MAK bestätigt Unterstützung für diese Arbeit von den National Institutes of Health / National Cancer Institute grant-Nummer - 1R15CA152985-01A1. Dieses Projekt wurde auch von Miami University Undergraduate Research Award Program, die Miami University Doktorat-Studium Möglichkeiten für Scholarship Program und der Miami University Sommer Scholars Program unterstützt.

durchgeführt, in dem Video und weiter unten beschriebenen Abläufe von der institutionellen Animal Care und Nutzung Committee (IACUC) an der Universität Miami genehmigt worden.
 1. Vorbereitung und Impuls-Test <ol><li>stellen zwei verschiedene Bereiche für den chirurgischen Eingriff, dem OP-Tisch und dem Post-OP-Tisch. Inszenieren Sie beide Bereiche mit allen Materialien und Utensilien notwendig.
	<ol><li>Bühne, die das Betriebssystem Tabelle unter eine belüftete Haube. Ordnen Sie die Tabelle mit der Ausrüstung in einer Weise, die die kontinuierliche und ungehinderte Leistung des Verfahrens erlaubt.</li>
		<li>Schaffen eine postoperative Tabelle im selben Raum und in der Nähe der Haupt-Tabelle des Vorgangs. Beide Tabellen als sterile Umgebungen während des Verfahrens zu erhalten.</li>
	</ol></li> <li>Ort die folgenden liefert auf dem OP-Tisch: ein Glas mit Deckel, eine 15 mL Tube, einem Paar Chirurgische Scheren, ein Squeeze-Flasche von 70 % Ethanol, zwei Schaumstoffplatten, zwei Zangen, zwei 1 mL 21 Gauge Spritzen, zwei 50 mL Röhrchen ein Zentrifugenröhrchen , eine kryogene Durchstechflasche, vier chirurgischen Pads, zehn Pins, einem Dispenser sterilisieren Tücher und Sharps Container.</li>
	<li>Legen Sie die folgenden Lieferungen auf dem Post-OP-Tisch: eine Analysenwaage, einer 4 L Dewar von flüssigem Stickstoff, einem flachen breiten Mund Dewar, einem schwimmenden Reaktionscup Rack, ein paar Chirurgische Scheren, zwei Zangen, vier kryogene Fläschchen und ein Spender von sterile Tücher.</li>
	<li>Füllen Sie ein 50 mL und eine 15 mL Tube zu 75 % des Volumens mit Formalin.</li>
	<li>Mit einem Stift in jeder Ecke ein OP Pad, ein ca. 30 cm x 30 cm Hartschaumplatten dienen als Dissektion Board befestigen. Nutzen Sie die verbleibenden vier Stifte während des Betriebs. Bereiten Sie eine kleinere Hartschaumplatten mit einem OP Pad übertragen die Organe auf der Post-Op-Tisch. 
	Achtung: Isofluran (99,9 %) ist eine giftige Chemikalie, und sollte in einer Abzugshaube verwendet werden, um das Höchstmaß an Sicherheit aus der Aufräumvorgang Narkose Abgas 8 sicherzustellen. Weitere Informationen über die Risiken für die Forscher im Zusammenhang mit der Verwendung der Open-Drop-Methode mit Isofluran finden Sie in einem Artikel von Taylor und Mook 8.</li>
	<li>Eine OP Pad in das Glasgefäß und Einweichen mit ein paar Tropfen von Isofluran (99,9 %) und einem Papiertuch über den Rand zu direkten Kontakt der Maus mit der Isofluran zu verhindern. Ebenso eine OP Pad verwenden, um säumen den verbleibenden Schlauch und Tränken mit ein paar Tropfen Isoflurane und legen Sie eine zusätzliche Pad über den Rand zu direkten Kontakt zwischen der Maus und der Isofluran verhindern.</li>
	<li>Pour Flüssigstickstoff in den flachen breiten Mund Dewar, bis das Maximum füllen Zeile erreicht ist.</li>
	<li>Statt der Maus ausgewählt für die Dissektion in die Narkose Kammer, d. h. das Glasgefäß mit einem Pad, getränkt mit ein paar Tropfen Isofluran (99,9 %) bedeckt mit Deckel, für ~ 1 min. 
