Il trattamento di droga e

Small laboratory fish have become popular models for bone research on the mechanisms underlying human bone disorders and for the screening of bone-modulating drugs. In this report, we describe a protocol to assess the effect of alendronate on bone cells in medaka larvae with osteoporotic lesions.

Che formano l'osso osteoblasti interagiscono con osteoclasti osso-riassorbono per coordinare il fatturato di matrice ossea e per controllare l'omeostasi scheletrica. Medaka e larve di pesce zebra sono ampiamente utilizzati per analizzare il comportamento delle cellule ossee durante la formazione ossea, degenerazione, e la riparazione. La loro chiarezza ottica permette la visualizzazione di cellule ossee fluorescenza etichettati e coloranti fluorescenti legati alla matrice mineralizzata scheletrico. Il nostro laboratorio ha generato pesci transgenici Medaka che esprimono il fattore di osteoclasti che induce Receptor Activator of Nuclear factor-kB Ligand (RANKL) sotto il controllo di un promotore di calore shock inducibile. Espressione ectopica di risultati RANKL in eccesso formazione degli osteoclasti attivati, che possono essere visualizzati in linee giornalista con espressione nlGFP sotto il controllo del K (ctsk) promotore catepsina. induzione RANKL e la formazione degli osteoclasti ectopica porta a gravi fenotipi osteoporosi-like. Composto transgenico Medaka Lines che esprimono ctsk: nlGFP in osteoclasti, nonché mCherry sotto il controllo del Osterix (osx) promotore in osteoblasti prematuri, possono essere utilizzati per studiare l'interazione di entrambi i tipi di cellule. Questo facilita l'osservazione in vivo del comportamento cellulare in condizioni di degenerazione e riparazione ossea. Qui, descriviamo l'uso di questo sistema per testare un farmaco comunemente utilizzato nella terapia dell'osteoporosi umana e descrivere un protocollo per l'imaging in tempo reale. Il modello Medaka integra studi in colture cellulari e topi, e offre un nuovo sistema per l'analisi in vivo di azione farmaco nel sistema scheletrico.

Lo scheletro vertebrato fornisce supporto strutturale e protezione per organi, permette la mobilità, e serve come fonte di calcio. Per tutta la vita, la matrice ossea extracellulare viene continuamente girato per mantenere la stabilità ossea e rigidità. Questo processo richiede l'attività strettamente coordinato e interazione degli osteoblasti che formano l'osso e osteoclasti osso-riassorbono. Gli osteoblasti derivano da progenitori mesenchimali multipotenti e producono collagene per formare il osteoide, la parte proteica della matrice ossea ^10. Osteoblasti interagiscono con gli osteoclasti per realizzare un'attività equilibrata di entrambi i tipi di cellule, che è richiesto per controllare l'omeostasi ossea ^7. A causa di queste interazioni normative complesse, risposte al trattamento farmacologico e l'omeostasi ossea non possono essere completamente esaminati utilizzando studi in vitro. Quindi, vi è una forte richiesta di modelli animali. Rispetto alle impostazioni di coltura cellulare, in modelli in vivo può fornireinformazioni preziose nelle reti pluricellulari all'interno dell'ambiente osso.

Esistono numerosi modelli di mouse per una varietà di malattie delle ossa umane, tra cui l'osteoporosi ^16. Tuttavia, la dimensione e l'accessibilità di embrioni di topo rappresentano significative limitazioni per l'imaging dal vivo di processi scheletrici. Piccoli pesci teleostei, invece, servire come un'alternativa interessante per l'imaging in vivo. Zebrafish (Danio rerio) e Medaka (Oryzias latipes) sono diventati popolari modelli animali per la ricerca scheletrico nel corso degli ultimi due decenni, ^{17, 19, 22, 24.} Bone nei pesci teleostei e nei mammiferi è molto simile, sia strutturale che a livello fisiologico, e molti dei geni regolatori chiave e vie di segnalazione sono conservati ^3. Come nei mammiferi, pesci teleosteo regolare accuratamente l'attività degli osteoblasti e osteoclasti per bilanciare la formazione dell'osso ed il riassorbimento ^26. Ancora più importante, la chiarezza ottica di fish larve permette l'utilizzo di reporter fluorescenti per marcare le cellule ossee e calcificate matrice scheletrico ^{8, 9, 12, 21, 23,} che facilita l'osservazione dei processi cellulari in animale vivente. Inoltre, una serie di strumenti genetici è stato generato per facilitare la ricerca biomedico rilevante nel pesce. Per Medaka in particolare, i metodi per mirata mutazione genetica da CRISPR / Cas9 ^2, cellule-lineage tracing ^6, e transgenesi ¹⁴ sono state di recente costituzione e sono ora ampiamente in uso ¹⁵ site-specific.

