פרוטוקול זה פותחה באמצעות קרנות ממכון לוח של המושלים הרגנרציה לרפואה במרכז הרפואי Cedars-Sinai (כדי HSG), קריירות ב מלגת אימונולוגיה של האגודה האמריקאית של Immunologists (כדי AY HSG), ו פרס מלומד האגודה האמריקנית של המטולוגיה (כדי AY). אנו מודים הליבה Cytometry זרימה בבית Cedars-Sinai Medical Center על סיוע עם FACS מיון.

כל השיטות המתוארות כאן אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC) של Cedars-Sinai Medical Center.
1. בידוד של מח העצם העכבר והכנה של השעיה תא בודד
<ol><li>המתת חסד את העכבר בהתאם להנחיות מוסדיים.</li>
	<li>הנח את העכבר לאללה על גבו, תשפריץ עם 70% אתנול (EtOH). עושים חתך קטן (3-5 מ מ) בכל איבר הינד-הקרסול רמת באמצעות מספריים, מחודד, ומשוך את העור למעלה לכיוון הגוף כדי להסיר אותו הרגליים ולחשוף את השרירים והעצמות.</li>
	<li>הסר את השרירים (הארבע ראשי, מיתרי הברך, וכו ') העצמות באמצעות קיטום אותם עם מספריים, עם כיוון של העצם. יש להיזהר לא לגרום נזק לעצמות.</li>
	<li>לנקוע את עצמות הירך של מפרקי הירך, לחתוך משם את רקמת השריר כדי לנתק את הרגליים, נזהר לא לחתוך לתוך העצמות.</li>
	<li>להסיר את הרגליים על ידי נקע לקרסוליים של tibias, מניחים את העצמות שפופרת של PBS סטרילי או מדיה, להעביר אותם על קרח לחדר תרביות רקמה. הערה: בשביל כמה יישומים אחרים (למשל, שתנבע מקרופאגים מתאי מח עצם סה כ) זה אפשרי להשאיר את העצמות על הקרח לזמן מה, אך לבידוד קדמון חשוב להמשיך במהירות האפשרית כדי למנוע downregulation של חשוב משטח סמנים (במיוחד CD115).</li>
	<li>באבטחה הקבינט, הסר כל רקמות רכות הנותרים העצמות על ידי שפשוף אותם עם נייר טישו. הערה: הפרוטוקול צריכה להתבצע ב- cabinet אבטחה אם דגימה סטרילית נדרשת עבור מבחני תרבות או ויוו תא לאחר מיון FACS. אם תאים סטרילי אינם נדרשים, כל התהליך יכול להתבצע על הספסל מעבדה.</li>
	<li>בקצרה לטבול את העצמות ב 70% EtOH לחטא אותם, ולאחר מכן ב- PBS סטרילי לרחוץ אותם.</li>
	<li>להפריד את עצמות הירך tibias, קטועת דרך הברך, ולמחוק את קטועת.</li>
	<li>חותכים את הקצוות את העצמות עם מספריים חדות.</li>
	<li>הקציר מח עצם עם PBS קר סטרילי כדלקמן עד העצמות נראים לבנים:<ol>
<li>אחיזה כל עצם עם מלקחיים והוסף מחט 26 גרם מחובר 10 מ"ל המזרק המכיל PBS סטרילי קר לתוך הצינור עצם בקצה אחד.</li>
		<li>. תחזיק את העצם מעל שפופרת צנטרפוגה 50 מ ל ומורידים 2-5 מ ל PBS דרך העצם כדי לקצור את מח העצם.</li>
		<li>לקצור את מח העצם. מהעצמות 4 כל לכל העכבר (2 עצמות הירך ו- 2 tibias).</li>
	</ol>
</li>
	<li>בעדינות פיפטה למעלה ולמטה עם פיפטה 1 מ"ל כדי disaggregate מח העצם כדי ליצור השעיה התא.</li>
	<li>לסנן את המתלים מח העצם דרך פיסת רשת ניילון μm 30 כדי לחסל את חתיכות עצם וסלולרי אגרגטים, ובכך יוצר השעיה תא בודד.</li>
	<li>צנטריפוגה התליה תא בודד ב g 280 x 5 דקות, resuspend בגדר תא במאגר מכתימים סטרילי (PBS + 0.5% FBS + 2 מ מ EDTA), באמצעות 5 מ"ל מכתים מאגר לכל העכבר (למשל, 10 מ עבור תאים איחדו עצמות הירך, tibias של עכברים 2).</li>
	<li>. קח μL 10 aliquot של המדגם, ערבב את זה עם 10 μL Trypan Blue, טען 10 μL של המדגם התווית על-ידי Trypan Blue המתקבלת על hemocytometer. לספור את התאים באמצעות מיקרוסקופ אור. הערה: אם התאים נמצאים גם מרוכזים לספירת אמין, לדלל את הדגימה לפני הוספת Trypan Blue.</li>
</ol>2. קדמון העשרה על ידי מגנטי תא לפעיל על-מיון (מקינטוש)
<ol><li>Centrifuge המתלה כולו תא בודד (או תאים רבים נדרשים להשיג את התשואה הרצוי) ב g 280 x דקות 5-4° C ו resuspend בגדר תא ב 40 μL מכתים מאגר (PBS + 0.5% FBS + 2 מ מ EDTA) לכל 107 תאים. הערה: זה גם ניתן להשתמש MACS מאגר מהיצרן ערכת דלדול השושלת (ראה טבלה של חומרים) כחלופה למאגר מוכתמים.</li>
	<li>לבצע דלדול שושלת היוחסין לפי ההוראות שסופקו עם ערכת דלדול השושלת. ההוראות הבאות הן עבור ערכת ראה את הטבלה של חומרים. אם ערכת שונים, בצע הוראות היצרן ולאחר מכן המשך לשלב 2.3.<ol>
<li>להוסיף 10 קוקטייל ביוטין-נוגדן μL לכל 107 תאים, לערבב על-ידי pipetting, תקופת דגירה של מינימום 10-4 מעלות צלזיוס.</li>
		<li>להוסיף 30 μL מכתים מאגר/מקינטוש מאגר לכל 107 תאים ומערבבים.</li>
		<li>הוסף 20 גרגרי אנטי ביוטין μL לכל 107 תאים. מערבבים היטב, תקופת דגירה של 15 דקות נוספות ב 4 º C. הערה: מערבולת גרגרי לפני הוספתן על התאים כדי לוודא כי הם מפוזרים לגמרי.</li>
		<li>להוסיף 1 מ"ל מכתים מאגר/מקינטוש מאגר לכל 107 תאים, centrifuge את התאים ב g x 280 5 דקות, resuspend בגדר תא ב- 500 μL מכתימים מאגר/מקינטוש מאגר עבור עד 108 תאים. עבור יותר מ-108 תאים, לשנות את עוצמת הקול של צביעת מאגר/מקינטוש מאגר בהתאם.</li>
		<li>להכין את המפריד מגנטי אוטומטית על פי הוראות היצרן.</li>
		<li>למקם את הצינור המכילות את התאים שכותרתו לתוך המפריד ובחרו את תוכנית הבחירה שלילי.</li>
		<li>לאסוף את השבר שליליים, אשר מכיל את התאים מועשרים קדמון (לין–) שושלת היוחסין-שלילי. למחוק את השבר חיובית, אשר מכיל את התאים שושלת היוחסין-חיובית עם התווית מגנטית.</li>
	</ol>
</li>
	<li>לין– תאים ב g 280 x במשך 5 דקות, centrifuge, resuspend בגדר תא ב 2 מ"ל מכתים מאגר/מקינטוש מאגר לכל העכבר (למשל, 4 מ"ל אם מח העצם היה איחדו בין שני עברים). הערה: בגדר עכשיו להיות לבן במקום אדום כי אריתרוציטים התרוקן.</li>
	<li>קח את μL 10 aliquot של התאים לין– , ערבב את זה עם 10 μL Trypan Blue, טען 10 μL של המדגם התווית על-ידי Trypan Blue המתקבלת על hemocytometer. לספור את התאים באמצעות מיקרוסקופ אור. הערה: אם התאים נמצאים גם מרוכזים לספירת אמין, לדלל את הדגימה לפני הוספת Trypan Blue.</li>
</ol>3. מיאלואידית קדמון זיהוי ובידוד על ידי תא לפעיל על-ידי קרינה פלואורסצנטית מיון (FACS)
<ol><li>תווית 9 צינורות microcentrifuge (1.5 או 2 מ"ל) עבור: 1) מוכתם תאים, 2-8) תאים יחיד מוכתם fluorophore מצומדת נוגדנים נגד FcγR (CD16/32), c-Kit, Sca-1, CD34, Flt3 (CD135), Ly6C ו- CD115 לקבלת פיצוי הבחירה וצבע מתח, ו- 9) דגימת תאים כדי להיות מוכתם כל 7 נוגדנים קדמון זיהוי ומיון.</li>
	<li>פזר 100,000 תאים לכל אחד הצינורות שליטה (צינורות 1-8), ואת כל התאים הנותרים (או פחות אם תרצה) לשם ברכבת התחתית מדגם (הצינור 9). הערה: אם אמצעי האחסון מדגם גדול מ- 1.5-2 מ"ל, ייתכן צורך להפיץ את דגימת התאים לתוך צינור 15 מ"ל, centrifuge אותם, resuspend בגדר (שלב 3.3 להלן), ולאחר מכן להעביר את התאים לרכבת התחתית microcentrifuge עבור צביעת והשלבים הבאים.</li>
	<li>Centrifuge התאים ב g 1,500 x למשך 5 דקות ולאחר resuspend כדורי צינור שליטה ב- 100 μL מכתים מאגר (PBS + 0.5% FBS + 2 מ מ EDTA) ולא בגדר צינור לדוגמה ב- 100 μL מכתים מאגר לכל 5 x 106 תאים (למשל, 200 μL עבור 1 x 107 תאים).</li>
	<li>להוסיף 2 μg/mL anti-CD16/CD32-APC-Cy7 הצינור FcγR הכתם יחיד, הצינור מדגם. מערבולת בעדינות כדי לערבב, תקופת דגירה של מינימום 10-4 מעלות צלזיוס. הערה: חשוב להכתים את דגימת התאים עם הנוגדן FcγR (CD16/32) לפני הוספת נוגדנים אחרים כדי למנוע תחרות בגלל שאינם ספציפיים בתיווך fc של הנוגדן מחייב. לא תדגור התאים עם FcγR חסימת ריאגנט</li>