	Hinweis: Diese Zeit variiert von Maus zu Maus. Sobald die Maus bewusstlos ist, entfernen Sie es aus der Kammer und platzieren Sie es auf das Bedienboard.</li>
	<li>Ausrichten die Maus, sodass es Bauchseite bis und mit dem Kopf wies Weg von der Wissenschaftler aufliegt. Legen Sie den Kopf in die Röhre, gesäumt von einer OP Pad getränkt mit ein paar Tropfen von Isofluran (99,9 %), und führen Sie einen Impuls-Test durch eine Prise Fuß um sicherzustellen, dass die Maus nicht auf Reize reagiert.
	<ol><li>Wenn dieser Test fehlschlägt und die Maus auf den Fuß Kneiftest reagiert, wiederholen Sie Schritt 1.8.</li>
	</ol></li></ol> 2. Erster Schnitt, Herz durchbohren und Euthanasie <ol><li>Pin die Gliedmaßen der Maus auf die chirurgische Dämmplatte und nass die ventrale Seite der Maus mit 70 % igem Ethanol.</li>
	<li>Die Fell/Haut in der Nähe der Harnröhrenöffnung mit Zange zusammendrücken und leicht nach oben ziehen. Machen Sie einen Schnitt mit der chirurgische Schere durch die Bauchhöhle der Harnröhrenöffnung auf der Mittellinie beginnend und endend am Kinn.
	<ol><li>Nahe des Startpunktes des ersten Schnittes, einseitig das Fell/Haut mit der Zange greifen und machen ein weiterer Schnitt mit der Schere nach unten und schräg in Richtung der hinteren Pfote.</li>
		<li>Wiederholen Sie diesen Vorgang auf die gleiche Weise auf der gegenüberliegenden Seite. 
		Hinweis: Die Fell/Haut kann eine breitere Öffnung erstellen festgenagelt werden, aber ist nicht notwendig.</li>
	</ol></li> <li>Herzen suchen und entfernen Sie das Perikard, die der Sac in der Herzgegend, zur Vermeidung von Verstopfungen der Spritzennadel ist.
	<ol><li>Der Herzbeutel mit der Zange fassen und mit der Schere ausschneiden. Führen Sie die Herz-Punktion durch sorgfältig die Spritzennadel in das schlagende Herz und beginnen Sie langsam den Kolben zurückziehen.</li>
		<li>Für die optimale Blutentnahme, verwenden Sie den Kolben der Nadel zu imitieren die Pumpfunktion des Herzens und vermeiden zu schnelles zeichnen. 
		Hinweis: In der Regel etwa 1 mL Blut gesammelt werden können.</li>
		<li>Nach Abschluss der Blutentnahme, zerstreuen das Blut in die Zentrifugenröhrchen und entsorgen Sie die Spritze in die Scharfbehälter.</li>
		<li>Nach der Herz-Punktion durchführen Euthanasie durch Entfernen der Anlagen verbinden Herzen. 
		Hinweis: Heparin, ein Antigerinnungsmittel, wurde die Spritze in diesem Verfahren vor Herz durchbohren um das Blut zu gerinnen für Serum-Sammlung in dieser spezifischen Studie ermöglichen nicht hinzugefügt. Jedoch wenn der Forscher Blutgerinnung Sammle Plasma verhindern wollte, Heparin konnte hinzugefügt werden, die Spritze vor der Herz-Punktion.</li>
	</ol></li> <li>Wenn die Studie Genotypisierung der Maus beinhaltet, einen Teil des Ohrs mit der Schere schneiden und legen Sie in ein Zentrifugenröhrchen für eine Überprüfung der Genotyp.</li></ol>
 3. Bauchspeicheldrüse Extraktion <ol><li>suchen den Magen auf der linken Seite der Maus. Beginnen Sie vorsichtig (um reißen zu vermeiden) trennt die Bauchspeicheldrüse, Magen und Zwölffingerdarm mit zwei Pinzetten. 
	Hinweis: Wenn die Bauchspeicheldrüse vom Magen und Darm zu trennen, ist es sehr wichtig, dass die Zange vorsichtig verwendet werden, um das Pankreas-Gewebe Weg von den Organen zu führen und zu nicht zerdrücken oder reißen die Bauchspeicheldrüse mit der Zange.