Piccole larve teleosteo sono stati utilizzati con successo per gli schermi chimici, che hanno portato alla scoperta di diversi farmaci farmacologicamente rilevanti ^{1, 18.}

Pesce larve sono tolleranti a basse concentrazioni di DMSO e sono in grado di assorbire composti dal loro ambiente acquatico, sia attraverso la pelle o attraverso il tratto gastrointestinale ^{1, 5.} Il nostro laboratorio in precedenza rappresentanteorted linee Medaka transgenici che esprimono i reporter fluorescenti in cellule ossee sotto il controllo di vari osteoblasti e promotori specifici osteoclasti. Questi includono osteoblasti prematuri (collagene 10A1, col10a1; Osterix, OSX) ^{20, 21,} osteoblasti maturi (osteocalcina, OSC) ^27, e osteoclasti (catepsina K, ctsk) ^24. Abbiamo anche generato una linea transgenica che esprime il fattore di osteoclasti che induce Receptor Activator of Nuclear factor-kB Ligand (RANKL) sotto il controllo di un shock termico-inducibile promotore ^24.

Induzione di RANKL in questo sistema porta alla formazione ectopica di osteoclasti attivi. Questo porta ad un aumento riassorbimento osseo e una grave fenotipo osteoporosi simile, con drasticamente ridotta mineralizzazione nei corpi vertebrali. Abbiamo recentemente dimostrato che l'attività degli osteoclasti in questo modello può essere bloccato dalla bifosfonati etidronato e alendronato, TWO farmaci comunemente utilizzati nella terapia dell'osteoporosi umana, convalidando così Medaka come sistema modello adatto per l'osteoporosi ^27.

Grazie alla loro grande prole, rapido sviluppo, e piccole dimensioni di embrioni, transgenici Medaka larve sono particolarmente adatta per lo screening su larga scala di farmaci osteoporosi e per l'analisi in vivo del comportamento delle cellule ossee. Gli studi in Medaka quindi possono integrare in modo efficiente esperimenti in colture cellulari e nei topi che hanno lo scopo di scoprire nuovi bersagli terapeutici e nuove terapie per i disturbi delle ossa umane.

Nel presente studio, si descrive un protocollo per il trattamento di Medaka larve osso-giornalista con il farmaco osteoporosi comuni, l'alendronato. Descriviamo anche in dettaglio come trattate le larve sono montati e preparati per l'imaging dal vivo di matrice ossea e cellule ossee. Questi protocolli possono essere facilmente adattate ad altri composti chimici di piccole dimensioni che sia il lavoro come anabolizzanti osso o droghe riassorbimento osseo.

Tutti gli esperimenti sono stati eseguiti in conformità con i protocolli Istituzionali Animal Care e del Comitato Usa (IACUC) approvato per l'Università Nazionale di Singapore (R14-293).