	<li>להוסיף נוגדנים אחרים המתאימים כתם אחד הצינורות (1 נוגדן כל) של הצינור מדגם (כל 6 נוגדנים): μg/mL 10 c-Kit-פסיפיק בלו, 2 μg/mL Sca-1-PE-Cy7, 25 μg/mL CD34-FITC, 10 μg/mL Flt3-APC, 2 μg/mL Ly6C-PerCP-Cy5.5 ו- 4 μg/mL CD115-PE. מערבולת בעדינות, דגירה למשך 15 דקות ב 4 º C.</li>
	<li>הוסף 900 μL מאגר מכתימים את הצינורות שליטה מאגר מכתימים 1 מ"ל לכל7 10, לתאים הצינור הדגימה. Centrifuge התאים ב g x 1,500 במשך 5 דקות, resuspend בגדר תא בצביעת מאגר: μL 200 למחזור בקרת ולאחר μL 500 לכל 25 x 10 תאים6 בצינור הדגימה. העבר את התאים resuspended צינורות 5 מ"ל FACS. הערה: אם אמצעי האחסון מדגם גדול מ- 1.5-2 מ"ל, ייתכן צורך להעביר את התאים לרכבת התחתית 15 mL עבור צנטריפוגה.</li>
	<li>הכינו את cytometer זרימה (מנתח או סדרן) על פי הוראות היצרן.</li>
	<li>הפעל את מוכתם יחיד צבעונית תאים שליטה דרך הזרימה cytometer כדי להגדיר את המתחים ואת צבע פיצויים.</li>
	<li>להפעיל את התאים לדוגמה, שער תת-קבוצות קדמון וגם מחולקת לרמות מתחת מסוכמים באיור2, ולבצע במידת הצורך, FACS מיון כדי לבודד תת-קבוצות קדמון הרלוונטיים. הערה: יש בדרך כלל צורך לרכוש כ 200,000 תאים כדי לקבל לפחות 1,000 אירועים כל שער קדמון.<ol>
<li>ליצור חלקת נקודה כל התאים, הצגת FSC-A (x) וציר האס-A (ציר y), ואת שער להוציא פסולת ותאים מתים = > "חי" תאים.</li>
		<li>יצירת מגרש נקודה של תאים "חי", הצגת FSC-H (ציר x) ו- FSC-W (ציר y), ואת שער כדי לא לכלול doublets = > שער חי/גופיה (FSC).</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה לחיות/גופיה תאים (FSC), הצגת האס-H (ציר x), האס-W (ציר y), ואת שער כדי לא לכלול doublets = > לחיות/גופיה (FSC) / שער גופיה (האס).</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה לחיות/גופיה (FSC) / תאים גופיה (האס), הצגת Sca-1 (ציר x) ו- c-Kit (ציר y), ושער לבחירת c-Kit+ Sca-1– תאים = > תאים ביירד– .</li>
		<li>יצירת מגרש נקודה של תאים ביירד– , הצגת CD34 (ציר x) FcγR (ציר y) ואת השער כדי לבחור CD34+ FcγRהלאו תאים = > "CMPs", ואת CD34+ FcγR תאיםשלום = > "Gmp". הערה: חשוב לשער את "CMPs" ואת "Gmp" כמו במדויק ככל האפשר. זה עוזר להשתמש מגרש צפיפות מדומה או מגרש מתאר עבור gating מדויק.</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה "CMPs", הצגת CD115 (ציר x), Flt3 (ציר y), ושער כדי לבחור: Flt3+ CD115הלאו תאים = > CMP-Flt3+ CD115הלאו תאים, Flt3– CD115הלאו תאים = > Flt3-CMP– תאי, Flt3+ CD115 תאיםשלום = > MDPs.
</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה "Gmp", הצגת Ly6C (ציר x) FcγR (ציר y) ואת שער לבחירת Ly6C תאים–= > "תאים GMP-Ly6C– ", Ly6C+ תאים = > "GMP-Ly6C+ תאים".</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה "GMP-Ly6C– תאים", הצגת CD115 (ציר x), Flt3 (ציר y), ושער כדי לבחור: Flt3– CD115הלאו תאים = > Gmp.
</li>
		<li>ליצור חלקת נקודה "GMP-Ly6C+ תאים", הצגת CD115 (ציר x), Flt3 (ציר y), ושער כדי לבחור: Flt3– CD115הלאו תאים = > GPs, Flt3– CD115היי תאים = > MPs + cMoPs.
</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+clonogenic+common+myeloid+progenitor+that+gives+rise+to+all+myeloid+lineages.">A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages.</a> Nature. 404 (6774), 193-197 (2000).</li><li>Y&#225;&#241;ez, A., Ng, M. Y., Hassanzadeh-Kiabi, N., Goodridge, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IRF8+acts+in+lineage-committed+rather+than+oligopotent+progenitors+to+control+neutrophil+vs+monocyte+production.">IRF8 acts in lineage-committed rather than oligopotent progenitors to control neutrophil vs monocyte production.</a> Blood. 125 (9), 1452-1459 (2015).</li><li>Auffray, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CX3CR1++CD115++CD135++common+macrophage/DC+precursors+and+the+role+of+CX3CR1+in+their+response+to+inflammation.">CX3CR1+ CD115+ CD135+ common macrophage/DC precursors and the role of CX3CR1 in their response to inflammation.</a> Journal of Experimental Medicine. 206 (3), 595-606 (2009).</li><li>Fogg, D. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+clonogenic+bone+marrow+progenitor+specific+for+macrophages+and+dendritic+cells.">A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cells.</a> Science. 311 (5757), 83-87 (2006).</li><li>Onai, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+clonogenic+common+Flt3+M-CSFR++plasmacytoid+and+conventional+dendritic+cell+progenitors+in+mouse+bone+marrow.">Identification of clonogenic common Flt3+M-CSFR+ plasmacytoid and conventional dendritic cell progenitors in mouse bone marrow.</a> Nature Immunology. 8 (11), 1207-1216 (2007).</li><li>Hettinger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origin+of+monocytes+and+macrophages+in+a+committed+progenitor.">Origin of monocytes and macrophages in a committed progenitor.</a> Nature Immunology. 14 (8), 821-830 (2013).</li><li>Y&#225;&#241;ez, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Granulocyte-monocyte+progenitors+and+monocyte-dendritic+cell+progenitors+independently+produce+functionally+distinct+monocytes.">Granulocyte-monocyte progenitors and monocyte-dendritic cell progenitors independently produce functionally distinct monocytes.</a> Immunity. 47 (5), 890-902 (2017).</li><li>Olsson, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-cell+analysis+of+mixed-lineage+states+leading+to+a+binary+cell+fate+choice.">Single-cell analysis of mixed-lineage states leading to a binary cell fate choice.</a> Nature. 537 (7622), 698-702 (2016).</li><li>Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+hind+limb+long+bone+dissection+and+bone+marrow+isolation.">Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation.</a> Journal of Visualized Experiments. (110), (2016).</li><li>Y&#225;&#241;ez, A., Goodridge, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interferon+regulatory+factor+8+and+the+regulation+of+neutrophil,+monocyte,+and+dendritic+cell+production.">Interferon regulatory factor 8 and the regulation of neutrophil, monocyte, and dendritic cell production.</a> Current Opinion in Hematology. 23 (1), 11-17 (2016).</li><li>Manz, M. G., Miyamoto, T., Akashi, K., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prospective+isolation+of+human+clonogenic+common+myeloid+progenitors.">Prospective isolation of human clonogenic common myeloid progenitors.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (18), 11872-11877 (2002).</li></ol>