	<ol><li>Weiterhin die Bauchspeicheldrüse aus den Dünndarm Jejunum und Ileum, trennen und schließlich von der Blinddarm des Dickdarms.</li>
	</ol></li> <li>An den Blinddarm, positionieren Sie die Zange und Trennung der Bauchspeicheldrüse entlang der restlichen Doppelpunkt in Richtung Enddarm. 
	Hinweis: An dieser Stelle ist es bequem zu schneiden und entfernen den Teil aus dem Magen in die Region des Dickdarms, die unmittelbar vor dem Rektum.</li>
	<li>Suchen Sie die Bauchspeicheldrüse und Milz zugeordnet. Schieben Sie die Bauchspeicheldrüse zur rechten Seite der Maus. Trennen Sie die restlichen Verbindungen zwischen der Bauchspeicheldrüse und der Brusthöhle mit der Zange, vollständig zu lösen, der Bauchspeicheldrüse und der angrenzenden Milz.</li>
	<li>Die Bauchspeicheldrüse zu entfernen und zur Prüfung verteilt. Lassen Sie die Milz an der Bauchspeicheldrüse zu Identifizierungszwecken befestigt.
	<ol><li>Entfernen Sie alle Bindegewebe, Fett und mesenterialen Gewebe aus der Bauchspeicheldrüse. 
		Hinweis: Dieses Gewebe ist von weißer Farbe und somit aus dem Gewebe der Bauchspeicheldrüse, das pinker Farbe ist leicht unterschieden werden kann. Dies ist besonders wichtig, wenn die ganze Bauchspeicheldrüse entfernt werden muss. Zum Beispiel, wenn die Bauchspeicheldrüse muss abgewogen und im Vergleich zu Körpergewicht oder zwischen Gruppen von Tieren. In der Ptf1a Cre / +; LSL-Kras G12D / + Mausmodell, speziell in den älteren Monaten harten faserigen Bauchspeicheldrüsen-Gewebe vorhanden sein könnten. In diesem Fall muss sorgfältige Entfernung der Bauchspeicheldrüse durchgeführt werden, da der Darm im Tumorgewebe interlaced sein könnte. In fortgeschrittenen Fällen abnorme Milz und Leber können auch vorhanden sein.</li>
	</ol></li> <li>Auf Wunsch entfernen andere Organe an dieser Stelle.</li></ol>
 4. Datenerhebung und-Speicherung <ol><li>nach der Extraktion der Organe, verschieben die Proben in den postoperativen Bereich für Erhaltung.</li>
	<li>Wiegen jedes Organ und legen Sie sie in ihre jeweiligen kryogenen Vial. 
	Hinweis: entlang with die Masse jeder Probe sollte etwaige Unregelmäßigkeiten zu Referenzzwecken aufgezeichnet werden.</li>
	<li>Sobald die Organe gewogen sind, legen Sie sie in den flüssigen Stickstoff für Snap einfrieren.</li>
	<li>Nach dem Fang Einfrieren, aufbewahren der Organe bei-80 ° C für die Langzeitspeicherung.</li>
	<li>Stellen die Formalin aufbewahrt Proben auf der Bank-Oberseite über Nacht und am nächste Morgen ändern ihre Lösung von Formalin in 70 % igem Ethanol. 
	Hinweis: Diese Beispiele sollten gespeichert werden, bei 4 ° C für die Langzeitspeicherung.</li>
	<li>Für langfristige Lagerung, Einfrieren die Blut und Ohr Punch bei-80 ° c. Lassen Sie für Serum-Sammlung aus dem Blut das Blut gerinnen für 30 min dann Zentrifugieren sie. Die Serum-Teil mit einer Pipette zu entfernen und dann speichern bei-80 ° c</li>
</ol> 5. Clean Up <ol><li>desinfizieren die Dissektion Werkzeuge mit der Sterilisation Tücher. Verschluss der Röhre, gesäumt von den Isofluran getränkt OP Pad. Ersetzen Sie die OP Pad auf der Dämmplatte mit einem frischen OP Pad. Entsorgen Sie die Teile der Maus, die nicht pro Anlage gesammelt wurden &#39; s Tier Entsorgung Politik.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Fesinmeyer, M. D., Austin, M. A., Li, C. I., De Roos, A. J., Bowen, D. 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Die Autoren haben nichts preisgeben.