1. I pesci allevamento e alla raccolta di embrioni

1. Sollevare WT, ctsk: nlGFP ^24, RANKL: HSE: CFP ^24, e OSX: mCherry ²¹ mono o pesce Medaka compound-transgenici a 26 ° C sotto un ciclo di luce controllata (14 h, 10 h scuro) per indurre la deposizione delle uova.
2. la deposizione delle uova quotidiana si svolge durante i primi 30 minuti dopo che la luce è accesa. Le uova si attaccano insieme attraverso filamenti e attribuiscono al ventre della femmina per diverse ore. Utilizzare una rete a maglia fine per la cattura di un adulto di sesso femminile che trasporta un cluster di uovo. Lasciate che il pesce riposare per breve tempo in rete e poi massaggiare delicatamente l'addome del pesce per mettere a nudo con attenzione il cluster ovulo fecondato dall'addome della femmina.
   NOTA: Una sana Medaka femminilepuò produrre 10 - 20 uova al giorno per circa 5 mesi.
3. Mettere le uova in una plastica Petri 60 millimetri. Utilizzare una pipetta di plastica per lavare gli embrioni con 5 - 10 ml di 0.3x Danieau del medium soluzione (pesce; 19,3 mM NaCl, 0,23 mm KCl, 0,13 mm MgSO _4, 0,2 mM Ca (NO _{3) 2} e 1,7 mm HEPES, pH 7.0). Aggiungere 1 ml di 0,25% (w / v) di metilene blu stock di 2,5 L di medio pesce per prevenire la crescita fungina.
4. rotolare delicatamente grappolo di uova in modo da formare un nodo di filamenti di attacco. Usare pinze per rimuovere con attenzione i filamenti allegato dal cluster ovulo fecondato per ottenere singoli embrioni (Figura 1A).
5. Fase gli embrioni in base al Iwamatsu 2004 ^13.
6. Cultura 20 - 30 embrioni per 60 millimetri di plastica Petri in un incubatore a 28 °. Cambiare la media giornaliera di garantire il normale sviluppo degli embrioni.
   NOTA: il tempo attorno al palco schiusa (8-9 d postfertilization,DPF) è particolarmente critica per la sopravvivenza. Rimuovere chorions libero di fluttuare per mantenere la media pulito e per garantire buoni tassi di sopravvivenza delle larve.

2. Screening embrioni transgenici

1. Utilizzare uno stereomicroscopio dotato di una lampada al mercurio per l'imaging di fluorescenza e GFP, RFP, e filtri CFP per lo screening degli embrioni transgenici per l'espressione reporter fluorescente utilizzando 40X di ingrandimento.
2. Visivamente identificare osx: mCherry embrioni di espressione giornalista mCherry nei primi anni di formazione ossa craniche, come il cleithrum, su entrambi i lati della testa posteriore (Figura 1B, freccia), e il parasphenoid, in una posizione centrale nel cranio ventrale ( Figura 1B, punta di freccia).
   NOTA: l'espressione Reporter inizia dal 5 in poi DPF ^21.
3. Identificare ctsk: nlGFP embrioni di forte espressione nlGFP nella testa (Figura 1C, freccia) e la coda (Figura 1C, punta di freccia), a partire da6 DPF.
   NOTA: osteoclasti endogeni formano solo dopo 21 DPF. nlGFP-cellule che esprimono in questa fase iniziale (6 DPF) non sono osteoclasti, ma altri, finora non caratterizzato, ctsk cellule -positive ^24.
4. Identificare RANKL: HSE: PCP embrioni transgenici di espressione ubiquitaria PCP dopo un breve trattamento termico d'urto per 20 minuti a 39 ° C, condotto presso 2 DPF o poi ai fini dello screening.
   NOTA: Il RANKL e CFP transgeni sono sotto il controllo dello stesso bidirezionale Heat Shock Element (HSE). Espressione PCP indica successo RANKL induzione ^24.
5. Eseguire un 1,5-2 h termico trattamento d'urto a 9 DPF o poi per indurre un gran numero di osteoclasti ectopiche nella regione del tronco, che si traduce di conseguenza in un fenotipo osteoporosi simile ^24.
   NOTA: espressione RANKL transgenico indotta a 9 risultati DPF in una attivazione ectopica di cellule progenitrici degli osteoclasti dormienti, che endogeno non viene attivatoprima del 21 DPF. Usare un bagno d'acqua per ottenere stabili 39 ° C condizioni. Lasciate che i Petri contenenti embrioni Medaka galleggiano sulla superficie dell'acqua. Assicurarsi che il coperchio della scatola di Petri è asciutto per evitare l'affondamento del piatto.
6. Schermo embrioni da linee di composti, come RANKL: HSE: CFP / ctsk: nlGFP doppio transgenico e OSX: mCherry / RANKL: HSE: CFP / ctsk: nlGFP triplo transgenico, secondo il pattern di espressione di ogni individuo transgene.
   NOTA: gli embrioni transgenici omozigoti emizigote e sono stati contraddistinti da diversi livelli di fluorescenza del transgene giornalista. embrioni omozigoti avevano una intensità di fluorescenza che è risultata approssimativamente raddoppiata rispetto a quella dei transgenici hemizygous. Linee di composti che erano omozigoti per entrambi RANKL: HSE: PCP e ctsk: nlGFP sono stati ottenuti incrossing ripetuto per diverse generazioni. Per triplo transgenico OSX: mCherry / RANKL: HSE: CFP / ctsk: nlGFP pesce, RANKL omozigote: HSE: CFP / ctsk: pesce nlGFP sono stati incrociati con OSX omozigote: vettori mCherry. La progenie triple-transgenici eterozigoti risultante sono state sollevate e incrossed di ottenere embrioni omozigoti per RANKL: HSE: CFP. Il RANKL: HSE: PCP transgene deve essere omozigote per ottenere l'induzione efficiente degli osteoclasti ectopiche.