המחברים אין לחשוף.

ויסמן gating אסטרטגיה עבור זיהוי קדמון מיאלואידית העכבר1 כבר את תקן זהב עבור immunologists ו ההמטולוגים במשך כמעט 20 שנה, אבל עכשיו זה לכאורה כי השערים "CMP" ו- "GMP" הם מאוד הטרוגנית יותר מדויק אסטרטגיות המגביל נחוצים. בפרוטוקול כי שתיארנו כאן מאפשר הזיהוי של oligopotent ושל קבוצות משנה ביצע שושלת היוחסין בעכברים C57BL/6J כימות מדויקת יותר של אבות מיאלואידית ספציפיים, מיפוי של מסלולים myelopoiesis, כמו גם חקירה של מולקולרית מנגנונים הפעלה בשלבים מסוימים של בידול מיאלואידית. תת-קבוצות קדמון ניתן למיין, במידת הצורך, עבור ניתוחים מולקולריים, הערכת במבחנה , ויוו בידול וכו
הפרוטוקול פותח באמצעות צעיר (בן 6-8 שבועות) עכברים C57BL/6J ומתאים גם זכר וגם נקבה עכברים. אנחנו לא שאפיינו תת-קבוצות קדמון בעכברים בוגרים. אנחנו לא צופים סמני ישתנה עם הגיל, אך כמויות יחסיות של ערכות המשנה עשוי להשתנות. אנחנו לא שהערכת תת-קבוצות קדמון של זנים אחרים בעכבר.
היישום הראשון של האסטרטגיה המגביל ששונה שלנו היה לספק מכניסטית תובנה ברגולציה של התאים מיאלואידית גורל הבחירה על ידי שעתוק מקדם אינטרפרון רגולטוריות הגורם 8 (IRF8)2. IRF8 דווח קודם לכן לבוא לידי ביטוי על ידי Gmp (ויסמן "GMP" שבר), נדרש עבור בידול מונוציט לקדם ביטוי גנים מונוציט, דיכוי גנים נויטרופילים ועל קידום אפופטוזיס נויטרופילים10. באמצעות אסטרטגיה המגביל ששונה שלנו, הפגנו כי IRF8 לא מתבטא בכך oligopotent Gmp, אבל בא לידי ביטוי הן GPs ו- MPs + cMoPs2. יתר על כן, אנחנו הראו כי IRF8 מסדיר GP ו MP + cMoP הישרדות, בידול, יותר מאשר ייצור של המוצא לאגס ביצע שושלת היוחסין מאת oligopotent Gmp. באופן דומה, אנחנו לאחרונה להשתמש האסטרטגיה המגביל ששונה שלנו להגדיר מחדש את המודל של myelopoiesis, ולא הוכיח כי Gmp ו- MDPs לייצר באופן פונקציונלי ברורים ומונוציטים דלקתיות דרך מסלולים עצמאיים 27.
הצעד דלדול שושלת היוחסין יכול להתבצע באמצעות מפריד מגנטי ידנית במקום הפרדה מגנטית אוטומטיות ולאחר שושלת היוחסין דלדול גם ניתן להשיג באמצעות cytometry זרימה באמצעות את הקוקטייל נוגדן biotinylated סמן שושלת היוחסין ו- a fluorophore מצומדת אנטי ביוטין נוגדן, עם דרך השער כדי לבחור את התאים וללא רבב. דלדול שושלת היוחסין אינו כולל ביותר תאים ומעשירה עבור c-Kit+ אבות למזער את הזמן ואת עלויות המשויכות והשלבים הבאים (קרי, מפחית את הנוגדן אמצעי אחסון עבור cytometry זרימה, מנתח/סדרן זמן, וכו). החוקרים לעיין גליון הנתונים של היצרן כדי לקבוע אם הצעד דלדול שושלת היוחסין עבד ביעילות ככל הצפויה עבור ערכת מסוים להשתמש. עם זאת, זה לא משנה אם דלדול שושלת היוחסין אינו 100% יעיל כי מבודלים (לין+) תאים לא אקספרס c-Kit, אז יש תאים שנותרו לאחר דלדול השושלת (כמו גם שאר התאים c-Kit– ) לאחר מכן לא נכלל בשל gating cytometry זרימה. חשוב גם לציין כי GPs ו MPs Ly6C אקספרס, אבל בניגוד Ly6C לידי ומונוציטים, המייצר Ly6C (ככל הנראה שונה isoform) אינה מזוהה על ידי הנוגדן Gr-1 כלולים לעיתים קרובות ערכות דלדול שושלת היוחסין, ובכך GPs ו MPs נשארים לאחר השושלת דלדול2.
צביעת טוב הוא חשוב עבור כל הסמנים פני השטח, אבל קריטי במיוחד עבור FcγR להתיר gating מדויק של FcγRהלאו "CMPs", את FcγRשלום "Gmp". דילול הבחירה ואת נוגדן fluorophore האופטימלי חיוניים הפרדה טובה, ריאגנט חסימה FcγR (נפוץ לפני צביעת עבור cytometry זרימה) בטח לא להשתמש בו. חשוב גם לציין כי CD115 הוא downregulated כאשר התאים נשמרים ב 4° C או בקרח לתקופה ממושכת, ולכן חשוב לעבוד מהר כדי להשיג מכתים טוב. אנו ממליצים על עיבוד התאים בתוך 1-2 שעות כדי לשמר את שלמות שלהם. אם תאים חיים אינם נדרשים, התאים מוכתם יכול להיות קבוע, רכשה תוך 48 שעות.
אם השברים מבודד מכילים מספרים משמעותיים של תאים מתים, זה ניתן לכלול צבע הכדאיות (למשל, יודיד propidium) לשער באופן מדויק יותר של תאים חיים, אם כי זה כנראה יצריכו שינוי השילוב של נוגדנים fluorochrome מצומדת. במידת הצורך, ניתן לחשב תא ספירת על-ידי הוספת חרוזים ספירה-ריכוז ידוע לדגימת עבור cytometry זרימה. חרוזים הספירה הם חרוזים לייטקס פלורסנט ניתן להבדיל בין התאים FSC-A והאס-A או על ידי עוצמת קרינה פלואורסצנטית גבוהה שלהם. מספרי הטלפון הנייד יכול להיות מחושב באמצעות הנוסחה הבאה:
(מספר האירועים תא / מספר אירועים חרוז) x (מספר חרוזים הוסיף מדגם / נפח של מדגם μL) = ריכוז לדוגמה כמו תאים/μL
מגבלה אחת של פרוטוקול הנוכחית היא כי זה אינו מאפשר זיהוי נפרדים של MPs cMoPs, אשר מסבך את הערכה של אבות אלה, חקירת שלהם ביטוי גנים, מאפיינים פונקציונליים, וכו לדוגמה, נצפתה לודיג MP + מספרים cMoP אינו מציין אם מונוציט משופרת ייצור מתרחשת דרך השביל GMP, מסלול MDP או שניהם. במחקרים מתמשך, אנו מקווים לזהות סמנים משטח המבדילות בין MPs cMoPs. בינתיים, הערכה של אלה אבות מאת רצפי RNA בתא יחיד7 יכול לשמש לעשות פרופיל של כמויות יחסיות של MPs ו- cMoPs.
מחקרים רצפי RNA בתא יחיד סביר גם תחשוף הטרוגניות נוספים בתוך השברים קדמון 6 שמתואר פרוטוקול זה, אשר ישקפו התבגרות שונים קובע למשל, GPs רק לאחרונה שאיבדה מונוציט פוטנציאל לעומת ה-GPs זה עומדים להמשיך לשלב הבא של בידול. תת-קבוצות שבר "GMP" עשויים להכיל אבות עם פוטנציאל לייצר אחרים גרנולוציטים (אאוזינופילים, בזופילים, ו תאי פיטום), אבל אנחנו לא חקרו את זה. כאמור במבוא, גם לא ברור כרגע CMP-Flt3+ CD115הלאו,– Flt3-CMP ושברים MDP באמת להכיל המוצא לאגס החזוי oligopotent או לחלופין מהווים תערובת של אבות עם יותר רצף RNA פוטנציאליים, אך תא בודד השושלת מוגבל עשוי לספק תובנה זו שאלה חשובה.
גישה חדשה שעכשיו הדרושה הזיהוי של קבוצות משנה של אבות מיאלואידית אנושי. וייסמן ועמיתיו שהוגדרה קודם לכן מיאלואידית קבוצות משנה (כולל "CMPs" ו "Gmp") אנושי מח עצם, דם טבורי11, אבל הם באופן דומה הטרוגנית. למרבה הצער, תרגום של העכבר gating אסטרטגיות אבות האדם הינו מסובך ההבדלים הבולטים בביטוי סמן משטח בין בני האדם ואת העכבר אבות; למשל, הביטוי CD34 מוגבל קבוצות משנה קדמון מיאלואידית העכבר, אך הבחין להפכה על אבות האדם כולל תאי גזע hematopoietic. כדאי, מחקרים רצפי RNA בתא יחיד לעומת זאת, היתר גם הזיהוי של המועמד סמנים כדי להפריד בין תת-קבוצות אדם קדמון.