Bedeutung im Hinblick auf bestehende Methoden Während andere informelle Videos von Maus Sezierungen vorhanden sind, in diesem video Artikel finden die ersten Profi-Qualität, Peer review, visuelle Demonstration aller die detaillierten Schritte erforderlich für die Extraktion und die Ernte von der Maus Bauchspeicheldrüse durch Dissektion10 . Mit der Bauchspeicheldrüse wird eine Hauptorgel für metabolische Aktivität und Insulin ermöglicht Produktion, Dissektion und Ernte d...

Die Maus hat ein wichtiges Tier Modell des menschlichen pankreatischen Krebses1,2entwickelt. In der Ptf1aCre / +; LSL-KrasG12D / + Maus-Modell, die Kristen Ratte Sarkom (K-Ras) Onkogen ist ausschließlich in der Bauchspeicheldrüse, was Einleitung von präkanzerösen Läsionen in der Bauchspeicheldrüse, bekannt als Pankreas intraepitheliale Neoplasie (liegen), dass der Fortschritt aktiviert zu pankreatischen duktalen Adenokarzinome, gemeinhin als PDACs3. Dieses Maus-Modell-System bietet eines der verfügbaren Tiermodelle für menschlichen pankreatischen Krebs4,5, mit dem zusätzlichen Vorteil, die sich die liegen innerhalb der ersten fünf Monate des Lebens und häufig Fortschritte PDAC innerhalb einer einzelne Jahr4,5, während Bauchspeicheldrüsenkrebs am häufigsten bei Menschen 60-70 Jahre alt tritt.
Extraktion der Bauchspeicheldrüse durch Dissektion aus der Ptf1aCre / +; LSL-KrasG12D / + Mäuse in verschiedenen Altersstufen ermöglicht detaillierte längs histologische Untersuchung der Entwicklung von Krebs in der Bauchspeicheldrüse PDAC3,4 von den frühesten Stadien der PanIN durch das Fortschreiten bis , 5. Ernte der Bauchspeicheldrüsenkrebs im Alter von fünf bis fünfzehn Monate Gewebe vorzubereiten Auszüge zu globalen Veränderungen im Pankreas4 Stoffwechsel zu charakterisieren, die auftreten, während der Übergang vom gesunden zum erkrankten Gewebe verwendet werden 6,7.
Dieser Artikel stellt eine komplette visuelle Anleitung die erforderlichen Schritte zum Ausführen einer Maus Bauchspeicheldrüse Extraktion und enthält Richtlinien für die Lagerung der Bauchspeicheldrüse zur weiteren Analyse. Dieses Handbuch wird für Einzelpersonen forschen auf andere Pankreas Erkrankungen, darunter Diabetes Typ I und besonders nützlich für Studenten und Forscher neu in Forschung, die Ernte von Pankreas Maus sollte gleichermaßen wertvoll sein Präparation für metabolic profiling oder histologische Analysen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="790">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glass Jar&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">3140-150</td>
			<td style="width:167px;">The glass jar used in the video has been discontinued.&#160; This is its replacement.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Lid of Glass Jar</td>
			<td style="width:288px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">9985-150</td>
			<td>The glass jar lid used in the video has been discontinued.&#160; This is its replacement.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">15 mL Falcon Tubes</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">339650</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Surgical Scissors</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">9201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Squeeze bottle&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">03-409-10DD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">100% Ethanol</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">22-032-103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Formalin</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">245-684</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Foam Boards</td>
			<td style="width:288px;">Therapak</td>
			<td style="width:119px;">562908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Forceps</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">200205SHN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">1 mL 21G Syringes</td>
			<td style="width:288px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:119px;">309624</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">50 mL Falcon Tubes</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">339652</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">2.0 mL Microcentrifuge Tubes&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">02-681-258</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Surgical Pads</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">S67011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">T-Pins Length:&#160; 2&#34;&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Advance Store Products</td>
			<td>X32T-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Sterilizing Wipes</td>
			<td style="width:288px;">Professional Disposables International Inc.</td>
			<td style="width:119px;">Q85084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sharps Container</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">14-827-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Analytical Balance</td>
			<td style="width:288px;">Marshall Scientific</td>
			<td style="width:119px;">ME-AE200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">4L Dewar</td>
			<td style="width:288px;">Taylor-Wharton</td>
			<td style="width:119px;">4LD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Shallow Wide Mouth Dewar</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">F3087-V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Floating Microtube Rack</td>
			<td style="width:288px;">VWR</td>
			<td style="width:119px;">60986-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cryogenic Vial 1.2 mL, Sterile</td>
			<td style="width:288px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">10-500-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Isothesia (Isoflurane)&#160;</td>
			<td style="width:288px;">Henry Schein Animal Health</td>
			<td style="width:119px;">050033</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Liquid Nitrogen</td>
			<td style="width:288px;">Wright Brothers</td>
			<td style="width:119px;">NIT-60-XX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mouse Kras Strain</td>
			<td style="width:288px;">The Jackson Laboratory</td>
			<td style="width:119px;">OO8179</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mouse Cre Strain</td>
			<td style="width:288px;">MMRRC</td>
			<td style="width:119px;">OOO435-UNC</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection of the mouse pancreas for histological analysis and metabolic profiling