Figura 1: WT e transgenici Medaka embrioni a 7 D Postfertilization (DPF). A. embrioni WT osservati con illuminazione campo chiaro. B. Embrioni transgenici che mostrano OSX: espressione mCherry intorno al cleithrum (freccia) e parasphenoid (punta di freccia). C. Embrioni transgenici che mostrano ctsk: espressione nlGFP nella testa (freccia) e la coda (punta di freccia). Barre di scala: 500 micron.025 / 55025fig1large.jpg "target =" _ blank "> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

3. trattamento con i bifosfonati di Medaka larve

1. Preparare soluzioni contenenti diverse concentrazioni dei bifosfonati (BPS) per gli studi dose-risposta.
   NOTA: La BP esemplare utilizzato in questo protocollo è l'alendronato.
   1. Sciogliere alendronato in mezzo pesce ad una concentrazione di 100 ug / ml per preparare una soluzione madre.
   2. Utilizzare un vortex per garantire la completa dissoluzione. Conservare la soluzione di riserva a 4 ° C.
   3. Preparare diverse soluzioni di lavoro diluendo la soluzione madre con il mezzo pesce per una serie di concentrazioni (cioè, 25, 37,5, 50, 62,5 e 75 mg / mL).
      NOTA: Diversi farmaci possono avere diverse assorbimento, distribuzione, metabolismo ed escrezione (ADME parametri), che devono essere considerati durante i test con questo sistema larve Medaka. Inoltre, la solubilità della droga e stabilità possono variare quandoapplicata come soluzione acquosa. Meno composti idrosolubili potrebbero dover prima essere sciolto in solventi organici, come DMSO. In questo caso, una soluzione madre viene preparata in DMSO, che viene poi ulteriormente diluito in terreno pesci. Si noti che le soluzioni di lavoro in acqua (media) pesci possono essere conservati in frigorifero per diversi sett. Tuttavia, le soluzioni contenenti DMSO devono essere conservati a temperatura ambiente per evitare la cristallizzazione.
2. Trasferimento Medaka larve in piastre a sei pozzetti (sei larve / e) per il successivo trattamento BP (alendronato).
3. Rimuovere il mezzo di pesce con cura utilizzando una pipetta di plastica pulito e aggiungere un piccolo volume (circa. 0,5 mL) di soluzione alendronato in ogni pozzetto.
4. Evitare medio pesce rimasto, come la soluzione di BP aggiunto potrebbe essere diluito, il che è particolarmente importante per le soluzioni alendronato meno concentrate.
5. Rimuovere un piccolo volume di soluzione di alendronato (fino a 0,5 mL) da ogni pozzetto con una pipetta di plastica pulito e sostituirlo con un volu grandeme (4 mL) di soluzione alendronato.
6. Cambiare media quotidianamente per garantire il normale sviluppo degli embrioni.