ומונוציטים, נויטרופילים, תאים דנדריטים (Dc) הם התאים מיאלואידית הנובעים מן אבות hematopoietic, בעיקר במח העצם, על ידי תהליך הנקרא myelopoiesis. אבות מיאלואידית משותף (CMPs) יש פוטנציאל לייצר התאים מיאלואידית, כמו גם megakaryocytes, אריתרוציטים, אבל בתאי הלימפה לא. גרנולוציט-מונוציט אבות (Gmp), אשר נגזרות CMPs, להפיק גרנולוציטים ומונוציטים, אך איבדו מגקריוציט של כדוריות דם אדומות פוטנציאליים. ומונוציטים הקלאסית plasmacytoid בקרי קבוצת מחשבים (cDCs/שיתפקדו) הם גם חשבו נובעים אבות נפוץ הידוע בשם אבות מונוציט-DC (MDPs), המיוצרים על ידי הדרגתי ההגבלה של פוטנציאל שושלת היוחסין בסופו של דבר התוצאה ביצע השושלת CMPs. אבות: אבות גרנולוציט מונוציט אבות, אבות תא דנדריטי (איור 1).
וייסמן ועמיתיו דיווחו כי CMPs נמצאים בערכה לין– c-+ Sca-1– (ביירד–) CD34+ FcγRהלאו שבר של העכבר מח העצם, ואילו Gmp הכלולים CD34 ביירד– + FcγR היי חלק1. עם זאת, אלו שברים "CMP" ו- "GMP" הם מאוד הטרוגנית. למשל, השבר "GMP" מכיל גם גרנולוציט ביצע לשושלת אבות מונוציט אבות1,2. MDPs דווחו בנפרד כדי להיות CX3CR1+ Flt3+ CD115+ אבות כי גם אקספרס CD34 ו FcγR3,-4. MDPs להצמיח cDC/pDC-הפקת נפוצות DC אבות (CDPs), אשר דווחו לבטא רמות נמוכות יותר של c-Kit (CD117), לא נכללות שבר ביירד– 5.
בעבר והונח ומונוציטים להיווצר באמצעות נתיב יחיד (CMP-GMP-MDP-מונוציט). בקנה אחד עם זה אבות מודל, ביצע מונוציט מתוצרת Gmp (על שם אבות מונוציט, MPs)2 ו- MDPs (על שם נפוץ מונוציט אבות, cMoPs)6 שנראה אותם התאים על בסיס משותף סמן משטח ביטוי . עם זאת, אנחנו לאחרונה הוכיח כי ומונוציטים מיוצרים באופן עצמאי על ידי Gmp ו MDPs, היו מסוגלים להבחין בין MPs cMoPs על ידי רצפי RNA בתא יחיד7.
אנחנו ששינה לאחרונה את ויסמן "CMP" ואסטרטגיה "GMP" חסימה כדי לזהות subfractions 6 של מח העצם של העכבר C57BL/6J המכילה oligopotent שונים, ביצע שושלת היוחסין קדמון מיאלואידית קבוצות משנה. קודם דיווחנו כי צביעת עבור Ly6C ו- CD115 מתירה את ניתוקה של oligopotent Gmp, וכן גרנולוציט אבות (GPs) של אבות מונוציט (MPs והן cMoPs, אשר כעת אין אפשרות להפריד) שבר "GMP"2 (ביירד - CD34+ FcγRהיי שער; איור 1). לאחר מכן להדגים MDPs מצויים בעיקר השבר "CMP" (CD34 ביירד– + FcγRהלאו שער), אשר מכיל גם Flt3+ CD115הלאו , Flt3– קבוצות משנה7 (איור 1 ). CMP-+ CD115הלאו שבר Flt3 התשואות Gmp והן MDPs בעת העברה המאמצת. המשנה CMP-Flt3– מכיל אבות כי נראה ביניים בין CMP-Flt3+ CD115הלאו תאים Gmp. בניגוד MDPs, CMP-Flt3+ CD115הלאו והן שברים CMP-Flt3– גם בעלי מגקריוציט כדוריות דם אדומות פוטנציאליים.
חשוב לציין, עם זאת, כי זה כרגע לא ברור אם השברים "CMP" מכילים אבות כי הם באמת oligopotent (למשל, תאים בודדים בתוך CMP-+ CD115הלאו שבר Flt3 שקיימים נויטרופילים, מונוציט, DC, מגקריוציט, פוטנציאל כדוריות דם אדומות), או לחלופין, מהווים תערובת של אבות עם פוטנציאל שושלת היוחסין מוגבל יותר. המושבה ויוצרים מבחני (methylcellulose תרבויות) חשפה תאים עם גרנולוציט (נויטרופילים), כדוריות דם אדומות, מונוציט מגקריוציט פוטנציאליים (תאי GEMM) ב- "CMP," CMP-Flt3+ CD115הלאו ושברים CMP-Flt3– 1 ,7, אך אינן מתירות את ההערכה של פוטנציאל DC. לעומת זאת, המושבה ויוצרים מבחני הוכיחה את קיומו של oligopotent Gmp (אבות נויטרופילים וגם מונוציט פוטנציאליים)1,שבר "GMP"2, זה נתמך על ידי תא בודד לאחרונה ניתוח transcriptomic8. לא כיום ידוע, עם זאת, בין אם אלה Gmp oligopotent גם לייצר אחרים גרנולוציטים (אאוזינופילים, בזופילים, ו תאי פיטום).
בהתבסס על מחקרים אלה, עכשיו נדגים איך פני השטח 7 סמנים (c-Kit, Sca-1, CD34, FcγR, Flt3, Ly6C ו CD115) יכול לשמש לזיהוי ולבידוד אלה 6 קבוצות משנה של oligopotent, ביצע לשושלת אבות מיאלואידית. הפרוטוקול המתואר כאן יכול להיות מיושם עבור in vitro לקשרי תרבות מבחני (תרבויות methylcellulose או נוזל), ויוו העברה המאמצת ניסויים עכברים, אנליזה מולקולרית (רצפי RNA בתפזורת, תא בודד, סופג המערבי, וכו).
הפרוטוקול מורכב 3 שלבים: 1) הכנת השעיה תא בודד של מח העצם תאים, 2) העשרה עבור אבות hematopoietic (מגנטי תא לפעיל על-מיון), ו- 3) זיהוי ובידוד במידת הצורך, של קבוצות משנה קדמון על ידי זרימת cytometry (באמצעות מנתח או סדרן, לפי הצורך). הצעד הראשון הוא בידודו של תאים במח העצם עצמות הירך ואת tibias של עכברים לאללה, והוא דומה לזה שתואר לעיל פרוטוקולים אחרים9. בשלב הבא, המדגם הוא מועשר עבור תאי גזע וקדמון באמצעות קוקטייל של נוגדנים נגד סמני פני שטח התא של אריתרוציטים, נויטרופילים ומונוציטים, לימפוציטים, וכו ', כדי לרוקן את התאים הבדיל. זו אינה חובה, אבל מומלץ בחום כדי למטב את הזיהוי של ערכות המשנה קדמון, וכדי להפחית את כמות נוגדנים לצורך זיהוי קדמון ולא את הזמן הנדרש עבור cytometry זרימה. פרוטוקול דלדול שושלת היוחסין להלן מתאר מיון תא Magnetic-Activated (מקינטוש) באמצעות ערכת דלדול העכבר תא השושלת (אשר מכיל biotinylated נוגדנים נגד CD5, CD45R (B220), CD11b, Gr-1 (Ly6G/ג), 7-4, וטר-119, בנוסף אנטי ביוטין . גרגרי) ומפריד ממוכנת מגנטי. השלב האחרון הוא הזיהוי (ומיון, במידת הצורך) של ערכות המשנה קדמון על ידי cytometry זרימה. לוח נוגדן המתוארים להלן (ראה גם לוח 1) תוכנן כדי לשמש cytometer זרימה (מנתח או סדרן) עם לייזרים 4 (405 ננומטר, 488 ננומטר, 561 nm, 640 ננומטר).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58061/58061fig1.jpg"> איור 1: אבות נויטרופילים, מונוציט, DC מסלולים בידול. המודל לאחרונה המתוקן של myelopoiesis7 מודגם, עם השערים וייסמן "CMPs" (כחול) ו- "Gmp" (ירוק)1 בשכבות. איור זה השתנה. ואח 2017 Yáñez7. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/58061/58061fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="945">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Mouse: Wild-type C57BL/6J (CD45.2)</td>
			<td style="width:177px;">The Jackson Laboratories</td>
			<td style="width:172px;">Cat#JAX:000664</td>
			<td style="width:239px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Lineage Cell Depletion Kit, mouse</td>
			<td style="width:177px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:172px;">Cat#130-090-858</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Rat anti-mouse CD34 (clone RAM34) FITC</td>
			<td style="width:177px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:172px;">Cat#553733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:357px;">Rat anti-mouse CD16/CD32 (Fc&#947;R; clone 93) APC-Cy7</td>
			<td style="width:177px;">BioLegend</td>
			<td style="width:172px;">Cat#101327</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:357px;">Rat anti-mouse Ly6A/E (Sca-1; clone 108113) PE-Cy7</td>
			<td style="width:177px;">BioLegend</td>
			<td style="width:172px;">Cat#108114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:357px;">Rat anti-mouse CD117 (c-Kit; clone 2B8) Pacific Blue</td>
			<td style="width:177px;">BioLegend</td>
			<td style="width:172px;">Cat#105820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Rat anti-mouse Ly6C (clone HK1.4) PerCP-Cy5.5</td>
			<td style="width:177px;">BioLegend</td>
			<td style="width:172px;">Cat#128012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Rat anti-mouse CD115 (clone AFS98) PE</td>
			<td style="width:177px;">BioLegend</td>
			<td style="width:172px;">Cat#135506</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">Rat anti-mouse CD135 (Flt3; clone A2F10.1) APC</td>
			<td style="width:177px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:172px;">Cat#560718</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">CountBright Absolute Counting Beads</td>
			<td style="width:177px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:172px;">Cat#C36950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">AutoMACS Separator</td>
			<td style="width:177px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:172px;">N/A</td>
			<td>Use the &#34;deplete&#34; program</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">BD LSRFortessa</td>
			<td style="width:177px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:172px;">N/A</td>
			<td>5 lasers, 15 colors</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">BD FACS Aria III cell sorter</td>
			<td style="width:177px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:172px;">N/A</td>
			<td>5 lasers, 13 colors</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:357px;">FlowJo</td>
			<td style="width:177px;">FlowJo, LLC</td>
			<td style="width:172px;">https://www.flowjo.com</td>
			<td>For further analysis of the .fcs files</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