Wir haben die Bauchspeicheldrüse spezifischen Transkriptionsfaktor, 1a Cre-Rekombinase untersucht; Lox-Stop-Lox-Kristen Ratte Sarkom, Glycin, Asparaginsäure an das 12-Codon (Ptf1aCre / +; LSL-KrasG12D / +) Belastung als ein Modell des menschlichen pankreatischen Krebses Maus. Unsere aktuellen Studien soll neue metabolischen Biomarker der Bauchspeicheldrüsenkrebs Progression ermittelt. Wir haben durchgeführt, metabolic profiling von Urin, Kot, Blut, sowie Pankreas-Gewebe-Extrakte und histologische Analysen der Bauchspeicheldrüse, die Krebsentwicklung zu inszenieren. Die Maus-Bauchspeicheldrüse ist keine wohldefinierte solide Organ wie beim Menschen, sondern ist ein diffus verteilte weichen Gewebe, das nicht leicht zu erkennen ist von Einzelpersonen mit Maus Innere Anatomie nicht vertraut oder von Personen, die wenig oder gar keine Erfahrung durchführen Maus-Organ-Sektionen. Der Zweck dieses Artikels ist es, eine detaillierte schrittweise bieten visuelle Demonstration, Novizen bei der Entfernung der Maus Bauchspeicheldrüse durch Dissektion zu führen. Dieser Artikel sollte besonders wertvoll für Studenten und Forscher neue Forschung, die Ernte der Maus Bauchspeicheldrüse durch Präparation für metabolic profiling oder histologische Analysen benötigt.

Abbildung 1 zeigt eine Übersicht über den Arbeitsbereich Umwelt und Abbildung 2 zeigt das Post-OP-Feld. Während diese Einstellung die minimale Menge an Ausrüstung bietet und Inszenierung, Einzelpersonen dies am besten individuell verändern können. Das Protokoll sollte entsprechend den spezifischen Bedürfnissen des Experiments optimiert werden. Dieses Verfahren wird in einer Weise durchgeführt, die das Leben einer Maus, er...

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Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

Dieser video Artikel enthält eine ausführliche Demonstration der Verfahren erforderlich, um erfolgreich die Bauchspeicheldrüse von einer Maus entfernen durch Präparation für histologische Analyse und metabolic profiling.

Dissektion der Maus Bauchspeicheldrüse für histologische Analyse und Metabolic Profiling

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at ...

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Research

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Medicine

36.2K Aufrufe.  Miami University. Dieser video Artikel enthält eine ausführliche Demonstration der Verfahren erforderlich, um erfolgreich die Bauchspeicheldrüse von einer Maus entfernen durch Präparation für histologische Analyse und metabolic profiling.

Serie: Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

Dissection of Human Vitreous Body Elements for Proteomic Analysis

The vitreous is an optically clear, collagenous extracellular matrix that fills the inside of the eye and overlies the retina. 1,2 Abnormal interactions between vitreous substructures and the retina underlie several vitreoretinal diseases, including retinal tear and detachment, macular pucker, macular hole, age-related macular degeneration, vitreomacular traction, proliferative vitreoretinopathy, proliferative diabetic retinopathy, and inherited vitreoretinopathies. 1,2 The molecular composition of the vitreous substructures is not known. Since the vitreous body is transparent with limited surgical access, it has been difficult to study its substructures at the molecular level. We developed a method to separate and preserve these tissues for proteomic and biochemical analysis. The dissection technique in this experimental video shows how to isolate vitreous base, anterior hyaloid, vitreous core, and vitreous cortex from postmortem human eyes. One-dimensional SDS-PAGE analyses of each vitreous component showed that our dissection technique resulted in four unique protein profiles corresponding to each substructure of the human vitreous body. Identification of differentially compartmentalized proteins will reveal candidate molecules underlying various vitreoretinal diseases.

