מקור: מעבדות של ד"ר איאן פפר וד"ר צ'ארלס ג'רבה - אוניברסיטת אריזונה
מחבר מפגין: בראדלי שמיץ
תגובת שרשרת פולימראז (PCR) היא טכניקה המשמשת לזיהוי מיקרואורגניזמים הנמצאים בקרקע, במים ובסביבות אטמוספריות. על ידיגברת מקטעים ספציפיים של DNA, PCR יכול להקל על זיהוי וזיהוי של מיקרואורגניזמים היעד עד למין, זן, ורמת serovar / pathovar. ניתן להשתמש בטכניקה גם כדי לאפיין קהילות שלמות של מיקרואורגניזמים בדגימות.
פולחן המיקרואורגניזמים במעבדה באמצעות מדיית צמיחה מיוחדת הוא טכניקה ותיקה ונשאר בשימוש לגילוי מיקרואורגניזמים בדגימות סביבתיות. חיידקים רבים בסביבה הטבעית, בעודם בחיים, שומרים על רמות נמוכות של פעילות מטבולית ו/או זמני הכפלה ולכן מכונים אורגניזמים בני קיימא אך לא פולחניים (VBNC). השימוש בטכניקות מבוססות תרבות בלבד אינו יכול לזהות חיידקים אלה, ולכן אינו מספק הערכה יסודית של אוכלוסיות מיקרוביאליות בדגימות. השימוש ב- PCR מאפשר זיהוי של חיידקים הניתנים לתנור, אורגניזמים VBNC ואלה שאינם חיים או פעילים עוד, שכן הגברה של רצפים גנטיים אינה דורשת בדרך כלל העשרה מוקדמת של מיקרואורגניזמים הקיימים בדגימות סביבתיות. עם זאת, PCR אינו יכול להבדיל בין המצבים הנ"ל של כדאיות ופעילות. בשילוב עם טכניקה אחת או יותר המבוססת על תרבות, הכדאיות של תת-קבוצות מסוימות של מיקרואורגניזמים עדיין עשויה להיקבע.
הנחת היסוד של PCR היא להשתמש במחזורים חוזרים ונשנים של שינויי טמפרטורה רציפים כדי להשיג הגברה מעריכית של DNA. סינתזת הדנ"א מתבצעת על ידי אנזימי פולימראז DNA המתקבלים מחיידקים החיים במעיינות חמים, כגון תרמיוס אקווטיקה (Taq). פולימראזים אלה הם חום יציב, המאפשר להם לעמוד בטמפרטורות הגבוהות המשמשות במהלך PCR.
רצף היעד, המכונה אמפליסון, מוגבר מתבנית ה- DNA באמצעות שתי רצועות קצרות של נוקלאוטידים המכונים "פריימרים". בגלל הספציפיות הגבוהה של כריכת חומצת גרעין משלימה, הפריימרים מאפשרים הגברה ממוקדת של רצפים ספציפיים מאוד של עניין. על ידי עיצוב פריימרים שרק יגבירו רצף ייחודי (או שילוב ייחודי של רצפים) מאורגניזם מעניין, ניתן להשתמש ב- PCR כדי לזהות באופן דיפרנציאלי את נוכחות הדנ"א של האורגניזם בין כל החומרים הגנטיים הקיימים במדגם סביבתי מורכב.
כדי לבצע PCR, מכונה המכונה thermocycler משמש מחזור אוטומטי דרך הטמפרטורות השונות הנדרשות עבור התגובה. כל מחזור מחולק לשלושה שלבים. הראשון, המכונה "denaturation", מוגדר בדרך כלל מעל 92 °C (70 °F) ונמשך כ -30 מעלות צלזיוס. דנטורציה משמשת לפירוק מולקולות DNA לגדילים בודדים, כדי לאפשר לתגובת ההגברה להמשיך.
השלב השני, "חישול", מוגדר 2-3 °C (5 °F) מתחת לטמפרטורת ההיתוך של שני פריימרים, בדרך כלל בין 50-65 °C (50 °F), וגם נמשך כ -30 מעלות צלזיוס. טמפרטורת ההיתוך היא הטמפרטורה שבה 50% מהדנ"א הכפול נפרדו לגדילים בודדים, ולכן שלב ההמסה מאפשר לפריימרים להיקשר לאתרי היעד שלהם בתבנית הדנ"א.
השלב השלישי של מחזור PCR הוא "התארכות" או "הרחבה", כאשר פולימראז ה- DNA נקשר לדופלקס תבנית פריימר ומזרז סינתזה של המוצר. מוגדר על 72 °C עבור פולימראז טאק, משך שלב זה תלוי באורך של אמפליסון, בדרך כלל 30 s / 500 bp. לאחר כל מחזור, ה- DNA המוגבר שוב מושמצת ומשמש כתבנית חדשה, מה שמוביל לעלייה מעריכית בכמות מוצרי ה- PCR.
