めて光室]、N = 795、ペア- t検定）を入力する前に暗闇の中で過ごした最初の時間は含まれません。これは、C57BL/6Jマウスは光チャンバーを避ける傾向にあることを示し、そして光の中で費やされた時間が不安のような振る舞いのよい指標であること。 すべてのデータが同じプロトコルを使用して取得されるので、変異マウスの様々な株から得られた結果は、簡単に、比較されます。容易に再現し、他の変異体のデータと比較することができる変異マウスの系統の結果を表現型取得するには、行動試験法は、研究室間で可能な限り同じにする必要があります。クラッブと同僚は、全く同じ近交系とのnull変異株を用いて、マウスの行動と実験環境間の相互作用を試験した。彼らの研究では、装置、テストプロトコル、および多くの環境変数は、厳密に標準化した。彼らはまた、すべてのビヘイビア（クラッブら、1999）における系統差を検出したものの、標準化にもかかわらず、彼らは、研究室間の行動における体系的な違いを見つけた。彼らは変異体を特徴づける手に負えないの変数との実験は、特定の研究室に特異な結果をもたらす可能性があることを報告した。研究室間に存在する手続き型の違いは、それが困難な研究室間の結果を複製または比較すること。プロトコルの詳細を示すことができるように、ここで、私たちは映画のような光/闇の移行テストのための我々のプロトコルを示す。 プロトコルの視覚的なドキュメントを確立することは研究室間および変異マウスの様々な系統の行動表現型の比較のために使用されるプロトコルの標準化を可能にする、実験手順の詳細についての理解を促進するこのテストを用いて評価されます。そのような我々の行動テストバッテリーで使用する高架式十字迷路、オープンフィールド試験、porsolt強制水泳試験、恐怖条件付け、用など、他のプロトコルの作品は現在、将来のビデオ雑誌記事などの出版物のために作られている。

light/dark transition test for mice

マウスのゲノム配列のすべてが決定されているが、我々はまだこれらの遺伝子のほとんどの機能を知らない。技術を遺伝子標的、しかし、マウスの特定の遺伝子を削除したり操作するために使用することができます。特定の行動上の特定の遺伝子の影響は、変異マウスの行動解析を行うことによって決定することができます。変異マウスの行動表現型解析のためのテストとして、ダーク/ライト遷移テストは、マウスの不安様行動を測定するために最も広く使用されている試験の一つです。テストは、明るく照らされた領域へのマウスの自然な嫌悪感にと小説の環境で自発的探索行動に基づいています。テストは、抗不安薬の治療に敏感です。装置は、暗室と明るく照明室で構成されています。マウスは2つのチャンバー間を自由に移動することが許可されます。明るい室と時間の期間内のエントリの数は、マウスで明るい空間不安の指標がある過ごした。容易に再現し、他の変異体のものと比較することができる変異マウスの系統の結果を表現型取得するには、行動試験法は、研究室間で可能な限り同じにする必要があります。研究室間に存在する手続き上の違いは、しかし、それは困難な研究室間の結果を複製または比較すること。プロトコルの詳細を示すことができるように、ここで、私たちは映画のような光/闇の移行テストのための我々のプロトコルを示す。当研究室では、我々は映画に示されているプロトコルを使用して、変異マウスの60以上の株を評価している。これらのデータは、我々が今構築している公的データベースの一部として開示されます。 プロトコルの可視化は、変異マウスの様々な系統の行動表現型の研究室との比較を介して使用されるプロトコルの標準化を可能にする、全体の実験手順の詳細についての理解を容易にするこのテストを用いて評価。

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Light/dark Transition Test for Mice

ダーク/ライト遷移テストは、マウスの不安様行動を測定するために最も広く使用されている試験の一つです。ここで、我々はテストを行う方法についての詳細な手順を示して映画を紹介。

マウス用ダーク/ライト遷移テスト

Although all of the mouse genome sequences have been determined, we do not yet know the functions of most of these genes. Gene-targeting techniques, ...

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biology

52.4K ビュー.  Graduate School of Medicine, Kyoto University. He did. So what?

ビデオ: Light/dark Transition Test for Mice

Assessment of Sensorimotor Function in Mouse Models of Parkinson's Disease

Sensitive and reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of potential therapeutic treatments in preclinical trials for many neurodegenerative diseases. In Parkinson's disease, sensorimotor tests sensitive to varying degrees of nigrostriatal dysfunction are fundamental for testing the efficacy of potential therapeutics. Reliable and quite elegant sensorimotor measures exist for rats, however many of these tests measure sensorimotor asymmetry within the rat and are not entirely suitable for the newer genetic mouse models of PD. We have put together a battery of sensorimotor tests inspired by the sensitive tests in rats and adapted for mice. The test battery highlighted in this study is chosen for a) its sensitivity in a wide variety of mouse models of PD, b) its ease in implementing into a study, and c) its low expense. These tests have proven useful in characterizing novel genetic mouse models of PD as well as in testing potential disease-modifying therapies.

In Parkinson's disease and movement disorders in general, sensitive and reliable behavioral assays are essential for testing novel potential therapeutics. Here, we describe a manageable battery of sensorimotor tests for mice that are sensitive to varying degrees of injury to the nigrostriatal system and useful for preclinical studies.

パーキンソン病のマウスモデルにおける感覚運動機能の評価

Sensitive and  reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of  potential therapeutic treatments in preclinical trials for many  ...

行動学

Automated, Quantitative Cognitive/Behavioral Screening of Mice: For Genetics, Pharmacology, Animal Cognition and Undergraduate Instruction

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and pharmacological manipulations on basic mechanisms of cognition and learning in mice. A standard polypropylene mouse housing tub is connected through an acrylic tube to a standard commercial mouse test box. The test box has 3 hoppers, 2 of which are connected to pellet feeders. All are internally illuminable with an LED and monitored for head entries by infrared (IR) beams. Mice live in the environment, which eliminates handling during screening. They obtain their food during two or more daily feeding periods by performing in operant (instrumental) and Pavlovian (classical) protocols, for which we have written protocol-control software and quasi-real-time data analysis and graphing software. The data analysis and graphing routines are written in a MATLAB-based language created to simplify greatly the analysis of large time-stamped behavioral and physiological event records and to preserve a full data trail from raw data through all intermediate analyses to the published graphs and statistics within a single data structure. The data-analysis code harvests the data several times a day and subjects it to statistical and graphical analyses, which are automatically stored in the &#34;cloud&#34; and on in-lab computers. Thus, the progress of individual mice is visualized and quantified daily. The data-analysis code talks to the protocol-control code, permitting the automated advance from protocol to protocol of individual subjects. The behavioral protocols implemented are matching, autoshaping, timed hopper-switching, risk assessment in timed hopper-switching, impulsivity measurement, and the circadian anticipation of food availability. Open-source protocol-control and data-analysis code makes the addition of new protocols simple. Eight test environments fit in a 48 in x 24 in x 78 in&#160;cabinet; two such cabinets (16 environments) may be controlled by one computer.

Fully automated system for measuring physiologically meaningful properties of the mechanisms mediating spatial localization, temporal localization, duration, rate&#160;and probability estimation, risk assessment, impulsivity, and the accuracy and precision of memory, in order to assess the effects of genetic and pharmacological manipulations on foundational mechanisms of cognition in mice.

マウスの自動化、定量的認知/行動スクリーニング：遺伝学、薬理学、動物認知と学部命令について

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and ...

Measuring Circadian and Acute Light Responses in Mice using Wheel Running Activity

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2. They are responsible for timing our sleep/wake cycles and hormone secretion. Since this timing is not precisely 24-hours, it is synchronized to the solar day by light input. This is accomplished via photic input from the retina to the suprachiasmatic nucleus (SCN) which serves as the master pacemaker synchronizing peripheral clocks in other regions of the brain and peripheral tissues to the environmental light dark cycle3-7. The alignment of rhythms to this environmental light dark cycle organizes particular physiological events to the correct temporal niche, which is crucial for survival8. For example, mice sleep during the day and are active at night. This ability to consolidate activity to either the light or dark portion of the day is referred to as circadian photoentrainment and requires light input to the circadian clock9. Activity of mice at night is robust particularly in the presence of a running wheel. Measuring this behavior is a minimally invasive method that can be used to evaluate the functionality of the circadian system as well as light input to this system. Methods that will covered here are used to examine the circadian clock, light input to this system, as well as the direct influence of light on wheel running behavior.

This article will review methods that can be used to determine circadian function and light responsiveness in mice.

ホイール実行中のアクティビティを使用して、マウスの概日リズムと急性ライト応答を測定する

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2.  They ...

神経科学

Elevated Plus Maze for Mice

Although the mouse genome is now completely sequenced, the functions of most of the genes expressed in the brain are not known. The influence of a given gene on a specific behavior can be determined by behavioral analysis of mutant mice. If a target gene is expressed in the brain, behavioral phenotype of the mutant mice could elucidate the genetic mechanism of normal behaviors. The elevated plus maze test is one of the most widely used tests for measuring anxiety-like behavior. The test is based on the natural aversion of mice for open and elevated areas, as well as on their natural spontaneous exploratory behavior in novel environments. The apparatus consists of open arms and closed arms, crossed in the middle perpendicularly to each other, and a center area. Mice are given access to all of the arms and are allowed to move freely between them. The number of entries into the open arms and the time spent in the open arms are used as indices of open space-induced anxiety in mice. Unfortunately, the procedural differences that exist between laboratories make it difficult to duplicate and compare results among laboratories. Here, we present a detailed movie demonstrating our protocol for the elevated plus maze test. In our laboratory, we have assessed more than 90 strains of mutant mice using the protocol shown in the movie. These data will be disclosed as a part of a public database that we are now constructing.
Visualization of the protocol will promote better understanding of the details of the entire experimental procedure, allowing for standardization of the protocols used in different laboratories and comparisons of the behavioral phenotypes of various strains of mutant mice assessed using this test. 


The elevated plus maze test is one of the most widely used tests for measuring anxiety-like behavior in mice. Here, we present a movie showing the detailed procedures for conducting the test.

マウス用高架式十字迷路

Although the mouse genome is now completely sequenced, the functions of most of the genes expressed in the brain are not known. The influence of a given ...

生物学

Light Preference Assay to Study Innate and Circadian Regulated Photobehavior in Drosophila Larvae

Light acts as environmental signal to control animal behavior at various levels. The Drosophila larval nervous system is used as a unique model to answer basic questions on how light information is processed and shared between rapid and circadian behaviors. Drosophila larvae display a stereotypical avoidance behavior when exposed to light. To investigate light dependent behaviors comparably simple light-dark preference tests can be applied. In vertebrates and arthropods the neural pathways involved in sensing and processing visual inputs partially overlap with those processing photic circadian information. The fascinating question of how the light sensing system and the circadian system interact to keep behavioral outputs coordinated remains largely unexplored. Drosophila is an impacting biological model to approach these questions, due to a small number of neurons in the brain and the availability of genetic tools for neuronal manipulation. The presented light-dark preference assay allows the investigation of a range of visual behaviors including circadian control of phototaxis.

Light Preference Assay to Study Innate and Circadian Regulated Photobehavior in Drosophila Larvae

Here we describe a light-dark preference test for Drosophila larva. This assay provides information about innate and circadian regulation of light sensing and processing photobehavior.

に自然免疫とサーカディアン規制Photobehaviorを勉強する光プアッセイ<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;幼虫

Light acts as environmental signal to control animal behavior at various levels. The Drosophila larval nervous system is used as a unique model to answer ...

Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity to Modulate Behavior in Freely Moving Mice

Optogenetic modulation of neuronal circuits in freely moving mice affects acute and long-term behavior. This method is able to perform manipulations of single neurons and region-specific transmitter release, up to whole neuronal circuitries in the central nervous system, and allows the direct measurement of behavioral outcomes. Neurons express optogenetic tools via an injection of viral vectors carrying the DNA of choice, such as Channelrhodopsin2 (ChR2). Light is brought into specific brain regions via chronic optical implants that terminate directly above the target region. After two weeks of recovery and proper tool-expression, mice can be repeatedly used for behavioral tests with optogenetic stimulation of the neurons of interest.
Optogenetic modulation has a high temporal and spatial resolution that can be accomplished with high cell specificity, compared to the commonly used methods such as chemical or electrical stimulation. The light does not harm neuronal tissue and can therefore be used for long-term experiments as well as for multiple behavioral experiments in one mouse. The possibilities of optogenetic tools are nearly unlimited and enable the activation or silencing of whole neurons, or even the manipulation of a specific receptor type by light.
The results of such behavioral experiments with integrated optogenetic stimulation directly visualizes changes in behavior caused by the manipulation. The behavior of the same animal without light stimulation as a baseline is a good control for induced changes. This allows a detailed overview of neuronal types or neurotransmitter systems involved in specific behaviors, such as anxiety. The plasticity of neuronal networks can also be investigated in great detail through long-term stimulation or behavioral observations after optical stimulation. Optogenetics will help to enlighten neuronal signaling in several kinds of neurological diseases.

With optogenetic manipulation of specific neuronal populations or brain regions, behavior can be modified with high temporal and spatial resolution in freely moving animals. By using different optogenetic tools in combination with chronically implanted optical fibers, a variety of neuronal modulations and behavioral testing can be performed.

自由に動くマウスの行動を調節する神経活動の光遺伝学的操作

Optogenetic modulation of neuronal circuits in freely moving mice affects acute and long-term behavior. This method is able to perform manipulations of ...

Investigating Migraine-Like Behavior Using Light Aversion in Mice

Migraine is a complex neurological disorder characterized by headache and sensory abnormalities, such as hypersensitivity to light, observed as photophobia. Whilst it is impossible to confirm that a mouse is experiencing migraine, light aversion can be used as a behavioral surrogate for the migraine symptom of photophobia. To test for light aversion, we utilize the light/dark assay to measure the time mice freely choose to spend in either a light or dark environment. The assay has been refined by introducing two critical modifications: pre-exposures to the chamber prior to running the test procedure and adjustable chamber lighting, permitting the use of a range of light intensities from 55 lux to 27,000 lux. Because the choice to spend more time in the dark is also indicative of anxiety, we also utilize a light-independent anxiety test, the open field assay, to distinguish anxiety from light-aversive behavior. Here, we describe a modified test paradigm for the light/dark and open field assays. The application of these assays is described for intraperitoneal injection of calcitonin gene-related peptide (CGRP) in two mouse strains and for optogenetic brain stimulation studies.

Rodents are not able to report migraine symptoms. Here, we describe a manageable test paradigm (light/dark and open field assays) to measure light aversion, one of the most common and bothersome symptoms in patients with migraines.

マウスの光嫌悪を用いた片頭痛様行動の調査

Migraine is a complex neurological disorder characterized by headache and sensory abnormalities, such as hypersensitivity to light, observed as ...

<meta charset="utf8"></head><body>マウスモデルにおける自閉症スペクトラム障害の行動アッセイ

Strategies for Assessing Autistic-Like Behaviors in Mice

Autism spectrum disorder (ASD) is a neurobiologically complex condition with a heterogeneous genetic etiology. Clinically, ASD is diagnosed by social communication impairments and restrictive or repetitive behaviors, such as hand flapping or lining up objects. These behavioral patterns can be reliably observed in mouse models with ASD-linked genetic mutations, making them highly useful tools for studying the underlying cellular and molecular mechanisms in ASD. Understanding how genetic changes affect the neurobiology and behaviors observed in ASD will facilitate the development of novel targeted therapeutic compounds to ameliorate core behavioral impairments. Our lab has employed several protocols encompassing well-described training and testing procedures that reflect a wide range of behavioral deficits related to ASD. Here, we detail two assays to study the core features of ASD in mouse models: self-grooming (a measure of repetitive behavior) and the three-chamber social interaction test (a measure of social interaction approach and preference for social novelty).

<meta charset="utf8"></head><body>マウスの自閉症様行動を評価するための戦略

Rodent models are valuable tools for studying core behaviors related to autism spectrum disorder (ASD). In this article, we expound on two behavioral tests for modeling the core features of ASD in mice: self-grooming, which assesses repetitive behavior, and the three-chamber social interaction test, which documents social impairments.

マウスの自閉症様行動を評価するための戦略

Autism spectrum disorder (ASD) is a neurobiologically complex condition with a heterogeneous genetic etiology. Clinically, ASD is diagnosed by social ...

マウス用ダーク/ライト遷移テスト

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パーキンソン病のマウスモデルにおける感覚運動機能の評価

マウスの自動化、定量的認知/行動スクリーニング：遺伝学、薬理学、動物認知と学部命令について

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マウス用高架式十字迷路

に自然免疫とサーカディアン規制Photobehaviorを勉強する光プアッセイ

自由に動くマウスの行動を調節する神経活動の光遺伝学的操作

マウスの光嫌悪を用いた片頭痛様行動の調査

マウスの自閉症様行動を評価するための戦略

マウスの自閉症様行動を評価するための戦略

マウスの自閉症様行動を評価するための戦略