identification and isolation of oligopotent and lineage-committed myeloid progenitors from mouse bone marrow

אבות מיאלואידית כי תשואות נויטרופילים ומונוציטים, תאים דנדריטים (Dc) יכול להיות מזוהה ב והיא מבודדת ממח העצם של עכברים עבור ניתוחים hematological ו. לדוגמה, מחקרים של המאפיינים תאית ומולקולרית של אוכלוסיות קדמון מיאלואידית ניתן לחשוף את המנגנונים שבבסיס הטרנספורמציה לוקמיה או להדגים כיצד המערכת החיסונית מגיבה לחשיפה הפתוגן. בעבר אסטרטגיות cytometry זרימה שתואר עבור זיהוי קדמון מיאלואידית אפשרו התקדמות משמעותית בתחומים רבים, אך שברים שהם מזהים הטרוגנית מאוד. אסטרטגיות המגביל הנפוצות ביותר מגדירים מח העצם שברים מועשר עבור האוכלוסיות הרצוי, אך גם להכיל מספרים גדולים של אבות "מזהם". מחקרים אחרונים שלנו פתרו את רוב זה הטרוגניות, פרוטוקול שאנו מציגים כאן מתירה את ניתוקה של 6 subpopulations של oligopotent, ביצע לשושלת אבות מיאלואידית 2 שתואר קודם לכן מח העצם שברים. הפרוטוקול מתאר 3 שלבים: 1) בידוד של מח העצם תאים, 2) העשרה עבור אבות hematopoietic על-ידי מגנטי תא לפעיל על-מיון (דלדול שושלת היוחסין מאת מקינטוש) ולאחר 3) זיהוי של קדמון מיאלואידית קבוצות משנה על-ידי cytometry זרימה (כולל קרינה פלואורסצנטית תא לפעיל על-מיון, FACS, במידת הצורך). גישה זו מאפשרת כימות קדמון ובידוד למגוון רחב של יישומי בתוך חוץ גופית וויוו , כבר הניב תובנות הרומן משעולים, מנגנונים של נויטרופילים, מונוציט DC בידול.

באמצעות פרוטוקול המתואר לעיל, זה אפשרי להשיג ~ 100 מיליון תאים (כולל תאי דם אדומים, או תאים nucleated ~ 50 מיליון) של עצמות הירך והן tibias (2 רגליים) של עכבר C57BL/6J אחד (6-8 שבועות ישנים, זכר או נקבה). 1-2 מיליון תאים לין– ניתן לבודד לכל העכבר על ידי MACS דלדול תאי לין+ .
כל אחד 6 קבוצות משנה קדמון מיאלואידית מהווה ~ 1-4% של לין תאים– . השושלת דלדול יעילים depleting תאים ומכיל מעשירה עבור אבות, אבל השבר לין– אחוז גדול של תאים– c-Kit בנוסף אבות c-Kit+ (איור 3 א). קדמון התשואות לאחר מיון FACS יכול להשתנות בהתאם להגדרות סדרן בשימוש (למשל, מקסימום תשואה לעומת טוהר אופטימלי), אבל באופן כללי זה ניתן לקבל 10,000-40,000 תאים לכל סיעה (איור 3B). ניתוח cytometry זרימה לאחר מיון צריך לחשוף > 95% טוהר כל שבר (איור 3C).
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58061/58061fig2.jpg"> איור 2: Gating אסטרטגיה לצורך זיהוי שברים קדמון מיאלואידית 6. (א) gating פרוגרסיבי של התאים לין– בשידור חי -> ללבישה (FSC) -> ללבישה (האס) -> ביירד– תאים -> CD34+ FcγRלו ("CMP") ו- CD34+ FcγR שבריםשלום ("GMP") -> 6 תאים מיאלואידים קדמון קבוצות משנה. (B) סיכום של סמן משטח ביטוי על ידי שברים קדמון 6. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/58061/58061fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58061/58061fig3.jpg"> איור 3: התשואות קדמון נציג וטוהר. (א) cytometry זרימה נציג חלקות בסה כ מציג c-Kit and ביטוי CD11b על-ידי תאי מח עצם לפני ואחרי התרוקנות שושלת היוחסין, להפגין העשרה של אבות (c-Kit+ תאים). (B) תא התשואות עבור כל שבר קדמון, הציג אומר + סטיית תקן של 30 ניסויים. תאים במח העצם של עכברים עד 20 היו איחדו עבור ניסוי. (ג) cytometry זרימה נציג חלקות של מיון שלאחר ניתוח, הממחיש את הטוהר של שברים קדמון ממוין FACS. לוח ג שונתה. ואח 2017 Yáñez7. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/58061/58061fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>לייזר</td>
			<td>ערוץ</td>
			<td>מסנן</td>
			<td>המראה</td>
		</tr>
<tr>
<td>405 ננומטר</td>
			<td>א</td>
			<td>670/30</td>
			<td>635LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>B.</td>
			<td>525/50</td>
			<td>505LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ג c-Kit-פסיפיק כחול</td>
			<td>450/50</td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>488 ננומטר</td>
			<td>א (FSC)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>B. Ly6C-PerCP-Cy5.5</td>
			<td>710/50</td>
			<td>690LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ג CD34-FITC</td>
			<td>525/50</td>
			<td>505LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ד האס</td>
			<td>488/10</td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>561 nm</td>
			<td>א Sca-1-PE-Cy7</td>
			<td>780/40</td>
			<td>750LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>B.</td>
			<td>710/50</td>
			<td>690LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ג.</td>
			<td>660/20</td>
			<td>640LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ד</td>
			<td>610/20</td>
			<td>600LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>אי CD115-PE</td>
			<td>582/15</td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>640 nm</td>
			<td>א FcϒR-APC-Cy7</td>
			<td>780/60</td>
			<td>750LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>B.</td>
			<td>730/45</td>
			<td>690LP</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>ג Flt3-APC</td>
			<td>670/30</td>
			<td></td>
		</tr>
</tbody></table>
טבלה 1: נוגדן לוח וזרימה cytometer תצורה.

Watch this Scientific Journal Video about Identification and Isolation of Oligopotent and Lineage-committed Myeloid Progenitors from Mouse Bone Marrow at JoVE.com

Identification and Isolation of Oligopotent and Lineage-committed Myeloid Progenitors from Mouse Bone Marrow

נדגים כיצד לזהות ולבודד 6 קבוצות משנה של אבות מיאלואידית ממח העצם מאתר באמצעות שילוב של מגנטי קרינה פלואורסצנטית מיון (מקינטוש ו- FACS). פרוטוקול זה יכול לשמש in vitro לקשרי תרבות מבחני (תרבויות methylcellulose או נוזל), ויוו המאמצת העברת הניסויים של RNA/חלבון ניתוחים.

זיהוי ובידוד של Oligopotent, ביצע לשושלת אבות מיאלואידית ממח העצם העכבר

Myeloid progenitors that yield neutrophils, monocytes and dendritic cells (DCs) can be identified in and isolated from the bone marrow of mice for ...

identification-isolation-oligopotent-lineage-committed-myeloid

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

8.4K Views.  Cedars-Sinai Medical Center. נדגים כיצד לזהות ולבודד 6 קבוצות משנה של אבות מיאלואידית ממח העצם מאתר באמצעות שילוב של מגנטי קרינה פלואורסצנטית מיון (מקינטוש ו- FACS). פרוטוקול זה יכול לשמש in vitro לקשרי תרבות מבחני (תרבויות methylcellulose או נוזל), ויוו המאמצת העברת הניסויים של RNA/חלבון ניתוחים.

Video: Identification and Isolation of Oligopotent and Lineage-committed Myeloid Progenitors from Mouse Bone Marrow

Differentiating Functional Roles of Gene Expression from Immune and Non-immune Cells in Mouse Colitis by Bone Marrow Transplantation

To understand the role of a gene in the development of colitis, we compared the responses of wild-type mice and gene-of-interest deficient knockout mice to colitis. If the gene-of-interest is expressed in both bone marrow derived cells and non-bone marrow derived cells of the host; however, it is possible to differentiate the role of a gene of interest in bone marrow derived cells and non- bone marrow derived cells by bone marrow transplantation technique. To change the bone marrow derived cell genotype of mice, the original bone marrow of recipient mice were destroyed by irradiation and then replaced by new donor bone marrow of different genotype. When wild-type mice donor bone marrow was transplanted to knockout mice, we could generate knockout mice with wild-type gene expression in bone marrow derived cells. Alternatively, when knockout mice donor bone marrow was transplanted to wild-type recipient mice, wild-type mice without gene-of-interest expressing from bone marrow derived cells were produced. However, bone marrow transplantation may not be 100% complete. Therefore, we utilized cluster of differentiation (CD) molecules (CD45.1 and CD45.2) as markers of donor and recipient cells to track the proportion of donor bone marrow derived cells in recipient mice and success of bone marrow transplantation. Wild-type mice with CD45.1 genotype and knockout mice with CD45.2 genotype were used. After irradiation of recipient mice, the donor bone marrow cells of different genotypes were infused into the recipient mice. When the new bone marrow regenerated to take over its immunity, the mice were challenged by chemical agent (dextran sodium sulfate, DSS 5%) to induce colitis. Here we also showed the method to induce colitis in mice and evaluate the role of the gene of interest expressed from bone-marrow derived cells. If the gene-of-interest from the bone derived cells plays an important role in the development of the disease (such as colitis), the phenotype of the recipient mice with bone marrow transplantation can be significantly altered. At the end of colitis experiments, the bone marrow derived cells in blood and bone marrow were labeled with antibodies against CD45.1 and CD45.2 and their quantitative ratio of existence could be used to evaluate the success of bone marrow transplantation by flow cytometry. Successful bone marrow transplantation should show a vast majority of donor genotype (in term of CD molecule marker) over recipient genotype in both the bone marrow and blood of recipient mice.

Bone marrow transplantation provides a way to change the genotype of the bone marrow derived cells. If the gene of interest is expressed in both bone marrow derived cells and non-bone marrow derived cells, bone marrow transplantation can change the bone marrow derived cells to a different genotype without changing the non-bone marrow derived cell genotype.

הבחנת תפקידים פונקציונליים של ביטוי גנים מתאים חיסוניים וללא חיסון בקוליטיס המאוס על ידי השתלת מח עצם

To understand the role of a gene in the development of colitis, we compared the responses of wild-type mice and gene-of-interest deficient knockout mice ...

Isolation, Purification and Labeling of Mouse Bone Marrow Neutrophils for Functional Studies and Adoptive Transfer Experiments

Neutrophils are critical effector cells of the innate immune system. They are rapidly recruited at sites of acute inflammation and exert protective or pathogenic effects depending on the inflammatory milieu. Nonetheless, despite the indispensable role of neutrophils in immunity, detailed understanding of the molecular factors that mediate neutrophils' effector and immunopathogenic effects in different infectious diseases and inflammatory conditions is still lacking, partly because of their short half life, the difficulties with handling of these cells and the lack of reliable experimental protocols for obtaining sufficient numbers of neutrophils for downstream functional studies and adoptive transfer experiments. Therefore, simple, fast, economical and reliable methods are highly desirable for harvesting sufficient numbers of mouse neutrophils for assessing functions such as phagocytosis, killing, cytokine production, degranulation and trafficking. To that end, we present a reproducible density gradient centrifugation-based protocol, which can be adapted in any laboratory to isolate large numbers of neutrophils from the bone marrow of mice with high purity and viability. Moreover, we present a simple protocol that uses CellTracker dyes to label the isolated neutrophils, which can then be adoptively transferred into recipient mice and tracked in several tissues for at least 4 hr post-transfer using flow cytometry. Using this approach, differential labeling of neutrophils from wild-type and gene-deficient mice with different CellTracker dyes can be successfully employed to perform competitive repopulation studies for evaluating the direct role of specific genes in trafficking of neutrophils from the blood into target tissues in vivo.

We describe a protocol for isolation and purification of neutrophils from mouse bone marrow by density gradient centrifugation and for neutrophil labeling using CellTracker dyes. This represents a simple, fast, reproducible and economical method for obtaining large numbers of neutrophils for downstream functional studies or adoptive transfer and tracking experiments.

בידוד, טיהור וסימון של נויטרופילים מח עצם עכבר ללימודים פונקציונליים וניסויי העברת מאמצת

Neutrophils are critical effector cells of the innate immune system. They are rapidly recruited at sites of acute inflammation and exert protective or ...

Isolation of Myeloid Dendritic Cells and Epithelial Cells from Human Thymus

In this protocol we provide a method to isolate dendritic cells (DC) and epithelial cells (TEC) from the human thymus. DC and TEC are the major antigen presenting cell (APC) types found in a normal thymus and it is well established that they play distinct roles during thymic selection. These cells are localized in distinct microenvironments in the thymus and each APC type makes up only a minor population of cells. To further understand the biology of these cell types, characterization of these cell populations is highly desirable but due to their low frequency, isolation of any of these cell types requires an efficient and reproducible procedure. This protocol details a method to obtain cells suitable for characterization of diverse cellular properties. Thymic tissue is mechanically disrupted and after different steps of enzymatic digestion, the resulting cell suspension is enriched using a Percoll density centrifugation step. For isolation of myeloid DC (CD11c+), cells from the low-density fraction (LDF) are immunoselected by magnetic cell sorting. Enrichment of TEC populations (mTEC, cTEC) is achieved by depletion of hematopoietic (CD45hi) cells from the low-density Percoll cell fraction allowing their subsequent isolation via fluorescence activated cell sorting (FACS) using specific cell markers. The isolated cells can be used for different downstream applications.

This protocol details a method to isolate antigen presenting cells from human thymus via different steps of enzymatic digestion of the tissue followed by density centrifugation of the single cell suspension and finally magnetic and/or FACS sorting of the cell populations of interest.

בידוד של תאי מיאלואידית דנדריטים ותאי האפיתל מקורנית האדם

In this protocol we provide a method to isolate dendritic cells (DC) and epithelial cells (TEC) from the human thymus. DC and TEC are the major antigen ...

Bone Marrow-derived Macrophage Production

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because of their powerful microbicidal activities. Macrophages are widely distributed throughout the body and are present in the lymphoid organs, liver, lungs, gastrointestinal tract, central nervous system, bone, and skin. Because of their repartition, they participate in a wide range of physiological and pathological processes. Macrophages are highly versatile cells that are able to recognize microenvironmental alterations and to maintain tissue homeostasis. Numerous pathogens have evolved mechanisms to use macrophages as Trojan horses to survive, replicate in, and infect both humans and animals and to propagate throughout the body. The recent explosion of interest in evolutionary, genetic, and biochemical aspects of host-pathogen interactions has renewed scientific attention regarding macrophages. Here, we describe a procedure to isolate and cultivate macrophages from murine bone marrow that will provide large numbers of macrophages for studying host-pathogen interactions as well as other processes.

Macrophages have long been recognized as a critical component of the innate and adaptive immune responses. The recent explosion of knowledge pertaining to evolutionary, genetic, and biochemical aspects of the interaction between macrophages and microbes has renewed scientific attention to macrophages. This article describes a method to differentiate macrophages from mouse bone marrow.

מח עצם נגזרות Macrophage הפקה

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because ...

Isolation and Intravenous Injection of Murine Bone Marrow Derived Monocytes

As a subtype of leukocytes and progenitors of macrophages, monocytes are involved in many important processes of organisms and are often the subject of various fields in biomedical science. The method described below is a simple and effective way to isolate murine monocytes from heterogeneous bone marrow.
Bone marrow from the femur and tibia of Balb/c mice is harvested by flushing with phosphate buffered saline (PBS). Cell suspension is supplemented with macrophage-colony stimulating factor (M-CSF) and cultured on ultra-low attachment surfaces to avoid adhesion-triggered differentiation of monocytes. The properties and differentiation of monocytes are characterized at various intervals. Fluorescence activated cell sorting (FACS), with markers like CD11b, CD115, and F4/80, is used for phenotyping. At the end of cultivation, the suspension consists of 45%&#177; 12% monocytes. By removing adhesive macrophages, the purity can be raised up to 86%&#177; 6%. After the isolation, monocytes can be utilized in various ways, and one of the most effective and common methods for in vivo delivery is intravenous tail vein injection. 
This technique of isolation and application is important for mouse model studies, especially in the fields of inflammation or immunology. Monocytes can also be used therapeutically in mouse disease models.

Here we present a protocol that generates large amounts of murine monocytes from heterogeneous bone marrow for translational applications. In comparison to others, this new method helps reduce the number of sacrificed animals and lowers costs by avoiding expensive methods such as high gradient magnetic cell separation (MACS).

המונוציטים בידוד והזרקה תוך ורידית של Murine מח העצם נגזר

As a subtype of leukocytes and progenitors of macrophages, monocytes are involved in many important processes of organisms and are often the subject of ...

Tracking Mouse Bone Marrow Monocytes In Vivo

Real time multiphoton imaging provides a great opportunity to study cell trafficking and cell-to-cell interactions in their physiological 3-dimensionnal environment. Biological activities of immune cells mainly rely on their motility capacities. Blood monocytes have short half-life in the bloodstream; they originate in the bone marrow and are constitutively released from it. In inflammatory condition, this process is enhanced, leading to blood monocytosis and subsequent infiltration of the peripheral inflammatory tissues. Identifying the biomechanical events controlling monocyte trafficking from the bone marrow towards the vascular network is an important step to understand monocyte physiopathological relevance. We performed in vivo time-lapse imaging by two-photon microscopy of the skull bone marrow of the Csf1r-Gal4VP16/UAS-ECFP (MacBlue) mouse. The MacBlue mouse expresses the fluorescent reporters enhanced cyan fluorescent protein (ECFP) under the control of a myeloid specific promoter 1, in combination with vascular network labelling. We describe how this approach enables the tracking of individual medullar monocytes in real time to further quantify the migratory behaviour within the bone marrow parenchyma and the vasculature, as well as cell-to-cell interactions. This approach provides novel insights into the biology of the bone marrow monocyte subsets and allows to further address how these cells can be influenced in specific pathological conditions.

Tracking Mouse Bone Marrow Monocytes In Vivo

Monocytes are key regulators of innate immunity and play a critical role in the renewal of the peripheral mononuclear phagocytic system and in case of inflammation. This manuscript describes the procedure of real time imaging of the mouse calvaria bone marrow to study the monocyte mobilisation mechanism.

מעקב עכבר מח עצם המונוציטים<em&gt; In vivo</em

Real time multiphoton imaging provides a great opportunity to study cell trafficking and cell-to-cell interactions in their physiological 3-dimensionnal ...

Myeloid Cell Isolation from Mouse Skin and Draining Lymph Node Following Intradermal Immunization with Live Attenuated Plasmodium Sporozoites

Malaria infection begins when the sporozoite stage of Plasmodium is inoculated into the skin of a mammalian host through a mosquito bite. The highly motile parasite not only reaches the liver to invade hepatocytes and transform into erythrocyte-infective form. It also migrates into the skin and to the proximal lymph node draining the injection site, where it can be recognized and degraded by resident and/or recruited myeloid cells. Intravital imaging reported the early recruitment of brightly fluorescent Lys-GFP positive leukocytes in the skin and the interactions between sporozoites and CD11c+ cells in the draining lymph node. We present here an efficient procedure to recover, identify and enumerate the myeloid cell subsets that are recruited to the mouse skin and draining lymph node following intradermal injection of immunizing doses of sporozoites in a murine model. Phenotypic characterization using multi-parametric flow cytometry provides a reliable assay to assess early dynamic cellular changes during inflammatory response to Plasmodium infection.

Myeloid Cell Isolation from Mouse Skin and Draining Lymph Node Following Intradermal Immunization with Live Attenuated Plasmodium Sporozoites

We describe here a protocol for isolating myeloid cells from mouse skin and draining lymph node following intradermal injection of Plasmodium sporozoites. Flow cytometry of collected cells provides a reliable assay to characterize the skin and draining lymph node inflammatory response to the parasite.

בידוד תא מיאלואידית מעור העכבר וניקוז הלימפה הצומת בעקבות החיסון תוך-עורית עם נחלש חי<em&gt; Plasmodium</em&gt; Sporozoites

Malaria infection begins when the sporozoite stage of Plasmodium is inoculated into the skin of a mammalian host through a mosquito bite. The highly ...

Murine Hind Limb Long Bone Dissection and Bone Marrow Isolation

Investigation of the bone and the bone marrow is critical in many research fields including basic bone biology, immunology, hematology, cancer metastasis, biomechanics, and stem cell biology. Despite the importance of the bone in healthy and pathologic states, however, it is a largely under-researched organ due to lack of specialized knowledge of bone dissection and bone marrow isolation. Mice are a common model organism to study effects on bone and bone marrow, necessitating a standardized and efficient method for long bone dissection and bone marrow isolation for processing of large experimental cohorts. We describe a straightforward dissection procedure for the removal of the femur and tibia that is suitable for downstream applications, including but not limited to histomorphologic analysis and strength testing. In addition, we outline a rapid procedure for isolation of bone marrow from the long bones via centrifugation with limited handling time, ideal for cell sorting, primary cell culture, or DNA, RNA, and protein extraction. The protocol is streamlined for rapid processing of samples to limit experimental error, and is standardized to minimize user-to-user variability.

Here we present a protocol for the dissection of hind limb long bones (femurs and tibiae) from the laboratory mouse. We further describe a rapid technique for bone marrow isolation from these bones that utilizes centrifugation for removal of bone marrow from the bone marrow space.

Murine הינד לימב ארוך עצם Dissection ובידוד מח העצם

Investigation of the bone and the bone marrow is critical in many research fields including basic bone biology, immunology, hematology, cancer metastasis, ...

Generation and Identification of GM-CSF Derived Alveolar-like Macrophages and Dendritic Cells From Mouse Bone Marrow

Macrophages and dendritic cells (DCs) are innate immune cells found in tissues and lymphoid organs that play a key role in the defense against pathogens. However, they are difficult to isolate in sufficient numbers to study them in detail, therefore, in vitro models have been developed. In vitro cultures of bone marrow-derived macrophages and dendritic cells are well-established and valuable methods for immunological studies. Here, a method for culturing and identifying both DCs and macrophages from a single culture of primary mouse bone marrow cells using the cytokine granulocyte macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) is described. This protocol is based on the established procedure first developed by Lutz et al. in 1999 for bone marrow-derived DCs. The culture is heterogeneous, and MHCII and fluoresceinated hyaluronan (FL-HA) are used to distinguish macrophages from immature and mature DCs. These GM-CSF derived macrophages provide a convenient source of in vitro derived macrophages that closely resemble alveolar macrophages in both phenotype and function.

Bone marrow cells cultured with granulocyte macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) generate a heterogeneous culture containing macrophages and dendritic cells (DCs). This method highlights using MHCII and hyaluronan (HA) binding to differentiate macrophages from the DCs in the GM-CSF culture. Macrophages in this culture have many similarities to alveolar macrophages.

דור וזיהוי GM-CSF נגזר מכתשיים דמוי מאקרופאגים דנדריטים תאי עכבר מח עצם

Macrophages and dendritic cells (DCs) are innate immune cells found in tissues and lymphoid organs that play a key role in the defense against pathogens. ...

Fluorescence-activated Cell Sorting for Purification of Plasmacytoid Dendritic Cells from the Mouse Bone Marrow

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method enables researchers to better understand the characteristics of a single cell population without the influence of other cells. Compared to other methods of cell enrichment, such as magnetic-activated cell sorting (MCS), FACS is more flexible and accurate for cell separation due to the ability of phenotype detection by flow cytometry. In addition, FACS is usually capable of separating multiple cell populations simultaneously, which improves the efficiency and diversity of experiments. Although FACS has some limitations, it has been broadly used to purify cells for functional studies in both in vitro and in vivo settings. Here we report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate a very rare population of immune cells, plasmacytoid dendritic cells (pDC), with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for in vitro functional studies of pDC.

We report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate plasmacytoid dendritic cells (pDC) with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for functional studies of pDC.

מיון תא מופעל קרינה עבור טיהור של תאי דנדריטים Plasmacytoid ממח עצם העכבר

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method ...