使用大鼠的耳镜可视化和行为拍片启动反应进行验证，对传导性听力损失进行简单手术诱导

本研究的总体目标是通过手术性酪板膜穿刺建立可靠的听力损失诱导，通过耳镜可视化和行为评估通过拍手拍板建立可靠的听力损失诱导。我们的实践的目的是开发一个人体听力传导障碍的模型。在实践中演示了导电性听力损失外科手术，这是一种简化的耳塞去除，通过耳镜可视化验证传导性听力损失的方法，以及一个简单的行为拍手，验证了传导性听力损失的发生。

我们描述的程序的主要优点是非侵入性程序，通过耳镜验证导电听力损失，以及通过拍手的验证。本研究及程序已获动物研究伦理委员会及香港城市大学、香港大学及香港特别行政区卫生署批准。对于目前的协议，我们选择老鼠，但你可以选择任何啮齿动物。

称量动物，确保正确麻醉IP注射。对于麻醉，重要的是动物有适当的剂量。把你的老鼠捡起来。

确保你正确剂量的氯胺酮和锡胺用于IP注射，并注射。确保执行手趾捏，以验证没有疼痛感。对于手术设置包括你的麻醉大鼠，微分，和你的耳镜。

请用乙醇彻底清洁手术区域。将手术窗帘放在清洁的长凳上。随后介绍你的剪刀、显微镜和老鼠。

你的剪刀的大小取决于你的啮齿动物的大小。在耳镜下，可视化大鼠的左耳和右耳，以确保健康的鼓膜。抓住螺旋，扩大外听觉管，使模糊和发黑。

在这里，您将介绍微分体。将微分体引入听觉管的中心，注意不要划破组织。听流行声音，然后扭曲，以确保位移的马勒乌斯。

确认一个成功的传导性听力损失手术，应用耳镜进行。使用小直径镜面镜评估手术前和手术后的每个大鼠耳朵。当用耳镜进行可视化时，应研究普通tympan膜和穿刺的tympan膜之间的差异。

在这里，左侧的正常tympanic膜有马雷乌斯的头部就位，与右侧被刺穿的发孔膜有巨大不同。被刺穿的发孔膜，在传导性听力损失手术后，已经取代了马氏，而香肠与马鲁姆的umbo破裂，头部完全缺失。啮齿动物术后护理。

将啮齿动物放在暖灯下的家中笼子里，并注射抗菌剂和葡萄糖。确认连接性听力损失与行为拍手的启动。CHL 大鼠被放置在两个相邻的笼子里，放在一只普通老鼠旁边。

这些被放置在一个寂静的房间里。站在半米远的地方，在等空的持续时间内鼓掌，时间特定数次。在这里，我们选择五个。

在这里，我们代表的行为结果。请注意，底部的老鼠不会跳到响亮的鼓掌声。屏幕顶部的老鼠被这些响亮的鼓掌声吓了一跳。

请研究这两只大鼠的拍拍区分。未能诱发传导性听力损失。未能诱发传导性听力损失可能是由一只或两只耳朵出血引起的。

在这种情况下，啮齿动物应该被安乐死。这表明剪刀没有接触发孔膜。过程中没有弹出的声音。

无爆裂声表示导电性听力损失程序差且不干净。无弹出的声音将意味着您的微分光器没有直接接触的 tympanic 膜。奥托镜可视化。

如果，当通过耳镜可视化时，发孔膜看起来正常，这将表示没有发生 CHL。对响亮的鼓掌声音测试的反应。这表明没有发生CHL，啮齿动物没有传导性听力损失。

当老鼠跳跃或被响亮的拍手声吓了一跳时，就会发生这种情况。我们描述的程序的主要优点是非侵入性程序，通过耳镜验证导电性听力损失，以及通过拍手的验证。做实际操作后，可以在啮齿动物模型中诱导传导性听力损失，并探索这种听力障碍的行为和心理物理表现。