This video shows an effective technique for differentiating and dissecting the various semi-transparent structures of the human vitreous body in post mortem eyes.

Dissection of Human Glaskörper Elemente für Proteomanalyse

The vitreous is an optically clear, collagenous extracellular matrix that fills the inside of the eye and overlies the retina. 1,2 Abnormal interactions ...

Forschung

Medizin

Collection Protocol for Human Pancreas

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation of pancreas recovered from cadaveric organ donors. The pancreas is divided into 3 main regions (head, body, tail) followed by serial transverse sections throughout the medial to lateral axis. Alternating sections are used for fixed paraffin and fresh frozen blocks and remnant samples are minced for snap frozen sample preparations, either with or without RNAse inhibitors, for DNA, RNA, or protein isolation. The overall goal of the pancreas dissection procedure is to sample the entire pancreas while maintaining anatomical orientation.
Endocrine cell heterogeneity in terms of islet composition, size, and numbers is reported for human islets compared to rodent islets 1. The majority of human islets from the pancreas head, body and tail regions are composed of insulin-containing &beta;-cells followed by lower proportions of glucagon-containing &alpha;-cells and somatostatin-containing &delta;-cells. Pancreatic polypeptide-containing PP cells and ghrelin-containing epsilon cells are also present but in small numbers. In contrast, the uncinate region contains islets that are primarily composed of pancreatic polypeptide-containing PP cells 2. These regional islet variations arise from developmental differences. The pancreas develops from the ventral and dorsal pancreatic buds in the foregut and after rotation of the stomach and duodenum, the ventral lobe moves and fuses with the dorsal 3. The ventral lobe forms the posterior portion of the head including the uncinate process while the dorsal lobe gives rise to the rest of the organ. Regional pancreatic variation is also reported with the tail region having higher islet density compared to other regions and the dorsal lobe-derived components undergoing selective atrophy in type 1 diabetes4,5.
Additional organs and tissues are often recovered from the organ donors and include pancreatic lymph nodes, spleen and non-pancreatic lymph nodes. These samples are recovered with similar formats as for the pancreas with the addition of isolation of cryopreserved cells. When the proximal duodenum is included with the pancreas, duodenal mucosa may be collected for paraffin and frozen blocks and minced snap frozen preparations.

This video demonstrates a dissection procedure for processing human pancreas into multiple storage formats. Anatomical orientation is maintained throughout the pancreatic regions to allow definition of regional islet composition and density.

Sammlung Protokoll zur menschlichen Pankreas

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation ...

Whole Vitreous Humor Dissection for Vitreodynamic Analysis

The authors propose an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes. While previous studies have shown the results of such dissections, the detailed steps have not been described, precluding researchers outside the field from replicating their methods. Other studies harvest vitreous either through aspiration, which does not maintain the vitreous structure anatomy, or through partial dissection, which only isolates the vitreous core. The proposed method isolates the whole vitreous body, with the vitreous core and cortex intact, while maintaining vitreous anatomy and structural integrity. In this method, a full thickness scleral flap in an enucleated porcine eye is first created and through this, the choroid tissue can be separated from the sclera. The scleral flap is then expanded and the choroid is completely separated from the sclera. Finally the choroid-retina tissue is peeled off the vitreous to leave an isolated intact vitreous body. The proposed vitreous dissection technique can be used to study physical properties of the vitreous humor. In particular, this method has significance for experimental studies involving drug delivery, vitreo-retinal oxygen transport, and intraocular convection.

The goal of this protocol is to show an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes.

Ganze Glaskörper Dissection für Vitreodynamic Analysis

The authors propose an effective technique to isolate whole, intact vitreous core and cortex from post mortem enucleated porcine eyes. While previous ...

Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide new expandable sources of beta cells to alleviate the donor scarcity in human islet transplantation as therapy for diabetes. Although recent advances have been made towards this aim, mechanisms that regulate beta cell expansion and differentiation from a stem/progenitor cell remain to be characterized. Here, we describe a protocol for an injury model in the adult mouse pancreas that can function as a tool to study mechanisms of tissue remodeling and beta cell proliferation and differentiation. Partial duct ligation (PDL) is an experimentally induced injury of the rodent pancreas involving surgical ligation of the main pancreatic duct resulting in an obstruction of drainage of exocrine products out of the tail region of the pancreas. The inflicted damage induces acinar atrophy, immune cell infiltration and severe tissue remodeling. We have previously reported the activation of Neurogenin (Ngn) 3 expressing endogenous progenitor-like cells and an increase in beta cell proliferation after PDL. Therefore, PDL provides a basis to study signals involved in beta cell dynamics and the properties of an endocrine progenitor in adult pancreas. Since, it still remains largely unclear, which factors and pathways contribute to beta cell neogenesis and proliferation in PDL, a standardized protocol for PDL will allow for comparison across laboratories.

This protocol describes an injury model involving the surgical ligation of the pancreatic duct in the adult mouse pancreas, resulting in severe injury that establishes an environment that allows beta cell neogenesis and proliferation. This model can be used as a tool to study mechanisms involved in beta cell formation.

Chirurgische Verletzung des Maus-Pankreas durch Ligatur des Pankreasganges als Modell für endokrine und exokrine Reprogrammierung und Proliferation

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide ...

Do's and Don'ts in the Preparation of Muscle Cryosections for Histological Analysis

Histological evaluation of muscle biopsies has served as an indispensable tool in the understanding of the development and progression of pathology of neuromuscular disorders. However, in order to do so, proper care needs to be taken when excising and preserving tissues to achieve optimal staining. One method of tissue preservation involves fixing tissues in formaldehyde and then embedding them with paraffin wax. This method preserves morphology well and allows for long-term storage at RT but is cumbersome and requires handling of toxic chemicals. Further, formaldehyde fixation results in antigen cross-linking, which necessitates antigen retrieval protocols for effective immunostaining. On the contrary, frozen sectioning does not require fixation and thus retains biological antigen conformation. This method also provides a distinct advantage in quick turn around time, making it especially useful in situations needing quick histological evaluation like intraoperative surgical biopsies. Here we describe the most effective method of preparing muscle biopsies for visualization with different histological and immunological stains.

Here we demonstrate the most efficient methods for freezing, embedding, cryosectioning, and staining of muscle biopsies to avoid freezing artifacts.

Gebote und Verbote in der Herstellung von Muscle Kryoschnitte für die histologische Analyse

Histological evaluation of muscle biopsies has served as an indispensable tool in the understanding of the development and progression of pathology of ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.

Maus-Modell für die Bauchspeicheldrüse Transplantation mit einer modifizierten Manschette-Technik

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

Echocardiographic and Histological Examination of Cardiac Morphology in the Mouse

An increasing number of genetically modified mouse models has become available in recent years. Moreover, the number of pharmacological studies performed in mice is high. Phenotypic characterization of these mouse models also requires the examination of cardiac function and morphology. Echocardiography and magnetic resonance imaging (MRI) are commonly used approaches to characterize cardiac function and morphology in mice. Echocardiographic and MRI equipment specialized for use in small rodents is&#160;expensive and requires a dedicated space. This protocol describes cardiac measurements in mice using a clinical echocardiographic system with a 15 MHz human vascular probe. Measurements are performed on anesthetized adult mice. At least three image sequences are recorded and analyzed for each animal in M-mode in the parasternal short-axis view. Afterwards, cardiac histological examination is performed, and cardiomyocyte diameters are determined on hematoxylin-eosin- or wheat germ agglutinin (WGA)-stained paraffin sections. Vessel density is determined morphometrically after Pecam-1 immunostaining. The protocol has been applied successfully to pharmacological studies and different genetic animal models under baseline conditions, as well as after experimental myocardial infarction by the permanent ligation of the left anterior descending coronary artery (LAD). In our experience, echocardiographic investigation is limited to anesthetized animals and is feasible in adult mice weighing at least 25 g.

Echocardiographic examination is frequently used in mice. Expensive high-resolution ultrasound devices have been developed for this purpose. This protocol describes an affordable echocardiographic procedure combined with histological morphometric analyses to determine cardiac morphology.

Echokardiographische und histologische Untersuchung der kardiale Morphologie in der Maus

An increasing number of genetically modified mouse models has become available in recent years. Moreover, the number of pharmacological studies performed ...