לאחר השלמת התגובה, ניתן לפתור את מוצרי ה- PCR לפי גודל על "ג'ל" העשוי בדרך כלל אגרוז פולימר, תהליך המכונה אלקטרופורזה. שדה חשמלי מוחל על פני הג'ל, והמטענים השליליים בעמוד השדרה של מולקולות ה- DNA גורמים להם לנדוד לעבר הקצה החיובי של השדה. באופן כללי, מולקולות DNA ליניאריות גדולות יותר ייקח יותר זמן לנסוע דרך מטריצת הג'ל.
1. איסוף דוגמאות
2. מיצוי והכנה של חומצות גרעין
3. תגובת שרשרת פולימראז
4. הכנת ג'ל אגרוז
5. אלקטרופורזה ג'ל
רכיב | נפח לכל צינור (μL) | נפח עבור 5 צינורות (μL) | ריכוז סופי |
10x חוצץ אקס טאק | 5.0 | 25 | 1x |
2.5 מ"מ של dNTPs | 4.0 | 20 | 0.2 מ"מ |
פריימר קדמי* | 2.0 | 10 | 400 ננומטר |
פריימר הפוך* | 2.0 | 10 | 400 ננומטר |
מולקולרית H2O | 31.75 | 158.75 | - |
אקס טאק | 0.25 | 1.25 | 2.5 U |
תערובת PCR | 45 | 225 |
טבלה 1. אמצעי אחסון ריאגנט עבור תערובת מאסטר PCR. *נפחי הפריימר משתנים בהתאם לאי-ההסתעפות של האורגניזם. התאם את נפח המים המולקולריים כדי להפוך את הנפח הסופי 45 μL. אמצעי אחסון של רכיבים אחרים אינם אמורים להשתנות.
% מומלץ של אגרוז | רזולוציה אופטימלית עבור שברי DNA ליניאריים (זוגות בסיס) |
0.5 | 1,000-30,000 |
0.7 | 800-12,000 |
1.0 | 500-10,000 |
1.2 | 400-7,000 |
1.5 | 200-3,000 |
2.0 | 50-2,00 |
טבלה 2. גודל שבר DNA טווחים נפתרו בצורה אופטימלית על ידי אחוזי ג'ל אגרוז שונים.
באיור 1, סולם הדנ"א (נתיב 1) מספק התייחסות לגודל ולריכוז המשוער של רצועות של מוצרי ה-PCR. השליטה השלילית (נתיב 2) אינה מכילה כל חומר גנטי, בעוד הפקד החיובי (נתיב 3) מוגבר מתבניות הידועות כמכילות את ה- DNA המשמש כיעד כדי לציין את הגודל והמיקום של רצועות היעד. דגימות 4, 6, 8 ו-9 מציגות דפוס פס דומה לזה של השליטה החיובית, ולכן מצביעות על כך שדגימות אלה מכילות את החומר הגנטי של היעד. ניתן להסיק כי האורגניזם קיים בסביבות שמהן הושגו דגימות אלה.
איור 1. לדמיין להקות על ג'ל אגרוז בעקבות אלקטרופורזה.
PCR יכול להיות מועסק כדי לקבוע במהירות את נוכחות או היעדר פתוגנים בסביבה. לדוגמה, פריימרים ספציפיים אמבה אוכל המוח, Naegleria fowleri, יגבירו את ה- DNA וייצרו רצועות חזקות על ג'ל אם האורגניזם נמצא במדגם. אם אורגניזם יחיד אינו העניין העיקרי, אלא גנים הקשורים לייצור רעלים ממגוון אורגניזמים, PCR יכול לשמש גם כדי לקבוע את נוכחותם או היעדרם של חומרים גנטיים ספציפיים אלה.
PCR יכול לשמש גם כהליך אישור בעת ניתוח חיידקים סביבתיים במעבדה. אם שיטת תרבית אינה יכולה להבדיל בין אורגניזמים מסוימים הנמצאים במדגם סביבתי, אז PCR אולי משמש להבחין באופן ספציפי בין חיידקים המועמדים.
PCR קונבנציונאלי ניתן לשנות במספר דרכים למטרות ניסיוניות מסוימות. ניתן להשתמש ב- PCR כדי לנתח תבניות RNA חד-גדיליות על-ידי צימוד לשלב שעתוק הפוך (RT-PCR). מעבר לקביעת נוכחות לעומת היעדרות, PCR כמותי (qPCR) יכול למדוד את הריכוז עבור DNA ספציפי של עניין.
Skip to...
Videos from this collection:
Now Playing
Environmental Microbiology
44.6K Views
Environmental Microbiology
359.3K Views
Environmental Microbiology
126.4K Views
Environmental Microbiology
100.2K Views
Environmental Microbiology
42.2K Views
Environmental Microbiology
57.3K Views
Environmental Microbiology
28.8K Views
Environmental Microbiology
40.4K Views
Environmental Microbiology
47.8K Views
Environmental Microbiology
29.5K Views
Environmental Microbiology
39.3K Views
Environmental Microbiology
40.7K Views
Environmental Microbiology
184.3K Views
Environmental Microbiology
295.9K Views
Environmental Microbiology
13.8K Views
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved