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一步一步协议通过RIP-芯片的分离和鉴定RNA相关的复合物。
作为发展的高通量测序和高效的微阵列分析的结果,全球基因表达分析已经成为一个简单的数据收集和随时可用的形式。在许多研究,然而,疾病模型,靶基因mRNA的稳态水平不总是直接与稳态蛋白水平。基因转录后调控是一个可能的解释两者之间的分歧。结合的RNA结合蛋白(RBP)的带动下,形成核糖核蛋白(RNP)复合物与靶mRNA的转录后调控影响mRNA的定位,稳定性和翻译的。确定这些未知从头目标mRNA的细胞提取物中的RNP复合物的RBP和其造成的影响对蛋白质的输出理解的机制和功能的关键。该协议概述的方法被称为RNP免疫沉淀芯片(RIP-Chip)的,允许s的识别pecific的mRNA的核糖核蛋白复合物,在试验条件下,随着选项,以进一步优化的个别研究者的实验。有了这个重要的实验工具,研究人员能够探索与转录后基因调控,以及其他核蛋白的相互作用的复杂机制。
实验准备
在开始实验之前,这是关键的是具有所有试剂,容器和用具,无RNase。治疗玻璃器皿与RNase抑制剂(RNaseZAP,Ambion公司),然后用DEPC处理过的水冲洗。确保所有的试剂被确认为无RNase。
1。准备mRNP裂解液
2。外壳蛋白A琼脂糖珠与抗体和冲洗
3。免疫沉淀和RNA沉淀
4。 DNA酶和蛋白酶K的治疗
5。代表性的成果
如果程序进行了优化,并进行正确的免疫沉淀产生显着富集的mRNA靶标。通常情况下,根据RBP和它的靶mRNA(S),我们可以看到进行评估时,通过实时定量RT-PCR富集约10 - 50倍。许多限制性商业惯例的目标可以发现集体使用基因芯片分析。然而,这种方法是用实时定量RT-PCR方法相比更敏感的降解。根据上RBP,目标的数量和反应效率,微阵列可以揭示数百个新的目标,或者它可以只发现了很少,如果有的。例如,一个更好的特点RNA结合蛋白HuR的,转录后调控许多重要的生理基因1,2的表达和翻译。通过RIP芯片在乳腺癌细胞株中的HuR的ribonucleo复杂的分离,例如,显示的几个重要的已知HuR的目标,包括使用定量RT-PCR方法,如在图1中所示的β-肌动蛋白的富集。在这两种肿瘤细胞株的β-肌动蛋白富集的12 - 至15 - 倍。通常情况下,正确执行时,我们看到了显着的ENRichment各种细胞系中的β-肌动蛋白。然而,如果RIP没有发现任何显着的β-肌动蛋白的富集这表明与RIP的一个问题,可能需要重复该过程。此外,从这些细胞系的免疫沉淀的样品的微阵列分析的子集显示不同的表达HuR的目标在不同的雌激素受体 (ER)阳性的MCF-7癌细胞与ER阴性MB-231乳腺癌细胞株作为相比,表明在图2 1。这些目标分为几类:已知和未知的HuR的目标,无论是与癌症有关或无关的。例如,CALM2和CD9都是以前没有HuR的目标确定为癌基因。使用微阵列和确认用定量RT-PCR,CALM2和CD9被发现是5 - 至180倍富集HuR的粒料中的指示突出HuR的蛋白质和这些目标基因之间的相互作用。
图1。免疫沉淀和RIP MB-231(ER)和MCF-7(ER +)乳腺癌细胞 MB-231,MCF-7细胞裂解液进行免疫沉淀。使用抗HuR的单克隆抗体(3A2)和IgG1同型对照。 A. IP西户珥透露,预计大小的带检测3A2。在右边的面板上显示金额,户珥的输入裂解液使用这两个细胞系,与β-微管蛋白作为加载控制。 B.定量RT-PCR验证表明,3A2 IP地址从MB-231和MCF-7,15和11倍的富集β-肌动蛋白,已知的HuR的目标。 ΔΔCT值进行标准化,以GAPDH。进行了实验,一式两份,每份(n = 2时)。
图2。 HuR的RIP-CHIP确定不同的基因图谱,在ER +和ER-的乳腺癌细胞。HuR的免疫沉淀进行从MB-231或MCF-7细胞的裂解物使用的HuR抗体和IgG1同种型对照的Illumina公司Sentrix阵列(47,000个基因)杂交。控制信号中减去。结果代表来自12个不同的阵列的累计数据。实验进行了每种细胞系相匹配的控制组(n = 3),一式三份。秤是LOG2。
由于这个实验的性质,优化和经验的唯一可靠的方法,成功地获得预期的结果。在此过程中的许多步骤,温度和所用试剂和产品的高效的处理是极为重要的。适当的规划和执行的技术将有助于确保该实验是在一个合理的时间在推荐的最佳温度。 RNA分离实验的一个主要问题是由核糖核酸酶的敏感性RNA的降解。所有的试剂需要无RNA酶的无RNase的容器中并贮存或使用。这是一个关键的步骤,以确保你的基因样本的完整性。甚至当实验正确执行,然而,期望的结果可能无法实现由于RBP和其靶mRNA之间的相互作用的性质。
一个潜在的问题是有低,甚至无信号提取的RNA RIP-芯片。虽然有可能是从总RNA中的信号,这可能是由珠子被拉下的结合蛋白不足的结果。第一个故障排除步骤是确认的细胞裂解液正在使用的具体RBP有足够的表达。经确认后,蛋白质可被分离后最终NT2洗涤并重新悬浮在Laemmli缓冲或另一种合适的变性缓冲液,并加热,在95℃的5分钟。 Western blot分析可以用在这些样品中的协调与输入裂解液作为阴性对照,以确保有足够的下拉相关蛋白。
此外,因为裂解细胞需要访问这些组件,通常分离的蛋白质和mRNA的异常和不必要的相互作用的潜在可能被引入。这些相互作用可能与"吸收"靶mRNA结合蛋白通过非特异性相互作用。此外,蛋白质在这些不同的合作条件可以折叠的多种变体,其结合基序可能变得不可访问他们的目标基因,防止它们之间的相互作用。这些都加强了工作效率,以及利用最佳温度限制这些有害的相互作用的重要性。此外,为每个特定的目标蛋白的洗涤条件的优化将是至关重要的最大化的相互作用的纯度。可能需要更严格的洗涤条件。例如,洗涤缓冲液可以被补充与SDS或一个适当的量的尿素,以减少非特异性的相互作用和背景中的信号输出。这将是完全依赖于实验者的目标的RBP以及作为其独特的生理条件下与靶mRNA中。在某些情况下,将不适合于某些mRNA的分析工具,应当指出,在制备的样品。
最后,虽然在富集的RNA RIP是成功-RBP的互动与RIP(CHIP)的方法,一个众所周知的问题是无法确定具体的RBP结合域的瞬时表达目标。几种交联技术可用于随后RIP隔离独特的序列目标,但是,使用短波UV趋于导致核酸损伤。一种新方法被称为的PAR-CLIP,或光活化的核糖核苷的交联剂和immuoprecipitation,采用长波UV纳入thiouridine成新生RNA允许从稳定和瞬时RNA的相互作用的独特的结合位点的识别。
总体而言,RIP-芯片已经建立了一个很好的工具,用来分离和研究组,以及许多其他的研究小组之间的相互作用RNA结合蛋白和mRNA的目标。虽然敏感的性质和实践,正确执行此过程会产生这些RNP复合物隔离,直到最近,已经INACC的发现和分析essible为。
作者宣称,他们有没有利益冲突。
国防部(创意奖W81XWH-07-0406) - 乌鲁斯阿塔索伊
NIH RO1 A1080870 - 乌鲁斯阿塔索伊
NIH R21 A1079341 - 乌鲁斯阿塔索伊
密苏里州的机构资金 - 乌鲁斯阿塔索伊
Name | Company | Catalog Number | Comments |
试剂名称 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
1 M二硫苏糖醇 | 费舍尔 | BP172-5 | DTT |
DNA酶1 | Ambion公司 | 2235 | 无RNase |
乙二胺Tetraccetic酸 | 费舍尔 | BP118-500 | EDTA |
糖原 | Ambion公司 | 9516 | |
1 HEPES | 西格玛 | H3375-100G | pH值7.0 |
的Igepal NONIDET P-40 | USB | 78641 | NP40 |
1 M氯化钾 | 费舍尔 | BP366-500 | |
1 M的MgCl 2 | 费舍尔 | 乙P214-500 | |
NT2缓冲区 | 见下面 | ||
多聚核糖体裂解缓冲液 | 见下面 | ||
蛋白酶抑制剂鸡尾酒粒的 | 罗氏公司 | 11873580001 | |
蛋白A Sepharose磁珠 | 西格玛 | P3391 | |
蛋白酶K | 费舍尔 | BP1700-100 | |
核糖核酸酶出核糖核酸酶抑制剂 | Invitrogen公司 | 10777-019 | 40 U /μL |
1M NaCl的 | 费舍尔 | BP358-212 | |
十二烷基硫酸钠 | 费舍尔 | BP166-500 | SDS |
1 M的Tris-HCl | 费舍尔 | BP153-500 | pH值7.4 |
Trizol法 | Invitrogen公司 | 15596-026 | |
钒核糖核苷复合物 | 新英格兰实验室 | S1402S | VRC |
试剂全面评估 |
核糖核酸酶/无DNase的,DEPC处理过的玻璃器皿中制备试剂 |
多聚核糖体裂解缓冲液 |
100毫米氯化钾 |
5毫摩尔MgCl 2 |
的10mM HEPES(pH7.0)中 |
0.5%NP40 |
1毫米DTT |
100单位/毫升核糖核酸输出 |
400μMVRC |
蛋白酶抑制剂鸡尾酒平板的 |
5毫升的多核糖体的裂解缓冲液 |
添加50μl的1 M HEPES(pH值7.0) |
500μl的1 M KCL |
25微升的1 M的MgCl 2 |
25μl的NP40 |
4.7毫升无RNA酶的DNA酶H 2 O |
50微升的1 M DTT |
100 U / ml的RNA酶12.5μl的出 |
200μl蛋白酶抑制剂混合物(溶于根据制造商) |
10微升的200mM VRC(在使用时) |
NT2缓冲区 |
的50mM的Tris-HCl(pH7.4)中 |
150mM NaCl的 |
1毫摩尔MgCl 2 |
0.05%NP40 |
1 L的NT2缓冲器 |
的50毫升Tris(pH7.4)中 |
30毫升5 M氯化钠 |
1毫升1 M氯化镁 2 |
500μLNP40 |
820毫升RNA酶,无DNA酶H 2 O |
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