4. La colorazione dal vivo di matrice mineralizzata con l'osso

1. Sciogliere 0.5 g di alizarina complessone (ALC, acido alizarina-3-methyliminodiacetic) o 0,05 g di calceina in 50 ml di terreno di pesce per preparare soluzioni madre 1% e 0,1% rispettivamente. Utilizzare un vortex per garantire la completa dissoluzione.
   NOTA: media Pesce senza l'aggiunta di blu di metilene è utilizzato in questa e nelle fasi successive per ridurre autofluorescenza nelle larve.
2. Utilizzare un filtro siringa e monouso (0,2 micron) per filtrare la soluzione colorante. Conservare la soluzione filtrata al buio a temperatura ambiente.
   NOTA: Il colore della, chiara soluzione colorante ALC filtrato è di colore giallo scuro all'arancio. Il colore della soluzione calceina chiaro filtrato è di colore giallo brillante. Le soluzioni possono essere utilizzati per diversi mesi.
3. Diluire la soluzione filtrata ALC o calceina magazzino 1:10 in media pescee incubare le larve Medaka per 1,5 - 2 ore (0,1% soluzione ALC) o 2 - 2,5 h (0,01% soluzione calceina) in un incubatore a 28 ° se si utilizzano le larve tra il 9 e il 17 DPF. Conservare i campioni al buio.
4. Trasferire le larve medio pesce fresco con una pipetta di plastica pulito.
5. Rimuovere il supporto di pesce con una pipetta di plastica pulito e aggiungere mezzo di pesce fresco. Ripetere questo passaggio per 3 - 4 volte fino a quando nessuna soluzione rossi o giallo-macchiato (ALC o calceina, rispettivamente) è rimasto sopra. Lasciare le larve in mezzo pesce per 30 - 60 min prima di montaggio per l'imaging di evitare epifluorescenza dal mezzo.
   NOTA: 0,1% soluzione ALC colorazione è dannoso per Medaka larve per tempi di esposizione prolungati. I tempi di incubazione di più di 2 h influenzano la sopravvivenza delle larve. Concentrazione e tempo di colorazione devono pertanto essere ottimizzato per diverse fasi, al fine di ottenere risultati ottimali di sopravvivenza degli embrioni e di colorazione.

5. vivo imaging di fluorescenza p>

1. Anestetizzare le larve Medaka con 0,01% Tricaine (etil metanosolfonato 3-aminobenzoate) in media del pesce.
   NOTA: anestetizzati larve diventano immobilizzato dopo 5 - 10 minuti in soluzione Tricaine e di solito sono distesi o su un fianco o le spalle.
2. Utilizzare un microloader plastica per orientare le larve in base alla regione di interesse. L'orientamento delle larve utilizzato in questo protocollo è laterale.
3. Utilizzare uno stereomicroscopio con illuminazione a fluorescenza per l'imaging. Utilizzare alto ingrandimento quando si scattano immagini, concentrandosi su diverse parti della larve (testa, tronco anteriore, il tronco posteriore, e la coda). Stitch singole immagini insieme alla sovrapposizione delle regioni utilizzando un apposito software di elaborazione delle immagini (inserti in Figura 3G).
   NOTA: Ciò contribuisce a migliorare la qualità di immagine di tutte le parti del corpo interessate nel piano focale corretto.
4. Rientro le larve al mezzo di pesce per il recupero dopo l'imaging.

1. Anestetizzare le larve con 0,01% Tricaine in media pesce per 5 - 10 minuti fino a quando diventano immobilizzato.
2. Sciogliere bassofondente agarosio all'1,5% in media pesci riscaldandolo in un forno a microonde. Raffreddare la soluzione a circa 30 ° C.
3. Aggiungere 0,5-1 ml di liquido 1,5% basso punto di fusione agarosio in media pesce per una capsula di Petri con fondo trasparente. Trasferire le larve anestetizzato nella soluzione con una pipetta di plastica pulito.
   NOTA: prendere precauzioni speciali che la temperatura del liquido agarosio bassofondente è abbastanza basso da non danneggiare le larve.
4. Prima solidifica agarosio, utilizzare un microloader plastica per spingere le larve al fondo del piatto Petri e orientare le larve in base alla regione di interesse. L'orientamento delle larve utilizzato in questo protocollo è laterale.
   NOTA: I campioni sono pronti per confocale l'imaging dal vivo dopo l'agarosio solidifica completamente.
5. Utilizzare un microscopio confocale a ACQimmagini uire.
6. Utilizzare una linea laser 543 nm per le analisi mCherry e ALC colorazione. Utilizzare una linea laser 488 nm per nlGFP e analizza calceina colorazione.
7. Dopo l'imaging, aggiungi medio pesce alla piastra di Petri e utilizzare un paio di aghi sottili siringa (27 G x 1 ½ ") per rimuovere con attenzione le larve dal agarosio. Trasferire le larve con residuale attaccato agarosio ad una capsula di Petri con il mezzo di pesce per il recupero .
8. Elaborare le immagini utilizzando una immagine software di analisi ^27.