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental insults that disturb placenta development or function can cause early pregnancy loss in mice and humans. Nevertheless, simple in vitro assays to screen for potential effects on placenta formation are lacking. Here, we focus on modeling the first and critical step in placenta formation, which consists of the attachment of the allantois to the chorion. We describe a method to rapidly assess the attachment of allantoic explants on immobilized &#945;4&#946;1 integrin, which serves as a chorio-mimetic substrate.This in vitro approach enables a qualitative evaluation of the attachment and spreading behavior of multiple allantois explants at different consecutive time points. The protocol may be used to investigate the effect of targeted mouse mutations, drugs, or various environmental factors that have been linked to pregnancy complications or fetal loss on allantois attachment ex vivo.

Dissection and Explant Culture of Murine Allantois for the In Vitro Analysis of Allantoic Attachment

We describe an in vitro assay to model chorioallantoic attachment, the first step in placenta formation. The protocol demonstrates the dissection and explant culture of murine allantoides on immobilized &#945;4&#946;1 integrin. Allantois attachment is evaluated microscopically at pre-determined time points.

Dissektion und modellabhängigen Kultur der murinen Allantois zur In-vitro- Analyse der Viruswenig Anlage

The placenta is essential for the growth and development of mammalian embryos. For this reason, numerous genetic alterations and likely also environmental ...

Quantitative Micro-CT Analysis of Aortopathy in a Mouse Model of &#946;-aminopropionitrile-induced Aortic Aneurysm and Dissection

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of aortic disease exist, in vivo imaging of the vasculature has been limited. In recent years, micro-computerized tomography (micro-CT) has emerged as a preferred modality for imaging both large and small vessels both in vivo and ex vivo. In conjunction with a method of vascular casting, we have successfully used micro-CT to characterize the frequency and distribution of aortic pathology in &#946;-aminopropionitrile-treated C57/Bl6 mice. Technical limitations of this method include variations in the quality of the perfusion introduced by poor animal preparation, the application of proper methodologies for vessel size quantification, and the non-survivability of this procedure. This article details a methodology for the intravascular perfusion of a lead-based radiopaque silicone rubber for the quantitative characterization of aortopathy in a mouse model of aneurysm and dissection. In addition to visualizing aortic pathology, this method may be used for examining other vascular beds in vivo or vascular beds removed post-mortem.

This article describes a detailed methodology of using a radiopaque lead-based silicone rubber to perfuse the murine vasculature for aortic diameter quantification in a mouse model of aortic aneurysm and dissection.

Quantitative Micro-CT-Analyse der Aortopathy in einem Mausmodell der β-Aminopropionitrile-induzierte Aortenaneurysma und Dissektion

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of ...

Mechanisms Underlying Gut Hormone Secretion Using the Isolated Perfused Rat Small Intestine

The gut is the largest endocrine organ of the body, producing more than 15 different peptide hormones that regulate appetite and food intake, digestion, nutrient absorption and distribution, and post-prandial glucose excursions. Understanding the molecular mechanisms that regulate gut hormone secretion is fundamental for understanding and translating gut hormone physiology. Traditionally, the mechanisms underlying gut hormone secretion are either studied in vivo (in experimental animals or humans) or using gut hormone-secreting primary mucosal cell cultures or cell lines. Here, we introduce an isolated perfused rat small intestine as an alternative method for studying gut hormone secretion. The virtues of this model are that it relies on the intact gut, meaning that it recapitulates most of the physiologically important parameters responsible for the secretion in in vivo studies, including mucosal polarization, paracrine relationships and routes of perfusion/stimulus exposure. In addition, and unlike in vivo studies, the isolated perfused rat small intestine allows for almost complete experimental control and direct assessment of secretion. In contrast to in vitro studies, it is possible to study both the magnitude and the dynamics of secretion and to address important questions, such as what stimuli cause secretion of different gut hormones, from which side of the gut (luminal or vascular) is secretion stimulated, and to analyze in detail molecular sensors underlying the secretory response. In addition, the preparation is a powerful model for the study of intestinal absorption and details regarding the dynamics of intestinal absorption including the responsible transporters.

Here, we present a powerful and physiological model to study the molecular mechanisms underlying gut hormone secretion and intestinal absorption &#8212; the isolated perfused rat small intestine.

Mechanismen, die Hormonausschüttung der Darm mit der isolierten durchblutet Ratte Dünndarm

The gut is the largest endocrine organ of the body, producing more than 15 different peptide hormones that regulate appetite and food intake, digestion, ...