numeri uovo abbondanti, così come le piccole dimensioni delle larve, fanno Medaka un modello eccellente per lo screening farmacologico. Una singola piastra di sei pozzetti è stato usato per coltura fino a 36 larve, sufficiente a fornire dati statisticamente significativi. Un altro grande vantaggio di utilizzare pesce per analisi scheletrica è la possibilità di fare imaging dal vivo. La trasparenza delle larve consente l'uso di proteine ​​fluorescenti per marcare le cellule ossee, nonché l'uso di coloranti che si legano alla matrice ossea per visualizzare mineralizzazione. Le larve sono facili da maneggiare, e preparazione del campione per l'imaging è semplice (Figura 2).

A RANKL: HSE: CFP / ctsk: nlGFP linea a doppio transgenico è stato utilizzato per visualizzare la formazione ectopica di osteoclasti RANKL-indotta. Inoltre, OSX: mCherry / RANKL: HSE: CFP / ctsk: nlGFP larve tripla-transgenici sono stati utilizzati per la simultanea rilevareione di osteoblasti prematuri e osteoclasti differenziati (Figura 3). Presentazione immagini sono state scattate con uno stereomicroscopio (Figura 3A - C e F - H), mentre la microscopia confocale è stato utilizzato per visualizzare i processi a livello cellulare (Figura 3D, E, I, J punte di freccia). Matrice ossea ALC macchiate lungo gli archi neurali (na) e centra (c) (Figura 3D) è stato utilizzato come riferimento per determinare la posizione delle cellule ossee fluorescente (Figura 3D e I).

Un vantaggio di visualizzare contemporaneamente osteoclasti e osteoblasti nella stessa larve intatto è che il antiriassorbimento vs attività osso-anabolizzanti di un composto testato può essere distinto. Per questo, la distribuzione degli osteoclasti e osteoblasti è determinata lungo matrice ossea mineralizzata preesistente e di nuova formazione. Succolorazione cessiva di matrice ossea con ALC (rosso) (Figura 4A, B), seguita da calceina (verde) (Figura 4C, D) rivela de novo matrice ossea mineralizzata (verde) (punte di freccia figura 4E, F). Questo test consente la quantificazione del tasso di formazione ossea. De novo tassi aumentato dopo trattamento farmacologico indicano un effetto osso-anabolizzante del composto testato. Al contrario, la persistenza dei punti della matrice ossea preesistenti un'attività inibente del farmaco ^27. Entrambe le etichette ALC e calceina nel larve sono stabili per almeno due settimane, permettendo una continua osservazione della formazione di nuovo osso in Medaka larve in vivo.

Figura 2: Schema del trattamento farmacologico, diretta ALC di colorazione e di montaggio per confocale Immagini dal vivo. A. Un piatto a sei beneè utilizzato per il trattamento farmacologico per garantire uno spazio sufficiente per le larve. La matrice mineralizzata-osso è macchiato incubando Medaka larve nello 0,1% ALC per 1,5 - 2 ore al buio. larve macchiato vengono sciacquati più volte con mezzo di pesce. 0,01% Tricaine viene utilizzato per anestetizzare larve. B. Dopo il trasferimento di larve anestetizzato per tiepida e liquido 1,5% bassofondente agarosio, la loro posizione viene regolata con un microloader plastica. Le larve sono poi montati in base alla regione di interesse (ad esempio, la colonna dei vertebrati è meglio ripreso nella vista laterale). Dopo l'agarosio si è solidificato, il campione montato è pronto per l'imaging confocale. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 3: ctsk: nlGFP e OSX: mCherry espressione in transgenico Medaka Larve a 10 DPF, senza e dopo Espressione RANKL Heat Shock-indotta. AC. larve di controllo senza RANKL induzione. ALC-macchiato matrice scheletrica (A); notare il segnale aspecifico auto-fluorescenza nella dorsale situato fila di cellule del pigmento. ctsk: espressione nlGFP nella testa e la coda (B) e la distribuzione di osx: osteoblasti prematuri mCherry-positivi nel cranio, le colonne vertebrali, e pinna caudale (C). D. Pila confocale dell'area scatola in A e B che mostra l'assenza di osteoclasti ectopiche intorno archi neurali (na) e centra (c) in questa fase di sviluppo. E. Pila confocale della zona inscatolato in C che mostra osx: mCherry esprimono osteoblasti premature lungo la NEURAl archi e ai bordi della centra. Gli osteoclasti sono assenti dal tronco senza RANKL induzione. FJ. Le larve dopo RANKL induzione da shock termico alle 9 DPF. F. ALC-macchiato matrice scheletrico. G. ctsk: nlGFP esprimente osteoclasti che formano nella la colonna vertebrale. Inserti in G mostrano immagini singole scattate a più alto ingrandimento che sono cuciti insieme per portare l'immagine composto in G. H. La distribuzione di osx: mCherry-cellule che esprimono non viene alterata 1 d dopo RANKL induzione. I. Pila confocale dell'area inscatolato in F e G mostra osteoclasti RANKL indotta formano intorno gli archi neurali, nonché Centra (frecce). J. Pila confocale della zona inscatolato in H mostrando ctsk: nlGFP esprimono osteoclasti accanto a osx: mCherry-etichettato osteoblasti premature lungogli archi neurali e la centra. Barre di scala in A, B, C, F, G e H: 100 micron. Barre di scala in D, E, I e J: 50 micron. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 4: Analisi di De Novo mineralizzazione delle ossa Matrix dalla colorazione successiva di larve con ALC e Calceina a 12 e 15 DPF, rispettivamente. A, B. ALC-macchiato matrice scheletrico a 12 DPF. C, D. Calceina-macchiato matrice scheletrico a 15 DPF nella stessa larve. E, F. immagine fusa che mostra la nuova minerazato matrice ossea alle punte degli archi neurali (verde, frecce). B, D e F. Pila confocale dell'area inscatolato in A, C ed E, rispettivamente. Barre di scala in A, C, ed E: 100 micron. Barre di scala in B, D e F: 50 micron. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 5: immagini rappresentative Mostrando un successo e un successo di montaggio per confocale Imaging. AC. Riuscito montaggio risultati agarosio bassofondenti nella parte del campione (sinistra) situata al di fuori del piano focale. DF. montaggio di successo mostrando tutto regiComponenti di interesse nello stesso piano focale. Barre di scala: 50 micron. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 6: Trattamento Alendronato Previene Riassorbimento osseo. ALC-macchiato matrice scheletrico e ctsk: nlGFP esprimono osteoclasti in transgenici larve Medaka senza RANKL induzione (CA), con l'espressione shock termico indotto RANKL (DF), e con l'aggiunta di alendronato nello stesso giorno come RANKL induzione (GI) . C, F, e io. Pile confocale delle aree scatola in A e B, D ed E, G e H, rispettivamente.C. ALC-macchiato le colonne vertebrali intatti senza RANKL induzione. F. RANKL-indotta, ctsk esprimente forma osteoclasti intorno gli archi neurali e la centra, conseguente riassorbimento completa della matrice mineralizzata degli archi neurali (frecce) e difetti alla centra (frecce). G. L'aggiunta di alendronato non ha alcun effetto sulla formazione di ctsk: osteoclasti nlGFP esprimenti, ma blocca il riassorbimento osseo e lascia gli archi neurali e centra intatta. Barre di scala in A, B, D, E, G e H: 100 micron. Barre di scala in C, F e I: 50 micron. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

I passaggi critici all'interno del protocollo

È essenziale che le condizioni per il trattamento shock termico sono coerenti e stabili quando si confrontano i diversi campioni. Condizioni di temperatura stabili garantiscono livelli simili di RANKL induzione nelle larve transgeniche e, di conseguenza, la formazione di osteoclasti comparabili, che può essere confermata da screening per ctsk: espressione nlGFP. In definitiva, questo porta ad un grado simile di riassorbimento osseo indotto ectopica e lesioni osteoporosi-like, come convalidato mediante colorazione ALC. Tale disegno sperimentale consente poi per la determinazione e il confronto degli effetti di vari farmaci anti-riassorbimento o lo stesso farmaco applicata a diverse concentrazioni.

Modifiche e risoluzione dei problemi

Le larve sono molto fragili e deve essere maneggiato con attenzione durante il processo di montaggio per l'imaging. Per ottimale confocale vivo, larve sono accuratamente positioned con microloader plastica, piuttosto che forcipe, per evitare lesioni (Figura 2B). L'estensione tuorlo è meno sensibile al tatto stimoli e può essere usato per orientare le larve con una microloader, evitando così il movimento larvale durante il montaggio. La regione di interesse deve essere montato piana per assicurare che il campione può essere focalizzata in un piano focale durante l'imaging (Figura 5). il comportamento delle cellule di osso è molto dinamico e richiede alta risoluzione temporale e spaziale durante l'imaging dal vivo. In modo ottimale, time-lapse imaging mediante analisi confocale si desidera seguire le interazioni osteoblasti-osteoclasti nel corso di diverse ore in larve di vita. Tuttavia, ciò richiede condizioni speciali per mantenere vivo e in posizione fissa le larve. Per anestesia prolungata, viene aggiunta una soluzione di 0,001% Tricaine in mezzo pesce per coprire la solidificato agarosio durante l'imaging. Questo impedisce l'agarosio si secchi e impedisce improvvisa contrazione delle larve durante imaging per diverse ore.

LIMITI DELLA TECNICA

L'osteoporosi è una malattia che colpisce soprattutto gli uomini anziani. Pertanto, un ideale modello in vivo per lo screening di stupefacenti osteoporosi dovrebbe coinvolgere pesci adulti. Finora, tuttavia, la tecnica di imaging dal vivo descritto in questa relazione è limitato alle fasi embrionali e larvali. Attualmente l'imaging confocale a disposizione non permette l'imaging dal vivo di cellule ossee geneticamente etichettati in pesci adulti a causa di limitazioni nella profondità di penetrazione. Il recente sviluppo di tecnica LUCE microscopia a fluorescenza (LSFM), che permette l'imaging in profondità nei tessuti viventi, insieme con la disponibilità di meno pigmentate "see-through" ceppi Medaka, rende ipotizzabile che questa limitazione sarà presto superata, e immagini dal vivo di cellule ossee nel pesce Medaka adulto dopo il vaglio di farmaci sarà possibile.

Importanza della tecnica in materia d 'esistente / Alternative Metodi

Una combinazione unica di immagini dal vivo e strumenti genetici avanzati ha fatto piccoli pesci teleostei popolare per la ricerca biomedica - la ricerca ossea in particolare - e come modelli in vivo per lo screening di stupefacenti. Con la possibilità di analizzare le interazioni cellula-cellula all'interno di un organismo intatto, linee Medaka transgeniche sono particolarmente adatto per l'imaging dal vivo di processi cellulari dinamici durante la modellazione ossea e rimodellamento. Perché condividono molte reti geniche-normativo per il controllo dell'omeostasi ossea con i mammiferi, studi in vivo in Medaka può completare e addirittura superare studi in vitro utilizzando osteoblasti mammiferi e saggi cellulari cultura degli osteoclasti.

Le applicazioni future o Indicazioni Dopo aver imparato questa tecnica

Altro che il test singoli composti in uno sfondo transgenico, come descritto in questo protocollo, pesce offrono anche approcci semplici per esaminare le combinazioni di vafarmaci rious per una possibile sinergia o interferenza di composti. Inoltre, l'uso di una combinazione di diverse linee del reporter, per esempio, nel contesto di un particolare sfondo mutante, fornisce ampie opportunità per studiare il comportamento delle cellule ossee durante le diverse fasi di degenerazione e riparazione ossea, o in presenza di un osso di droga -modulating. Con le sue caratteristiche uniche che completano le analisi del mouse, il modello Medaka osteoporosi fornisce un eccellente approccio vivo per verificare e quantificare la effetti anabolici e riassorbimento osseo di nuovi composti osso-modulante.

Gli autori dichiarano di non avere interessi in competizione o finanziari.

Questo progetto è stato finanziato da sovvenzioni dal Ministero della Pubblica Istruzione di Singapore (MOE, codice di autorizzazione 2013-T2-2-126) e l'Istituto Nazionale della Salute, Stati Uniti d'America (NIH, concedere numero 1R21AT008452-01A1). TY ha ricevuto una borsa di studio di laurea del Dipartimento di Scienze Biologiche NUS. Ringraziamo l'unità confocale del Centro NUS per Bioimmagini Sciences (CBIS) per il loro costante supporto.